RU2100031C1 - Method of alpha-fetoprotein preparing - Google Patents
Method of alpha-fetoprotein preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2100031C1 RU2100031C1 RU95120418A RU95120418A RU2100031C1 RU 2100031 C1 RU2100031 C1 RU 2100031C1 RU 95120418 A RU95120418 A RU 95120418A RU 95120418 A RU95120418 A RU 95120418A RU 2100031 C1 RU2100031 C1 RU 2100031C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- fetoprotein
- afp
- alpha
- target product
- antibodies
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биологической химии (преимущественно к биотехнологии) в частности к получению онкофетального белка альфа-фетопротеина, и может быть использовано в медицине для лечения опухолевых заболеваний и заболеваний с аутоиммунными нарушениями. The invention relates to biological chemistry (mainly to biotechnology), in particular to the production of oncofetal protein alpha-fetoprotein, and can be used in medicine for the treatment of tumor diseases and diseases with autoimmune disorders.
Онкофетальные белки, в частности альфа-фетопротеин (АФП) широко используются в медицине для изготовления различных иммунодиагностикумов, необходимых для распознавания злокачественных опухолей, а также лечения заболеваний с аутоиммунными нарушениями и опухолевых заболеваний, поэтому, задача совершенствования известных способов получения данных белков является актуальной. Oncofetal proteins, in particular alpha-fetoprotein (AFP), are widely used in medicine for the manufacture of various immunodiagnostics necessary for the recognition of malignant tumors, as well as the treatment of diseases with autoimmune disorders and tumor diseases, therefore, the task of improving the known methods for obtaining these proteins is relevant.
Онкофетальные белки получают из эмбриональной или опухолевой ткани человека или животных. Oncofetal proteins are obtained from human or animal embryonic or tumor tissue.
Известен способ получения АФП из опухолевой ткани человека, включающий выделение и хроматографическую очистку целевого продукта последовательно на нескольких сорбентах [1]
Недостатком известного способа является низкое содержание целевого продукта в исходном сырье (50 100 мкг/мл), высокая трудоемкость процесса и низкий выход целевого продукта.A known method of producing AFP from human tumor tissue, including the isolation and chromatographic purification of the target product sequentially on several sorbents [1]
The disadvantage of this method is the low content of the target product in the feedstock (50 to 100 μg / ml), the high complexity of the process and the low yield of the target product.
Известен способ получения АФП из эмбриональной ткани человека [2] включающий ее измельчение, промывку, обработку трипсином в течение 1 ч. при температуре не более 37oC. Полученную суспензию клеток культивируют в питательной среде в течение 7-8 сут при 37oС, а целевой продукт отделяют центрифугированием при 3000 об/мин. Получают прозрачную жидкость оранжево-желтого цвета, содержащую 10% онкофетального белка.A known method of producing AFP from human embryonic tissue [2] including its grinding, washing, trypsin treatment for 1 hour at a temperature of not more than 37 o C. The resulting cell suspension is cultured in a nutrient medium for 7-8 days at 37 o C, and the target product is separated by centrifugation at 3000 rpm A clear orange-yellow liquid is obtained containing 10% oncofetal protein.
Недостатками известного способа являются низкий выход и высокое содержание примесных белков. The disadvantages of this method are the low yield and high content of impurity proteins.
Известен способ получения АФП из эмбриональной ткани человека [3] включающий обработку исходной ткани бутиловым спиртом, центрифугирование при 6000 об/мин в течение 45 мин, диализ водно-белковой фазы против 0,9-ного раствора хлористого натрия, центрифугирование, инкубирование полученного супернатанта с эстрогеном в конечной концентрации 0,005% при 0 -10oC в течение 8 ч и выделение целевого продукта из супернатанта хроматографией на сефарозе CL-4B с иммобилизованным эстрогеном. Выход целевого продукта составляет 60-70% а чистота препарата 90 -95%
Недостатками способа являются недостаточная чистота целевого продукта, наличие примеси альбумина и гемоглобина, а также высокая трудоемкость способа и необходимость работы с легковоспламеняющимся резко пахнущим органическим реактивом бутиловым спиртом.A known method of producing AFP from human embryonic tissue [3] comprising treating the starting tissue with butyl alcohol, centrifuging at 6000 rpm for 45 minutes, dialysing the aqueous-protein phase against a 0.9% sodium chloride solution, centrifuging, incubating the obtained supernatant with estrogen in a final concentration of 0.005% at 0 -10 o C for 8 hours and the selection of the target product from the supernatant by chromatography on sepharose CL-4B with immobilized estrogen. The yield of the target product is 60-70% and the purity of the drug 90 -95%
The disadvantages of the method are the insufficient purity of the target product, the presence of an admixture of albumin and hemoglobin, as well as the high complexity of the method and the need to work with flammable sharply smelling organic reagent butyl alcohol.
