RU2107911C1 - Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices - Google Patents

Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices Download PDF

Info

Publication number
RU2107911C1
RU2107911C1 RU94012403A RU94012403A RU2107911C1 RU 2107911 C1 RU2107911 C1 RU 2107911C1 RU 94012403 A RU94012403 A RU 94012403A RU 94012403 A RU94012403 A RU 94012403A RU 2107911 C1 RU2107911 C1 RU 2107911C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sections
histological
pbs
minutes
differential diagnosis
Prior art date
Application number
RU94012403A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU94012403A (en
Inventor
Д.В. Козлов
Original Assignee
Новокузнецкий институт усовершенствования врачей
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Новокузнецкий институт усовершенствования врачей filed Critical Новокузнецкий институт усовершенствования врачей
Priority to RU94012403A priority Critical patent/RU2107911C1/en
Publication of RU94012403A publication Critical patent/RU94012403A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2107911C1 publication Critical patent/RU2107911C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves dying cytoplasm of parenchymatous cells in histologic slices. Pregnancy-associated alpha2-glycoprotein detection is carried out by means of immune histochemical reaction with primary antibodies used against pregnancy-associated alpha2-glycoprotein in 8-10 mcg/l concentration. EFFECT: enhanced accuracy of prognosis.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии и патологической анатомии. The invention relates to medicine, namely to immunology and pathological anatomy.

Известен способ дифференциальной диагностики гиперпластических процессов и рака молочной железы в гистологических срезах окрашенных наиболее популярным в гистологической практике методом окраски - гематоксилином и зозином. Способ основан на микроскопическом выявлении в концевых отделах долек, внутридольковых и внедольковых протоках пролифератов клеток. К дифференциально-диагностическим критериям в одних случаях относятся мономерфизм, в других - полиморфизм клеток и гиперхромию ядер, нарушение полярности расположения клеток и увеличение их митотической активности (Ермилова В.Д. Опухоли молочной железы. Руководство по патологоанатомической диагностике опухолей человека. /Под ред. Н.А.Краевского, А.В.Смольянникова, Д.С.Саркисова. - З-е изд. -М.: Медицина, 1982, c. 210-232). При достаточно высокой степени дифференсировки опухоли неинфильтрующие раки молочной железы представляют значительные трудности для дифференциальной диагностики с предраковыми гиперпластическими процессами, а также доброкачественными опухолями. Наиболее достоверным признаком является инвазивный рост (Головин Д.И. Ошибки и трудности гистологической диагностики опухолей: руководство для врачей. -Л.: Медицина, 1982., c 304 ), что знаменует собой уже диссеминированную форму заболевания. В связи с этим приходится прибегать к исследованию многочисленных срезов материала и консультативной помощи. В отдельных случаях все эти приемы не позволяют утвердительно ответить на вопрос о наличии или отсутствии рака, особенно при исследовании материала срочных биопсий. A known method for the differential diagnosis of hyperplastic processes and breast cancer in histological sections stained with the most popular staining method in histological practice is hematoxylin and zosin. The method is based on microscopic detection in the terminal sections of lobules, intralobular and extralobular ducts of cell proliferates. Differential diagnostic criteria in some cases include monomerphism, in others - cell polymorphism and hyperchromia of the nuclei, violation of the polarity of the cells and an increase in their mitotic activity (Ermilova V.D. Breast tumors. Guide to the pathological diagnosis of human tumors. / Ed. N.A. Kraevsky, A.V. Smolyannikov, D.S. Sarkisov .-- 3rd ed. -M .: Medicine, 1982, p. 210-232). With a sufficiently high degree of tumor differentiation, non-infiltrating breast cancers present significant difficulties for differential diagnosis with precancerous hyperplastic processes, as well as benign tumors. The most reliable sign is invasive growth (Golovin DI Errors and difficulties in the histological diagnosis of tumors: a guide for doctors. -L .: Medicine, 1982., p 304), which marks an already disseminated form of the disease. In this regard, it is necessary to resort to the study of numerous sections of material and advice. In some cases, all these techniques do not allow an affirmative answer to the question of the presence or absence of cancer, especially when examining urgent biopsy material.

