RU2108580C1 - Method for determining fish blood toxicity - Google Patents

Method for determining fish blood toxicity Download PDF

Info

Publication number
RU2108580C1
RU2108580C1 RU96108149/13A RU96108149A RU2108580C1 RU 2108580 C1 RU2108580 C1 RU 2108580C1 RU 96108149/13 A RU96108149/13 A RU 96108149/13A RU 96108149 A RU96108149 A RU 96108149A RU 2108580 C1 RU2108580 C1 RU 2108580C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
fish
blood
toxicity
formations
determining
Prior art date
Application number
RU96108149/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU96108149A (en
Original Assignee
Тахтаев Фарид Халиуллич
Тахтаева Диляра Фаридовна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Тахтаев Фарид Халиуллич, Тахтаева Диляра Фаридовна filed Critical Тахтаев Фарид Халиуллич
Application granted granted Critical
Publication of RU2108580C1 publication Critical patent/RU2108580C1/en
Publication of RU96108149A publication Critical patent/RU96108149A/en

Links

Images

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A40/00Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
    • Y02A40/80Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
    • Y02A40/81Aquaculture, e.g. of fish

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves mixing fish blood serum with alpha amino acetic acid solution and holding it for some time. Then crystallographic examination is carried out on obtained changes. Crystallization centers of various forms, volumes and length as well as formations in the form of deposit being produced, toxicity is diagnosed. EFFECT: simplified method. 4 dwg, 1 tbl

Description

Изобретение относится к области токсикологии и позволяет установить токсичность жидких сред организма рыб. The invention relates to the field of toxicology and allows you to set the toxicity of the liquid media of the fish organism.

Известен способ выявления токсичности жидких сред организма рыб путем определения содержания гистамина в рыбопродуктах, в основе которого лежит измерение интенсивной флюоресценции производного, полученного при взаимодействии гистамина с о-фталевым альдегидом [1]. A known method for detecting the toxicity of liquid media of an organism of fish by determining the histamine content in fish products, which is based on measuring the intense fluorescence of a derivative obtained by the interaction of histamine with o-phthalaldehyde [1].

Недостатком этого способа является его техническая сложность использования (требуется длительное время для подготовки образца, высококвалифицированный персонал, сложная аппаратура и остродефицитные реактивы). The disadvantage of this method is its technical complexity of use (it takes a long time to prepare the sample, highly qualified personnel, sophisticated equipment and severely deficient reagents).

Известен способ определения содержания в сыворотке крови рыб общего белка, белковых фракций, которые разделяют методом электрофореза на бумаге. Изменение соотношения альбуминов и глобулинов и их содержания в сыворотке крови свидетельствуют об отравлении рыб [2]. A known method for determining the content in the blood serum of fish of total protein, protein fractions, which are separated by electrophoresis on paper. A change in the ratio of albumin and globulin and their content in the blood serum indicates fish poisoning [2].

Недостатком этого способа является техническая сложность исполнения (требуется длительное время для разделения белков на фракции, а также остродефицитные реактивы). The disadvantage of this method is the technical complexity of execution (it takes a long time to separate proteins into fractions, as well as acute deficiency reagents).

Кристаллографический метод нашел применение в биологии и медицине, в частности для судебно-химического анализа, качественного определения лекарственных препаратов, диагностики степени, злокачественности опухолевого процесса, нарушения мозгового кровообращения и т.п. The crystallographic method has found application in biology and medicine, in particular for forensic chemical analysis, qualitative determination of drugs, diagnosis of the degree, malignancy of the tumor process, cerebrovascular accident, etc.

Задачей изобретения является разработка способа определения токсичности крови рыб путем обеспечения более высокой чувствительности определения. Указанный результат достигается тем, что проводят инкубацию сыворотки крови с кристаллообразующим веществом с последующей кристаллизацией смеси, включающий использование раствора альфа-аминоуксусной кислоты и при появлении центров кристаллизации различной формы, объема и длины а также образований в форме налета определяют токсичность крови рыб. The objective of the invention is to develop a method for determining the toxicity of blood fish by providing a higher detection sensitivity. This result is achieved by the incubation of blood serum with a crystal-forming substance followed by crystallization of the mixture, including the use of an alpha-aminoacetic acid solution, and, when crystallization centers of various shapes, volumes and lengths, as well as plaque formations appear, determine the toxicity of the blood of fish.

