RU2040274C1 - METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES - Google Patents
METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES Download PDFInfo
- Publication number
- RU2040274C1 RU2040274C1 SU4371034A RU2040274C1 RU 2040274 C1 RU2040274 C1 RU 2040274C1 SU 4371034 A SU4371034 A SU 4371034A RU 2040274 C1 RU2040274 C1 RU 2040274C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sorbent
- carrier
- immunosorbent
- binding
- washed
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской химии и иммунологии, конкретно к биоспецифическим сорбентам, представляющим собой твердые носители с иммобилизованными на них синтетическими олигосахаридами. Такие сорбенты предназначены для удаления антител с групповой специфичностью А и В/ α и β-агглютининов/ из крови, плазмы, сыворотки, а также препаратов крови, например, при получении антирезусных диагностических сывороток. The invention relates to medical chemistry and immunology, specifically to biospecific sorbents, which are solid carriers with synthetic oligosaccharides immobilized on them. Such sorbents are designed to remove antibodies with group specificity A and B / α and β-agglutinins / from blood, plasma, serum, and blood products, for example, when receiving anti-Rhesus diagnostic sera.
Цель изобретения упрощение способа и улучшения качества сорбента. The purpose of the invention is to simplify the method and improve the quality of the sorbent.
П р и м е р 1. Получение сорбента В. PRI me R 1. Obtaining sorbent B.
К 1 г аминопропиллированного макропористого стекла (МПС) прибавляют раствор 40 мл поли/4-нитрофенилакрилата/ в 2 мл ДМФА, выдерживают, периодически встряхивая, в течение 15 ч, промывают ДМФА. К полученному активированному носителю прибавляют раствор 3 мг /7,5 мкмоль/ /3-аминопропил/-3-0-/α -D-галактопиранозил/- β -D-галактопиранозида в 2 мл ДМФА, выдерживают в течение суток, периодически встряхивая, затем прибавляют 0,4 мл этаноламина, через 2 ч промывают сорбент ДМФА, затем этанолом, эфиром, высушивают. Полученный сорбент содержит 7,5 мкмоль, дисахаридного лиганда на 1 г МПС. Перед использованием полученный сорбент промывают водой, затем рабочим буферным раствором. To 1 g of aminopropylated macroporous glass (MPS), a solution of 40 ml of poly / 4-nitrophenylacrylate / in 2 ml of DMF is added, the mixture is incubated, periodically shaking for 15 hours, washed with DMF. A solution of 3 mg / 7.5 μmol / 3-aminopropyl / -3-0- / α-D-galactopyranosyl / β-D-galactopyranoside in 2 ml of DMF is added to the obtained activated carrier, incubated for one day, periodically shaking, then 0.4 ml of ethanolamine is added, after 2 hours the DMF sorbent is washed, then with ethanol, ether and dried. The resulting sorbent contains 7.5 μmol, disaccharide ligand per 1 g of MPS. Before use, the resulting sorbent is washed with water, then with a working buffer solution.
П р и м е р 2. Получение сорбента А. PRI me R 2. Obtaining sorbent A.
К 1 г аминопропилированного МПС прибавляют раствор 50 мг поли/4-нитрофенилметакрилата/ММ 4 кД в 2 мл ДМФА, выдерживают, периодически встряхивая, в течение 15 ч, промывают ДМФА. К полученному активированному носителю прибавляют раствор 4 мг /7,5 мкмоль/ /3-аминопропил/-3-0-/ α -D-N-ацетилгалактозаминил/- β-D-галактопиранозида в 2 мл воды, выдерживают в течение суток, периодически встряхивая, затем прибавляют 1 мл 20%-ного раствора аммиака, через 2 ч промывают сорбент водой, затем ацетоном, гексаном, высушивают. Полученный сорбент содержит 10 мкмоль дисахаридного лиганда А на 1 г МПС. A solution of 50 mg of poly / 4-nitrophenylmethacrylate / MM 4 kD in 2 ml of DMF is added to 1 g of aminopropylated MPS, it is kept, periodically shaking for 15 hours, washed with DMF. A solution of 4 mg / 7.5 μmol / 3-aminopropyl / -3-0- / α -DN-acetylgalactosaminyl / β-D-galactopyranoside in 2 ml of water is added to the obtained activated carrier, incubated for one day, shaking periodically, then 1 ml of a 20% ammonia solution is added, after 2 hours the sorbent is washed with water, then with acetone, hexane, and dried. The resulting sorbent contains 10 μmol of disaccharide ligand A per 1 g of MPS.
