RU2102134C1 - Method of immunosorbent producing - Google Patents
Method of immunosorbent producing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2102134C1 RU2102134C1 RU95121203A RU95121203A RU2102134C1 RU 2102134 C1 RU2102134 C1 RU 2102134C1 RU 95121203 A RU95121203 A RU 95121203A RU 95121203 A RU95121203 A RU 95121203A RU 2102134 C1 RU2102134 C1 RU 2102134C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- immunosorbent
- producing
- specific capacity
- carrier
- plague
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 32
- 239000003547 immunosorbent Substances 0.000 title claims description 27
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 claims abstract description 11
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 11
- 229910002012 Aerosil® Inorganic materials 0.000 claims abstract description 9
- BAZAXWOYCMUHIX-UHFFFAOYSA-M sodium perchlorate Chemical compound [Na+].[O-]Cl(=O)(=O)=O BAZAXWOYCMUHIX-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 5
- 229910001488 sodium perchlorate Inorganic materials 0.000 claims abstract description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims description 6
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 6
- 239000003446 ligand Substances 0.000 claims description 3
- 206010035148 Plague Diseases 0.000 abstract description 12
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 abstract description 12
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 abstract description 6
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 abstract description 6
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 abstract description 6
- 208000034784 Tularaemia Diseases 0.000 abstract description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 abstract description 4
- 238000010166 immunofluorescence Methods 0.000 abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 4
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 abstract description 3
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 abstract description 3
- 125000003172 aldehyde group Chemical group 0.000 abstract description 2
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 abstract description 2
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 abstract description 2
- 230000003993 interaction Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 abstract description 2
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 abstract description 2
- 230000004913 activation Effects 0.000 abstract 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 abstract 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 abstract 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 11
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 10
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 6
- 239000002594 sorbent Substances 0.000 description 5
- 206010008631 Cholera Diseases 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 2
- 239000006247 magnetic powder Substances 0.000 description 2
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 2
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 241000607598 Vibrio Species 0.000 description 1
- 201000004050 brachyolmia-amelogenesis imperfecta syndrome Diseases 0.000 description 1
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 1
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 231100000481 chemical toxicant Toxicity 0.000 description 1
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 1
- 239000013068 control sample Substances 0.000 description 1
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 238000010556 emulsion polymerization method Methods 0.000 description 1
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004020 luminiscence type Methods 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 229920000620 organic polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 238000010301 surface-oxidation reaction Methods 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 239000003440 toxic substance Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к иммунохимии и может быть использовано для выявления специфической реакции антиген-антитело в диагностике с помощью иммуноферментного анализа, реакции иммунофлуоресценции и бактериологического метода. The invention relates to immunochemistry and can be used to detect a specific antigen-antibody reaction in diagnosis using enzyme immunoassay, immunofluorescence reaction and bacteriological method.
Известен способ получения иммуносорбента на основе целлюлозы, включающий ковалентное связывание белкового лиганда с носителем. Недостатком способа является низкий уровень специфичности сорбента, кроме того, органический носитель непрочен, подвержен разрушению при воздействии микроорганизмов [1]
Наиболее близким к предлагаемому способу является способ получения полиакриламидного иммуносорбента методом эмульсионной полимеризации, содержащего магнитный порошок (Fe2O3) [2]
Недостатками указанного способа являются низкий уровень специфической емкости иммуносорбента, длительность и многостадийность процесса его получения, использование дорогостоящих импортных токсичных реактивов.A known method of producing an immunosorbent based on cellulose, comprising covalent binding of a protein ligand to a carrier. The disadvantage of this method is the low level of specificity of the sorbent, in addition, the organic carrier is weak, prone to destruction when exposed to microorganisms [1]
Closest to the proposed method is a method for producing a polyacrylamide immunosorbent by emulsion polymerization method containing magnetic powder (Fe 2 O 3 ) [2]
The disadvantages of this method are the low level of the specific capacity of the immunosorbent, the duration and multi-stage process of its preparation, the use of expensive imported toxic reagents.