Известен способ, выбранный в качестве прототипа, диагностики рака в гистологических срезах, основанный на иммунологическом выявлении индивидуальных веществ в клетках, являющийся в настоящее время одним из современных и быстро развивающихся методов уточняющей гисто- и цитологической диагностики (Франк Г.А., Пугачев К.К., Шабалова И.П., Шимбирева И.Б.//Арх.пат. 1990. т. 52, N. 8, с. 70-74). В настоящее время известно значительное число разнообразных типов биологических веществ, которые относят к опухолевым маркерам: онкофетальные антигены, изоэнзимы, продукты онкогенов, специфические для той или другой клетки белки, т.е. маркеры клеток; муцимы и другие гликопротеины; тормоны и прочие соединения (Романенко А.М.//Арх.пат. 1989, т.51, N 4, с. 58-62; Bobrow L. A. , Nartou A.J. //Cancer Surv. - 1987. Vol.6, N 2. - p. 209-225; Virji M.A., Mercer D.W., Herberman R.B. //CA. - 1988. - Vol.38, N 2.-p. 104-126.). There is a method selected as a prototype for the diagnosis of cancer in histological sections, based on the immunological identification of individual substances in cells, which is currently one of the modern and rapidly developing methods for specifying histological and cytological diagnostics (Frank G.A., Pugachev K. K., Shabalova I.P., Shimbireva I.B. // Arch.pat. 1990.v. 52, N. 8, p. 70-74). Currently, a significant number of various types of biological substances are known that are classified as tumor markers: oncofetal antigens, isoenzymes, oncogen products, proteins specific for one or another cell, i.e. cell markers; mucimas and other glycoproteins; brakes and other connections (Romanenko A.M. // Arch. Pat. 1989, vol. 51, No. 4, pp. 58-62; Bobrow LA, Nartou AJ // Cancer Surv. - 1987. Vol.6, N 2 . - p. 209-225; Virji MA, Mercer DW, Herberman RB // CA. - 1988. - Vol.38, N 2.-p. 104-126.).

Несмотря на обилие исследований, в которых описываются и применяются опухолевые маркеры, последние не позволяют отличить доброкачественные клетки от злокачественных (Donat E.E. //Canad. S. wed. Technob- 1987. -Vol. 49, N3. -P. 173-176; Wick M. R. // Arch, Patn. Lab. Med. -1986.-Vol.110, N 3.-p. 180-181). Despite the abundance of studies that describe and use tumor markers, the latter do not distinguish between benign and malignant cells (Donat EE // Canad. S. wed. Technob-1987.-Vol. 49, N3. -P. 173-176; Wick MR // Arch, Patn. Lab. Med. -1986.-Vol. 110, N 3.-p. 180-181).

Задача предлагаемого способа заключается в проведении иммуногистохимической реакции, позволяющей с помощью разной строго специфической окраски показать различия интактного, гиперплазированного и атипичного эпителия ацинусов долек, внутридольковых и внедольковых протоков. The objective of the proposed method is to conduct an immunohistochemical reaction that allows using different strictly specific colors to show the differences in the intact, hyperplastic and atypical epithelium of the acini of the lobules, intralobular and extralobular ducts.

Поставленная задача достигается тем, что в способе, основанном на проведении иммунопероксидазной реакции, используют первичные антитела против одного из белков семейства макроглобулинов ассоциированного с беременностью альфа2-гликопротеина (АБГ), являющегося ингибитором протеиназ. Следует подчеркнуть, что АБГ не является специфической принадлежностью эпителия молочной железы. Этот белок принимает участие в рестрикции активности протеиназ различной локализации. Биосинтез его осуществляется в основном лимфоцитами (преимущественно B-лимфоцитами) и моноцитами. Таким образом, нормальные структуры молочной железы АБГ не содержат.This object is achieved in that in a method based on an immunoperoxidase reaction, primary antibodies are used against one of the proteins of the macroglobulin family of pregnancy-associated alpha 2 -glycoprotein (ABG), which is an inhibitor of proteinases. It should be emphasized that ABG is not a specific affiliation of the epithelium of the mammary gland. This protein is involved in the restriction of the activity of proteinases of various localization. Its biosynthesis is carried out mainly by lymphocytes (mainly B-lymphocytes) and monocytes. Thus, the normal breast structure does not contain ABH.

Известно, что злокачественный рост сопровождается увеличением активности лизосомальных протеинов (Веремеенко К.Н., Голобородько О.П., Кизим А.М. Протеолиз в норме и при патологии. Киев: Здоровья, 1988, c.200 ). It is known that malignant growth is accompanied by an increase in the activity of lysosomal proteins (Veremeenko KN, Goloborodko OP, Kizim AM Proteolysis in normal and pathological conditions. Kiev: Health, 1988, p.200).

