RU2072855C1 - Method of preparing dna sodium salt from fish milt - Google Patents
Method of preparing dna sodium salt from fish milt Download PDFInfo
- Publication number
- RU2072855C1 RU2072855C1 RU95116051A RU95116051A RU2072855C1 RU 2072855 C1 RU2072855 C1 RU 2072855C1 RU 95116051 A RU95116051 A RU 95116051A RU 95116051 A RU95116051 A RU 95116051A RU 2072855 C1 RU2072855 C1 RU 2072855C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- dna
- reaction mixture
- solution
- final concentration
- edta
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Изобретение относится к способу получения натриевой соли ДНК из зрелых молок рыб и может найти применение при получении иммуномодуляторов на основе нуклеиновой кислоты в фармацевтической промышленности. The invention relates to a method for producing sodium salt of DNA from mature fish milk and may find application in the preparation of nucleic acid immunomodulators in the pharmaceutical industry.
В настоящее время помимо широкого использования препаратов дезоксирибонуклеиновых кислот в научных целях для изучения структурно-функциональной организации генетического аппарата клетки активно разрабатываются схемы их применения в качестве лечебных средств при раковых заболеваниях, лучевой болезни, диабете и других патологических состояниях организма, при которых необходима его иммунокоррекция либо иммуномодуляция. Currently, in addition to the widespread use of deoxyribonucleic acid preparations for scientific purposes, to study the structural and functional organization of the cell’s genetic apparatus, schemes for their use as therapeutic agents for cancer, radiation sickness, diabetes, and other pathological conditions of the body that require immunocorrection or immunomodulation.
Хорошо зарекомендовавшим себя источником выделения дезоксирибонуклеиновых кислот (ДНК) в промышленных целях являются зрелые молоки рыб, имеющие ряд преимуществ перед сырьем иного происхождения, таким, например, как органы и ткани животных либо растений, биомасса микроорганизмов и т.п. К основным преимуществам рыбных молок, как сырья, могут быть отнесены: наиболее высокое содержание ДНК по сравнению с другими источниками, относительно низкое содержание рибонуклеиновых кислот (РНК) и других примесей, а также дешевизна и доступность молок, являющихся отходами рыбной промышленности. A well-established source of the isolation of deoxyribonucleic acids (DNA) for industrial purposes is mature fish milk, which has a number of advantages over raw materials of other origin, such as, for example, organs and tissues of animals or plants, biomass of microorganisms, etc. The main advantages of fish milk as a raw material can be attributed to: the highest DNA content compared to other sources, the relatively low content of ribonucleic acids (RNA) and other impurities, as well as the low cost and availability of milk, which are waste products from the fishing industry.
Известные способы получения ДНК предусматривают выделение на первом этапе дезоксинуклеопротеида (ДНП), из которого на второй стадии удаляют белок с помощью детергентов, катионитов или протеазами. Known methods for producing DNA involve the isolation of a deoxynucleoprotein (DNP) in a first step, from which a protein is removed in a second step with detergents, cation exchangers or proteases.
Известен способ получения ДНК (авт. свид. СССР N 1373709, 1988, МКИ С 07 Н 21/04), cогласно которому ткани животных гомогенизируют и затем центрифугируют. Осаждающийся хроматин отмывают от рибонуклеопротеидов не менее 6 раз, каждый раз отделяя его центрифугированием и проводя весь процесс при 4oC. Отмытый ДНП суспендируют в солевом буферном растворе с 0,15 М хлористого натрия, доводят концентрацию соли до 2 М, после чего добавляют катионит и проводят диализ полученной суспензии ДНП с катионитом против физраствора при постоянном перемешивании в течение 12 ч при 4oC. Диализованный препарат ДНК центрифугируют, в надосадочной жидкости остается раствор ДНК концентрацией не более 0,2 мг/мл и содержанием белка менее 1%
Недостатками данного способа являются необходимость проведения работы при низких температурах (сложность технологии), возможность получения только разбавленных растворов ДНК и небольших ее количеств. Способ пригоден только для использования в лабораторной практике.A known method of producing DNA (ed. Certificate. USSR N 1373709, 1988, MKI C 07
The disadvantages of this method are the need for work at low temperatures (the complexity of the technology), the ability to obtain only dilute solutions of DNA and small amounts. The method is suitable only for use in laboratory practice.
