RU2057176C1 - Питательная среда для культивирования клеток человека и животных - Google Patents
Питательная среда для культивирования клеток человека и животных Download PDFInfo
- Publication number
- RU2057176C1 RU2057176C1 SU5042641A RU2057176C1 RU 2057176 C1 RU2057176 C1 RU 2057176C1 SU 5042641 A SU5042641 A SU 5042641A RU 2057176 C1 RU2057176 C1 RU 2057176C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- medium
- nutrient medium
- human
- animal cells
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Использование: культивирование клеток человека и животных, необходимых для получения вакцинных штаммов вирусов и проведения диагностических исследований. Сущность: получение питательной среды для культивирования клеток, содержащей триозид-(25 S)-5 α=3β, 22 α, 26-триол-26-0- β -Д-глюкопиранозид. Триозид получают путем экстракции семян томатов 70%-ным метанолом. При его добавлении в стандартную ростовую среду выход клеток увеличивается не менее, чем в 2 раза. 1 табл.
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к выращиванию клеток человека и животных, и может быть использовано при культивировании вирусов, производстве вакцин, получении моноклональных антител, проведении диагностических исследований.
Известны стандартные ростовые питательные среды для культивирования человека и животных [1] Однако эти среды не обеспечивают выход достаточного количества целевого продукта.
Задача изобретения обеспечить существенное повышение выхода клеточной продукции.
Для этого в стандартную ростовую питательную среду среда Игла, Игла-МЕМ, среда 199 кроме стандартных добавок (сыворотка крупного рогатого скота в конечной концентрации 8-10% антибиотики) вводят 5 α -фуростан-3 β, 22, 26-триол-3-[0- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 2)- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 4)- β -D-галактопиранозид] -26-0- β D-глюкопиранозид в концентрации 0,01% (Sato H. Sakamura S. A better Principle of tomato Seeds Isolation and structure of new Furactanol Saponin. -Agr.Biol.Chem. 1973, 37(2), p.225-231.
На предлагаемой питательной среде количество клеточной популяции увеличивается в 3 и более раз по сравнению с известными средами.
П р и м е р 1. Приготовление первично-трипсинированной культуры фибробластов эмбриона человека (ФЭЧ). Ткани туловища и конечностей плода 2-4-месячной беременности измельчают ножницами до мелких кусочков, размером 2-4 мм, затем промывают три раза в растворе Хенкса рН 7,4. Измельченную ткань трипсинизируют. Полученную суспензию клеток осаждают центрифугированием при 1500-2000 об/мин в течение 15 мин и помещают в холодильник до смешивания с клетками последующих экстракций. Смешанную суспензию клеток, полученную после всех экстракций, центрифугируют при 1500-2000 об/мин в течение 15 мин, надосадочную жидкость отбрасывают, клетки ресуспендируют в среде с 0,5%-ным раствором гидролизата лактальбумина на растворе Хенкса рН 7,0. Осадок ресуспендируют в питательной среде для выращивания клеток до концентрации 200 тыс. клеток в 1,0 мл ростовой среды. В качестве среды для выращивания клеток используют среду с 0,5% гидролизата лактальбумина на растворе Хенкса рН 7,0; среду 199 на растворе Хенкса рН 7,2; в каждую из которых добавляют сыворотку крупного рогатого скота (10,0%) и антибиотики из расчета 25 тыс.ед. пенициллина и 25,0 мг стрептомицина на 100,0 мл среды. Клеточную суспензию разделяют на две половины, в одну из них помимо вышеперечисленных ингредиентов добавляют 10,0% -ный раствор 5 α -фуростан-3 β22,26-триол-3-[0- β -D- глю- копиранозил (1 __→ 2) β D глюкопиранозил (1 __→ 4)β D-галактопиранозид]-26-0- β -D-глюкопиранозид, предварительно приготовленный на среде 199 и простерилизованный через пластины Millipore с диаметром пор 0,22 мкм с таким расчетом, чтобы конечная концентрация биостимулятора в ростовой среде составила 0,01% Первично трипсинизированные клетки фибробластов эмбриона человека разливают в пробирки по 1,0 мл. Пробирки укладывают в штатив под углом 30-40о и помещают в термостат при 37оС. Через 3 суток культивирования клеток (в присутствии биостимулятора) формируется монослой клеток типичной морфологии.