Одновременно с этим образованием комплексов белки семейства макроглобулинов - ферменты вводят в действие мощный иммуносупрессивный потенциал, который и защищает злокачественное новообразование от атак иммунокомпетентных клеток. Следовательно, рост опухоли увеличивает ее защитный потенциал. Концентрация рестрикторов протеиназ хорошо корректирует с массой злокачественной опухоли, что связывают с локальным биосинтезом макроглобулинов опухолевыми клетками (Зорин Н.А., Зорина Р.М. Горин В.С.//Акушерство и гинекология. 1986. N 6, с. 6-9). Simultaneously with this formation of complexes, proteins of the macroglobulin family - enzymes, activate a powerful immunosuppressive potential, which protects the malignant neoplasm from attacks of immunocompetent cells. Consequently, tumor growth increases its protective potential. The concentration of proteinase restrictors is well adjusted with the mass of the malignant tumor, which is associated with the local biosynthesis of macroglobulins by tumor cells (Zorin N.A., Zorina R.M. Gorin V.S. // Obstetrics and Gynecology. 1986. N 6, p. 6- 9).

Эпителиальные образования, подвергшиеся гиперплазии, находятся в промежуточном положении и в отличие от нормальных клеток содержат АБГ, но в значительно меньшем количестве, чем злокачественные клетки. Таким образом, иммуногистохимическая детекция АБГ отразит количественные отличия содержания данного белка в эпителиальных структурах, находящихся в разных состояниях, соответствующих норме, гиперплазии и озлокачествлению. Epithelial lesions that underwent hyperplasia are in an intermediate position and, unlike normal cells, contain ABH, but in a much smaller amount than malignant cells. Thus, immunohistochemical detection of ABH will reflect the quantitative differences in the content of this protein in epithelial structures in different states corresponding to normal, hyperplasia and malignancy.

Сущность предлагаемого способа иммуногистохимической детекции АБГ в гистологических срезах молочной железы, ее пролифератов и рака заключаются в следующем. Проводимая реакция включает ряд этапов. The essence of the proposed method for immunohistochemical detection of ABH in histological sections of the breast, its proliferates and cancer are as follows. The reaction involves a number of steps.

1. Регидратация срезов и удаление из них остатков парафина. Для этого срезы проводят через три порции о-ксилола, абсолютный этанол, спирт 70 и 56%-ный, а также забуференный физиологический раствор (ЗФР) - по три минуты в каждой порции жидкости. 1. Rehydration of sections and removal of paraffin residues from them. For this, sections are carried out through three portions of o-xylene, absolute ethanol, alcohol 70 and 56%, as well as buffered saline solution (PBS) - for three minutes in each portion of the liquid.

2. Блокирование эндогенной пероксидазы осуществляют путем внесения на срез нескольких капель 3%-ный перекиси водорода на 10 мин. 2. Blocking endogenous peroxidase is carried out by introducing into the cut several drops of 3% hydrogen peroxide for 10 minutes

3. Блокирование неспецифической сорбции иммуноглобулинов достигают путем нанесения на срез лошадиной сыворотки в разведении 1:20 на 30 мин. 3. Blocking non-specific sorption of immunoglobulins is achieved by applying horse serum to a slice at a dilution of 1:20 for 30 minutes.

4. Этап обработки гистологических срезов первичными антителами в концентрации 8-10 мкг/мл, разведенными в ЗФР с добавлением 3%-ного альбумина и 0,01%-ного азида натрия. Инкубация срезов осуществляется в течение 30 мин при 37oC.4. The stage of processing histological sections with primary antibodies at a concentration of 8-10 μg / ml, diluted in PBS with the addition of 3% albumin and 0.01% sodium azide. Incubation of sections is carried out for 30 min at 37 o C.

5. Инкубация гистологчиеских срезов вторичными антителами в разведении 10 мкг/мл ЗФР на 30 мин. 5. Incubation of histological sections with secondary antibodies at a dilution of 10 μg / ml PBS for 30 minutes.