Известен способ (авт. свид. СССР N 496279, 1975, МКИ С 07 Н 21/04), по которому удаляют белки из ДНП экстракцией хлороформом в присутствии бентонита при 15-20oC и интенсивном перемешивании. После центрифугирования суспензии ДНК из надосадочной жидкости осаждают этиловым спиртом. В этом случае продемонстрирована авторами возможность получения нескольких десятков грамм ДНК с содержанием основного вещества в конечном продукте 80-85%
Недостатками способа являются использование экологически вредного соединения хлороформа, высокая стоимость процесса, а также его трудоемкость.A known method (ed. Certificate of the USSR N 496279, 1975, MKI C 07
The disadvantages of the method are the use of environmentally harmful compounds of chloroform, the high cost of the process, as well as its complexity.
Известен способ (авт. свид. СССР N 644484, 1979, МКИ С 07 Н 21/04), согласно которому депротеинизацию отмытого ДНП также проводят экстракцией органическими растворителями смесью хлороформа с изоамиловым спиртом. После отделения осадка центрифугированием ДНК осаждают из надосадочной жидкости 2 объемами охлажденного этилового спирта. К сожалению, авторы не указывают степень чистоты получаемой ими ДНК. A known method (ed. Certificate of the USSR N 644484, 1979, MKI C 07
Недостатком данного способа является использование экологически вредного соединения хлороформа. The disadvantage of this method is the use of environmentally harmful chloroform compounds.
Известен способ получения ДНК (авт. свид. СССР N 487897, 1975, МКИ С 07 G 7/026), согласно которому молоки рыб гомогенизируют в холодном цитратно-солевом растворе, центрифугируют и осадок вновь гомогенизируют в цитратно-солевом растворе, затем при перемешивании добавляют 6%-ный раствор додецилсульфата натрия (ДНС) до конечной концентрации ДСН 1% и, не прекpащая перемешивания, нагревают раствор до 60oC и выдерживают при этой температуре 1,5 ч. После чего добавляют вновь цитратно-солевую смесь до конечной концентрации хлористого натрия 16% и концентрации трехзамещенного цитрата натрия 2,6% и перемешивают смесь еще 1,5 ч при 60oC, по окончании чего смесь охлаждают до 2-4oC, смешивают с кизельгуром и элюируют ДНК с него цитратно-солевым раствором. Раствор ДНК отделяют от кизельгура фильтрацией через слой бальтинга и фильтровальной бумаги на нутч-фильтре. ДНК из раствора осаждают холодным 96% -ным этиловым спиртом. ДНК, полученная данным способом, содержит не более 1,5% белка, обладает значительным гиперхромным эффектом (41%).A known method of producing DNA (ed. Certificate of the USSR N 487897, 1975, MKI C 07
Недостатком данного способа является расход значительных количеств растворов: для получения 1 г ДНК требуется около 12 л цитратно-солевого раствора, что требует использования больших емкостей реакционных сосудов. The disadvantage of this method is the consumption of significant amounts of solutions: to obtain 1 g of DNA requires about 12 l of citrate-saline solution, which requires the use of large capacities of the reaction vessels.