Способ осуществляют следующим образом. К 5 мл профильтрованного водного раствора альфа-аминоуксусной кислоты /глицина/ добавляют 0,2 мл сыворотки крови рыб, тщательно перемешивают и смесь переносят в чашки Петри, которые помещают в термостат при 37oC или оставляют на воздухе до полного высыхания содержимого чашки. После инкубации в течение 5 - 6 ч проводят кристаллографическое обследование полученных изменений, контролем служит кристаллография чистого глицина и при появлении центров кристаллизации различной формы и объема, и длины, а также образований в форме налета определяют токсичность крови рыб.The method is as follows. To 5 ml of filtered aqueous solution of alpha-aminoacetic acid / glycine / add 0.2 ml of blood serum of fish, mix thoroughly and transfer the mixture to Petri dishes, which are placed in a thermostat at 37 o C or left in air until the contents of the cup are completely dried. After incubation for 5-6 hours, a crystallographic examination of the obtained changes is carried out, crystallography of pure glycine is used as a control, and when crystallization centers of various shapes and volumes, lengths, and also formations in the form of plaque appear, toxicity of fish blood is determined.

Примеры выполнения способа. Для сравнения на фиг. 1 представлена кристаллография чистого глицина (масштаб 1:1). Она состоит из мягких полиэдрических монокристаллов размерами 4 - 6 мм, различаемых визуально, также встречаются единичные кристаллы типа параллелепипеда длиной до 30 мм. На фиг.2 представлена кристаллография, полученная из сыворотки крови сазана, выловленного 25.05.94 г. в Чардарьинском водохранилище. К 0,2 мл сыворотки крови рыбы добавляют 5 мл раствора альфа-аминоуксусной кислоты, после чего проводят инкубацию на воздухе до кристаллизации смеси. На кристаллографической картине отчетливо видны три поля, состоящие: первая часть состоит из кристаллических образований; вторая часть представляет собой как бы песок; третья часть имеет вид налета, представляющего собой узорчатую решетку размером до 40 мм. Examples of the method. For comparison, in FIG. 1 shows the crystallography of pure glycine (scale 1: 1). It consists of soft polyhedral single crystals with sizes of 4-6 mm, distinguishable visually, and there are also single crystals of the parallelepiped type up to 30 mm long. Figure 2 presents crystallography obtained from serum of carp, caught on 05.25.94, in the Chardarya reservoir. To 0.2 ml of fish blood serum add 5 ml of alpha-aminoacetic acid solution, after which they are incubated in air until the mixture crystallizes. Three fields are clearly visible in the crystallographic picture, consisting of: the first part consists of crystalline formations; the second part is like sand; the third part has the form of plaque, which is a patterned lattice up to 40 mm in size.

В первой части имеется 4 - 5 центров кристаллизации, имеющих форму листика с прожилками, делящие на две части эти образования и отходящими от них в стороны прожилками. Характерным является присутствие монокристаллов полиэдрической формы размерами 4 - 5 мм и кристаллические образования длиной до 20 мм, а также группы кристаллов в форме копья или качелей и наличие образований в виде веток. In the first part, there are 4–5 crystallization centers in the form of a leaf with veins, dividing these formations into two parts and veins extending from them to the sides. Characteristic is the presence of single crystals of a polyhedral shape with sizes of 4-5 mm and crystalline formations up to 20 mm long, as well as groups of crystals in the form of spears or swings and the presence of formations in the form of branches.