6. Обработка срезов комплексом авидин-пероксидаза в концентрации 25 мкг/мл в течение 30 мин. 6. Processing sections with a complex of avidin-peroxidase at a concentration of 25 μg / ml for 30 minutes

7. Проявление пероксидазной активности 3,3-диаминобензидином тетрахлоридом (ДАБ) и ЗФР в соотношении 500 мкг ДАБ на 1 мл ЗФР. К свежеприготовленному раствору прибавляют 0,03%-ную перекись водорода и срезы инкубируют с субстратом в течение 10 мин. Реакцию останавливают погружением срезов в дистиллированную воду. В дальнейшем срезы проводят по спиртам восходящей концентрации и трем порциям о-ксилола, заключают в бальзам. 7. The manifestation of peroxidase activity of 3,3-diaminobenzidine tetrachloride (DAB) and PBS in the ratio of 500 μg DAB per 1 ml of PBS. 0.03% hydrogen peroxide is added to the freshly prepared solution and the sections are incubated with the substrate for 10 minutes. The reaction is stopped by immersion of the slices in distilled water. Subsequently, the sections are carried out with up-concentration alcohols and three portions of o-xylene, enclosed in a balm.

При проведении иммуногистохимической реакции используют "положительный контроль", т. е. срезы аналогичной исследуемой ткани с заведомо позитивной реакцией. В каждом случае применяют и "отрицательный контроль"; т.е. срезы аналогичной исследуемой ткани, в которых при проведении иммунопероксидазной реакции опущены 4 или 5 этапы ее с целью обнаружения возможного фонового окрашивания. Другими словами, применяют тест на качество забивки эндогенной пероксидазы. When conducting an immunohistochemical reaction, a "positive control" is used, that is, sections of a similar tissue under investigation with a known positive reaction. In each case, apply a "negative control"; those. sections of a similar test tissue, in which during the immunoperoxidase reaction, 4 or 5 steps are omitted to detect possible background staining. In other words, an endogenous peroxidase clogging test is used.

В результате реакции получают отчетливую яркую окраску цитоплазмы клеток злокачественного новообразования, достигающей коричневого цвета. Эпителиальные структуры нормальной железы при этом не окрашиваются. Паренхиматозные образования участков гиперплазии имеют неравномерную окраску золотисто-желтого цвета. As a result of the reaction, a clear bright coloration of the cytoplasm of the cells of the malignant neoplasm, reaching a brown color, is obtained. The epithelial structures of the normal gland are not stained. Parenchymal formations of hyperplasia sites have an uneven golden yellow color.

Предлагаемый способ позволяет одномоментно распознавать в гистологическом срезе эпителиальные клетки нормальной ткани, участков гиперплазии и рака. Это позволяет повысить точность диагностики как отдельных из этих состояний органа, так и осуществлять дифференциальную диагностику их между собой. The proposed method allows simultaneous recognition in the histological section of epithelial cells of normal tissue, areas of hyperplasia and cancer. This allows you to increase the accuracy of diagnosis as individual of these states of the body, and to carry out differential diagnosis between them.

Пример 1. Иммуногистохимическая детекция АБГ в ткани молочной железы с наличием очагов правильной типичной пролиферации эпителия протоков и долек. Example 1. Immunohistochemical detection of ABH in breast tissue with the presence of foci of the correct typical proliferation of epithelium of ducts and lobules.

Фрагменты операционного материала фиксируют 15%-ным водным нейтральным раствором формалина в течение суток при комнатной температуре. В последующем материал подвергают парафиновой проводке, заключающейся в проведении его по батарее, включающей ряд жидкостей: о-ксилол 30 мин, две порции 70% и 80%-ного этанола по 6 ч в каждой, три порции 96%-ного этанола по 6 ч в каждой, абсолютный спирт 30 мин, абсолютный спирт - ксилол в равных соотношениях в течение 2 ч, ксилолпарафин в равных соотношениях при температуре 37oC 2 ч, три порции парафина при температуре 58oC по одному часу в каждой. Пропитанные парафином кусочки охлаждают на воздухе и наклеивают на деревянные блоки. Гистологические срезы толщиной 5-8 мкм готовят с помощью микротома.Fragments of the surgical material are fixed with a 15% aqueous neutral formalin solution for 24 hours at room temperature. Subsequently, the material is subjected to paraffin wiring, which consists of conducting it on a battery, including a number of liquids: o-xylene for 30 minutes, two portions of 70% and 80% ethanol for 6 hours each, three portions of 96% ethanol for 6 hours in each, absolute alcohol for 30 minutes, absolute alcohol - xylene in equal proportions for 2 hours, xylene paraffin in equal proportions at a temperature of 37 ° C for 2 hours, three portions of paraffin at a temperature of 58 ° C for one hour each. The paraffin-impregnated pieces are cooled in air and glued onto wooden blocks. Histological sections 5-8 μm thick are prepared using a microtome.

