RU2138813C1 - Method of immunosorbent producing (variants) - Google Patents

Method of immunosorbent producing (variants) Download PDF

Info

Publication number
RU2138813C1
RU2138813C1 RU97119147A RU97119147A RU2138813C1 RU 2138813 C1 RU2138813 C1 RU 2138813C1 RU 97119147 A RU97119147 A RU 97119147A RU 97119147 A RU97119147 A RU 97119147A RU 2138813 C1 RU2138813 C1 RU 2138813C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
immunosorbent
carrier
producing
sorbent
activated
Prior art date
Application number
RU97119147A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU97119147A (en
Inventor
И.В. Жарникова
И.С. Тюменцева
В.И. Ефременко
Е.Н. Афанасьев
В.В. Бинатова
Original Assignee
Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт filed Critical Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority to RU97119147A priority Critical patent/RU2138813C1/en
Publication of RU97119147A publication Critical patent/RU97119147A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2138813C1 publication Critical patent/RU2138813C1/en

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Abstract

FIELD: medicine, immunology. SUBSTANCE: invention involves modifying a carrier with 0.3-0.4% of polyglucin solution. Sorbent is dried, activated with secondary sodium alkyl sulfate and activated sorbent is bound covalently with the protein ligand. By the first variant alumosilicate is used as a carrier and by the second variant - a mixture of magnetic powder and alumosilicate. Of protein ligands immunoglobulins against plague, cholera or tularemia pathogens can be used. Invention is used for production of immunosorbents for detection of specific reaction antigen-antibody. EFFECT: improved method of producing. 3 cl, 6 ex

Description

Изобретение относится к иммунохимии, микробиологии и может быть использовано в производстве иммуносорбентов для выявления специфической реакции антиген-антитело. The invention relates to immunochemistry, microbiology and can be used in the production of immunosorbents to detect a specific antigen-antibody reaction.

Известен способ получения иммуносорбента на основе целлюлозы, включающий ковалентное связывание белкового лиганда с носителем. Недостатком способа является низкий уровень специфичности сорбента, кроме того, органический носитель непрочен, подвержен разрушению при воздействии микроорганизмов (К.Л. Шаханина и соавт. Приготовление различных иммуносорбентов и их использование для выделения антигенов и антител. Ж. Вопросы мед.химии, N 6, 1976. - С. 127-136). A known method of producing an immunosorbent based on cellulose, comprising covalent binding of a protein ligand to a carrier. The disadvantage of this method is the low level of specificity of the sorbent, in addition, the organic carrier is unstable, subject to destruction when exposed to microorganisms (KL Shakhanina et al. Preparation of various immunosorbents and their use for the isolation of antigens and antibodies. J. Questions of medical chemistry, N 6 , 1976. - S. 127-136).

Перспективными для применения в методах иммуноанализа являются твердофазные носители, в том числе различные гранулированные сорбенты, а в последнее время сорбенты с магнитными свойствами. Solid-phase carriers, including various granular sorbents, and more recently, sorbents with magnetic properties, are promising for use in immunoassay methods.

Основными требованиями к таким сорбентам являются их инертность по отношению к биологическим препаратам, стабильность свойств, механическая прочность, достаточная сорбционная емкость при иммобилизации лигандов. Наиболее прочное присоединение лигандов к поверхности соpбентов обеспечивается ковалентной связью, которая осуществляется предварительной активацией поверхности сорбентов, например глутаровым альдегидом (В.И.Ефременко, В.Г.Пушкарь и др. Получение и применение магнитных сорбентов в методах иммуноанализа микроорганизмов. ЖМЭИ, N 12, 1989, c. 100-104). The main requirements for such sorbents are their inertness with respect to biological preparations, stability of properties, mechanical strength, sufficient sorption capacity when immobilizing ligands. The most durable attachment of ligands to the surface of sorbents is provided by a covalent bond, which is carried out by preliminary activation of the surface of sorbents, for example, glutaraldehyde (V.I. Efremenko, V.G. Pushkar, etc. Production and use of magnetic sorbents in immunoassay methods of microorganisms. ZhMEI, N 12 1989, p. 100-104).