Известен способ получения ДНК (пат. РФ N 2017496, 1994, МКИ С 07 Н 21/04), согласно которому молоки гомогенизируют в цитратно-солевом растворе, осадок после центрифугирования трижды промывают этим же раствором, отмытый осадок суспендируют в цитратно-солевом растворе с 6% додецилсульфата натрия в 45% -ном этиловом спирте, нагревают до 60oC, после чего добавляют равный объем 5 М хлористого натрия, перемешивают и охлаждают до 12-16oC. Полученную реакционную массу обрабатывают ультразвуком и осадок отделяют фильтрацией суспензии через кизельгур. ДНК из фильтрата отделяют на мембране с размером пор 0,45 мкм и промывают на этой же мембране до отрицательной пробы на белок в промывочных растворах.A known method of producing DNA (US Pat. RF N 2017496, 1994, MKI C 07
Недостатком данного способа является использование в ходе получения ДНК ультразвука, что неизбежно влечет применение в технологии мощных ультразвуковых машин, что удорожает получение субстанции и усложняет технологию. The disadvantage of this method is the use of ultrasound during the production of DNA, which inevitably entails the use of powerful ultrasonic machines in the technology, which makes obtaining a substance more expensive and complicates the technology.
Известен способ (авт. свид. СССР N 652187, 1979, МКИ С 07 Н 21/04), по которому гомогенат молок рыб в 0,15 М хлористом натрии центрифугируют и многократно промывают полученный осадок солевым буфером до отрицательной пробы на белок в промывочной жидкости, после чего осадок ресуспендируют в растворе протеолитического фермента (обычно трипсина или проназы) и инкубируют при 370oC в течение 18 ч. Далее клетки лизируют 0,5%-ным раствором додецилсульфата натрия и из полученной вязкой массы удаляют белки экстракцией фенолом. После центрифугирования к надосадочной жидкости добавляют хлористый натрий до конечной концентрации 3 М и экстрагируют равным объемом смеси хлороформа с изоамиловым спиртом. После центрифугирования из надосадочной жидкости осаждают ДНК равным объемом концентрированного этилового спирта. Для получения ДНК повышенной чистоты ее обрабатывают РНК-азой и затем трипсином для удаления примеси РНК и белка. Затем полученную ДНК несколько раз переосаждают и проводят одну-две депротеинизации хлороформом, после чего ее осаждают концентрированным этанолом, промывают несколько раз 70%-ным этиловым спиртом.A known method (ed. Certificate of the USSR N 652187, 1979, MKI C 07
Данным способом удается получить ДНК высокой степени чистоты (содержание белка около 1% отсутствие примеси полисахаридов, примеси РНК). Однако к недостаткам метода следует отнести многостадийность и использование органических растворителей для депротеинизации ДНП, которые являются экологически вредными и достаточно дорогими, что делает процесс более дорогостоящим и сложным. In this way, it is possible to obtain DNA of a high degree of purity (protein content of about 1% lack of polysaccharide impurities, RNA impurities). However, the disadvantages of the method include multistage and the use of organic solvents for the deproteinization of DNPs, which are environmentally harmful and quite expensive, which makes the process more expensive and complicated.
Наиболее близким техническим решением является способ получения ДНК, в котором удаление белка из ДНП ведут с помощью протосубтилина протеазы, выделенной из Bacillus Subtilis (авт. свид. СССР N 780444, 1985, МКИ С 07 D 13/06). Гомогенат молок лосося разбавляют равным объемом 0,15 М NaCl, центрифугируют, осадок трижды промывают 0,15 М NaCl, затем этанолом. Полученный ДНП суспендируют в солевом буфере, нагревают суспензию до 35oC, добавляют протосубтилин до 1,2 ед. акт/мл и выдерживают 30 мин при слабом перемешивании. После центрифугирования реакционной смеси надосадочную жидкость смешивают с равным объемом этилового спирта и извлекают пряди ДНК.The closest technical solution is a method for producing DNA, in which protein is removed from DNP using protosubtilin protease isolated from Bacillus Subtilis (ed. Certificate of the USSR N 780444, 1985, MKI C 07
Однако существенным недостатком известного способа является получение с использованием протосубтилина ДНК с высоким содержанием белка (2,4%), которую нельзя использовать без дополнительной очистки для получения инъекционных или иных лекарственных препаратов, в которых содержание белка не должно превышать 1,5% Другим недостатком является то, что согласно описанному способу удается получать только высокомолекулярную ДНК, которая медленно растворяется, образует очень вязкие растворы и также не годится без дополнительной фрагментации для получения на ее основе лекарственных препаратов. However, a significant disadvantage of the known method is the production of protosubtilin DNA with a high protein content (2.4%), which cannot be used without further purification to obtain injectable or other drugs in which the protein content should not exceed 1.5%. Another disadvantage is the fact that according to the described method it is possible to obtain only high molecular weight DNA, which slowly dissolves, forms very viscous solutions and is also not suitable without additional fragmentation for obtaining medications based on it.