Депарафинирование гистологических срезов проводят обработкой их в трех порциях о-ксилола по 5 мин в каждой и последующим прогреванием срезов в термостате при 37oC в течение трех часов. Обезвоживание гистологических срезов достигают обработкой их в четырех порциях этанола (абсолютный, 96, 70 и 56%-ный) по три минуты в каждой. Далее срезы переводят на 5 мин в 0,05 М раствор ЗФР pH 7,6. Блокирование эндогенной пероксидазы (этот и последующие этапы реакции проводят в чашках Петри) осуществляют свежим 3%-ным раствором перекиси водорода. Длительность этапа 10 мин ЗФР 5 мин.Histological sections are dewaxed by treating them in three portions of o-xylene for 5 minutes each and then heating the sections in an thermostat at 37 ° C for three hours. Dehydration of the histological sections is achieved by treating them in four portions of ethanol (absolute, 96, 70 and 56%) for three minutes each. Next, the sections are transferred for 5 min in a 0.05 M solution of PBS pH 7.6. Blocking endogenous peroxidase (this and subsequent reaction steps is carried out in Petri dishes) is carried out with a fresh 3% hydrogen peroxide solution. The duration of the stage is 10 min. PBS 5 min.

Далее срезы выдерживают под каплей 5%-ного раствора лошадиного сывороточного альбумина (50 мг альбумина в 1 мл ЗФР). После этого избыток альбумина стряхивают и аккуратно обтирают предметные стекла вокруг среза. На последний наносят каплю аффинно-очищенных кроличьих антител против АБГ в концентрации 8 мкг/мл ЗФР. Раствор антител включает в себе 3% альбумина и 0,01% азида натрия. Инкубацию срезов проводят в течение 30 мин при 37oC в чашках Петрия с созданием условий влажной камеры (на дно чашки укладывают фильтровальную бумагу, смоченную ЗФР). Две порции ЗФР по 5 мин в каждой, после чего раствор ЗФР меняют на новый. Инкубируют гистологические срезы во вторичных антителах в разведении 10 мкг на 1 мл ЗФР в течение 30 мин. ЗФР 5 мин. Обрабатывают срезы комплексом авидин-пероксидаза в течение 30 мин. Непосредственно перед применением комплекс разводят в 200 раз в ЗФР. ЗФР 5 мин. Иммунологическое проявление осуществляют в 0,03%-ном растворе субстрата в течение 10 мин. Раствор получают смешивая непосредственно перед применением 1 мг ДАБ с 2 мл ЗФР и 0,2 мл 0,3%-ной перекиси водорода. Реакцию останавливают споласкиванием срезов в двух порциях дистиллированной воды.Next, the sections are kept under a drop of 5% solution of equine serum albumin (50 mg of albumin in 1 ml of PBS). After that, excess albumin is shaken off and the glass slides carefully wiped around the slice. A drop of affinity-purified rabbit anti-ABH antibody is applied to the latter at a concentration of 8 μg / ml PBS. The antibody solution includes 3% albumin and 0.01% sodium azide. Incubation of sections was carried out for 30 min at 37 o C in Petri dishes with the creation of the conditions of a wet chamber (filter paper moistened with PBS was placed on the bottom of the cup). Two portions of PBS for 5 minutes each, after which the PBS solution is changed to a new one. Histological sections were incubated in secondary antibodies at a dilution of 10 μg per 1 ml of PBS for 30 minutes. SFR 5 min. Slices are treated with avidin-peroxidase complex for 30 minutes. Immediately before use, the complex is diluted 200 times in PBS. SFR 5 min. Immunological manifestation is carried out in a 0.03% solution of the substrate for 10 minutes The solution is prepared by mixing immediately before use 1 mg of DAB with 2 ml of PBS and 0.2 ml of 0.3% hydrogen peroxide. The reaction is stopped by rinsing the sections in two portions of distilled water.

