RU2057176C1 - Питательная среда для культивирования клеток человека и животных - Google Patents

Питательная среда для культивирования клеток человека и животных Download PDF

Info

Publication number
RU2057176C1
RU2057176C1 SU5042641A RU2057176C1 RU 2057176 C1 RU2057176 C1 RU 2057176C1 SU 5042641 A SU5042641 A SU 5042641A RU 2057176 C1 RU2057176 C1 RU 2057176C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cells
medium
nutrient medium
human
animal cells
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Константин Иванович Спыну
Павел Константинович Кинтя
Татьяна Петровна Грушко
Original Assignee
Институт генетики АН Республики Молдова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт генетики АН Республики Молдова filed Critical Институт генетики АН Республики Молдова
Priority to SU5042641 priority Critical patent/RU2057176C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2057176C1 publication Critical patent/RU2057176C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Использование: культивирование клеток человека и животных, необходимых для получения вакцинных штаммов вирусов и проведения диагностических исследований. Сущность: получение питательной среды для культивирования клеток, содержащей триозид-(25 S)-5 α=3β, 22 α, 26-триол-26-0- β -Д-глюкопиранозид. Триозид получают путем экстракции семян томатов 70%-ным метанолом. При его добавлении в стандартную ростовую среду выход клеток увеличивается не менее, чем в 2 раза. 1 табл.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к выращиванию клеток человека и животных, и может быть использовано при культивировании вирусов, производстве вакцин, получении моноклональных антител, проведении диагностических исследований.
Известны стандартные ростовые питательные среды для культивирования человека и животных [1] Однако эти среды не обеспечивают выход достаточного количества целевого продукта.
Задача изобретения обеспечить существенное повышение выхода клеточной продукции.
Для этого в стандартную ростовую питательную среду среда Игла, Игла-МЕМ, среда 199 кроме стандартных добавок (сыворотка крупного рогатого скота в конечной концентрации 8-10% антибиотики) вводят 5 α -фуростан-3 β, 22, 26-триол-3-[0- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 2)- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 4)- β -D-галактопиранозид] -26-0- β D-глюкопиранозид в концентрации 0,01% (Sato H. Sakamura S. A better Principle of tomato Seeds Isolation and structure of new Furactanol Saponin. -Agr.Biol.Chem. 1973, 37(2), p.225-231.
На предлагаемой питательной среде количество клеточной популяции увеличивается в 3 и более раз по сравнению с известными средами.
П р и м е р 1. Приготовление первично-трипсинированной культуры фибробластов эмбриона человека (ФЭЧ). Ткани туловища и конечностей плода 2-4-месячной беременности измельчают ножницами до мелких кусочков, размером 2-4 мм, затем промывают три раза в растворе Хенкса рН 7,4. Измельченную ткань трипсинизируют. Полученную суспензию клеток осаждают центрифугированием при 1500-2000 об/мин в течение 15 мин и помещают в холодильник до смешивания с клетками последующих экстракций. Смешанную суспензию клеток, полученную после всех экстракций, центрифугируют при 1500-2000 об/мин в течение 15 мин, надосадочную жидкость отбрасывают, клетки ресуспендируют в среде с 0,5%-ным раствором гидролизата лактальбумина на растворе Хенкса рН 7,0. Осадок ресуспендируют в питательной среде для выращивания клеток до концентрации 200 тыс. клеток в 1,0 мл ростовой среды. В качестве среды для выращивания клеток используют среду с 0,5% гидролизата лактальбумина на растворе Хенкса рН 7,0; среду 199 на растворе Хенкса рН 7,2; в каждую из которых добавляют сыворотку крупного рогатого скота (10,0%) и антибиотики из расчета 25 тыс.