Задачей изобретения является разработка такого ферментативного способа получения ДНК из молок половозрелых рыб, который бы позволял без дополнительной очистки и усложнения технологической схемы получать ДНК с содержанием белка не более 1,5% и одновременно позволял бы получать заданный размер нуклеиновых кислот, не прибегая к дополнительным техническим средствам, например использованию ультразвуковых установок. The objective of the invention is to develop such an enzymatic method for producing DNA from the milk of mature fish, which would make it possible to obtain DNA with a protein content of not more than 1.5% without additional purification and complication of the technological scheme and at the same time would allow to obtain a given nucleic acid size without resorting to additional technical means, for example the use of ultrasonic devices.
Поставленная задача решается тем, что предлагается способ получения натриевой соли ДНК из молок рыб путем их гомогенизации и удаления белков из комплекса с ДНК с помощью обработки ферментным препаратом, выделенным из гепатопанкреаса Камчатского краба, обладающий протеолитической, липазной и нуклеазной активностями. Другим важным приемом является добавление в реакционную смесь натриевой соли ЭДТА с последующей инкубацией. The problem is solved in that a method is proposed for producing sodium salt of DNA from fish milk by homogenizing them and removing proteins from the complex with DNA by treatment with an enzyme preparation isolated from the hepatopancreas of the Kamchatka crab, which has proteolytic, lipase and nuclease activities. Another important technique is the addition of EDTA sodium salt to the reaction mixture, followed by incubation.
Молекулярную массу получаемой натриевой соли ДНК можно регулировать, варьируя количество добавленной ЭДТА. Для получения низкомолекулярной ДНК добавляют ЭДТА до концентрации 3-10 мМ. Для получения ДНК средних размеров добавляют ЭДТА до концентрации 10-20 мМ. Для получения высокомолекулярной ДНК добавляют ЭДТА до концентрации 20-30 мМ. The molecular weight of the resulting sodium salt of DNA can be controlled by varying the amount of EDTA added. To obtain low molecular weight DNA add EDTA to a concentration of 3-10 mm. To obtain medium-sized DNA, EDTA is added to a concentration of 10-20 mM. To obtain high molecular weight DNA add EDTA to a concentration of 20-30 mm.
Кроме того, установлено, что повторная инкубация реакционной смеси в присутствии хлористого натрия в конечной концентрации 20-100 г/л позволяет получить препарат ДНК с меньшим содержанием белка. In addition, it was found that re-incubation of the reaction mixture in the presence of sodium chloride in a final concentration of 20-100 g / l allows you to get a DNA preparation with a lower protein content.
Для получения высокоочищенной ДНК с содержанием белка менее 0,1% раствор ДНК пропускают через колонку с аминообменником модифицированным силикагелем (полисил СА-500, 20-30 мкм), промывают колонку 0,5-1 М раствором хлористого натрия и элюируют высокочистую ДНК 2 М раствором NaCl. To obtain highly purified DNA with a protein content of less than 0.1%, the DNA solution is passed through a column with an modified silica gel amino exchanger (polysil CA-500, 20-30 μm), the column is washed with a 0.5-1 M sodium chloride solution and a 2 M high-purity DNA is eluted NaCl solution.