Результат читают под разными увеличениями светового микроскопа по наличию окраски цитоплазмы клеток в опытных микропрепаратах и "положительном контроле", при отсутствии окраски - в "отрицательном контроле". Использование способа показало, что цитоплазма эпителия протоков и долек нормальной ткани молочной железы не имеет окраски. В очагах гиперплазии цитоплазма эпителиальных структур окрашена в золотисто-желтый цвет. Разные клетки данной зоны имеют неравномерную окраску, что объясняется различной степенью их гиперплазии. Полученные данные позволяют объективнее различать зоны интактного и гиперплазированного эпителия, за счет чего повышается точность диагностики гиперпластических процессов в молочной железе. The result is read under different magnifications of the light microscope by the presence of cytoplasm staining in experimental micropreparations and the "positive control", in the absence of color - in the "negative control". Using the method showed that the cytoplasm of the epithelium of the ducts and lobules of normal breast tissue is not stained. In the foci of hyperplasia, the cytoplasm of epithelial structures is colored in golden yellow. Different cells of this zone have an uneven color, which is explained by the varying degree of their hyperplasia. The data obtained make it possible to more objectively distinguish between areas of intact and hyperplasticized epithelium, which increases the accuracy of diagnosis of hyperplastic processes in the mammary gland.

Пример 2. Иммуногистохимическая детекция АБГ в ткани рака молочной железы. Example 2. Immunohistochemical detection of ABH in breast cancer tissue.

Фрагмент операционного материала фиксируют в водном нейтральном растворе формалина 15%-ной концентрации в течение суток при комнатной температуре. В последующем материал подвергают парафиновой проводке, заключающейся в проведении его по батарее, включающей ряд жидкостей: о-ксилол 30 мин, три порции 70% и 80%-ного этанола по 6 ч в каждой, три порции 96%-ного этанола по 6 ч в каждой, абсолютный спирт 30 мин, абсолютный спирт-ксилол в равных соотношениях в течение 2 ч, ксилол-парафин в равных соотношениях при температуре 37oC 2 ч, три порции парафина при температуре 58oC по одному часу в каждой. Пропитанные парафином кусочки охлаждают на воздухе и наклеивают на деревянные блоки. Гистологические срезы толщиной 5-8 мкм готовят с помощью микротома. Депарафинирование гистологических срезов проводят обработкой их в трех порциях о-ксилола по 5 мин в каждой и последующим прогреванием срезов в термостате при 37oC в течение 3 ч. Обезвоживание гистологических срезов достигают обработкой их в четырех порциях этанола (абсолютный, 96, 70 и 56%-ный) по три минуты в каждой.A fragment of the operating material is fixed in an aqueous neutral solution of formalin of 15% concentration during the day at room temperature. Subsequently, the material is subjected to paraffin wiring, which consists in conducting it through a battery, including a number of liquids: o-xylene for 30 minutes, three portions of 70% and 80% ethanol for 6 hours each, three portions of 96% ethanol for 6 hours in each, absolute alcohol for 30 minutes, absolute alcohol-xylene in equal proportions for 2 hours, xylene-paraffin in equal proportions at a temperature of 37 ° C for 2 hours, three portions of paraffin at a temperature of 58 ° C for one hour each. The paraffin-impregnated pieces are cooled in air and glued onto wooden blocks. Histological sections 5-8 μm thick are prepared using a microtome. Histological sections are dewaxed by treating them in three portions of o-xylene for 5 minutes each and then heating the sections in an thermostat at 37 ° C for 3 hours. Histological sections are dehydrated by treating them in four portions of ethanol (absolute, 96, 70 and 56 %) for three minutes each.