Цель изобретения повышение специфической емкости, чувствительности и упрощение способа получения иммуносорбента. The purpose of the invention is the increase in specific capacity, sensitivity and simplification of the method of producing immunosorbent.
Цель достигается тем, что для увеличения специфической емкости, чувствительности иммуносорбента проводят модифицирование кремнеземного носителя аэросила 0,2 0,4% -ным раствором декстрана с последующим окислением полученного сорбента перхлоратом натрия. The goal is achieved in that in order to increase the specific capacity and sensitivity of the immunosorbent, the silica support of Aerosil is modified with a 0.2 0.4% dextran solution, followed by oxidation of the resulting sorbent with sodium perchlorate.
Сущность предлагаемого способа заключается в том, что осуществляется активирование носителя органическим полимерным материалом декстраном, представляющим собой полисахарид линейный полимер на основе циклической формы глюкозы, где звенья связаны α -1,6-гликозидной связью. При последующем оксилении модифицированного сорбционного материала раствором перхлората натрия получаемый продукт активирован альдегидными группами, которые способны к химическому взаимодействию с чумными, туляремийными и холерными иммуноглобулинами. The essence of the proposed method lies in the fact that the carrier is activated with an organic polymer material, dextran, which is a linear polysaccharide polymer based on the cyclic form of glucose, where the units are linked by an α -1,6-glycosidic bond. In the subsequent oxidation of the modified sorption material with sodium perchlorate solution, the resulting product is activated by aldehyde groups, which are capable of chemical interaction with plague, tularemia and cholera immunoglobulins.
1. Пример 1. Смесь, состоящую из 5 г аэросила и 1 г магнитного порошка, суспендируют в 100 мл 0,5%-ного водного раствора декстрана и далее выдерживают при температуре 24oC 1 ч. Полученный сорбент высушивают при 100 - 110oC в течение 30 мин. К полученному препарату добавляют 50 мл водного раствора, содержащего 2 г перхлората натрия, инкубируют смесь в темноте 1 ч. Затем сорбент отмывают 100 мл дистиллированной воды. К 0,02 г носителя приливают 1 мл чумных иммуноглобулинов с концентрацией по белку 4 мг/мл. Смесь оставляют при 24oC в течение 2 ч, далее надсадочную жидкость удаляют, а носитель трижды по 10 мл промывают 0,9%-ным раствором хлорида натрия. Длительность получения иммуносорбента составляет 4,5 ч.1. Example 1. A mixture consisting of 5 g of aerosil and 1 g of magnetic powder is suspended in 100 ml of a 0.5% aqueous solution of dextran and then kept at a temperature of 24 o C for 1 hour. The resulting sorbent is dried at 100 - 110 o C for 30 minutes To the resulting preparation, add 50 ml of an aqueous solution containing 2 g of sodium perchlorate, incubate the mixture in the dark for 1 hour. Then, the sorbent is washed with 100 ml of distilled water. To 0.02 g of the carrier, 1 ml of plague immunoglobulins with a protein concentration of 4 mg / ml is poured. The mixture was left at 24 ° C for 2 hours, then the supernatant was removed, and the support was washed three times with 10 ml each with 0.9% sodium chloride solution. The duration of the immunosorbent is 4.5 hours
Результаты определения специфической емкости иммуносорбента проводят методом иммунофлуоресценции. К 0,5 мл 10%-ного раствора иммуносорбента приливают 1 мл чумного микроба в концентрации 103 микробных тел (м.т.)/мл и инкубируют смесь 1 ч при 24oC. Далее иммуносорбент отмывают 50 мл 0,9%-ного раствора хлорида натрия. Вносят 0,5 мл иммуноглобинов чумных люминесцирующих в рабочем разведении и инкубируют 30 мин. 30 мин. Отмывают сорбент 0,9%-ным раствором хлорида натрия и проводят регистрацию результатов в люминесцирующем микроскопе Люмам P-2 по общепринятой DASS-системе. Параллельно с опытной пробой измеряют люминесценцию контрольной пробы (иммуносорбент без контакта с чумным микробом). Специфическая емкость иммуносорбента, измеренная методом иммунофлуоресценции, составляет 10 у.е. /мг. Чувствительность метода составляет 103 м.т./мл чумного микроба.The results of determining the specific capacity of the immunosorbent are carried out by immunofluorescence. To 0.5 ml of a 10% solution of the immunosorbent is added 1 ml of the plague microbe at a concentration of 10 3 microbial bodies (bw) / ml and the mixture is incubated for 1 h at 24 o C. Next, the immunosorbent is washed with 50 ml of 0.9% - solution of sodium chloride. Contribute 0.5 ml of plague luminescent immunoglobins in working dilution and incubate for 30 minutes. 30 min. The sorbent is washed with a 0.9% sodium chloride solution and the results are recorded in a Lumam P-2 luminescent microscope using the generally accepted DASS system. In parallel with the experimental sample, the luminescence of the control sample (immunosorbent without contact with the plague microbe) is measured. The specific capacity of the immunosorbent, measured by immunofluorescence, is 10 cu / mg The sensitivity of the method is 10 3 MT / ml of the plague microbe.