П р и м е р 3. Получение сорбента В. PRI me R 3. Obtaining sorbent B.
К 1 г аминопропилированного МПС прибавляют раствор 45 мг поли/4-нитрофенилакрилата/MM 80 кД в 2 мл ДМФА, выдерживают, периодически встряхивая, в течение 15 ч, промывают ДМСО. К полученному активированному носителю прибавляют раствор 0,8 мг /2 мкмоль/ /3-аминопропил/-3-0-/ α -D-галактопиранозил/- β-D-галактопиранозида в 2 мл ДМСО, выдерживают в течение суток, периодически встряхивают, затем прибавляют 0,5 г Триса /основание/, выдерживают, встряхивая, 15 ч, промывают ДМСО, ацетоном, пентаном, высушивают. Полученный сорбент содержит 2 мкмоль дисахаридного лиганда B на 1 г МПС. A solution of 45 mg of poly / 4-nitrophenylacrylate / MM 80 kD in 2 ml of DMF is added to 1 g of aminopropylated MPS, and it is kept, periodically shaking for 15 h, washed with DMSO. A solution of 0.8 mg / 2 μmol / / 3-aminopropyl / -3-0- / α-D-galactopyranosyl / β-D-galactopyranoside in 2 ml DMSO is added to the obtained activated carrier, incubated for 24 hours, periodically shaken, then add 0.5 g of Tris / base /, stand, shaking, 15 h, washed with DMSO, acetone, pentane, dried. The resulting sorbent contains 2 μmol of disaccharide ligand B per 1 g of MPS.
П р и м е р 4. Определение степени десорбции лиганда с сорбента. PRI me R 4. The determination of the degree of desorption of the ligand from the sorbent.
Бесполимерный вариант /сорбент Ф/. Polymer-free option / sorbent F /.
К 0,5 г аминопропилированного МПС в 5 мл 0,1 М бикарбонатного буфера /рН 8,4/ добавляют раствор 1,2 мг ФИТЦ в 0,1 мл ДМФА, перемешивают в течение 15 ч при 20оС, промывают водой.To 0.5 g of aminopropyl MEAs in 5 ml of 0.1 M bicarbonate buffer / pH 8.4 / was added a solution of 1.2 mg of FITC in 0.1 ml DMF was stirred for 15 hours at 20 ° C, washed with water.
Полимерный вариант /сорбент ФП/. Polymer option / sorbent FP /.
К 0,5 активированного полимером МПС, емкостью 100 мкмоль/г в 5 мл 0,1 М бикарбонатного буфера прибавляют раствор 1,2 мг ФИТЦ в ДМФА, выдерживают 15 ч при 20оС, прибавляют 0,2 мл этаноламина, через 2 ч промывают водой.To 0.5 activated polymer MEAs capacity 100 pmol / g in 5 ml of 0.1 M bicarbonate buffer solution was added 1.2 mg of FITC in DMF was kept for 15 hours at 20 ° C, is added 0.2 ml of ethanolamine after 2 h washed with water.
Элюция. Elution.
Через сорбенты Ф и ФП пропускают в течение суток в замкнутом контуре следующие растворы: фосфатно-солевой буфер /рН 7,4/; 1%-ный раствор аммиака; глицин-солянокислый буфер /рН 2,8/. The following solutions are passed through sorbents Ф and ФП during the day in a closed loop: phosphate-saline buffer / pH 7.4 /; 1% ammonia solution; glycine-hydrochloric acid buffer / pH 2.8 /.
Отбирают равные объемы элюатов, измеряют флуоресценцию полученных растворов. При всех значениях рН сорбент ФП показывал значения флуоресценции меньше, разница составляла 10-50 раз. Equal volumes of eluates were selected, and the fluorescence of the resulting solutions was measured. At all pH values, the sorbent AF showed less fluorescence, the difference was 10-50 times.
П р и м е р 5. Удаление антител с групповой специфичностью В из сыворотки крови доноров. PRI me R 5. Removal of antibodies with group specificity In from the blood serum of donors.