Наиболее близким к изобретению является способ получения АФП из эмбриональной ткани зародышей человека 8 12 нед, полученной при медицинских абортах, включающей следующие стадии [4] измельчение и гомогенизация эмбриональной ткани центрифугирирование гомогената при 5000 об/мин, сбор супернатанта; осветление супернатанта центрифугированием при 12000 об/мин; очистка целевого продукта хроматографией на ДЕ-целлюлозе; очистка целевого продукта хроматографией на сефадексе G-100 с иммобилизованным на нем красителем цибакрон голубой F36-A; очистка целевого продукта рехроматографией на сефадексе G-100 с иммобилизованным на нем красителем цибакрон голубой F26-A; очистка целевого продукта хроматографией на ДЕ-целлюлозе. Closest to the invention is a method for producing AFP from embryonic tissue of human embryos 8-12 weeks, obtained by medical abortion, including the following stages [4] grinding and homogenization of embryonic tissue, centrifugation of the homogenate at 5000 rpm, collecting supernatant; clarification of the supernatant by centrifugation at 12,000 rpm; purification of the target product by chromatography on DE-cellulose; purification of the target product by Sephadex G-100 chromatography with cybacron blue F36-A dye immobilized on it; purification of the target product by rechromatography on Sephadex G-100 with cybacron blue dye F26-A immobilized on it; purification of the target product by chromatography on DE-cellulose.
Недостатками прототипа являются длительность способа; низкий выход целевого продукта (25 30%), недостаточная чистота препарата (85 90%), высокая трудоемкость способа и необходимость в высокоскоростных центрифугах (которых, как известно, в нашей стране в большом дефиците). The disadvantages of the prototype are the duration of the method; low yield of the target product (25–30%), insufficient purity of the preparation (85–90%), high laboriousness of the method, and the need for high-speed centrifuges (which, as is known, are in great shortage in our country).
Технической задачей предлагаемого изобретения является упрощение известного способа, увеличение частоты и выхода АФП. The technical task of the invention is to simplify the known method, increasing the frequency and output of the AFP.
Задача достигается предлагаемым способом, заключающемся в следующем: берут абортивную кровь, полученную при медицинских абортах, отделяют балластные белки центрифугированием, а полученный супернатант подвергают хроматографической очистке сначала на колонке со смолой, содержащей ковалентно пришитые антитела к АФП, а затем на колонке со смолой, содержащей комплекс ковалентно пришитых антител против белков крови человека. В качестве аффинной смолы преимущественно используют Br-CN-сефарозу, активированную глутаровым альдегидом, с содержанием 10 мг/мл антител к АФП (первая хроматография) и 10 мг/мл комплекса антител против белков крови человека (вторая хроматография). Весь раствор АФП, прошедший через вторую колонку, собирают и диализуют против дистиллированной или деионизированной воды. Затем препарат стерилизуют и лиофильно высушивают. Полученный препарат АФП проверяют на чистоту иммунохимически и путем электрофореза в полиакриламидном геле. Выход целевого продукта составляет 60 72,7% Чистота препарата 95 -96%
Определяющим отличием предлагаемого способа от прототипа является то, что хроматографическую очистку целевого продукта проводят в две стадии сначала на аффинной смоле с ковалентно пришитыми к ней антителами к АФП, а затем на колонке со смолой, содержащей комплекс ковалентно пришитых антител против белков крови человека. Это позволяет резко увеличить чистоту и качество АФП, так как первый сорбент обладает повышенной афинностью к АФП, а второй максимально сорбирует на себя весь спектр примесных белков, присутствующие в растворе АФП (альбумин, гемоглобин и другие белки). Использование данных высокоспецифических сорбентов позволяет также упростить и уменьшить длительность способа за счет сокращения стадий хроматографической очистки целевого продукта с 4 до 2.The task is achieved by the proposed method, which consists in the following: take abortive blood obtained from medical abortions, ballast proteins are separated by centrifugation, and the obtained supernatant is subjected to chromatographic purification first on a column with a resin containing covalently attached antibodies to AFP, and then on a column with a resin containing a complex of covalently sewn antibodies against human blood proteins. Glutaraldehyde activated Br-CN-Sepharose, containing 10 mg / ml of anti-AFP antibodies (first chromatography) and 10 mg / ml of an anti-human protein complex (second chromatography), is predominantly used as an affinity resin. The entire AFP solution passing through the second column is collected and dialyzed against distilled or deionized water. Then the drug is sterilized and freeze-dried. The resulting AFP preparation is checked for purity immunochemically and by polyacrylamide gel electrophoresis. The yield of the target product is 60 72.7% Purity of the drug 95 -96%
The defining difference of the proposed method from the prototype is that the chromatographic purification of the target product is carried out in two stages, first on an affinity resin with antibodies to AFP covalently attached to it, and then on a resin column containing a complex of covalently sewn antibodies against human blood proteins. This makes it possible to sharply increase the purity and quality of AFP, since the first sorbent has an increased affinity for AFP, and the second sorbes to the maximum the entire spectrum of impurity proteins present in the AFP solution (albumin, hemoglobin, and other proteins). The use of these highly specific sorbents can also simplify and reduce the duration of the method by reducing the stages of chromatographic purification of the target product from 4 to 2.