Известен способ получения иммуносорбента, включающий активацию аминопропилсилохрома глутаровым альдегидом в концентрации 12,0-13,0% в течение 2 ч при комнатной температуре и pH 8.0 с последующим ковалентным связыванием белка A из Staphylococcus aureus и промывкой (a.с. СССР N 1517545, G 01 N 33/53, 15.12.93, Бюл. N 45-46). A known method of producing an immunosorbent, including the activation of aminopropylsilochrome by glutaraldehyde at a concentration of 12.0-13.0% for 2 hours at room temperature and pH 8.0, followed by covalent binding of protein A from Staphylococcus aureus and washing (a.c. USSR N 1517545, G 01 N 33/53, 12/15/93, Bull. N 45-46).

Используемый в качестве носителя аминопропилсилохром (производства Олайненского завода химреактивов) является дефицитным, активирующий агент недостаточно прочно закрепляется на поверхности носителя, так как глутаровый альдегид гидролизуется в водной среде, что приводит к неспецифической сорбции и снижению стабильности в биоспецифических процессах. The aminopropylsilochrome used as a carrier (manufactured by the Olainen Chemical Reagents Plant) is deficient, the activating agent is not firmly fixed to the surface of the carrier, since glutaraldehyde is hydrolyzed in an aqueous medium, which leads to non-specific sorption and a decrease in stability in biospecific processes.

Кроме того, полученный по этому способу иммуносорбент имеет недостаточную специфическую емкость и чувствительность в иммуноанализе. Способ не предусматривает получение иммуносорбента с магнитными свойствами. In addition, the immunosorbent obtained by this method has insufficient specific capacity and sensitivity in immunoassay. The method does not provide for immunosorbent with magnetic properties.

Известны способы получения иммуносорбентов с магнитными свойствами. Known methods for producing immunosorbents with magnetic properties.

Способ эмульсионной полимеризации, по которому в реакционную смесь сомономеров полиакриламида и катализатора включают магнитный порошок и лиганд (иммуноглобулины). При этом происходит механическое включение биологически активных веществ в ячеистую структуру полиакриламидного геля (Актуальные вопросы иммунодиагностики особо опасных инфекций. Тезисы докладов Всесоюзной научно-практической конференции, Ставрополь, 1986, c. 50-53). A method of emulsion polymerization, in which a magnetic powder and a ligand (immunoglobulins) are included in the reaction mixture of polyacrylamide comonomers and a catalyst. In this case, the biologically active substances are mechanically incorporated into the cellular structure of the polyacrylamide gel (Actual issues of immunodiagnostics of especially dangerous infections. Abstracts of the All-Union Scientific and Practical Conference, Stavropol, 1986, p. 50-53).

Недостатком способа является большой расход иммуноглобулинов концентрацией 40 мг/мл по белку, что повышает себестоимость препарата и ограничивает возможность организации промышленного производства. The disadvantage of this method is the high consumption of immunoglobulins with a concentration of 40 mg / ml for protein, which increases the cost of the drug and limits the possibility of organizing industrial production.

По другому способу сначала получают магносорбент путем предварительной обработки магнитного порошка с приданием ему коррозийной стойкости и гидрофильности, затем проводят эмульсионную полимеризацию смеси сомономеров полиакриламида и катализатора с обработанным магнитным порошком. Подготовленный магносорбент активируют 5%-ным глутаровым альдегидом в течение 18-20 ч и иммобилизуют специфичными иммуноглобулинами в растворе ФСБ при инкубации в течение 18-20 ч. Для блокировки несвязавшихся альдегидных групп магноиммуносорбенты дополнительно обрабатывают раствором альбумина в течение 1-3 ч (пат. РФ N 2068703, A 61 K 39/385, C 12 N 11/00 // G 01 N 33/53, оп. 10.11.96; Бюл. N 31). According to another method, first get the magnetic sorbent by pre-processing the magnetic powder with giving it corrosion resistance and hydrophilicity, then emulsion polymerization of a mixture of polyacrylamide comonomers and a catalyst with treated magnetic powder is carried out. The prepared magnetosorbent is activated with 5% glutaraldehyde for 18-20 hours and immobilized with specific immunoglobulins in a FSB solution during incubation for 18-20 hours. To block unbound aldehyde groups, the magneto-immunosorbents are additionally treated with an albumin solution for 1-3 hours (US Pat. RF N 2068703, A 61 K 39/385, C 12 N 11/00 // G 01 N 33/53, op. 10.11.96; Bull. N 31).