ед. пенициллина и 25,0 мг стрептомицина на 100,0 мл среды. Клеточную суспензию разделяют на две половины, в одну из них помимо вышеперечисленных ингредиентов добавляют 10,0% -ный раствор 5 α -фуростан-3 β22,26-триол-3-[0- β -D- глю- копиранозил (1 __→ 2) β D глюкопиранозил (1 __→ 4)β D-галактопиранозид]-26-0- β -D-глюкопиранозид, предварительно приготовленный на среде 199 и простерилизованный через пластины Millipore с диаметром пор 0,22 мкм с таким расчетом, чтобы конечная концентрация биостимулятора в ростовой среде составила 0,01% Первично трипсинизированные клетки фибробластов эмбриона человека разливают в пробирки по 1,0 мл. Пробирки укладывают в штатив под углом 30-40о и помещают в термостат при 37оС. Через 3 суток культивирования клеток (в присутствии биостимулятора) формируется монослой клеток типичной морфологии.
Вторую половину клеточной суспензии, куда не добавляют биостимулятор, используют в качестве контроля. Затем приступают к подсчету клеток. Для этого клетки снимают со стекла смесью, состоящей из равных объемов 0,25%-ных растворов трипсина и версена, предварительно подогретой на водяной бане до 30-35оС. Выливают из пробирок ростовую среду, клеточный монослой промывают 3 раза фосфатно-буферным раствором, рН 7,5. Затем теплой смесью трипсин-версена заливают монослой культуры клеток так, чтобы все участки были покрыты жидкостью. Пробирки встряхивают и помещают в термостат (37оС) на 15-20 мин до полного отделения клеток от поверхности стекла. Суспензию клеток центрифугируют 10 мин при 2000-2500 об/мин, смесь трипсин-версен удаляют. Осаждение центрифугированием клетки ресуспендируют в 1,0 мл питательной среды, количество клеток подсчитывают в счетной камере Горяева. Количество фибробластов эмбриона человека при использовании ростовой питательной среды, содержащей помимо известных добавок и биостимулятор (0,01% ), составляет 6,8·105; 12,2·105 и 28,3·105 кл/мл, в то время как в контроле эти показатели составляют 3,5·105; 4,2·105 и 9,4·105 кл/мл спустя 24, 48 и 72 ч соответственно см. таблицу.
П р и м е р 2. Приготовление перевиваемой культуры НЕр-2.
Взвесь клеток контролируют на бактериальную стерильность, разводят питательной средой (среда 199, среда Игла и др.) с таким расчетом, чтобы в 1,0 мл содержалось 90 тыс. клеток. В качестве среды для выращивания клеток используют среду Игла, среду 199, Игла-МЕМ с добавлением сыворотку крупного рогатого скота и антибиотиков из расчета 25 тыс. единиц пенициллина и 25,0 мг стрептомицина на 100,0 мл среды. Как и в предыдущем опыте клеточную суспензию разделяют на две половины, в одну из которых помимо ростовой среды добавляют 10,0% стерильного раствора с таким расчетом, чтобы конечная концентрация биостимулятора 5 α -фуростан-3 β,22,26-триол-3-[0- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 2)- β -D-глюкопиранозил (1 __→ 4)- β -D-галактопиранозид]-26-0- β -D-глюкоопиранозида составила 0,01% Перевиваемую культуру клеток НЕр-2 разливают в пробирки по 1,0 мл. Пробирки укладывают в штатив под углом 30-40о и помещают в термостат при 37оС. Клетки снимают с поверхности стекла матраса раствором, состоящим из равных объемов трипсина и версена. После добавления протеолитических ферментов пробирки встряхивают и помещают в термостат при 37оС на 15-20 мин, до полного отделения клеток от поверхности стекла. После осаждения клеток центрифугированием их ресуспендируют в 1 мл питательной среды, количество клеток подсчитывают в счетной камере Горяева. Количество клеток НЕр-2 при использовании ростовой среды (среда Игла, содержащая 8,0% сыворотки крупного рогатого скота) с добавлением биостимулятора в конечной концентрации 0,01% составляет 1,1·105; 4,0·105; 14,3·105 кл/мл, в то время, как при использовании среды без стимулятора 0,9·105; 1,4·105; 5,4·105 кл/мл спустя 24,48 и 72 ч соответственно.
Питательная среда, представленная в новом составе и используемая для выращивания клеток, позволяет значительно увеличить выход целевого продукта. Количество клеток увеличивается в 3 и более раз.

