RU2077558C1 - Состав для стабилизации липидов - Google Patents

Состав для стабилизации липидов Download PDF

Info

Publication number
RU2077558C1
RU2077558C1 RU95102928A RU95102928A RU2077558C1 RU 2077558 C1 RU2077558 C1 RU 2077558C1 RU 95102928 A RU95102928 A RU 95102928A RU 95102928 A RU95102928 A RU 95102928A RU 2077558 C1 RU2077558 C1 RU 2077558C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lipids
tocopherol
lecithin
benzaflavin
mixture
Prior art date
Application number
RU95102928A
Other languages
English (en)
Other versions
RU95102928A (ru
Inventor
Ирина Владимировна Кутузова
Надежда Михайловна Сторожок
Original Assignee
Ирина Владимировна Кутузова
Надежда Михайловна Сторожок
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ирина Владимировна Кутузова, Надежда Михайловна Сторожок filed Critical Ирина Владимировна Кутузова
Priority to RU95102928A priority Critical patent/RU2077558C1/ru
Publication of RU95102928A publication Critical patent/RU95102928A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2077558C1 publication Critical patent/RU2077558C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Anti-Oxidant Or Stabilizer Compositions (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Food Preservation Except Freezing, Refrigeration, And Drying (AREA)
  • Fats And Perfumes (AREA)
  • Edible Oils And Fats (AREA)

Abstract

Назначение: изобретение относится к области пищевой технологии, а именно к способам стабилизации процессов окисления масел, жиров, липидов. Сущность: состав включает следующие компоненты, мас.%: α-токоферол (или a-токоферола ацетат) - 2,4-80,0 бензафлавин 2,3-76,9, лецитин 8,3-93,8, добавляемый в смеси в концентрации 0,4-5,2% от массы липидов. 4 табл.