В сравнении с известными способами более высокая степень чистоты ДНК достигается за счет добавления вместо конкретной протеазы протосубтилина смеси протеаз из гепатопанкреаса камчатского краба и дополнительной стадией
прогреванием реакционной смеси при 56-60oC после гидролиза в солевом растворе. После этих обработок содержание белка в препарате ДНК не превышает 0,7%
Следует также добавить, что для получения ДНК, как лекарственной субстанции, ее необходимо фрагментировать, в частности, для этих целей и повышения выхода ДНК до 3% используется ультразвук. В заявляемом способе использование ультразвука не требуется, поскольку в комплексе ферментов из камчатского краба присутствуют и ДНКазы и РНКазы, поэтому только регуляцией количества добавляемого ЭДТА можно добиться получения препарата ДНК с заданным распределением молекулярных весов фрагментов, а выход ДНК из молок рыб также возрастает с 3% до 4-7,5% в предлагаемом способе.In comparison with known methods, a higher degree of DNA purity is achieved by adding instead of a specific protease of protosubtilin a mixture of proteases from king crab hepatopancreas and an additional stage
heating the reaction mixture at 56-60 o C after hydrolysis in saline. After these treatments, the protein content in the DNA preparation does not exceed 0.7%
It should also be added that in order to obtain DNA as a drug substance, it must be fragmented, in particular, ultrasound is used for these purposes and to increase the yield of DNA to 3%. In the inventive method, the use of ultrasound is not required, since DNase and RNase are also present in the complex of enzymes from king crab, so only by regulating the amount of EDTA added can we obtain a DNA preparation with a given distribution of molecular weights of the fragments, and the yield of DNA from fish milk also increases from 3% up to 4-7.5% in the proposed method.
На фиг.1 изображена схема получения препарата ДНК по заявляемому способу, где (А) дополнительные стадии, необходимые для получения высокоочищенной ДНК с содержанием белка менее 0,1% на фиг.2 спектр поглощения полученных по заявляемому способу образцов ДНК в УФ-области; на фиг.3 электрофорегpамма образцов ДНК, выделенных согласно заявляемому способу при различном содержании ЭДТА в реакционной смеси, 1-22 маркеры молекулярного веса. Стрелками отмечено положение самого большого фрагмента (1300 пар оснований) и самого маленького (50 пар оснований). Figure 1 shows a diagram of the preparation of a DNA preparation according to the claimed method, where (A) additional steps necessary to obtain highly purified DNA with a protein content of less than 0.1% in figure 2, the absorption spectrum of DNA samples obtained by the present method in the UV region; figure 3 electrophoretogram of DNA samples isolated according to the claimed method at different levels of EDTA in the reaction mixture, 1-22 molecular weight markers. The arrows indicate the position of the largest fragment (1300 base pairs) and the smallest (50 base pairs).
1, 22 маркеры молекулярного веса, Bspl гидролизат плазмидной ДНК pQPR, стрелками отмечено положение самого большого фрагмента (1300 пар оснований) и самого маленького (50 пар оснований). 1, 22 molecular weight markers, Bspl plasmid DNA hydrolyzate pQPR, arrows indicate the position of the largest fragment (1300 base pairs) and the smallest (50 base pair).
2, 7, 12, 17 ДНК, полученная согласно заявляемого способа при концентрации ЭДТА 5 мМ. 2, 7, 12, 17 DNA obtained according to the proposed method at a concentration of EDTA of 5 mm.
3, 8, 13, 18 ДНК, полученная при концентрации ЭДТА 10 мМ. 3, 8, 13, 18 DNA obtained at an EDTA concentration of 10 mM.
4, 9, 14, 19 ДНК, полученная при концентрации ЭДТА 15 мМ. 4, 9, 14, 19 DNA obtained at an EDTA concentration of 15 mM.
5, 10, 15, 20 ДНК, полученная при содержании ЭДТА в реакционной смеси 20 мМ. 5, 10, 15, 20 DNA obtained with an EDTA content of 20 mM in the reaction mixture.