Недостатками способа являются длительность и многостадийность процесса его получения, использование дорогостоящих импортных токсичных реактивов, что ограничивает организацию промышленного производства и ухудшает экологические условия процесса. The disadvantages of the method are the duration and multi-stage process of its preparation, the use of expensive imported toxic reagents, which limits the organization of industrial production and worsens the environmental conditions of the process.

Полученные по этому способу иммуносорбенты имеют недостаточную специфическую емкость и чувствительность в иммуноанализах. The immunosorbents obtained by this method have insufficient specific capacity and sensitivity in immunoassays.

Известен способ получения иммобилизованной аминоацилазы, включающий ковалентное связывание фермента с активированным силохромом (а. с. СССР N 1060676, C 12 N 11/14; C 12 N 9/78; оп. 15.12.83, Бюл. N 46). A known method for producing immobilized aminoacylase, including covalent binding of an enzyme to activated silochrome (A.S. USSR N 1060676, C 12 N 11/14; C 12 N 9/78; op. 15.12.83, Bull. N 46).

Силохром обрабатывают аминопропилтриэтоксисиланом и активируют n-бензохиноном. После включения лиганда готовый продукт дополнительно обрабатывают водным раствором глиоксаля с целью предотвращения диссоциации ацилазы и повышения стабильности иммуносорбента. The silochrome is treated with aminopropyltriethoxysilane and activated with n-benzoquinone. After the ligand is turned on, the finished product is additionally treated with an aqueous glyoxal solution in order to prevent acylase dissociation and increase the stability of the immunosorbent.

Недостатком способа является использование дефицитных дорогостоящих препаратов, что затрудняет организацию промышленного производства. Способ не предусматривает получения иммуносорбента с магнитными свойствами. The disadvantage of this method is the use of scarce expensive drugs, which complicates the organization of industrial production. The method does not provide for immunosorbent with magnetic properties.

Целью изобретения является организация промышленного производства иммуносорбентов, в том числе и с магнитными свойствами, с повышенной специфической емкостью и чувствительностью за счет упрощения процесса, использование доступных и недорогих препаратов. The aim of the invention is the organization of industrial production of immunosorbents, including those with magnetic properties, with increased specific capacity and sensitivity due to the simplification of the process, the use of affordable and inexpensive drugs.

Поставленная цель достигается по двум вариантам. The goal is achieved in two ways.

По первому варианту способ получения иммуносорбентов включает модифицирование носителя, в качестве которого используют алюмосиликат, 0,3-0,4%-ным раствором полиглюкина, высушивание сорбента, активацию его вторичным алкилсульфатом натрия с последующим ковалентным связыванием с лигандом белковой природы. According to the first embodiment, the method of producing immunosorbents includes modifying the support, which is used as an aluminosilicate, with a 0.3-0.4% solution of polyglucin, drying the sorbent, activating it with secondary sodium alkyl sulfate, followed by covalent binding to a protein ligand.

По второму варианту способ получения иммуносорбентов включает модифицирование носителя, в качестве которого используют смесь алюмосиликата и магнитного порошка, 0,3-0,4%-ным раствором полиглюкина, высушивание сорбента, активацию его вторичным алкилсульфатом натрия с последующим ковалентным связыванием с лигандом белковой природы. According to the second variant, the method for producing immunosorbents involves modifying the carrier, which is used as a mixture of aluminosilicate and magnetic powder, with a 0.3-0.4% polyglucin solution, drying the sorbent, activating it with secondary sodium alkyl sulfate, followed by covalent binding to a protein ligand.

По отношению к прототипу, в качестве которого выбран способ получения иммуносорбента по а. с. СССР N 1517545, G 01 N 33/53, 15.12.93, Бюл. N 45-46, заявляемый способ имеет следующие отличительные признаки. In relation to the prototype, which is selected as the method of producing the immunosorbent according to a. with. USSR N 1517545, G 01 N 33/53, 12/15/93, Bull. N 45-46, the inventive method has the following distinctive features.

Использование в качестве носителя алюмосиликата, который является доступным мелкодисперсным наполнителем, представляющим собой комплексные анионы алюминия и кремния с избыточным отрицательным зарядом, который компенсирован щелочноземельными металлами. Носитель обладает повышенными адгезионными свойствами по сравнению с полиакриламидом и силохромами, что позволяет смешивать его с магнитным порошком без предварительной подготовки последнего. Use as a carrier aluminosilicate, which is an affordable finely divided filler, which is a complex anion of aluminum and silicon with an excess negative charge, which is compensated by alkaline earth metals. The carrier has improved adhesive properties compared to polyacrylamide and silochrome, which allows it to be mixed with magnetic powder without first preparing the latter.