Description

Изобретение относится к области пищевой технологии, а именно к способам защиты масел, жиров, липидов от окисления и окислительной деструкции и может быть использовано в пищевой, косметической и химико-фармацевтической промышленности для получения стабильных липидсодержащих пищевых добавок, лечебно-косметических и лекарственных средств.
Известен состав для стабилизации липидов, включающий следующие компоненты, мас. α-токоферол (или a-токоферола ацетат) 88,11 92,17; бутилокситолуол 0,88-0,92; цистеин 6,91-11,01 [2,10,12] Однако, данная смесь антиоксидантов и синергиста окисления (цистеина) оказалась недостаточно эффективной в условиях опытно-промышленного производства липидного продукта микробиологического синтеза на ПО "Белмедпрепараты" (г. Минск). Это обусловлено тем, что цистеин плохо растворим в субстрате автоокисления. На технологической стадии фасовки липидного продукта сложно добиться точного дозирования цистеина в каждый флакон, поскольку стабилизатор оседает на дно высокогабаритной промышленной установки.
В последнее время широко обсуждаются сведения о токсичности другого компонента смеси прототипа бутилокситолуола (дибунола) [6,7] Длительность рекомендуемого курса назначения липидных продуктов в качестве пищевой добавки и перорально лекарственного средства (до 30 дней) определяет особую тщательность в подборе стабилизаторов. В связи с этим намечается тенденция к замене синтетических антиоксидантов, применяемых для стабилизации липидов, веществами исключительно природного происхождения, ведется целенаправленный поиск полифункциональных стабилизаторов и лекарств антиоксидантного действия [9]
Вместо цистеина и бутилокситолуола предлагается использовать отечественные медицинские препараты лецитин и бензафлавин [1,3,8,11] Лецитин широко применяется для стабилизации пищевых продуктов, считают [4,13] что он как и цистеин способен разрушать гидропероксиды, образующиеся в процессе окисления липидов, но в отличие от последнего хорошо растворим в липидном субстрате [4,6,11] Бензафлавин активный синергист токоферолов [8] проявляет антирадикальные свойства, сопоставимые с бутилокситолуолом и способен непосредственно реагировать с гидропероксидами [8]
Можно полагать, что введение в состав липидов лецитина, благоприятно влияющего на липидный обмен и снижающего уровень холестерина в плазме крови, и бензафлавина, оказывающего гиполипидемическое и антиатеросклеротическое действие, возможно, приведет к углублению и расширению спектра фармакологической активности полиненасыщенных липидов, учитывая однонаправленность их действия [3, 11] В связи с этим весьма удачно сочетание в композиции, обладающей высоким антиоксидантным действием, биологически активных соединений: a-токоферола или a-токоферола ацетата, бензафлавина, лецитина. Отличительной особенностью предложенного состава, является включение вместо бутилокситолуола и цистеина бензафлавина и лецитина при следующих соотношениях компонентов в составе смеси, мас.
a-токоферол (или a-токоферола ацетат) 2,4-80,0
бензафлавин 2,3-76,9
лецитин 8,3-93,8
добавляемых в концентрации 0,4-5,2% от массы липидов.
Эффективность стабилизаторов оценивалась несколькими независимыми методами: изучалась кинетика поглощения кислорода при инициированном окислении липидов в присутствии предлагаемого состава и прототипа; в процессе "ускоренного старения" при аутоокислении липидов в тонком слое при повышенных температурах (40±0,2Сo) тестировалась кинетика накопления гидропероксидов методом иодометрического титрования (ПЧ). Одновременно по ходу окисления через равные промежутки времени в образцах методом газожидкостной хроматографии контролировались количественные изменения содержания наиболее ненасыщенных и склонных к окислению компонентов липидного субстрата эфиров арахидоновой (ЭАР) и эйкозапентаеновой кислот (ЭЭП).
Изучение кинетики поглощения кислорода проводилось манометрическим методом в установках типа Варбурга при инициированном окислении липидов в присутствии инициатора азобисизобутиронитрила (АИБН) в концентрации 9 мМ при температуре 60±0,5oС. Контролем служили образцы липидов без добавок антиоксидантов.