Пример 2. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования аэросила используют 0,4%-ный раствор декстрана. Специфическая емкость составляет 10 у.е./ мг. Чувствительность метода составляет 103 м.т./мл чумного микроба.Example 2. A method of obtaining an immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but to modify aerosil using a 0.4% solution of dextran. The specific capacity is 10 cu / mg. The sensitivity of the method is 10 3 MT / ml of the plague microbe.
Пример 3. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования аэросила используют 0,3%-ный раствор декстрана. Специфическая емкость составляет 9 у.е. /мг. Чувствительность метода составляет 103 м.т./мл чумного микроба.Example 3. The method of producing immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but for the modification of Aerosil using a 0.3% solution of dextran. The specific capacity is 9 cu / mg The sensitivity of the method is 10 3 MT / ml of the plague microbe.
Пример 4. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования аэросила используют 0,2%-ный раствор декстрана. Специфическая емкость составляет 6 у.е./мг. Чувствительность метода составляет 103м.т /мл чумного микроба.Example 4. The method of producing immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but to modify aerosil using a 0.2% solution of dextran. The specific capacity is 6 cu / mg. The sensitivity of the method is 10 3 mt / ml of the plague microbe.
Пример 5. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но для модифицирования аэросила используют 0,1%-ный раствор декстрана. Специфическая емкость составляет 4 у.е./мг. Чувствительность метода составляет 103 м.т./мл чумного микроба.Example 5. The method of producing immunosorbent is carried out according to the method of example 1, but to modify aerosil using a 0.1% solution of dextran. The specific capacity is 4 cu / mg. The sensitivity of the method is 10 3 MT / ml of the plague microbe.
Пример 6. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но на последнем этапе синтеза к 0,02 г активированного носителя приливают 1 мл туляремийных иммуноглобулинов с концентрацией по белку 4 мг/мл. Специфическая емкость иммуносорбента составляет 103м.т./мл туляремийного микроба.Example 6. A method for producing an immunosorbent is carried out according to the procedure of Example 1, but at the last stage of synthesis, 1 ml of tularemia immunoglobulins with a protein concentration of 4 mg / ml is poured into 0.02 g of the activated carrier. The specific capacity of the immunosorbent is 10 3 MT / ml of tularemia microbe.
Пример 7. Способ получения иммуносорбента осуществляют по методике примера 1, но на последнем этапе синтеза к 0,02 г активированного носителя приливают 1 мл холерных иммуноглобулинов с концентрацией по белку 4 мг/мл. Специфическая емкость иммуносорбента составляет 10 у.е./мг. Чувствительность метода составляет 103м.т./мл. холерного вибриона.Example 7. A method for producing an immunosorbent is carried out according to the method of Example 1, but at the last stage of synthesis, 1 ml of cholera immunoglobulins with a protein concentration of 4 mg / ml are poured into 0.02 g of the activated carrier. The specific capacity of the immunosorbent is 10 cu / mg. The sensitivity of the method is 10 3 mt / ml. cholera vibrio.