Далее срезы переводят на 5 мин в 0,05 M раствор ЗФР с pH 7,6. Блокирование эндогонной пероксидазы (этот и последующие этапы реакции проводят в чашках Петри) осуществляют свежим раствором 3%-ной перекиси водорода. Длительность этапа 10 мин. ЗФР 5 мин. Далее выдерживают срезы под каплей 5%-ного раствора лошадиного сывороточного альбумина (50 мг альбумина в 1 мл ЗФР). После этого избыток альбумина стряхивают и аккуратно отбирают предметные стекла вокруг срезов. На последние наносят каплю аффинно-очищенных кроличьих первичных антител против АБГ в концентрации 8 мкг/мл ЗФР. Раствор антител включает в себе 3% альбумина и 0,01% азида натрия. Инкубацию срезов осуществляют в течение 30 мин при 37oC в чашках Петри с созданием условий влажной камеры (на дно чашки укладывают фильтровальную бумагу, смоченную ЗФР). Две порции ЗФР по 5 мин в каждой, после чего раствор ЗФР меняют на новый. Инкубируют гистологические срезы во вторичных антителах в разведении 10 мкг на 1 мл ЗФР в течение 30 мин. ЗФР 5 мин. Обрабатывают срезы комплексом авидин-пероксидаза в течение 30 мин. Непосредственно перед применением комплекс разводят в 200 раз в ЗФР. ЗФР 5 мин. Иммунологическое проявление осуществляют в 0,03%-ном растворе субстрата в течение 10 мин. Раствор получают смешивая непосредственно перед использованием 1 мг ДАБ с 2 мл ЗФР 0,2 мл 0,3%-ной перекиси водорода. Реакцию останавливают споласкиванием срезов в двух порциях дистиллированной воды.Next, the sections are transferred for 5 min in a 0.05 M solution of PBS with a pH of 7.6. Blocking of endogonal peroxidase (this and subsequent reaction steps is carried out in Petri dishes) is carried out with a fresh solution of 3% hydrogen peroxide. The duration of the stage is 10 minutes. SFR 5 min. Next, the sections are kept under a drop of 5% solution of equine serum albumin (50 mg of albumin in 1 ml of PBS). After that, excess albumin is shaken off and the specimen slides are carefully taken around the sections. A drop of affinity-purified rabbit primary anti-ABH antibody is applied to the latter at a concentration of 8 μg / ml PBS. The antibody solution includes 3% albumin and 0.01% sodium azide. Incubation of sections was carried out for 30 minutes at 37 ° C in Petri dishes with the creation of a wet chamber (filter paper moistened with PBS was placed on the bottom of the cup). Two portions of PBS for 5 minutes each, after which the PBS solution is changed to a new one. Histological sections were incubated in secondary antibodies at a dilution of 10 μg per 1 ml of PBS for 30 minutes. SFR 5 min. Slices are treated with avidin-peroxidase complex for 30 minutes. Immediately before use, the complex is diluted 200 times in PBS. SFR 5 min. Immunological manifestation is carried out in a 0.03% solution of the substrate for 10 minutes The solution is prepared by mixing immediately before use 1 mg of DAB with 2 ml of PBS 0.2 ml of 0.3% hydrogen peroxide. The reaction is stopped by rinsing the sections in two portions of distilled water.

Далее срезы проводят через свежие восходящей концентрации (56, 70, 96%-ный и абсолютный спирт) и три порции ксилола путем тщательного споласкивания в каждой жидкости. Затем срезы заключают в бальзам. Next, the sections are carried out through fresh ascending concentrations (56, 70, 96% and absolute alcohol) and three portions of xylene by thorough rinsing in each liquid. Then the slices are enclosed in a balm.

Результат: цитоплазма опухолевых клеток отчетливо и равномерно окрашена в желто-коричневый цвет, что объясняется, учитывая абсолютную специфичность метода, наличием в ней АБГ. Result: the cytoplasm of tumor cells is distinctly and uniformly stained yellow-brown, which is explained, given the absolute specificity of the method, by the presence of ABH in it.

Вывод. Предлагаемый способ позволяет с высокой специфичностью и относительной простотой проводить дифференциальную диагностику гиперпластических процессов и рака молочной железы в гистологических срезах. Патоморфологическая диагностика злокачественных новообразований, как известно, является на сегодня наиболее информативной. Способ имеет определенное прикладное значение, так как позволяет облегчить, улучшить и объективизировать, т.е. повысить точность процесса гистологической диагностики рака молочной железы, особенно неинфильтрирующихся его форм, диагностика которых представляет до сих пор значительные трудности в работе практических патологоанатомов. Output. The proposed method allows with high specificity and relative simplicity to conduct differential diagnosis of hyperplastic processes and breast cancer in histological sections. The pathomorphological diagnosis of malignant neoplasms, as you know, is by far the most informative. The method has a certain applied value, as it allows to facilitate, improve and objectify, i.e. to increase the accuracy of the process of histological diagnosis of breast cancer, especially its non-infiltrating forms, the diagnosis of which still presents significant difficulties in the work of practical pathologists.