В качестве субстратов окисления использования как природные липиды (рыб), так и смесь этиловых эфиров, полученных в результате переэтерификации липидов микробиального происхождения. Опытная серия рыбных липидов была наработана на Салехардском рыбоконсервном заводе. Изучение жирнокислотного состава липидов позволило установить присутствие значительного количества полиненасыщенных жирных кислот (до 37%), в том числе пента- и гексаенов до 12 и 2% соответственно [13]
Смесь этиловых эфиров полиненасыщенных жирных кислот микробиологического происхождения была получена в опытно-промышленных условиях ПО "Белмедпрепараты" [10] Смесь содержала до 30% этиларахидоната, до 24% этиллинолеата, до 42% этилолеата.
Эффективность индивидуальных антиоксидантов и их комбинаций с синергистом окисления исследовалась в широком диапазоне концентраций и соотношений компонентов:
a-токоферол (или a-токоферола ацетат) от 0,13 до 11,6 мМ
бензафлавин от 0,03 до 3,375 мМ
лецитин от 0,32 до 10,40 мМ
что составляло от массы липидов (0,021-2,000), (0,01-1,25%), (0,10-3,25% ) для указанных выше компонентов соответственно.
В присутствии определенной добавки индивидуальных ингибиторов окисления a-токоферола или a-токоферилацетата или бензафлавина), их смесей или композиций антиоксидантов с синергистом (лецитином) записывалась кинетика окисления с использованием вышеописанных методов. На основании полученных данных строились кинетические кривые изменения с течением времени объема поглощенного кислорода либо накопления пероксидов, либо снижения концентрации высоконенасыщенных составляющих липидных субстратов: тетра- и пентаенов. Из кинетических кривых определялись периоды индукции ((τ)), за которые принимали:
время (в мин), за которое процесс инициированного окисления липидов достигал максимальной скорости ((τΔO2).);
время (в часах) накопления пероксидов, количественно соответствующих значению ПЧ 0,1 I2.
время (в часах), в течение которого происходило уменьшение на 5% концентрации эфира арахидоновой или эйкозапентаеновой кислоты ((τΔ5%).).
Эффективность стабилизации окисления оценивали по абсолютному значению разницы между периодами индукции окисления субстратов со стабилизирующими добавками ((τi)) и без них ((τo)) по формуле
ε = Δτ = τio,
либо выражали ее в относительных единицах Δτ/τo..
В соответствии с использованием методами кинетического тестирования окисления были определены ε02, εпч, εэар или εээп.
Анализ экспериментально установленных значений ε для составов с различными соотношениями компонентов-стабилизаторов позволил выбрать среди них наиболее эффективные, превышающие по своему ингибирующему действию прототип. Диапазоны изменения концентрации каждого из компонентов, составляющих в целом наиболее высокоэффективные смеси, представлены следующими значениями, в от массы липидов:
a-токоферол (или a-токоферола ацетат) 0,1-1,2
бензафлавин 0,1-1,0
лецитин 0,2-3,0.
Суммарная концентрация компонентов высокоэффективных смесей составляет 0,4-5,2% от массы липидов, что отражено в формуле изобретения.
Сущность изобретения иллюстрируется следующими примерами:
Пример 1
Берут 10 г (точная навеска) липидов микробиологического происхождения. Добавляют 0,385 г (3,85%) смеси a-токоферола, бензафлавина, лецитина. Стабилизирующая комбинация содержит 0,060 г a-токоферола, 0,075 г бензафлавина, 0,250 г лецитина, что составляет соответственно 0,6:0,75:2,5% от массы липидов. При этом соотношение компонентов стабилизирующей смеси следующее:
a-токоферол 15,6
бензафлавин 19,5
лецитин 64,9
Пример 2
Берут 10 г (точная навеска) липидов микробиологического происхождения. Добавляют 0,340 г (3,4%) смеси a-токоферола, бензафлавина, лецитина. Стабилизирующая комбинация содержит 0,04 г a-токоферола, 0,050 г бензафлавина, 0,25 г лецитина, что составляет соответственно 0,4:0,55:2,5% от массы липидов. При этом соотношение компонентов стабилизирующей смеси следующее:
a-токоферол 11,8
бензафлавин 14,7
лецитин 73,5
Пример 3