Модифицирование носителя полиглюкином, который представляет собой полисахарид - линейный полимер на основе циклической формы глюкозы, где звенья связаны 1,6 - гликозидной связью. При обработке носителя на его поверхности образуется полимерная пленка, обеспечивающая повышение интенсивности последующей активации носителя и увеличение специфической емкости сорбента, а соответственно, и его чувствительность в иммуноанализах. Modification of the carrier with polyglucin, which is a polysaccharide, a linear polymer based on the cyclic form of glucose, where the units are linked by a 1,6 - glycosidic bond. When the carrier is treated, a polymer film is formed on its surface, which provides an increase in the intensity of subsequent activation of the carrier and an increase in the specific capacity of the sorbent, and, accordingly, its sensitivity in immunoassays.

Активация вторичным алкилсульфатом натрия, представляющим собой анионное поверхностно-активное вещество создает на модифицированной поверхности сорбента активные группы, способные к химическому взаимодействию с остатками различных аминокислот белкового лиганда, что способствует повышению специфической емкости и чувствительности иммуносорбента. Activation with sodium secondary alkyl sulfate, which is an anionic surfactant, creates active groups on the modified surface of the sorbent that are capable of chemical interaction with the residues of various amino acids of the protein ligand, which helps to increase the specific capacity and sensitivity of the immunosorbent.

Выбор заявляемых пределов концентрации полиглюкина является оптимальным, так, уменьшение его концентрации ниже 0,3% приводит к снижению специфической емкости и чувствительности иммуносорбента, а увеличение выше 0,4% уже нецелесообразно. The choice of the claimed concentration limits of polyglucin is optimal, so, a decrease in its concentration below 0.3% leads to a decrease in the specific capacity and sensitivity of the immunosorbent, and an increase above 0.4% is no longer practical.

Все используемые по заявляемому способу препараты доступны и недороги, способ обеспечивает простую и достаточно экологически безопасную технологию получения иммуносорбентов, в том числе и с магнитными свойствами. All drugs used according to the claimed method are available and inexpensive, the method provides a simple and environmentally friendly technology for the production of immunosorbents, including those with magnetic properties.

Возможность практического применения изобретения иллюстрируется примерами его конкретного выполнения с использованием полной совокупности заявляемых признаков. The possibility of practical application of the invention is illustrated by examples of its specific implementation using the full totality of the claimed features.

Пример 1. (вариант 1). 2,5 г алюмосиликатного носителя суспендируют в 40 мл 0,4%-ного водного раствора полиглюкина и выдерживают при температуре 24oC 1 ч. Полученный сорбент высушивают при 100-110oC в течение 30 мин. К 1 г полученного препарата добавляют 12 мл 24%-ного раствора хлорида натрия и 1 мл вторичного алкилсульфата натрия, инкубируют смесь 1-2 ч при температуре (37±1)oC. К 1 мл активированного сорбента приливают 1 мл чумных иммуноглобулинов с концентрацией белка 3,5 мг/мл. Смесь оставляют при (37±1)oC в течение 1-2 ч, далее надосадочную жидкость удаляют, а иммуносорбент промывают 0,9%-ным раствором хлорида натрия до "0" экстинции на спектрофотометре. Длительность получения иммуносорбента составляет 3-4 ч.Example 1. (option 1). 2.5 g of the aluminosilicate carrier are suspended in 40 ml of a 0.4% aqueous solution of polyglucin and kept at a temperature of 24 ° C. for 1 hour. The resulting sorbent is dried at 100-110 ° C. for 30 minutes. To 1 g of the obtained preparation, add 12 ml of a 24% solution of sodium chloride and 1 ml of secondary sodium alkyl sulfate, incubate the mixture for 1-2 hours at a temperature of (37 ± 1) o C. Pour 1 ml of plague immunoglobulins with a concentration of 1 ml of activated sorbent protein 3.5 mg / ml. The mixture is left at (37 ± 1) o C for 1-2 hours, then the supernatant is removed, and the immunosorbent is washed with 0.9% sodium chloride solution to “0” extinction on a spectrophotometer. The duration of the immunosorbent is 3-4 hours.