6, 11, 16, 21 образцы ДНК, полученные согласно [5]
Пример 1. Схема получения ДНК представлена на фиг.1. 1 кг замороженных молок лосося промывают питьевой водопроводной водой и затем ополаскивают дистиллированной водой, гомогенизируют в 900 мл 0,15 М раствора хлористого натрия в течение 10-15 мин при максимальных оборотах ножа гомогенизатора. К гомогенату добавляют 100 мл 0,40 М раствора динатриевой соли ЭДТА (рН 8,0) до конечной концентрации 20 мМ и гомогенизируют дополнительно 5 мин. К полученной вязкой массе добавляют 1 г комплекса ферментов, полученного из гепатопанкреаса Камчатского краба, и перемешивают массу гомогенизацией в течение 2 мин. Далее смесь инкубируют при 37oC в течение 16 ч. К полученной гидролитической массе присыпают 20-100 г/л хлористого натрия, нагревают при перемешивании до 56oC и выдерживают при этом температуре. Далее реакционную массу охлаждают и отделяют раствор ДНК от осадка центрифугированием либо фильтрацией на нутч-фильтре. К охлажденному раствору при перемешивании добавляют два объема охлажденного этилового спирта и формируют осадок ДНК в течение не менее 2 ч. Полученный осадок отделяют на нутч-фильтре, промывают 300 мл 70% этилового спирта, подсушивают на воздухе и растворяют в 800-1000 мл 0,5 М раствора хлористого натрия. Полученный раствор вновь прогревают и осаждают ДЕК этиловым спиртом. Сформированный осадок отделяют фильтрацией на нутч-фильтре, последовательно промывают 300 мл 70%-ного, а затем 96%-ного этилового спирта и сушат при 30-50oC в вакууме водоструйного насоса. Выход натриевой соли ДНК в зависимости от ее содержания в исходном сырье 40-75 г.6, 11, 16, 21 DNA samples obtained according to [5]
Example 1. The scheme for obtaining DNA is presented in figure 1. 1 kg of frozen salmon milk is washed with drinking tap water and then rinsed with distilled water, homogenized in 900 ml of 0.15 M sodium chloride solution for 10-15 minutes at maximum revolutions of the homogenizer knife. 100 ml of a 0.40 M solution of EDTA disodium salt (pH 8.0) was added to the homogenate to a final concentration of 20 mM and homogenized for an additional 5 minutes. To the resulting viscous mass is added 1 g of an enzyme complex obtained from hepatopancreas of the Kamchatka crab, and the mass is mixed by homogenization for 2 minutes. Then the mixture is incubated at 37 o C for 16 hours. To the resulting hydrolytic mass, 20-100 g / l of sodium chloride are sprinkled, heated with stirring to 56 o C and kept at this temperature. Next, the reaction mass is cooled and the DNA solution is separated from the precipitate by centrifugation or filtration on a suction filter. Two volumes of chilled ethyl alcohol are added to the cooled solution with stirring and a DNA precipitate is formed for at least 2 hours. The resulting precipitate is separated on a suction filter, washed with 300 ml of 70% ethyl alcohol, dried in air and dissolved in 800-1000 ml of 0. 5 M sodium chloride solution. The resulting solution was reheated and precipitated DEC with ethyl alcohol. The precipitate formed is filtered off on a suction filter, washed successively with 300 ml of 70% and then 96% ethanol, and dried at 30-50 ° C. in a vacuum of a water-jet pump. The yield of sodium salt of DNA, depending on its content in the feedstock 40-75 g.
Cпектр поглощения полученной по данной схеме ДНК представлен на фиг.2, электрофореграмма на фиг.3. Белок определяли по стандартному методу Бредфорда, используя в качестве стандарта раствор человеческого сывороточного альбумина. Выход ДНК рассчитывали по поглощению при 260 нм, используя коэффициент пересчета 1 о.е.50 мкг. Гиперхромизм ДНК (в) определяли, сравнивая оптическую плотность при 260 нм раствора ДНК до и после гидролиза 5% хлорной кислотой при 100oC в течение 20 мин.The absorption spectrum obtained by this DNA scheme is presented in figure 2, the electrophoregram in figure 3. Protein was determined according to the standard Bradford method using a human serum albumin solution as a standard. DNA yield was calculated by absorbance at 260 nm using a conversion factor of 1 p.u. 50 μg. DNA hyperchromism (c) was determined by comparing the optical density at 260 nm of a DNA solution before and after hydrolysis with 5% perchloric acid at 100 ° C for 20 minutes.