Вторую половину клеточной суспензии, куда не добавляют биостимулятор, используют в качестве контроля. Затем приступают к подсчету клеток. Для этого клетки снимают со стекла смесью, состоящей из равных объемов 0,25%-ных растворов трипсина и версена, предварительно подогретой на водяной бане до 30-35оС. Выливают из пробирок ростовую среду, клеточный монослой промывают 3 раза фосфатно-буферным раствором, рН 7,5. Затем теплой смесью трипсин-версена заливают монослой культуры клеток так, чтобы все участки были покрыты жидкостью. Пробирки встряхивают и помещают в термостат (37оС) на 15-20 мин до полного отделения клеток от поверхности стекла. Суспензию клеток центрифугируют 10 мин при 2000-2500 об/мин, смесь трипсин-версен удаляют. Осаждение центрифугированием клетки ресуспендируют в 1,0 мл питательной среды, количество клеток подсчитывают в счетной камере Горяева. Количество фибробластов эмбриона человека при использовании ростовой питательной среды, содержащей помимо известных добавок и биостимулятор (0,01% ), составляет 6,8·105; 12,2·105 и 28,3·105 кл/мл, в то время как в контроле эти показатели составляют 3,5·105; 4,2·105 и 9,4·105 кл/мл спустя 24, 48 и 72 ч соответственно см. таблицу.
П р и м е р 2. Приготовление перевиваемой культуры НЕр-2.
Взвесь клеток контролируют на бактериальную стерильность, разводят питательной средой (среда 199, среда Игла и др.) с таким расчетом, чтобы в 1,0 мл содержалось 90 тыс. клеток. В качестве среды для выращивания клеток используют среду Игла, среду 199, Игла-МЕМ с добавлением сыворотку крупного рогатого скота и антибиотиков из расчета 25 тыс. единиц пенициллина и 25,0 мг стрептомицина на 100,0 мл среды. Как и в предыдущем опыте клеточную суспензию разделяют на две половины, в одну из которых помимо ростовой среды добавляют 10,0% стерильного раствора с таким расчетом, чтобы конечная концентрация биостимулятора 5 α -фуростан-3 β,22,26-триол-3-[0- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 2)- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 4)- β -D-галактопиранозид]-26-0- β -D-глюкоопиранозида составила 0,01% Перевиваемую культуру клеток НЕр-2 разливают в пробирки по 1,0 мл. Пробирки укладывают в штатив под углом 30-40о и помещают в термостат при 37оС. Клетки снимают с поверхности стекла матраса раствором, состоящим из равных объемов трипсина и версена. После добавления протеолитических ферментов пробирки встряхивают и помещают в термостат при 37оС на 15-20 мин, до полного отделения клеток от поверхности стекла. После осаждения клеток центрифугированием их ресуспендируют в 1 мл питательной среды, количество клеток подсчитывают в счетной камере Горяева. Количество клеток НЕр-2 при использовании ростовой среды (среда Игла, содержащая 8,0% сыворотки крупного рогатого скота) с добавлением биостимулятора в конечной концентрации 0,01% составляет 1,1·105; 4,0·105; 14,3·105 кл/мл, в то время, как при использовании среды без стимулятора 0,9·105; 1,4·105; 5,4·105 кл/мл спустя 24,48 и 72 ч соответственно.
Питательная среда, представленная в новом составе и используемая для выращивания клеток, позволяет значительно увеличить выход целевого продукта. Количество клеток увеличивается в 3 и более раз.