Результаты определения специфической емкости иммуносорбента проводят методом количественной иммунофлуоресценции (Владимцева И.В., Ефременко В.И., Климова И.М. и др. Лабораторное дело N 7, 1988, с.53-55). К 0,1 мл 10%-ного раствора иммуносорбента приливают 0,2 мл чумного микроба в концентрации 109-102 м. к./мл и инкубируют смесь 1 ч при 24oC. Далее иммуносорбент отмывают 50 мл 0,9%-ного раствора хлорида натрия. Вносят 0,2 мл иммуноглобулинов чумных люминесцирующих в рабочем разведении и инкубируют 30 мин. Отмывают сорбент 0,9%-ным раствором хлорида натрия и проводят регистрацию результатов в люминесцентном микроскопе Люмам Р-2 по общепринятой DASS-системе. Параллельно с опытной пробой измеряют люминесценцию контрольной пробы (иммуносорбент без контакта с чумным микробом). Специфическая емкость иммуносорбента выражается в условных единицах (у.е.), которые определяются отношением показателей интенсивности свечений опытной и контрольной проб. Измеренная таким образом емкость иммуносорбента составляет 10 у.е. Чувствительность метода составляет 102 м.к./мл чумного микроба.The results of determining the specific capacity of the immunosorbent are carried out by the method of quantitative immunofluorescence (Vladimtseva I.V., Efremenko V.I., Klimova I.M. et al. Laboratory case No. 7, 1988, p. 53-55). To 0.1 ml of a 10% solution of the immunosorbent, 0.2 ml of the plague microbe is added at a concentration of 10 9 -10 2 m.k. / ml and the mixture is incubated for 1 h at 24 o C. Next, the immunosorbent is washed with 50 ml of 0.9% sodium chloride solution. Contribute 0.2 ml of plague luminescent immunoglobulins in working dilution and incubate for 30 minutes. The sorbent is washed with a 0.9% sodium chloride solution and the results are recorded in a Lumam R-2 luminescent microscope using the conventional DASS system. In parallel with the experimental sample, the luminescence of the control sample (immunosorbent without contact with the plague microbe) is measured. The specific capacity of the immunosorbent is expressed in arbitrary units (cu), which are determined by the ratio of the luminous intensity indicators of the experimental and control samples. The immunosorbent capacity measured in this way is 10 cu The sensitivity of the method is 10 2 MK / ml of the plague microbe.

Пример 2 (вариант 2). Смесь, состоящую из 2,5 г алюмосиликатного наполнителя и 0,5 г магнитного порошка, суспендируют в 40 мл 0,4%-ного водного раствора полиглюкина и далее выдерживают при температуре 24oC 1 ч. Полученный сорбент высушивают при 100-110oC в течение 30 мин. К 1 г полученного препарата добавляют 12 мл 24%-ного раствора хлорида натрия и 1 мл вторичного алкилсульфата натрия, инкубируют смесь 1-2 ч при температуре (37±1)oC. К 1 мл активированного сорбента приливают 1 мл чумных иммуноглобулинов с концентрацией белка 3,5 мг/мл. Смесь оставляют при (37±1)oC в течение 1-2 ч, далее надосадочную жидкость удаляют, а иммуносорбент промывают 0,9%-ным раствором хлорида натрия до "0" экстинции на спектрофотометре. Длительность получения иммуносорбента составляет 3-4 ч.Example 2 (option 2). A mixture consisting of 2.5 g of aluminosilicate filler and 0.5 g of magnetic powder is suspended in 40 ml of a 0.4% aqueous solution of polyglucin and then kept at a temperature of 24 o C for 1 h. The resulting sorbent is dried at 100-110 o C for 30 minutes To 1 g of the obtained preparation, add 12 ml of a 24% solution of sodium chloride and 1 ml of secondary sodium alkyl sulfate, incubate the mixture for 1-2 hours at a temperature of (37 ± 1) o C. Pour 1 ml of plague immunoglobulins with a concentration of 1 ml of activated sorbent protein 3.5 mg / ml. The mixture is left at (37 ± 1) o C for 1-2 hours, then the supernatant is removed, and the immunosorbent is washed with 0.9% sodium chloride solution to “0” extinction on a spectrophotometer. The duration of the immunosorbent is 3-4 hours.