В связи с тем, что в известных патентных и научно-технических источниках сведений об аналогичном способе получения альфа-фетопротеина не обнаружено, можно сделать вывод, что предлогаемое техническое решение отвечает критериям "новизна и изобретательский уровень". Due to the fact that information on a similar method for producing alpha-fetoprotein is not found in well-known patent and scientific and technical sources, it can be concluded that the proposed technical solution meets the criteria of "novelty and inventive step".
Пример 1. Все процедуры при +4oC. 1 л абортной крови центрифугируют со скоростью 3000 об/мин в течение 30 мин, осадок балластных белков отбрасывают, а 800 мл супернатанта наносят на хроматографическую колонку объемом 50 см3 с аффинной смолой, содержащей 10 мг/мл антител к АФП, ковалентно пришитых к Br-CN-сефарозе с помощью глутарового альдегида (производства НПО "Вектор", Россия). Скорость нанесения 100 мл/ч. Далее проводят отмывание колонки от не связавшихся белков 200 мл 0,1 М фосфатным буфером (pH7,0). Элюцию АФП проводят с помощью 0.1 М раствора HCl (pH2,0), пропуская через колонку 50 мл элюента. Процесс элюции контролируют по изменению цвета раствора, вытекающего из колонки от коричневого до желтого, спектрометрически на длине волны 260 нм. Элюат, содержащий целевой продукт, нейтрализуют до pH7,0 с помощью раствора NaOH и доводят до объема 100 мл. Затем начинают доочистку целевого продукта хроматографией на аффинной смоле, содержащей 10 мг/мл сбалансированного раствора антител против белков крови человека (производства НПО "Вектор", Россия). Для этого элюат, содержащий целевой продукт после первой хроматографии, наносят на хроматографическую колонку объемом 50 см3 с вышеназванной аффинной смолой со скоростью 50 мл/час. Весь прошедший через колонку раствор (около 100 мл), содержащий АФП, очищенный от альбумина и других балластных белков, собирают в емкость. Раствор АФП из емкости заливают в диализную остановку и проводят диализ против деионизированной воды при +4oC в течение 6 ч.Example 1. All procedures at +4 o C. 1 l of abortion blood is centrifuged at a speed of 3000 rpm for 30 minutes, the precipitate of ballast proteins is discarded, and 800 ml of the supernatant is applied to a chromatography column with a volume of 50 cm 3 with an affinity resin containing 10 mg / ml antibodies to AFP, covalently sewn to Br-CN-sepharose using glutaraldehyde (produced by NPO Vector, Russia). Application rate 100 ml / h. Next, the column was washed from unbound proteins with 200 ml of 0.1 M phosphate buffer (pH7.0). The AFP elution is carried out using a 0.1 M HCl solution (pH2.0), passing through a column of 50 ml of eluent. The elution process is controlled by the color change of the solution flowing from the brown to yellow column spectrometrically at a wavelength of 260 nm. The eluate containing the desired product is neutralized to pH7.0 with a NaOH solution and adjusted to a volume of 100 ml. Then, the purification of the target product by affinity resin chromatography containing 10 mg / ml of a balanced solution of antibodies against human blood proteins (starting from NPO Vektor, Russia) is started. For this, the eluate containing the target product after the first chromatography is applied to a 50 cm 3 chromatographic column with the above affinity resin at a rate of 50 ml / hour. The entire solution passing through the column (about 100 ml) containing AFP, purified from albumin and other ballast proteins, is collected in a container. The AFP solution from the tank is poured into a dialysis stop and dialyzed against deionized water at + 4 o C for 6 hours
Обессоленный после диализа раствор АФП разбавляют раствором NaCl (pH7,0) до концентрации АФП 100 мг/мл, замораживают в холодильнике и хранят при - 18oC до начала стерильной фильтрации.The AFP solution desalted after dialysis is diluted with a NaCl solution (pH7.0) to an AFP concentration of 100 mg / ml, frozen in the refrigerator and stored at -18 ° C until sterile filtration begins.