Claims (1)

  1. ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОК ЧЕЛОВЕКА И ЖИВОТНЫХ, представляющая собой стандартную ростовую среду с добавлением сыворотки крупного рогатого скота, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит 5α-фуростан-3, b22, 26- триол-3[ 0- β -D-глюкопиранозил (1_→2-β-D-глюкопиранозил (1_→4)-β-D-галактопиранозид ]-26-0- b-D-глюкопиранозид в концентрации 0,01%.
SU5042641 1992-05-20 1992-05-20 Питательная среда для культивирования клеток человека и животных RU2057176C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5042641 RU2057176C1 (ru) 1992-05-20 1992-05-20 Питательная среда для культивирования клеток человека и животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5042641 RU2057176C1 (ru) 1992-05-20 1992-05-20 Питательная среда для культивирования клеток человека и животных

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2057176C1 true RU2057176C1 (ru) 1996-03-27

Family

ID=21604475

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5042641 RU2057176C1 (ru) 1992-05-20 1992-05-20 Питательная среда для культивирования клеток человека и животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2057176C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8021881B2 (en) 1999-09-28 2011-09-20 Baxter Innovations Gmbh Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Лабораторная диагностика вирусных и риккетсиозных заболеваний. М.: Медицина, 1974, с.68-146. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8021881B2 (en) 1999-09-28 2011-09-20 Baxter Innovations Gmbh Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells
US8722406B2 (en) 1999-09-28 2014-05-13 Baxter Innovations Gmbh Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells
US9441203B2 (en) 1999-09-28 2016-09-13 Baxalta Innovations Gmbh Medium for the protein-free and serum-free cultivation of cells

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fischer Tissue culture; studies in experimental morphology and general physiology of tissue cells in vitro
DE2749023C2 (de) Verfahren zur schnellen Vermehrung von SV3T3 Zellen in vitro
JPS58174327A (ja) 治療および診断用組成物
Nozawa et al. Inhibiton by glucocorticoids and choleragen of the conditional growth of poorly adherent mononuclear phagocytes of newborn hamster liver and lung (Hormonal control of macrophage growth)
RU2057176C1 (ru) Питательная среда для культивирования клеток человека и животных
DE3538310A1 (de) Verwendung von glutamin in form seiner di- und tripeptide im naehrmedium fuer zellkulturen
Moustafa et al. The fate of transplanted cells in mouse blastocysts in vitro
CN109627282B (zh) 鹿胎盘活性蛋白及其提取方法和应用
US20240066091A1 (en) Use of plant-derived exosomes for inducing differentiation of stem cell sources into cartilage and bone cells
Peters Preparation of large quantities of pure bovine lymphocytes and a monolayer technique for lymphocyte cultivation
RU2206337C1 (ru) Лекарственный препарат для лечения мышечных дистоний и способ его получения
CN109792972B (zh) 一种囊尾蚴体外培养方法
Webber Effects of serum on the growth of prostatic cells in vitro
Lloyd ON VITAMINES, AMINO-ACIDS, AND OTHER CHEMI-CAL FACTORS INVOLVED IN THE GROWTH OF THE MENINGOCOCCUS. ¹
Morton et al. Some properties of the inhibitor (s) of lymphocyte mitosis derived from Mycoplasma
US5932717A (en) Methods of obtaining DNA-RNA hybrids from sturgeon milt
CA1164818A (en) Tissue culture substrate
JPS5852227A (ja) 淋菌からの免疫原性複合体
RU2762431C1 (ru) Способ выделения биологически активных веществ антимикробного действия из клеточных культур элеутерококка колючего eleutherococcus senticosus rupr. maxim.
Evans The effect of hemolytic streptococci and their products on leucocytes
Emery The metabolism of amino‐acids by Paramecium caudatum
JPS6028935A (ja) 新規ヒト抗体産生増強因子およびその製造法
CN116103219B (zh) 一种雪莲干细胞粉的制备方法及其制得的抑菌剂
Brannen et al. The effects of immunosuppression on sperm granulomas in vasectomized rats
RU2164940C2 (ru) Способ выделения аксенических культур микроводорослей