В отличие от прототипа предлагаемый способ получения иммуносорбента повышает специфическую емкость препарата в 3 3,5 раза, увеличивает чувствительность и при этом сокращается длительность синтеза иммуносорбента в 9 раз. Результаты представлены в таблице. In contrast to the prototype, the proposed method for producing an immunosorbent increases the specific capacity of the drug by 3.5 times, increases sensitivity, and at the same time, the duration of the synthesis of immunosorbent is reduced by 9 times. The results are presented in the table.
Как видно из таблицы, для модифицирования аэросила оптимален раствор декстрана с концентрацией 0,2 0,4% При увеличении концентрации до 0,5% не наблюдается увеличение специфической емкости иммуносорбента, тогда как уменьшение до 0,1% снижает специфическую емкость иммуносорбента. As can be seen from the table, dextran solution with a concentration of 0.2 0.4% is optimal for modifying aerosil. When the concentration is increased to 0.5%, the specific capacity of the immunosorbent is not increased, while a decrease to 0.1% decreases the specific capacity of the immunosorbent.
Положительный эффект и преимущества предлагаемого способа получения иммуносорбента объясняются тем, что в процессе получения композиционного органо-минерального носителя осуществляется активирование его поверхности декстраном. При последующем поверхностном окислении функциональных групп полисахарида образуются высокоактивные группы, которые реагируют с молекулами лиганда белковой природы иммуноглобулины чумные, туляремийные и холерные. Иммуносорбент, полученный по предлагаемому способу, обеспечивает повышение специфической емкости, чувствительности, характеризуется механической, химической и микробиологической устойчивостью. Кроме того, в отличие от прототипа способ отличается простотой технологии получения, исключающей токсические химические реагенты. The positive effect and advantages of the proposed method for producing an immunosorbent are explained by the fact that in the process of obtaining a composite organo-mineral carrier, its surface is activated by dextran. Subsequent surface oxidation of the functional groups of the polysaccharide results in the formation of highly active groups that react with ligand molecules of a protein nature, plague, tularemia and cholera immunoglobulins. The immunosorbent obtained by the proposed method provides an increase in specific capacity, sensitivity, characterized by mechanical, chemical and microbiological stability. In addition, in contrast to the prototype, the method is characterized by the simplicity of the production technology, excluding toxic chemicals.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU95121203A RU2102134C1 (en) | 1995-12-09 | 1995-12-09 | Method of immunosorbent producing |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU95121203A RU2102134C1 (en) | 1995-12-09 | 1995-12-09 | Method of immunosorbent producing |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2102134C1 true RU2102134C1 (en) | 1998-01-20 |
| RU95121203A RU95121203A (en) | 1998-01-20 |
Family
ID=20174729
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU95121203A RU2102134C1 (en) | 1995-12-09 | 1995-12-09 | Method of immunosorbent producing |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2102134C1 (en) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2228764C2 (en) * | 2002-07-18 | 2004-05-20 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Method for preparing suspension diagnosticum (variants) |
| RU2253871C1 (en) * | 2003-12-15 | 2005-06-10 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Method for immunosorbent production |
| RU2257951C1 (en) * | 2004-05-17 | 2005-08-10 | Ставропольский государственный университет | Sorbent manufacturing method |
| RU2265611C1 (en) * | 2004-06-30 | 2005-12-10 | Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ставропольский государственный аграрный университет | Method for preparing immunosorbent |
| RU2363732C1 (en) * | 2008-03-18 | 2009-08-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of producing immunosorbent |
| EP2281632A1 (en) | 2009-07-02 | 2011-02-09 | Amic AB | Capillary driven assay device and its manufacture |