Claims (1)

Способ дифференциальной диагностики гиперпластических процессов и рака молочной железы, включающий иммуногистохимическое исследование паренхиматозных клеток их тканей на гистологических окрашенных срезах, отличающийся тем, что при проведении иммунопероксидазной окраски гистоструктур микропрепарата используют на этапе обработки гистологических срезов первичные антитела против ассоциированного с беременностью альфа-2-гликопротеина в концентрации 8 - 10 мкг/мл и при наличии неравномерной окраски цитоплазмы клеток золотисто-желтого цвета диагностируют гиперпластический процесс в молочной железе, а при наличии равномерной окраски коричневого цвета - рак. A method for the differential diagnosis of hyperplastic processes and breast cancer, including an immunohistochemical study of parenchymal cells of their tissues on histological stained sections, characterized in that when immunoperoxidase staining of the histological structures of the micropreparation is used, primary antibodies against pregnancy-associated alpha-2 glycoprot are used in the processing of histological sections concentration of 8 - 10 μg / ml and in the presence of uneven staining of the cytoplasm of golden yellow cells the colors diagnose the hyperplastic process in the mammary gland, and in the presence of a uniform brown color - cancer.
RU94012403A 1994-04-07 1994-04-07 Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices RU2107911C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94012403A RU2107911C1 (en) 1994-04-07 1994-04-07 Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94012403A RU2107911C1 (en) 1994-04-07 1994-04-07 Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU94012403A RU94012403A (en) 1996-03-10
RU2107911C1 true RU2107911C1 (en) 1998-03-27

Family

ID=20154487

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU94012403A RU2107911C1 (en) 1994-04-07 1994-04-07 Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2107911C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2530557C1 (en) * 2013-04-18 2014-10-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Тихоокеанский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации ( ГБОУ ВПО ТГМУ Минздрава России) Differential diagnostic technique for malignant and benign breast pathology
RU2623857C1 (en) * 2016-06-22 2017-06-29 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России) Method for precancerous changes identification in mammary gland

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2530557C1 (en) * 2013-04-18 2014-10-10 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Тихоокеанский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации ( ГБОУ ВПО ТГМУ Минздрава России) Differential diagnostic technique for malignant and benign breast pathology
RU2623857C1 (en) * 2016-06-22 2017-06-29 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России) Method for precancerous changes identification in mammary gland

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6942970B2 (en) Identifying subjects suitable for topoisomerase II inhibitor treatment
CN104634974B (en) Detection, the discriminating conduct of intrahepatic cholangiocarcinoma
US5846749A (en) Quantitative measurement of tissue protein identified by immunohistochemistry and standardized protein determination
KR101976219B1 (en) Biomarker for breast cancer
US6677157B1 (en) Method of diagnosis of prostate cancer
Li et al. Modulation of mammary development and programmed cell death by the frequency of milk removal in lactating goats
Walter et al. Association of endometrosis in horses with differentiation of periglandular myofibroblasts and changes of extracellular matrix proteins
Shinoda et al. Immunohistochemical study of placental alkaline phosphatase in primary intracranial germ-cell tumors
Barbolina et al. Motility-related actinin alpha-4 is associated with advanced and metastatic ovarian carcinoma
Somers et al. Localization and developmental fate of ovoperoxidase and proteoliaisin, two proteins involved in fertilization envelope assembly
Ramaekers et al. Antibodies to cytokeratin and vimentin in testicular tumour diagnosis
CN116593262B (en) Molecular marker detection product based on PDX/PDTX tumor living tissue biological sample and database and preparation method thereof
RU2107911C1 (en) Differential diagnosis method for detecting the cases of hyperplastic processes and mammary gland cancer in histologic slices
Chen et al. Comparison of the variability of small extracellular vesicles derived from human liver cancer tissues and cultured from the tissue explants based on a simple enrichment method
Pateras et al. Determination of polarization of resident macrophages and their effect on the tumor microenvironment
McKeever et al. Products of cells from gliomas: IX. Evidence that two fundamentally different mechanisms change extracellular matrix expression by gliomas
Bano et al. Characterization of rat mammary tumor cell populations
RU2119668C1 (en) Method of differential diagnosis of fibroadenoma and breast cancer in histological slices
RU2094806C1 (en) Method of diagnosis of necrosis in histological slices
Stendahl et al. Expression of placental alkaline phosphatase in epithelial ovarian tumours
Li et al. Cell culture block array for immunocytochemical study of protein expression in cultured cells
Charpin et al. Cathepsin D detected by automated and quantitative immunohistochemistry in breast carcinomas: correlation with overall and disease free survival.
KR102363980B1 (en) Biomarker for diagnosis or prognosis analysis of brain metastasis and diagnosis method using same
Baildam et al. The expression of milk fat globule antigens within human mammary tumours: relationship to steroid hormone receptors and response to endocrine treatment
RU2098825C1 (en) Method for detecting proteins on histologic sections in applying methods of immunochemistry