RU2032335C1

RU2032335C1 - Method of entomophage growing

Info

Publication number: RU2032335C1
Authority: RU
Inventors: Валентин Федорович Дрозда; Анатолий Иванович Потопальский; Игорь Васильевич Вититнев; Николай Гордеевич Шкаруба
Original assignee: Украинский государственный аграрный университет
Priority date: 1989-04-19
Filing date: 1989-04-19
Publication date: 1995-04-10

Abstract

FIELD: agriculture. SUBSTANCE: intensive growing of entomophages is carried out by treatment of insect-host eggs and imago with biostimulating agent - native or modified RNA precursors. Concentration of agent for eggs is 0.001-0.05% and for imago - 0.006-0.025%. Eggs were treated for 30-60 min for the period of two first days of their development. EFFECT: improved method of entomophage growing. 11 tbl

Description

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к отрасли искусственного выращивания насекомых, и может быть использовано при разведении энтомофагов. The invention relates to agriculture, in particular to the industry of artificial insect cultivation, and can be used for breeding entomophages.

Цель изобретения увеличение длительности жизни и плодовитости имаго, выживаемости и заражающей способности энтомофагов при сокращении длительности их развития. The purpose of the invention is to increase the lifespan and fecundity of adults, survival and infectious ability of entomophages, while reducing the duration of their development.

Цель достигается комплексным применением различных групп биологически активных веществ на разных этапах онтогенеза с учетом биологических особенностей организма как энтомофагов так и их хозяев и специфики действия применяемых стимуляторов. В предлагаемом способе эта цель осуществляется путем воздействия нативными и модифицированными предшественниками РНК на яйца хозяев (зерновая моль и яблонная плодожорка), в которых выращивается соответственно трихограмма и аскогастер, с последующим воздействием нативными и модифицированными дрожжевыми РНК на имагинальную стадию энтомофагов. The goal is achieved by the integrated use of various groups of biologically active substances at different stages of ontogenesis, taking into account the biological characteristics of the organism of both the entomophages and their owners and the specific effects of the applied stimulants. In the proposed method, this goal is achieved by exposing native and modified RNA precursors to host eggs (cereal moth and apple moth), in which trichogram and ascogaster are grown, respectively, followed by exposure of native and modified yeast RNA to the imaginal stage of entomophages.

В качестве стимуляторов продуктивности для воздействия на яйца зерновой моли и яблонной плодожорки, применяемых в диапазоне концентраций 0,05-0,001% при экспозиции 30-60 мин в период 1-2 дней от начала инкубации, использовали водные растворы нативных и модифицированных предшественников РНК: урацил (УРЛ), метилурацил (МТ) и 5-пипередино-метилен-6-метилурацил (БЕС-221). Aqueous solutions of native and modified RNA precursors: uracil were used as productivity stimulators for exposure to eggs of cereal moth and apple moth, used in a concentration range of 0.05-0.001% during an exposure of 30-60 minutes during the period of 1-2 days from the beginning of incubation. (URL), methyluracil (MT) and 5-piperedino-methylene-6-methyluracil (BES-221).

В качестве стимуляторов продуктивности, примененных для подкормки имаго трихограммы и аскогастера, использовали нативную дрожжевую РНК (РН); РНК модифицированную тиофосфамидом (РНТ); РНК модифицированную циклофосфамидом (РНЦ). Диапазон концентраций 0,025-0,0006%
Использовали трихограмму желтую (Trichogramma cacoeciae March), широкораспространенный яйцевый паразит многих вредителей садовых и овощных культур, а также Аскогастер Ascogaster guadridentatus W.) паразит садовых листоверток. Трихограмму разводили на яйцах зерновой моли, а аскогастера на яйцах яблонной плодожорки. Насекомых разводили в биолаборатории при оптимальных условиях температуры, влажности и фотопериода.Native yeast RNA (PH) was used as productivity stimulators used to feed the adult trichogram and ascogaster; RNA modified with thiophosphamide (RNT); RNA modified with cyclophosphamide (RRC). The concentration range of 0.025-0.0006%
We used a yellow trichogram (Trichogramma cacoeciae March), a widespread egg parasite of many pests of garden and vegetable crops, as well as Askogaster Ascogaster guadridentatus W.) garden leaf parasite. The trichogram was bred on the eggs of a grain moth, and ascogaster on the eggs of the apple moth. Insects were bred in a biological laboratory under optimal conditions of temperature, humidity and photoperiod.

П р и м е р 1. Пять порций яиц зерновой моли и яблонной плодожорки, каждая в количестве 300 яиц, согласно предлагаемому способу были выдержаны в течение 30, 40 и 60 мин в 0,1; 0,05; 0,001 и 0,0005%-ных водных растворах препаратов МТ, БЕС-221 и УРЛ на второй день эмбрионального развития. PRI me R 1. Five servings of eggs of a grain moth and apple moth, each in an amount of 300 eggs, according to the proposed method were aged for 30, 40 and 60 minutes in 0.1; 0.05; 0.001 and 0.0005% aqueous solutions of MT, BES-221 and URL preparations on the second day of embryonic development.