После проведения стерилизующей фильтрации, раствор АФП разливают в ампулы по 1 мл, лиофильно высушивают и хранят при +4oC. Полученный препарат АФП проверяют на чистоту иммунохимически и при электрофорезе в полиакриламидном геле. Чистота полученного препарата 96% Выход 72,7% Препарат не содержит пирогенных и токсических примесей.After sterilizing filtration, the AFP solution is poured into 1 ml ampoules, freeze-dried and stored at + 4 o C. The resulting AFP preparation is checked for purity immunochemically and by polyacrylamide gel electrophoresis. Purity of the obtained preparation 96%. Yield 72.7%. The preparation does not contain pyrogenic and toxic impurities.
Пример 2. Все процедуры ведут при +4oC. 1 л абортной крови осветляют центрифугированием (3000 об/мин, 15 мин) осадок балластных белков отбрасывают, а супернатант наносят на хроматографическую колонку объемом 50 см3 с аффинной смолой, содержащей 10 мг/мл антител к АФП. Скорость нанесения 100 мл/час. Колонку отмывают от не связавшихся белков 100 мл физиологического раствора NaCl (pH7,0), а элюцию АФП проводят с помощью 0,1 М раствора HCl (pH2,0), пропуская через колонку 50 мл элюента. Элюат собирают, нейтрализуют до pH7,0 с помощью раствора NaOH и доводят до объема 100 мл. Затем раствор АФП наносят на колонку объемом 50 см3 с аффинной смолой, содержащей 10 мг/мл антител к альбумину, со скоростью 50 мл/час. Раствор АФП собирают в емкость, затем заливают в диализную установку и проводят диализ против дистиллированной воды в течение 10 ч. Полученный раствор АФП разбавляют физраствором до концентрации АФП 100 мг/мл, стерилизуют, разливают в ампулы и лиофильно высушивают. Выход препарата 60% Чистота препарата 95%
Использование предлагаемого способа позволяет по сравнению с прототипом:
упростить способ за счет уменьшения длительности и сокращения двух стадий хроматографии и двух стадий высокоскоростного центрифугирования;
повысить чистоту и качество целевого продукта за счет высокоэффективной хроматографической очистки продукта;
обеспечить возможность использования препарата в медицине для лечения злокачественных опухолей (а не только в качестве иммунодиагностикума).Example 2. All procedures are carried out at + 4 o C. 1 l of abortion blood is clarified by centrifugation (3000 rpm, 15 min), the precipitate of ballast proteins is discarded, and the supernatant is applied to a chromatographic column with a volume of 50 cm 3 with an affinity resin containing 10 mg / ml of antibodies to AFP. Application rate 100 ml / hour. The column is washed from unbound proteins with 100 ml of physiological NaCl solution (pH7.0), and AFP elution is carried out using a 0.1 M HCl solution (pH2.0), passing through the column 50 ml of eluent. The eluate is collected, neutralized to pH7.0 with a NaOH solution and adjusted to a volume of 100 ml. Then the AFP solution is applied to a 50 cm 3 column with an affinity resin containing 10 mg / ml of anti-albumin antibody at a rate of 50 ml / hour. The AFP solution is collected in a container, then poured into a dialysis unit and dialyzed against distilled water for 10 hours. The resulting AFP solution is diluted with saline to an AFP concentration of 100 mg / ml, sterilized, poured into ampoules and freeze-dried. The yield of the drug is 60%. The purity of the drug is 95%.
Using the proposed method allows, in comparison with the prototype:
to simplify the method by reducing the duration and reduction of the two stages of chromatography and two stages of high-speed centrifugation;
to increase the purity and quality of the target product due to high-performance chromatographic purification of the product;
to provide the possibility of using the drug in medicine for the treatment of malignant tumors (and not just as an immunodiagnosticum).