Берут 10 г (точная масса) рыбных липидов. Добавляют 0,145 г (1,45%) смеси a-токоферола, бензафлавина, лецитина. Стабилизирующая комбинация содержит 0,02 г a-токоферола, 0,075 г бензафлавина, 0,05 г лецитина, что составляет соответственно 0,2: 0,75:0,5% от массы липидов. При этом соотношение компонентов стабилизирующей смеси следующее:
a-токоферол 13,8
бензафлавин 51,7
лецитин 34,5
Пример 4
Берут 10 г (точная масса) липидов микробиологического происхождения. Добавляют 0,275 г смеси a-токоферола ацетата, бензафлавина, лецитина. Стабилизирующая комбинация содержит 0,100 г a-токоферола ацетата, 0,050 г бензафлавина, 0,125 г лецитина, что составляет соответственно 1,0:0,5:1,25% от массы липидов. При этом соотношение компонентов стабилизирующей смеси следующее, мас.
a-токоферола ацетат 36,4
бензафлавин 18,2
лецитин 45,4
Пример 5
Берут 10 г (точная масса) рыбных липидов. Добавляют 0,225 г смеси a-токоферола ацетата, бензафлавина, лецитина. Стабилизирующая комбинация содержит 0,125 г a-токоферола ацетата, 0,025 г бензафлавина, 0,075 г лецитина, что составляет соответственно 1,25:0,25:0,75% от массы липидов. При этом соотношение компонентов стабилизирующей смеси следующее, мас.
a-токоферола ацетат 55,6
бензафлавин 11,1
лецитин 33,3
Эффективность ингибирующего действия смесей указанных выше веществ оценивали на основании данных кинетики поглощения кислорода, получаемых с использованием манометрического метода ((ε02)), подробно изложенного в описании изобретения. Полученные результаты приведены в табл. 1. Из данных табл. 1 видно, что все рекомендуемые сочетания ингибиторов окисления превосходят по величине эффективности прототип (ε02 больше 92 мин для смесей, содержащих α-токоферола ацетат, и e02 больше 539 мин для смесей, содержащих α-токоферол).
Максимальное антиоксидантное действие проявляли композиции, приведенные в примерах 2 и 3. При ингибировании окисления упомянутыми смесями рыбных липидов и этиловых эфиров полиненасыщенных жирных кислот микробиологического происхождения индукционные периоды составили 1136 мин и 854 мин соответственно. Следовательно, наиболее эффективной для рыбных липидов оказалась смесь, включающая
a-токоферол 0,2%
бензафлавин 0,75%
лецитин 0,5%
от массы липидов и в соотношении 1,0:1,9:1,3.2 Для смеси полиненасыщенных жирных кислот наибольшую эффективность проявлял состав, содержащий
a-токоферол 0,4%
бензафлавин 0,5%
лецитин 2,5%
от массы липидов и в соотношении 1,7:1,0:5,3.
Эффективность указанных выше смесей в идентичных условиях окисления была сопоставлена с периодами индукции опыта-контроля (неингибированных липидов) и антиоксидантным действием прототипа (табл. 2,3). Было показано, что бинарные смеси a-токоферола с бензафлавином и a-токоферола с лецитином обеспечивали большие периоды индукции ((τΣ)), чем те, что могли быть получены при простом сложении ингибирующих эффектов их индивидуальных составляющих ((∑ τi)) таким образом, в совместном действии компонентов смеси проявлялся синергизм. Количественно эффект синергизма, оценивали по разности периодов индукции ((Δτ)) для смесей и для суммы индивидуальных (i) компонентов Δτ = τΣ-∑ τi, либо определяли в процентах, исходя из формулы ((Δτ/∑ τi)×100.).
Было установлено, что эффективность синергизма α-токоферола при сочетанном использовании с бензафлавином или с лецитином в разных субстратах составляет 21,6-51,4% и 5,6 21,0% соответственно.
Для смеси бензафлавина с лецитином эффекта синергизма не обнаружено. Изучение эффективности усложненной композиции, представленной комбинацией компонентов вышеописанных бинарных синергических смесей показало, что сочетание в одной системе a-токоферола, бензафлавина и лецитина позволяет дополнительно получить выигрыш в эффективности ингибирования, поскольку синергизм в тройной смеси еще более усиливается, в среднем в 1,3-6,0 раз по сравнению с бинарными смесями.