Содержание белка в образцах ДНК, полученных по заявляемому способу, существенно ниже, чем у известных способов. Кроме этого, выход ДНК также значительно выше (4-7,5% вместо 3, как в известных способах). Получаемая по нашему способу ДНК имеет двухцепочечную структуру, о чем свидетельствует высокое значение гиперхромного эффекта (33-42%). Наличие в ферментном препарате нуклеазных активностей приводит к получению фрагментированной ДНК, с размером фрагментов от 50 до 1300 пар оснований. Максимум распределения ДНК по фрагментам смещается в сторону более протяженных фрагментов при повышении концентрации ЭДТА в реакционной смеси (фиг.3). The protein content in DNA samples obtained by the present method is significantly lower than that of the known methods. In addition, the DNA yield is also significantly higher (4-7.5% instead of 3, as in the known methods). The DNA obtained by our method has a double-stranded structure, as evidenced by the high value of the hyperchromic effect (33-42%). The presence of nuclease activities in the enzyme preparation results in fragmented DNA, with fragment sizes ranging from 50 to 1300 base pairs. The maximum distribution of DNA across the fragments is shifted towards longer fragments with increasing concentration of EDTA in the reaction mixture (Fig. 3).
Пример 2. 1 кг замороженных молок лосося промывают питьевой водопроводной водой и затем ополаскивают дистиллированной водой, гомогенизируют в 950 мл 0,15 М раствора хлористого натрия в течение 10-15 мин при максимальных оборотах ножа гомогенизатора. К гомогенату добавляют 50 мл 0,40 М раствора динатриевой соли ЭДТА (рН 8,0) до конечной концентрации 10 мМ и гомогенизируют дополнительно 5 мин. Далее из полученного гомогената выделяют низкомолекулярную нативную ДНК согласно примера 1. Example 2. 1 kg of frozen salmon milk is washed with drinking tap water and then rinsed with distilled water, homogenized in 950 ml of 0.15 M sodium chloride solution for 10-15 minutes at maximum revolutions of the homogenizer knife. 50 ml of a 0.40 M solution of EDTA disodium salt (pH 8.0) was added to the homogenate to a final concentration of 10 mM and homogenized for an additional 5 minutes. Next, from the obtained homogenate isolated low molecular weight native DNA according to example 1.
Пример 3. 1 кг замороженных молок лосося промывают питьевой водопроводной водой и затем ополаскивают дистиллированной водой, гомогенизируют в 850 мл 0,15 М раствора хлористого натрия в течение 10-15 мин при максимальных оборотах ножа гомогенизатора. К гомогенату добавляют 150 мл 0,40 М раствора динатриевой соли ЭДТА (рН 8,0) до конечной концентрации 30 мМ и гомогенизируют дополнительно 5 мин. Далее из полученного гомогената выделяют высокомолекулярную нативную ДНК согласно примера 1. Example 3. 1 kg of frozen salmon milk is washed with drinking tap water and then rinsed with distilled water, homogenized in 850 ml of 0.15 M sodium chloride solution for 10-15 minutes at maximum revolutions of the homogenizer knife. To the homogenate, add 150 ml of a 0.40 M solution of EDTA disodium salt (pH 8.0) to a final concentration of 30 mM and homogenize for an additional 5 minutes. Next, from the obtained homogenate isolated high molecular weight native DNA according to example 1.
Пример 4. ДНК, полученную согласно примеров 1-3, растворяют в физиологическом растворе (концентрация 10 мг/мл) и пропускают через колонку с модифицированным силикагелем (Полисил СА-500, 20-30 мкм). После нанесения колонку промывают и элюируют ДНК 2 М NaCl. Анализ относительного содержания белка в различных фракциях показал, что высокочистая ДНК (содержание белка менее 0,1%) элюируется 2 М NaCl. Example 4. The DNA obtained according to examples 1-3 is dissolved in physiological saline (
Промышленная применимость. Изобретение может быть использовано в медицине и фармацевтической промышленности, а также при приготовлении косметических препаратов. Industrial applicability. The invention can be used in medicine and the pharmaceutical industry, as well as in the preparation of cosmetic preparations.