Claims (1)
- ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ЖИВОТНЫХ, представляющая собой стандартную ростовую среду с добавлением сыворотки крупного рогатого скота, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит 5α-фуростан-3, b22, 26- триол-3[ 0- β -D-глюкопиранозил (1_→2-β-D-глюкопиранозил (1_→4)-β-D-галактопиранозид ]-26-0- b-D-глюкопиранозид в концентрации 0,01%.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5042641 RU2057176C1 (ru) | 1992-05-20 | 1992-05-20 | Питательная среда для культивирования клеток человека и животных |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5042641 RU2057176C1 (ru) | 1992-05-20 | 1992-05-20 | Питательная среда для культивирования клеток человека и животных |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2057176C1 true RU2057176C1 (ru) | 1996-03-27 |
Family
ID=21604475
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5042641 RU2057176C1 (ru) | 1992-05-20 | 1992-05-20 | Питательная среда для культивирования клеток человека и животных |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2057176C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8021881B2 (en) | 1999-09-28 | 2011-09-20 | Baxter Innovations Gmbh | Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells |
-
1992
- 1992-05-20 RU SU5042641 patent/RU2057176C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Лабораторная диагностика вирусных и риккетсиозных заболеваний. М.: Медицина, 1974, с.68-146. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8021881B2 (en) | 1999-09-28 | 2011-09-20 | Baxter Innovations Gmbh | Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells |
US8722406B2 (en) | 1999-09-28 | 2014-05-13 | Baxter Innovations Gmbh | Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells |
US9441203B2 (en) | 1999-09-28 | 2016-09-13 | Baxalta Innovations Gmbh | Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Fischer | Tissue culture; studies in experimental morphology and general physiology of tissue cells in vitro | |
DE2749023C2 (de) | Verfahren zur schnellen Vermehrung von SV3T3 Zellen in vitro | |
JPS58174327A (ja) | 治療および診断用組成物 | |
Nozawa et al. | Inhibiton by glucocorticoids and choleragen of the conditional growth of poorly adherent mononuclear phagocytes of newborn hamster liver and lung (Hormonal control of macrophage growth) | |
RU2057176C1 (ru) | Питательная среда для культивирования клеток человека и животных | |
DE3538310A1 (de) | Verwendung von glutamin in form seiner di- und tripeptide im naehrmedium fuer zellkulturen | |
Moustafa et al. | The fate of transplanted cells in mouse blastocysts in vitro | |
CN109627282B (zh) | 鹿胎盘活性蛋白及其提取方法和应用 | |
US20240066091A1 (en) | Use of plant-derived exosomes for inducing differentiation of stem cell sources into cartilage and bone cells | |
Peters | Preparation of large quantities of pure bovine lymphocytes and a monolayer technique for lymphocyte cultivation | |
RU2206337C1 (ru) | Лекарственный препарат для лечения мышечных дистоний и способ его получения | |
CN109792972B (zh) | 一种囊尾蚴体外培养方法 | |
Webber | Effects of serum on the growth of prostatic cells in vitro | |
Lloyd | ON VITAMINES, AMINO-ACIDS, AND OTHER CHEMI-CAL FACTORS INVOLVED IN THE GROWTH OF THE MENINGOCOCCUS. ¹ | |
Morton et al. | Some properties of the inhibitor (s) of lymphocyte mitosis derived from Mycoplasma | |
US5932717A (en) | Methods of obtaining DNA-RNA hybrids from sturgeon milt | |
CA1164818A (en) | Tissue culture substrate | |
JPS5852227A (ja) | 淋菌からの免疫原性複合体 | |
RU2762431C1 (ru) | Способ выделения биологически активных веществ антимикробного действия из клеточных культур элеутерококка колючего eleutherococcus senticosus rupr. maxim. | |
Evans | The effect of hemolytic streptococci and their products on leucocytes | |
Emery | The metabolism of amino‐acids by Paramecium caudatum | |
JPS6028935A (ja) | 新規ヒト抗体産生増強因子およびその製造法 | |
CN116103219B (zh) | 一种雪莲干细胞粉的制备方法及其制得的抑菌剂 | |
Brannen et al. | The effects of immunosuppression on sperm granulomas in vasectomized rats | |
RU2164940C2 (ru) | Способ выделения аксенических культур микроводорослей |