5 мг сухого сорбента, полученного по примеру 1, промывают водой, затем фосфатно-солевым буфером /ФСБ/, выдерживают при 4-20оС с 0,5 мл сыворотки крови доноров группы крови А или 0 в течение 1-3 ч. Титр сыворотки определяли до и после сорбции стандартным методом солевой агглютинации.5 mg of dry sorbent prepared according to Example 1, washed with water, then phosphate-buffered saline / FSB /, maintained at 4-20 ° C with 0.5 ml of donor serum of blood group A or 0 for 1-3 hours. Titer serum was determined before and after sorption by the standard method of salt agglutination.
Десорбцию антител проводят, промывая несколько раз сорбент буферным раствором 1%-ного аммиака /pH 9/ или глицин-солянокислым буфером /pH 3/, затем промывают водой, спиртом, сорбент высушивают. После этого сорбент можно хранить или использовать повторно для сорбции антител. Неспецифическая сорбция не наблюдалась совсем или составляла 1 ступень. Antibody desorption is carried out by washing several times the sorbent with a buffer solution of 1% ammonia / pH 9 / or glycine-hydrochloric acid buffer / pH 3 /, then washing with water, alcohol, and the sorbent is dried. After that, the sorbent can be stored or reused for sorption of antibodies. Nonspecific sorption was not observed at all or amounted to 1 step.
П р и м е р 6. Удаление антител с групповой специфичностью А из сыворотки крови доноров. PRI me R 6. Removal of antibodies with group specificity And from the blood serum of donors.
50 мг сухого сорбента А, полученного по примеру 2, промывают водой, затем ФСБ, выдерживают при 4-20оС с 0,5 мл сыворотки крови доноров группы крови В или О в течение 1-3 ч. Титр сыворотки определяли до и после сорбции стандартным методом солевой агглютинации. Десорбцию проводили, как описано в примере 5.50 mg of dry sorbent A obtained in Example 2, washed with water, then FSB, maintained at 4-20 ° C with 0.5 ml of blood donors of blood group B or O serum for 1-3 hours. The serum titer was determined before and after sorption by the standard method of salt agglutination. Desorption was carried out as described in example 5.
Принципиальное преимущество предлагаемого способа от прототипа заключается в том, что лиганды присоединены к носителю не непосредственно, а при помощи полимера, причем полимера гибкого, что позволило заменить трисахариды на дисахариды, которые значительно проще синтезировать (9 стадий вместо 15). The principal advantage of the proposed method from the prototype is that the ligands are not attached directly to the carrier, but with the help of a polymer, which is flexible polymer, which made it possible to replace trisaccharides with disaccharides, which are much easier to synthesize (9 stages instead of 15).
В отличие от использованных в прототипе ацилазидов аминоалкилгликозиды дисахаридов стабильны. Благодаря многоточечному связыванию полимер /а вместе с ним и ковалентно присоединенный к нему лиганд/ прочнее примерно на два порядка присоединен к носителю, чем при присоединении без полимера. Это показано в специально проведенных экспериментах с флуоресцентно меченым лигандом, присоединенным двумя сравниваемыми способами /проводилась многочасовая элюция в замкнутом контуре при различных значениях рН/. Равномерно распределенные по поверхности МПС молекулы полимера в значительной степени предотвращают разрушение элементов крови при проведении сорбции. Кроме того сорбент, полученный предлагаемым способом, можно использовать многократно, более 9 раз, после регенерации кислым /pH 3/ или щелочным /pH 9/ буферным раствором. Сорбенты выдерживают длительное более 1,5 лет хранение в сухом виде, стерилизацию спиртом. Синтез стабильно воспроизводится. Unlike used in the prototype of acyl azides, aminoalkyl glycosides of disaccharides are stable. Due to the multipoint binding, the polymer (and with it the ligand covalently attached to it) is approximately two orders of magnitude stronger attached to the carrier than when attached without a polymer. This is shown in specially conducted experiments with a fluorescently labeled ligand attached by two compared methods / many hours of elution in a closed loop was carried out at various pH values /. The polymer molecules uniformly distributed on the surface of the MPS significantly prevent the destruction of blood elements during sorption. In addition, the sorbent obtained by the proposed method can be used repeatedly, more than 9 times, after regeneration with an acidic / pH 3 / or alkaline / pH 9 / buffer solution. Sorbents withstand long-term storage of more than 1.5 years in dry form, sterilization with alcohol. The synthesis is stably reproduced.