Claims (5)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95116051A RU2072855C1 (en) | 1995-09-21 | 1995-09-21 | Method of preparing dna sodium salt from fish milt |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU95116051A RU2072855C1 (en) | 1995-09-21 | 1995-09-21 | Method of preparing dna sodium salt from fish milt |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2072855C1 true RU2072855C1 (en) | 1997-02-10 |
RU95116051A RU95116051A (en) | 1998-10-27 |
Family
ID=20172086
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU95116051A RU2072855C1 (en) | 1995-09-21 | 1995-09-21 | Method of preparing dna sodium salt from fish milt |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2072855C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2663132C1 (en) * | 2017-01-31 | 2018-08-01 | Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" (ООО "СФМ") | Method for producing low-molecular dna with high degree of purity |
-
1995
- 1995-09-21 RU RU95116051A patent/RU2072855C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 780444, кл. C 07 D 13/06, 1985. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2663132C1 (en) * | 2017-01-31 | 2018-08-01 | Общество с ограниченной ответственностью "Саентифик Фьючер Менеджмент" (ООО "СФМ") | Method for producing low-molecular dna with high degree of purity |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR19990014924A (en) | Large Scale Purification of Plasmids | |
Yu et al. | Techniques for the isolation of high-quality RNA from cells encapsulated in chitosan hydrogels | |
JP6728294B2 (en) | A new method for protein purification. | |
JPS6356300A (en) | Removing agent of nucleic acid or endotoxin and method for removing said compound | |
FR2471785A1 (en) | RIBOSOMAL RNA-BASED IMMUNOSTIMULANT PREPARATIONS AND PROCESS FOR THE PREPARATION OF RNA | |
Amid et al. | A novel aqueous micellar two-phase system composed of surfactant and sorbitol for purification of pectinase enzyme from Psidium guajava and recycling phase components | |
RU2072855C1 (en) | Method of preparing dna sodium salt from fish milt | |
ES2336548T3 (en) | METHODS AND COMPOSITIONS TO REMOVE CELL PROTEINS. | |
CN103408625B (en) | A kind of method of purify DNA | |
RU2663132C1 (en) | Method for producing low-molecular dna with high degree of purity | |
RU2230325C2 (en) | Method for preparing purified preparation of botulinic toxin type a | |
RU2422532C2 (en) | Method of recovery low-molecular nuclear ribonucleoproteids (rnp) from tissues and organs of mammals | |
KR100337046B1 (en) | Method of purifying dna in a cross-flow centrifuge | |
RU2027759C1 (en) | Method of hyaluronidase preparing | |
EP0708828B1 (en) | Obtaining nucleic acids | |
Pospelov et al. | Structure of chromatin subunits: an endonuclease Serratia marcescens study | |
RU2055837C1 (en) | Method for production of sterile solution of desoxyribonucleic acid sodium salt | |
CN109371051A (en) | A kind of extracting method and application suitable for obtaining a large amount of high-purity salmonella outer membrane proteins | |
RU2026864C1 (en) | Method of dna isolation | |
RU2781832C1 (en) | Method for obtaining total rna from biomass of saccharomyces cerevisiae yeast cells | |
RU2779914C1 (en) | Method for producing dna-containing preparation for oral use and preparation obtained by this method | |
RU2274656C1 (en) | Method for preparing highly purified recombinant polypeptide with property of human tumor necrosis factor-alpha | |
RU2041885C1 (en) | Process for sodium preparing salt powder of deoxyribonucleic acid from milt | |
RU2237719C2 (en) | Method for preparing lipopolysaccharides | |
RU2225722C1 (en) | Method for preparing human interferon |