На фиг.3 представлена кристаллография, полученная из сыворотки крови сазана, выловленного 24.09.94 г. весом 1450 г в Чардарьинском водохранилище. К 0,2 мл сыворотки крови добавляют 5 мл раствора альфа-аминоуксусной кислоты, после чего проводят инкубацию на воздухе до кристаллизации смеси. На кристаллографической картине наблюдаются три участка. На первом участке отчетливо видно образование кристаллов различной формы, на втором - образование как бы из песка; на третьем - налет в виде узорчатой решетки длиной до 65 мм. На первом участке наблюдаются 2 - 3 центра кристаллизации, имеющих форму полурадиалий, длиной до 5 - 6 мм, кристаллообразования, имеющие форму качелей или копья до 8 - 10 мм. Монокристаллы имеют размеры 4 - 6 мм в форме параллелепипеда длиной 8 - 10 мм. Видно много образований аморфной формы. Figure 3 presents crystallography obtained from serum of carp, caught on 24.09.94, weighing 1450 g in the Chardarya reservoir. To 0.2 ml of blood serum add 5 ml of a solution of alpha-aminoacetic acid, followed by incubation in air until the mixture crystallizes. Three regions are observed in the crystallographic picture. In the first section, the formation of crystals of various shapes is clearly visible, in the second - the formation of sand, as it were; on the third - plaque in the form of a patterned lattice up to 65 mm long. In the first section, 2–3 crystallization centers are observed, having the form of half-radials, up to 5–6 mm long, and crystal formations having the form of a swing or spear, up to 8–10 mm. The single crystals have a size of 4-6 mm in the form of a parallelepiped with a length of 8-10 mm. One can see many formations of amorphous form.

На фиг.4 представлена кристаллография, полученная из сыворотки крови карася, выловленного 28.05.94 г. в Чардарьинском водохранилище. К 0,2 мл сыворотки крови рыбы добавляют 5 мл раствора альфа-аминоуксусной кислоты, после чего проводят инкубацию на воздухе до появления кристаллов. В поле зрения видно большое количество монокристаллов полиэдрической формы 4 - 6 мм, а также монокристаллы типа параллелепипеда длиной до 40 мм. Высота отдельных монокристаллов достигает 2 - 3 мм, отдельный участок до 50 мм представляет собой решетку, построенную из кристаллов, перекрещивающихся под разными углами. В то же время отчетливо видны центры кристаллизации в форме налета, представляющие собой образование в виде "изморози". Отчетливо видны центры кристаллизации, построенные из кристаллов в форме "глыбки" или полурадиальных. Отдельные кристаллические образования имеют форму "копья" и "качелей". Отмечается высокая степень "структурирования" кристаллической картины. Figure 4 presents crystallography obtained from the blood serum of crucian carp caught on 05.28.94 in the Chardarya reservoir. To 0.2 ml of fish blood serum add 5 ml of alpha-aminoacetic acid solution, after which they are incubated in air until crystals appear. A large number of single crystals of a polyhedral shape of 4-6 mm, as well as single crystals of the parallelepiped type up to 40 mm in length, are visible in the field of view. The height of individual single crystals reaches 2–3 mm, a separate section of up to 50 mm is a lattice built of crystals intersecting at different angles. At the same time, crystallization centers in the form of plaque, which are a formation in the form of "frost", are clearly visible. Crystallization centers built from crystals in the form of a “block” or semi-radial are clearly visible. Separate crystalline formations are in the form of "spears" and "swings". A high degree of "structuring" of the crystalline picture is noted.

На основании сопоставления кристаллической картины альфа-аминоуксусной кислоты, использованной в качестве контроля, можно сделать заключение о токсичности исследованных проб крови рыб. Based on a comparison of the crystalline pattern of alpha-aminoacetic acid used as a control, we can draw a conclusion about the toxicity of the studied fish blood samples.

Для доказательства выявленных токсических изменений кристаллической картины жидких сред организма рыб было проведено изучение содержания среднемолекулярных пептидов (СМ) крови рыб. Известно, что при эндогенной интоксикации организма человека и животных выявляется широкий спектр метаболитов, оказывающих токсическое действие. Интегральным показателем эндогенной интоксикации считают уровень соединений групп средних молекул (СМ) [3]. To prove the revealed toxic changes in the crystal picture of the liquid media of the fish organism, a study was made of the content of average molecular peptides (SM) of fish blood. It is known that with endogenous intoxication of the human and animal body, a wide range of metabolites with a toxic effect is detected. An integral indicator of endogenous intoxication is considered the level of compounds of groups of medium molecules (SM) [3].