Источники информации
1. Phil Gold et all. "Physicochemical Approach to the Purification of Human Fetoprotein from the Ascites Fluid of a Hepatoma-bearning Patient. Canser Research. 1978, N 36, p. 6 -12.Sources of information
1. Phil Gold et all. "Physicochemical Approach to the Purification of Human Fetoprotein from the Ascites Fluid of a Hepatoma-bearning Patient. Canser Research. 1978, No. 36, p. 6-12.
2. Авторское свидетельство СССР N 403407, кл3 А 61 К 35/48 "Способ получения биостимулятора" заявл. 26.11.68. опубл. 26.10.73.2. USSR author's certificate N 403407, class 3 A 61 K 35/48 "Method for producing a biostimulator" decl. 11/26/68. publ. 10.26.73.
3. Авторское свидетельство СССР N 1497806, МКИ4 А 61 К 37/02 "Способ получения альфа-фетопротеина".3. USSR author's certificate N 1497806, MKI 4 A 61 K 37/02 "Method for producing alpha-fetoprotein".
4. Klaus Huse et all "A novel purification procedure for human fetoprotein by application of immobilised Cibacron Blu F36-A as affinity ligand Clinica Chimica Acta, 133, 1983, 335-340. прототип. 4. Klaus Huse et all "A novel purification procedure for human fetoprotein by application of immobilized Cibacron Blu F36-A as affinity ligand Clinica Chimica Acta, 133, 1983, 335-340. Prototype.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95120418A RU2100031C1 (en) | 1995-12-01 | 1995-12-01 | Method of alpha-fetoprotein preparing |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95120418A RU2100031C1 (en) | 1995-12-01 | 1995-12-01 | Method of alpha-fetoprotein preparing |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU95120418A RU95120418A (en) | 1997-12-27 |
RU2100031C1 true RU2100031C1 (en) | 1997-12-27 |
Family
ID=20174324
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU95120418A RU2100031C1 (en) | 1995-12-01 | 1995-12-01 | Method of alpha-fetoprotein preparing |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2100031C1 (en) |
-
1995
- 1995-12-01 RU RU95120418A patent/RU2100031C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Klaus Huse et all. A novel purification procedure for human fetoprotein by application of immobilised Cibacron Blu F 36-A as affinity ligand. Climica Acta, 133, 1983, 335 - 340. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US7125552B2 (en) | Method for high yield purification of immune globulins from blood plasma and blood plasma intermediates | |
CN105153297B (en) | Method for separating and purifying α 2-macroglobulin from Cohn component IV precipitate | |
DE3061547D1 (en) | Process of preparation of an intravenous immunoglobulin solution, containing concentrated igm | |
US4301064A (en) | Ubiquitary tissue protein PP8 | |
RU2100031C1 (en) | Method of alpha-fetoprotein preparing | |
JP2001504144A (en) | Purification method of GBS toxin / CM101 | |
RU2283131C1 (en) | Method for preparing preparation dry alpha-fetoprotein | |
JP3030312B2 (en) | Mature hepatocyte growth factor (I) | |
AU600230B2 (en) | Tissue-derived tumor growth inhibitors, methods of preparation and uses thereof | |
RU2302424C1 (en) | Alpha-fetoprotein isolation and purification method | |
RU2123009C1 (en) | Method of alpha-fetoprotein preparation preparing | |
RU2308286C1 (en) | Method for production of alpha-fetoprotein | |
SU581842A3 (en) | Method of preparing antigens | |
RU2089204C1 (en) | Method of preparing peptides recovering the prostate gland function | |
RU2799637C1 (en) | Method of producing biologically active peptide-amino acid preparation based on human blood plasma | |
RU2319479C2 (en) | Method for preparing alpha-fetoprotein preparation tablet | |
CN114805548B (en) | Recombinant collagen freeze-dried fiber and preparation method thereof | |
EP2511288B1 (en) | Method of obtaining inhibitors of cysteine peptidases with an electrophoretic purity from biological materials | |
SU811530A1 (en) | Method of producing the substances possessing antitumoral activity | |
US4588685A (en) | Process for the preparation of a new-type active substance selectively inhibiting food intake | |
JPS6219532A (en) | Expression-inducing substance a for interleukin 2 receptor | |
RU2108343C1 (en) | Method of isolation and purification of human epidermal growth factor (h-egf) | |
SU1137098A1 (en) | Method for recovering properdin from blood serum | |
JPS60243018A (en) | Endogeneous human carcinostatic factor | |
RU2022559C1 (en) | Process for manufacture of oncoovarian alpha-1-globulin preparation |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20091202 |