Обработанные таким образом яйца зерновой моли заражали трихограммой, а яйца плодожорки аскогастером. Параллельно из тех же порций яиц моли и плодожорки выращивали оба вида энтомофагов обычным образом, без каких-либо воздействий (контроль). The eggs of a grain moth treated in this way were infected with a trichogram, and the eggs of the moth were ascogaster. At the same time, both types of entomophages were grown from the same portions of moth and moth eggs in the usual way, without any effects (control).

Выращенные по первому этапу предлагаемого способа энтомофаги по таким показателям продуктивности как длительность жизни имаго, плодовитости, количестве яйцекладущих самок, выживаемости и зараженности яиц хозяина превышают аналогичный показатель контрольного варианта на 10-25% При этом диапазон эффективных концентраций используемых препаратов находится в пределах 0,05-0,001% Полученные данные представлены в табл.1 и 2. Entomophages grown in the first stage of the proposed method in terms of productivity such as adult lifespan of adults, fecundity, number of oviparous females, survival rate and infection of the host eggs exceed the same indicator of the control variant by 10-25%. The range of effective concentrations of the preparations used is within 0.05 -0.001% The data obtained are presented in tables 1 and 2.

П р и м е р 2. Пять порций яиц зерновой моли и плодожорки, каждая в количестве 350 яиц, обрабатывали водными растворами МТ и УРЛ в концентрации 0,1; 0,05; 0,001 и 0,0005% в течение 20, 40, 60 и 80 мин. Зараженные впоследствии яйца моли и плодожорки трихограммой и аскогастером существенно увеличили свою продуктивность при экспозиции воздействия стимуляторами на яйца хозяев в пределах 30-60 мин. Полученные данные представлены в табл.3 и 4. PRI me R 2. Five servings of eggs of a grain moth and moth, each in an amount of 350 eggs, were treated with aqueous solutions of MT and URL in a concentration of 0.1; 0.05; 0.001 and 0.0005% for 20, 40, 60 and 80 minutes. Subsequently infected eggs of moths and moths with Trichogramma and Ascogaster significantly increased their productivity when exposure to stimulants on the eggs of hosts was within 30-60 minutes. The data obtained are presented in tables 3 and 4.

П р и м е р 3. Четыре порции яиц моли и плодожорки, каждая в количестве 350 яиц, обрабатывали водными растворами МТ, БЕС-221 и УРЛ в концентрации 0,05% и экспозиции 40 мин в первый, второй и третий дни эмбрионального развития. Зараженные впоследствии трихограммой и аскогастером особи дочернего поколения энтомофагов отличались повышенной продуктивностью и жизнеспособностью. Оптимальным периодом воздействия на яйца зерновой моли и плодожорки являются 1 и 2-й дни от начала их развития. Данные исследований представлены в табл.5 и 6. PRI me R 3. Four servings of moth and moth eggs, each in the amount of 350 eggs, were treated with aqueous solutions of MT, BES-221 and URL with a concentration of 0.05% and exposure for 40 minutes on the first, second and third days of embryonic development . Subsequently infected with a trichogram and ascogaster, individuals of the daughter generation of entomophages were distinguished by increased productivity and viability. The optimal period of exposure to eggs of grain moths and moths is 1 and 2 days from the beginning of their development. The research data are presented in tables 5 and 6.

Таким образом, при реализации первого этапа предлагаемого способа, наиболее высокие показатели развития и продуктивности трихограммы и аскогастера достигаются при обработке яиц хозяев водными растворами нативных и модифицированных предшественников РНК в диапазоне концентраций 0,05-0,001% при экспозиции 30-60 мин в период 1-2 дней от начала инкубации. Thus, when implementing the first stage of the proposed method, the highest development and productivity indicators of trichograms and ascogaster are achieved by treating the host eggs with aqueous solutions of native and modified RNA precursors in the concentration range of 0.05-0.001% with an exposure of 30-60 minutes in the period 1- 2 days from the start of incubation.

Вторым элементом комплекса воздействий на организм энтомофагов, согласно предлагаемому способу, является применение для подкормки имаго трихограммы и аскогастера водных растворов нативных и модифицированных дрожжевых РНК: РН, РНТ и РНЦ. Эти биостимуляторы используются впервые для выращивания энтомофагов, поэтому приводится обоснование оптимальных и граничных концентраций стимуляторов. The second element of the complex of effects on the body of entomophages, according to the proposed method, is the use for feeding adult trichograms and ascogaster of aqueous solutions of native and modified yeast RNA: RN, RNT and RSC. These biostimulants are used for the first time for the cultivation of entomophages, therefore, the rationale for the optimal and boundary concentrations of stimulants is given.