Специфическая емкость иммуносорбента, измеренная методом иммунофлуоресценции, составляет 10 у.е. Чувствительность метода составляет 102 м.к./мл чумного микроба.The specific capacity of the immunosorbent, measured by immunofluorescence, is 10 cu The sensitivity of the method is 10 2 MK / ml of the plague microbe.

Пример 3. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования сорбента используют 0,4%-ный раствор полиглюкина. Специфическая емкость составляет 10 у. е. Чувствительность метода составляет 102 м.к./мл чумного микроба.Example 3. The method of obtaining immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but to modify the sorbent using a 0.4% solution of polyglucin. The specific capacity is 10 oz. e. The sensitivity of the method is 10 2 MK / ml of the plague microbe.

Пример 4. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования сорбента используют 0,3%-ный раствор полиглюкина. Специфическая емкость составляет 9 у.е. Чувствительность метода составляет 103 м.к./мл чумного микроба.Example 4. A method of producing an immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but to modify the sorbent using 0.3% solution of polyglucin. The specific capacity is 9 cu The sensitivity of the method is 10 3 MK / ml of the plague microbe.

Пример 5. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но на последнем этапе синтеза к 1 мл активированного носителя приливают 1 мл туляремийных иммуноглобулинов с концентрацией по белку 3,5 мг/мл. Специфическая емкость иммуносорбента составляет 10 у.е. Чувствительность метода составляет 102 м.к./мл туляремийного микроба.Example 5. A method for producing an immunosorbent is carried out according to the procedure of Example 1, but at the last stage of synthesis, 1 ml of tularemia immunoglobulins with a protein concentration of 3.5 mg / ml is poured into 1 ml of activated carrier. The specific capacity of the immunosorbent is 10 cu The sensitivity of the method is 10 2 MK / ml tularemia microbe.

Пример 6. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 2, но на последнем этапе синтеза к 1 мл активированного носителя приливают 1 мл холерных иммуноглобулинов с концентрацией по белку 3,5 мг/мл. Специфическая емкость иммуносорбента составляет 10 у.е. Чувствительность метода составляет 102 м.к./мл холерного вибриона.Example 6. A method for producing an immunosorbent is carried out according to the procedure of Example 2, but at the last stage of synthesis, 1 ml of cholera immunoglobulins with a protein concentration of 3.5 mg / ml are poured into 1 ml of activated carrier. The specific capacity of the immunosorbent is 10 cu The sensitivity of the method is 10 2 MK / ml cholera vibrio.

Таким образом, изобретение практически осуществимо, его использование позволит организовать простую, экологически безопасную технологию производства иммуносорбентов, в том числе и с магнитными свойствами, которые по специфической емкости в 3 раза и чувствительности в 100 раз превосходят аналогичные препараты, полученные по известным способам. Thus, the invention is practicable, its use will allow you to organize a simple, environmentally friendly technology for the production of immunosorbents, including those with magnetic properties, which are 3 times more specific in sensitivity and 100 times more sensitive than similar products obtained by known methods.

Claims (2)

1. Способ получения иммуносорбента, включающий активацию носителя и ковалентное связывание с ним лиганда белковой природы, отличающийся тем, что в качестве носителя используют алюмосиликат, который модифицируют 0,3-0,4%-ным раствором полиглюкина и после высушивания активируют вторичным алкилсульфатом натрия. 1. A method of producing an immunosorbent, including activation of a carrier and covalent binding of a protein ligand to it, characterized in that an aluminosilicate is used as a carrier, which is modified with a 0.3-0.4% polyglucin solution and, after drying, it is activated with sodium sodium alkyl sulfate. 2. Способ получения иммуносорбента, включающий активацию носителя и ковалентное связывание с ним лиганда белковой природы, отличающийся тем, что в качестве носителя используют смесь алюмосиликата с магнитным порошком, который модифицируют 0,3-0,4%-ным раствором полиглюкина и после высушивания активируют вторичным алкилсульфатом натрия. 2. A method of producing an immunosorbent, including activation of a carrier and covalent binding of a protein ligand to it, characterized in that the carrier is a mixture of aluminosilicate with magnetic powder, which is modified with a 0.3-0.4% polyglucin solution and activated after drying secondary sodium alkyl sulfate.
RU97119147A 1997-11-20 1997-11-20 Method of immunosorbent producing (variants) RU2138813C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97119147A RU2138813C1 (en) 1997-11-20 1997-11-20 Method of immunosorbent producing (variants)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97119147A RU2138813C1 (en) 1997-11-20 1997-11-20 Method of immunosorbent producing (variants)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU97119147A RU97119147A (en) 1999-08-10
RU2138813C1 true RU2138813C1 (en) 1999-09-27