Из сравнения ингибирующего действия исследуемых смесей видно, что их эффективность выше при ингибировании эфиров полиненасыщенных жирных кислот микробиального происхождения нежели при окислении рыбных липидов. Данный факт связан, по-видимому с тем, что рыбные липиды содержат природные ингибиторы (в том числе a-токоферол, синергист окисления лецитин), тогда как при переэтерификации липидов микробиального происхождения происходит разрушение природной антиоксидантной системы, что приводит к резкому снижению их окислительной устойчивости. Введение рекомендуемой смеси a-токоферола, бензафлавина, лецитина воссоздает или усиливает (для рыбных липидов) антиоксидантную систему и обеспечивает эффективную защиту липидов от окисления. Более высокая ингибирующая способность указанной выше смеси по сравнению с прототипом была доказана несколькими независимыми методами (обсуждаемыми выше) (табл. 4).
Полученные нами впервые эффекты синергизма в смеси a-токоферола, бензафлавина и лецитина могут быть объяснены, исходя из представлений о механизме антиоксидантного действия используемых соединений. Литературные данные свидетельствуют о различиях в механизме действия компонентов смеси, что позволяет им воздействуя на различные элементарные стадии сложного процесса окисления в совокупности обеспечивать высокую эффективность ингибирования. Так, присутствие в смеси a-токоферола определяет чрезвычайно высокую активность в реакции с пероксидными радикалами, ведущими окисление. Бензафлавинантиоксидант нового класса обладает как антирадикальной активностью, так и способностью непосредственно взаимодействовать с гидропероксидами, а также регенерировать токофероксильные радикалы, восстанавливая активную фенольную форму основного антиоксиданта (a-токоферола) [8] Лецитин, благодаря сложности своего строения действует как синергист окисления благодаря способности аминогруппы разрушать гидропероксиды нерадикальным путем, а также при взаимодействии с остатками полиненасыщенных жирных кислот фрагмента его структуры, восстанавливать a-токофероксильные радикалы, регенерируя наиболее эффективный антиоксидант [4,13] Вышеизложенное объясняет полученные авторами эффекты значительного усиления ингибирующего действия смеси указанных веществ по сравнению с прототипом. Их сочетание в одной композиции позволяет снизить роль побочных реакций, приводящих к уменьшению эффективности антиоксидантов и значительно увеличить их потенциальную ингибирующую способность.
Источники информации
1. Авакумов В.М. Ковлер М.А. Кругликова-Львова Р.П. Лекарственные средства метаболической терапии на основе витаминов и ферментов (Обзор) // Вопросы мед. химии, 1992, т.38, N 4, с.14-21.
2. Бабанова Н.К. Теоретические и экспериментальные исследования биотехнологического способа получения эйкозаенов и их лекарственных форм. Автореф. дис. д.ф.н. М. 1992, 41 С.
3. Бензафлавин ВФС 42-2002-90.
4. Бурлакова Е.Б. Сторожок Н.М. Храпова Н.Г. Исследование роли функциональных групп в действии фосфолипидов как синергистов окисления // Биологические мембраны. 1990, т. 7, N 6, с. 612-618.
5. Герчук М.П. Антиокислители в пищевой промышленности // Журн. Всесоюз. хим. общества им. Д.И.Менделеева. 1960, N 4, с. 395-402.
6. Дегтярев И.А. Заиков Г.Е. Ионол. Распределение в организме и биологическое действие //Хим.-фарм. журн. 1985, N 10, с. 1160-1168.
7. Дурнев А.Д. Середенин С.В. Антиоксиданты как средства защиты генетического аппарата //Хим.-фарм. журн. 1990, N 2, с. 92-100.
8. Пименова Н. С. Иванова Р.А. Ильина О.Г. и др. Ингибирующие свойства бензоатов дигидрорибофлавина и их смесей с токоферолами// Кинетика и катализ. 1990, т. 31, вып. 1, с. 25-31.
9. Кинетические особенности токоферолов как антиоксидантов/ Бурлакова Е. Б. Крашаков С.А. Храпова Н.Г. Черноголовка 1992, 56 с.
10. Кутузова И.В. Создание и исследование мазей препарата биополиен. Автореф. дис. к.ф.н. М. 1990, 17 с.
11. Состав для стабилизации эфиров полиненасыщенных жирных кислот/Кутузова И. В. Бабанова Н. К. Ельдецова С.Н. Тенцова А.И. Авт. свид. (Россия), опубл. в Б.И. N 42, 1992.
12. Сторожок Н. М. Роль взаимодействия антиоксидантов и фосфолипидов в окислении многокомпонентных липидных систем природного происхождения. Автореф. дис. к.х.н. 1987, 26 с.
13. Borchert P. Watterberg L.W.// J. Nath. Cancer. Snst. 1976, v. 57, p. 173-176.