П р и м е р 4. Четырем группам энтомофагов, в каждой из которых было по 250 особей, предлагали для подкормки имаго водные растворы стимуляторов в различных концентрациях. Параллельно выращивали энтомофагов обычным образом, которым давали в качестве корма обычную воду (контроль). Результаты исследований приведены в табл. 7 и 8. Диапазон эффективных концентраций биостимуляторов, обеспечивающих существенное увеличение продуктивности энтомофагов, находится в пределах 0,025-0,0006%
Комплексное использование обеих элементов предлагаемого способа предполагает воздействие стимуляторами на яйцекладки яиц-хозяев с последующей подкормкой стимуляторами имаго энтомофагов.PRI me R 4. Four groups of entomophages, each of which had 250 individuals, were offered aqueous solutions of stimulants in various concentrations for feeding adults. At the same time, entomophages were grown in the usual way, which were given normal water as feed (control). The research results are given in table. 7 and 8. The range of effective concentrations of biostimulants, providing a significant increase in the productivity of entomophages, is in the range of 0.025-0,0006%
The complex use of both elements of the proposed method involves the effect of stimulants on the oviposition of host eggs, followed by feeding stimulators of adult entomophages.

П р и м е р 5. Пять партий яиц зерновой моли и яблонной плодожорки обрабатывали стимуляторами на 2-е сутки их развития с экспозицией 30, 40 мин, заражали их энтомофагами. Отродившееся дочернее поколение энтомофагов подкармливали препаратами дрожжевых РНК. Параллельно выращивали из той же группы насекомых обычным образом, без каких-либо воздействий (контроль), а также выращивали энтомофагов по известному способу. Для подкормки имаго энтомофагов стимуляторы разводили в воде, контрольным популяциям давали чистую воду. PRI me R 5. Five batches of eggs of cereal moth and apple moth were treated with stimulants on the 2nd day of their development with an exposure of 30, 40 minutes, infected with entomophages. The hatching daughter generation of entomophages was fed with yeast RNA preparations. At the same time, they were grown from the same group of insects in the usual way, without any influences (control), and entomophages were also grown according to the known method. To feed adult entomophages, stimulants were diluted in water; control populations were given pure water.

В табл.9. представлены материалы, характеризующие продуктивность трихограммы, выращенной по предлагаемому способу в сравнении со способом прототипом. Они свидетельствуют о высокой специфичности действия стимуляторов, способствующих увеличению длительности жизни имаго на 33% и плодовитости на 26% по сравнению с известным способом. Существенным было увеличение и других показателей продуктивности. In table 9. presents materials characterizing the productivity of the trichogram grown by the proposed method in comparison with the prototype method. They indicate a high specificity of the action of stimulants, contributing to an increase in the lifespan of adults by 33% and fertility by 26% compared with the known method. Significant was an increase in other indicators of productivity.

В табл. 10 приведены аналогичные данные, характеризующие продуктивность аскогастера, выращенного с использованием стимуляторов по предлагаемому способу. Данные таблицы иллюстрируют значительное увеличение продуктивности энтомофага в сравнении с известным способом. In the table. 10 shows similar data characterizing the productivity of ascogaster grown using stimulants according to the proposed method. These tables illustrate a significant increase in the productivity of the entomophage in comparison with the known method.

Итоговый анализ достигаемого положительного эффекта, полученного от использования предлагаемого способа иллюстрируют данные табл.11. По всем сравниваемым показателям продуктивности предлагаемый способ превосходит известный. The final analysis of the achieved positive effect obtained from the use of the proposed method is illustrated by the data in table 11. For all compared productivity indicators, the proposed method is superior to the known.

Технико-экономическая эффективность использования предлагаемого способа иллюстрируется примером по выращиванию трихограммы, энтомофага, масштабы применения которого превышают 10 млн га ежегодно. The technical and economic efficiency of using the proposed method is illustrated by an example for growing a trichogram, an entomophage, the scale of which exceeds 10 million hectares annually.

Одна механизированная линия в биолаборатории за один цикл дает около 8 кг яиц зерновой моли или около 400 млн яиц, для заражения которых нужно около 20 млн особей трихограммы. One mechanized line in the biological laboratory for one cycle gives about 8 kg of eggs of a grain moth or about 400 million eggs, for infection of which about 20 million individuals of the trichogram are needed.

Расчет эффективности способов (заявляемого и прототипа) приводится на основании усредненных данных табл.11. Для заражения 8 кг яиц зерновой моли нужно трихограммы, выращенной по известному способу 15,1 млн особей, что на 4,9 млн меньше, чем ее используется в настоящее время по существующему способу (базовый вариант). The calculation of the effectiveness of the methods (claimed and prototype) is based on the averaged data of table 11. To infect 8 kg of eggs of a grain moth, trichograms grown by the known method, 15.1 million individuals, which is 4.9 million less than it is currently used by the existing method (basic version), are needed.

Claims

METHOD FOR GROWING ENTOMOPHAGES, including feeding larvae of entomophages with eggs of host insects and processing adult imagines of entomophages with a biostimulator, characterized in that, in order to reduce the development time of entomophages and increase their productivity, native or modified preagents of antigens are used as biostimulants 0.006 0.025% and additionally the eggs of the host insects are treated with a biostimulant at a concentration of 0.001 0.05% for 30-60 minutes during the first two days of egg development.