В качестве условной нормы принято содержания СМ в крови карпа, выловленного из водоема Чиликского прудхоза 22.03.1994 г. Содержание См в крови 5 исследованных взрослых рыб весом 950 ± 109 г составило 0,051 ± 0,003 У.Е. (см. таблицу). В отличие от контроля содержание среднемолекулярных пептидов в крови сазана /взрослые рыбы весом 1510 ± 129 г/, отловленного весной, составляет в среднем 0,14 ± 0,02 У.Е. Уровень СМ пептидов у сазана (взрослые рыбы весом 1846 ± 140,0 г), обследованного осенью (24.09.94 г.) составляет 0,283 ± 0,032 У.Е. В крови карася (средний вес - 517 ± 13,5 г), отловленного 28.05.94 г., величина СМ пептидов составила 0,143 ± 0,037 У.Е. The content of SM in the blood of carp caught from the reservoir of the Chilik pond farm on March 22, 1994 was taken as a conditional norm. The content of cm in the blood of 5 examined adult fish weighing 950 ± 109 g was 0.051 ± 0.003 U.E. (see table). In contrast to the control, the content of medium-molecular peptides in the blood of carp (adult fish weighing 1510 ± 129 g /), caught in the spring, averages 0.14 ± 0.02 U.E. The level of SM peptides in carp (adult fish weighing 1846 ± 140.0 g) examined in the fall (September 24, 94) is 0.283 ± 0.032 U.E. In the blood of crucian carp (average weight 517 ± 13.5 g), captured on 05/28/94, the magnitude of the peptides was 0.143 ± 0.037 U.E.

Видно, что содержание СМ пептидов в крови рыб увеличивается осенью (уровень воды в водоеме резко падает) и зависит от уровня загрязнения водоема токсическими веществами, которые аккумулируются в органах и тканях рыб и вызывают эндогенную интоксикацию организма рыб. При сопоставлении с условной нормой содержание СМ пептидов видно, что их уровень возрастает в 3 раза при обследовании рыб весной, а осенью увеличивается почти в 6 раз. На основании сопоставления кристаллограмм сыворотки крови обследованных рыб с выявленным уровнем эндогенной интоксикации, определяемой по содержанию СМ пептидов, можно заключить, что представляемый способ определения токсичности выявляет эндогенную интоксикацию организма рыб, проявляющуюся в выявляемой токсичности крови по кристаллограмме. It is seen that the content of SM peptides in the blood of fish increases in the fall (the water level in the reservoir drops sharply) and depends on the level of pollution of the reservoir with toxic substances that accumulate in the organs and tissues of the fish and cause endogenous intoxication of the fish organism. When comparing with the conventional norm, the content of SM peptides shows that their level increases 3 times when examining fish in the spring, and in the autumn it increases almost 6 times. Based on a comparison of the serum crystallograms of the examined fish with the detected level of endogenous intoxication, determined by the content of SM peptides, it can be concluded that the presented method for determining toxicity reveals endogenous intoxication of the fish organism, which manifests itself in detectable blood toxicity by crystallogram.

Способ был опробирован в лаборатории болезней рыб Казахского научно-исследовательского института рыбного хозяйства Академии сельхознаук Республики Казахстан на 113 экземплярах рыб. The method was tested in the laboratory of fish diseases of the Kazakh Research Institute of Fisheries of the Academy of Agricultural Sciences of the Republic of Kazakhstan on 113 fish.

Способ определения токсичности крови рыб является высокочувствительным, быстрым (2 - 5 ч), показательным и информативным, может быть использован в целях охраны окружающей среды. The method for determining the toxicity of blood fish is highly sensitive, fast (2 - 5 hours), indicative and informative, can be used to protect the environment.

Источники:
1. Временные гигиенические нормативы и метод определения содержания гистамина в рыбопродуктах. Министерство здравоохранения, М. 1986.
Sources:
1. Temporary hygiene standards and a method for determining the content of histamine in fish products. Ministry of Health, M. 1986.