Прямое сравнение сорбентов, полученных данным способом, с синсорбами (Канада), т. е. прототипом, показало их лучшую сорбционную активность, меньшую неспецифическую сорбцию, большую долговечность /количество циклов регенерации/. A direct comparison of the sorbents obtained by this method with the sorbents (Canada), i.e., the prototype, showed their better sorption activity, less non-specific sorption, greater durability / number of regeneration cycles /.
Неспецифической сорбции, т. е. сорбции анти-А антител сорбентом В /или наоборот/ практически не наблюдалось. В то же время специфическая сорбция составляет 3-4 ступени /ступень-логарифм2 титра сыворотки, т.е. снижение титра на 4 ступени означает снижение концентрации антител в 16 раз/, в способе-прототипе специфическая сорбция составляет 2-3 ступени.Nonspecific sorption, i.e., sorption of anti-A antibodies by sorbent B / or vice versa / was practically not observed. At the same time, specific sorption is 3-4 steps / step-logarithm of 2 serum titers, i.e. a decrease in titer by 4 steps means a decrease in antibody concentration by 16 times /, in the prototype method, specific sorption is 2-3 steps.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4371034 RU2040274C1 (en) | 1988-02-09 | 1988-02-09 | METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4371034 RU2040274C1 (en) | 1988-02-09 | 1988-02-09 | METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2040274C1 true RU2040274C1 (en) | 1995-07-25 |
Family
ID=21352654
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4371034 RU2040274C1 (en) | 1988-02-09 | 1988-02-09 | METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2040274C1 (en) |
-
1988
- 1988-02-09 RU SU4371034 patent/RU2040274C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Лисичкин Б. Модифицированные кремнеземы в сорбции, катализе и хроматографии. М.: Химия, 1986, с.214-220. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4657873A (en) | Preactivated plastics surfaces for immobilizing organo-chemical and biologic materials | |
US6774102B1 (en) | Extracorporeal endotoxin removal method | |
CN101279242A (en) | Blood-purifying adsorbing agent for cleaning antibody | |
AU783457B2 (en) | Adsorbents for high mobility group proteins and column for purifying body fluid | |
EP1189692A1 (en) | Novel triazine-based detoxification agents and their use | |
CA3115831A1 (en) | Crosslinked polysaccharide based absorbents for removal of anti-a and/or anti-b antibodies from human plasma and whole blood | |
RU2040274C1 (en) | METHOD FOR PRODUCTION OF IMMUNOSORBENT FOR BINDING α- GROUP SPECIFIC AND β-AGGLUTININES | |
Özkara et al. | Separation of human-immunoglobulin-G from human plasma with L-histidine immobilized pseudo-specific bioaffinity adsorbents | |
CA1314813C (en) | Porous solid phases having bioaffinity, a process for preparing porous solid phases having bioaffinity, and their use | |
Suen et al. | Effects of spacer arms on cibacron blue 3GA immobilization and lysozyme adsorption using regenerated cellulose membrane discs | |
CN103933947A (en) | Blood purification material for removing rheumatoid factors, and preparation method thereof | |
Porath | Development of modern bioaffinity chromatography (A review) | |
JPH0489500A (en) | Method for purifying substance by affinity chromatography and apparatus for purification | |
JPH07136505A (en) | Affinity separating material | |
JPH0135670B2 (en) | ||
JPH11152330A (en) | Polylysine, production of polylysine, polylysine composition, and production of medicine which removes endotoxin | |
JPS6087854A (en) | Adsorbent for purifying blood | |
JP3970339B2 (en) | Cell separation material | |
JPH0634633A (en) | Hen's egg antibody fixation carrier and its production | |
Abdul Mazid et al. | Immunoadsorbents with synthetic oligosaccharide hapten representing blood group A substances | |
JP3890625B2 (en) | Super antigen adsorption material | |
Kayirhan-Denizli et al. | Fibronectin purification from human plasma in a packed-bed column system with gelatin immobilized PHEMA microspheres | |
SU883053A1 (en) | Immunosorbent | |
KR20240012463A (en) | Scaffolds for isolation of biomolecules | |
Klein | Affinity membranes in bioseparations |