Family

ID=20199134

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU97119147A RU2138813C1 (en) 1997-11-20 1997-11-20 Method of immunosorbent producing (variants)

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2138813C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2451078C1 (en) * 2010-10-27 2012-05-20 Российская Федерация, От Имени Которой Выступает Министерство Промышленности И Торговли Российской Федерации Mus musculus cultivated hybrid cell strain 11d6 producer of monoclonal antibodies specific to lipopolysaccharide francisella tularensis
RU2652231C1 (en) * 2017-02-02 2018-04-25 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for obtaining a standard sample of magnetic sorbent for the design of medical immunobiological preparations
RU2756202C1 (en) * 2020-12-07 2021-09-28 Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for obtaining magnetic immunosorbents for selective concentration of f. tularensis from environmental objects with subsequent detection by the maldi-tof ms method
RU2762805C1 (en) * 2020-10-20 2021-12-23 Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for producing magnetic sorbents for pathogen concentration followed by mass spectrometry

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2451078C1 (en) * 2010-10-27 2012-05-20 Российская Федерация, От Имени Которой Выступает Министерство Промышленности И Торговли Российской Федерации Mus musculus cultivated hybrid cell strain 11d6 producer of monoclonal antibodies specific to lipopolysaccharide francisella tularensis
RU2652231C1 (en) * 2017-02-02 2018-04-25 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for obtaining a standard sample of magnetic sorbent for the design of medical immunobiological preparations
RU2762805C1 (en) * 2020-10-20 2021-12-23 Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for producing magnetic sorbents for pathogen concentration followed by mass spectrometry
RU2756202C1 (en) * 2020-12-07 2021-09-28 Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for obtaining magnetic immunosorbents for selective concentration of f. tularensis from environmental objects with subsequent detection by the maldi-tof ms method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5637508A (en) Biomolecules bound to polymer or copolymer coated catalytic inorganic particles, immunoassays using the same and kits containing the same
US4061466A (en) Biologically active composition and the use thereof
US4657873A (en) Preactivated plastics surfaces for immobilizing organo-chemical and biologic materials
JPS61218945A (en) Stable fluorescent rare-earth element mark and factored physiological reactive seed
EP0123901A2 (en) Procedure for the irreversible binding of proteins onto polystyrene surfaces with retention of their biological activity, polystyrene surfaces obtained by this procedure, and their use
CN102483409A (en) Detection method and quantification method of detection target
US5397695A (en) Attachment of compounds to polymeric particles using carbamoylonium compounds and a kit containing same
JPH0243947A (en) Application of poly(ethyleneimine) formed into derivative by protein immobilizing hydrophobic group for immunoassay and bioaffinity separation
RU2138813C1 (en) Method of immunosorbent producing (variants)
Hadas et al. A rapid and sensitive heterogeneous immunoelectrochemical assay using disposable electrodes
JPS61272656A (en) Method of detecting component in substance to be analyzed and composition for detection
RU2290641C1 (en) Method for carrying out immunoenzyme analysis
RU2246968C2 (en) Method for preparing magnetic immunosorbent for detection of bacterial antigens
JPS60500548A (en) Chromogenic support immunoassay
EP0152254A2 (en) Chromogenic support immunoassay utilizing labeled complement components
RU2102134C1 (en) Method of immunosorbent producing
RU2363732C1 (en) Method of producing immunosorbent
RU2253871C1 (en) Method for immunosorbent production
EP0136347A1 (en) Insoluble surfaces treated to inhibit non-specific protein binding
CA2264448C (en) An assay surface that permits an analyte releasing step
RU2271540C2 (en) Method for production of biomagnetic immunosorbent for bacterial antigen detection (variants)
RU2815784C1 (en) Method of producing polycaprolactone-based immunosorbent for isolating chlamydial immunoglobulins
RU2068703C1 (en) Method of magnoinnune sorbent preparing
SU1125549A1 (en) Immunosorbent producing method
JPS61274261A (en) Immunological diagnosis reagent