2. Метелев В. В. , Канаев А.И., Дзасохова Н.Г. Водная токсикология М.: Колос, 1971, с. 72. 2. Metelev V.V., Kanaev A.I., Dzasokhova N.G. Water toxicology M .: Kolos, 1971, p. 72.

3. Николайчик В. В., Бычко Г.Н., Пилотович В.С. и др. Об использовании метода гель-фильтрации для определения тяжести интоксикации и эффективности детоксикационных процедур. Метод. письмо - Минск, 1983. 3. Nikolaychik V.V., Bychko G.N., Pilotovich V.S. and others. On the use of gel filtration to determine the severity of intoxication and the effectiveness of detoxification procedures. Method. letter - Minsk, 1983.

Claims (1)

Способ определения токсичности крови рыб путем анализа сыворотки крови рыб, отличающийся тем, что при анализе крови сыворотку смешивают с раствором альфа-аминоуксусной кислоты и о наличии токсичности крови судят по появлению центров кристаллизации различной формы, объема и длины, а также образований в форме налета. A method for determining the toxicity of fish blood by analyzing the blood serum of fish, characterized in that during the blood analysis, the serum is mixed with a solution of alpha-aminoacetic acid and the presence of blood toxicity is judged by the appearance of crystallization centers of various shapes, volumes and lengths, as well as formations in the form of plaque.
RU96108149/13A 1995-04-26 1996-04-24 Method for determining fish blood toxicity RU2108580C1 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KZ950317.1 1995-04-26
KZ950317 1995-04-26

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2108580C1 true RU2108580C1 (en) 1998-04-10
RU96108149A RU96108149A (en) 1998-09-20

Family

ID=19720754

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96108149/13A RU2108580C1 (en) 1995-04-26 1996-04-24 Method for determining fish blood toxicity

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2108580C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Временные гигиенические нормативы и метод определения содержания гистамина в рыбопродуктах. - М.: Министерство здравоохранения СССР, 1986. 2. Метелев В.В. и др. Водная токсикология. - М.: Коос, 1971, с.72. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hokama et al. A radioimmunoassay for the detection of ciguatoxin
Hutchinson et al. Seasonal trends in serum lysozyme activity and total protein concentration in dab (Limanda limandaL.) sampled from Lyme Bay, UK
Robertson The physical chemistry of the proteins
Goldwasser et al. [7] Erythropoietin: Assay and study of its mode of action
CN103901208A (en) Improved monocyte activation test better able to detect non-endotoxin pyrogenic contaminants in medical products
DE2134928B2 (en) Immunological reagent and process for its preparation
RU2108580C1 (en) Method for determining fish blood toxicity
SU1767433A1 (en) Method of determining insulin resistance of immunogenesis in patients with type 1 diabetes mellitus
Yanagihara et al. Protein synthesis in various regions of rat hippocampus during learning
Mangum et al. Analysis of the feeding response in the onuphid polychaete Diopatra cuprea (Bosc)
EA024423B1 (en) Immunoassay for detecting antibiotics
JP4105793B2 (en) Test method by biological system
Young On the optical rotatory power of crystalline ovalbumin and serum albumin
RU2325645C1 (en) Method of bacterial endotoxins detection with application of tal-test implying coagulogene polymer registered by structure of generated protein fractals
Hansen Biological samples: their composition and properties, and their collection and storage
RU2377561C2 (en) Method for biotesting activity of preparations derived from earthworms
RU2331437C1 (en) Method of producing house dust mite (dermatophagoides) allergen
RU2129270C1 (en) Method of determining toxicity of fish blood
JP2003514539A (en) Biochemical identification methods
EP1664771A2 (en) A method for qualitative and/or quantitative detection of polyethylene glycols in biological fluids
RU2077060C1 (en) Test-system for determination of protein in urine
EP0642020A4 (en) Method for determining lithogenesis activity rate and urina lithogenetic salts content in urolithiasis.
Benga et al. Comparative nuclear magnetic resonance studies of diffusional water permeability of red blood cells from different species. XII. Dog (Canis familiaris) and cat (Felis domestica)
RU2166913C1 (en) Method for determining immunoglobulins available in colostrum serum
RU2038820C1 (en) Method for determining nonspecific resistance of animal organism

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20040425