| RU2665165C1 (en) * | 2017-09-21 | 2018-08-28 | Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственное объединение "Иммунотэкс" | Method for producing an immunosorbent |
-
1995
- 1995-12-09 RU RU95121203A patent/RU2102134C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| 1. Шаханина К.Л. Приготовление различных иммуносорбентов и их использование для выделения антигенов и антител. Вопросы мед. химии. N 6, с.127 - 136. 2. Методические рекомендации "Приготовление и применение магнитных сорбентов для изучения антигенов микроорганизмов". - Волгоград, 1984, с.7 - 11. * |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2228764C2 (en) * | 2002-07-18 | 2004-05-20 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Method for preparing suspension diagnosticum (variants) |
| RU2253871C1 (en) * | 2003-12-15 | 2005-06-10 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Method for immunosorbent production |
| RU2257951C1 (en) * | 2004-05-17 | 2005-08-10 | Ставропольский государственный университет | Sorbent manufacturing method |
| RU2265611C1 (en) * | 2004-06-30 | 2005-12-10 | Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Ставропольский государственный аграрный университет | Method for preparing immunosorbent |
| RU2363732C1 (en) * | 2008-03-18 | 2009-08-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method of producing immunosorbent |
| EP2281632A1 (en) | 2009-07-02 | 2011-02-09 | Amic AB | Capillary driven assay device and its manufacture |
| RU2665165C1 (en) * | 2017-09-21 | 2018-08-28 | Общество с ограниченной ответственностью Научно-производственное объединение "Иммунотэкс" | Method for producing an immunosorbent |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Liu et al. | Al2O3 sol–gel derived amperometric biosensor for glucose | |
| Alonso-Lomillo et al. | Screen-printed biosensors in microbiology; a review | |
| Kirsch et al. | Towards the development of molecularly imprinted polymer based screen-printed sensors for metabolites of PAHs | |
| Sakuragawa et al. | Fluorometric determination of microamounts of hydrogen peroxide with an immobilized enzyme prepared by coupling horseradish peroxidase to chitosan beads | |
| DE3679688D1 (en) | ELECTROCHEMICAL DETECTION OF CIS-DIOLES. | |
| RU2138813C1 (en) | Method of immunosorbent producing (variants) | |
| Neubauer et al. | Fibre-optic glucose biosensor using enzyme membranes with 2-D crystalline structure | |
| CN111398396A (en) | Heavy metal Hg2+And Pb2+Preparation method of electrochemical sensor capable of detecting simultaneously | |
| CN113588752A (en) | Preparation method and application of electrochemiluminescence aptamer sensor | |
| Chauhan et al. | Chitosan-based biosensors-A comprehensive Review | |
| RU2102134C1 (en) | Method of immunosorbent producing | |
| Tsuji et al. | Enzyme immunosensors based on electropolymerized polytyramine modified electrodes | |
| AU742846B2 (en) | Particles | |
| Iijima et al. | Enzymatically amplified electrochemical detection for lipopolysaccharide using ferrocene-attached polymyxin B and its analogue | |
| JP6128578B2 (en) | Endotoxin concentration measuring method and endotoxin concentration measuring apparatus | |
| Nikoleli et al. | Development of an electrochemical biosensor for the rapid detection of cholera toxin using air stable lipid films with incorporated ganglioside GM1 | |
| Kurbanoglu et al. | Nanobiodevices for electrochemical biosensing of pharmaceuticals | |
| JPH06507479A (en) | sensor device | |
| Kubo et al. | Immobilization of creatinine deiminase on a substituted poly (methylglutamate) membrane and its use in a creatinine sensor | |
| JP4465452B2 (en) | Endotoxin concentration measurement method and endotoxin concentration measurement kit | |
| Chauhan et al. | Covalent immobilization of uricase inside a plastic vial for uric acid determination in serum and urine | |
| Wang et al. | Field-free electrochemical sensor: A novel inverted Y-type DNA conformation possessing specific self-transform capability for ultrasensitive determination of tetracycline | |
| RU2265611C1 (en) | Method for preparing immunosorbent | |
| Sun et al. | Visual detection of uric acid in serum through catalytic oxidation by a novel cellulose membrane biosensor with schiff base immobilized uricase | |
| RU2253871C1 (en) | Method for immunosorbent production |