Claims (1)

  1. Состав для стабилизации липидов, включающий α- токоферол или α- токоферола ацетат, отличающийся тем, что он дополнительно содержит бензафлавин и лецитин при следующем соотношении компонентов, мас.
    α- Токоферол или α- токоферола ацетат 2,4 80,0
    Бензафлавин 2,3 76,9
    Летицин 8,3 93,8,
    добавляемых в концентрации 0,4 5,2% от массы липидов.
RU95102928A 1995-02-28 1995-02-28 Состав для стабилизации липидов RU2077558C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95102928A RU2077558C1 (ru) 1995-02-28 1995-02-28 Состав для стабилизации липидов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95102928A RU2077558C1 (ru) 1995-02-28 1995-02-28 Состав для стабилизации липидов

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU95102928A RU95102928A (ru) 1996-07-20
RU2077558C1 true RU2077558C1 (ru) 1997-04-20

Family

ID=20165238

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU95102928A RU2077558C1 (ru) 1995-02-28 1995-02-28 Состав для стабилизации липидов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2077558C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2566983C1 (ru) * 2014-05-05 2015-10-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Государственный аграрный университет Северного Зауралья" Состав для стабилизации липидов к окислению

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Химико-фармацевтический журнал, 1985, N 10, с. 1160 - 1168. Там же, 1990, N 2, с. 92 - 100. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2566983C1 (ru) * 2014-05-05 2015-10-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Государственный аграрный университет Северного Зауралья" Состав для стабилизации липидов к окислению

Also Published As

Publication number Publication date
RU95102928A (ru) 1996-07-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bielawska et al. Selectivity of ceramide-mediated biology. Lack of activity of erythro-dihydroceramide.
Yamashita et al. Inhibition of natural killer cell activity of human lymphocytes by eicosapentaenoic acid
Ziboh et al. Inhibition of sheep vesicular gland oxygenase by unsaturated fatty acids from skin of essential fatty acid deficient rats
US20060289834A1 (en) External composition containing Unsaturated fatty acid or its salt or ester
Konar et al. Antimicrobial and biological effects of bomphos and phomphos on bacterial and yeast cells
RU94029679A (ru) Липидный состав для пищевых продуктов, способ его получения, пищевой продукт на его основе
Marinova et al. Antioxidant activity and mechanism of action of some synthesised phenolic acid amides of aromatic amines.
JP2021527648A (ja) 後細胞シグナル伝達因子の調節による免疫活性の低減
JP2002540248A (ja) 抗酸化剤
EP3856358A2 (en) Prevention of the oxidation of perfumery raw materials and food raw materials
RU2294958C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
RU2077558C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
RU2099400C1 (ru) Способ стабилизации полиненасыщенных соединений трижды и более высокоэтиленово-ненасыщенных органических материалов, композиция на их основе и композиция антиокислителя на их основе
Sultan Reviewing the protective role of antioxidants in oxidative stress caused by free radicals
Ley et al. Synthesis of lipophilic clovamide derivatives and their antioxidative potential against lipid peroxidation
FR2893026B1 (fr) Nouveaux derives polyphenoliques liposolubles et leur utilisation comme antioxidants
ATE439127T1 (de) Langkettige ungesättigte sauerstoffhaltige verbindungen und deren verwendung im therapeutischen, kosmetischen und diätetischen bereich
RU2181757C2 (ru) Состав для стабилизации липидов
RU2157829C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
KR20070114307A (ko) 필수 다중불포화 지방산의 시클릭 글리세리드를 이용한사이토킨 조절인자
RU2288257C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
US20170014432A1 (en) Compositions and methods for reducing chronic low-level inflammation
RU2284349C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
RU2318014C1 (ru) Состав для стабилизации липидов
Biagi et al. The effect of dietary polyenylphosphatidylcholine on microsomal delta-6-desaturase activity, fatty acid composition, and microviscosity in rat liver under oxidative stress