RU2026342C1 - Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки - Google Patents
Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки Download PDFInfo
- Publication number
- RU2026342C1 RU2026342C1 SU4938459A RU2026342C1 RU 2026342 C1 RU2026342 C1 RU 2026342C1 SU 4938459 A SU4938459 A SU 4938459A RU 2026342 C1 RU2026342 C1 RU 2026342C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- coxiella
- inactivated vaccine
- vaccine against
- preparing
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Область использования: микробиология, вакцинно-сывороточное производство, инактивированная вакцина, Ку-лихорадка. Сущность изобретения: новый штамм Coxiella burnetii "Луга-1" НИИЭМ N 102 характеризуется выраженными протективными свойствами и выраженной вирулентностью. Минимальная летальная доза для морских свинок равна 10-8 минимальная инфицирующая доза 10-10 Штамм используется для приготовления инактивированной вакцины против Ку-лихорадки. Обеспечивает более эффективную защиту по сравнению с антигеном, приготовленным из штамма "Найн-Майл" 1 табл.
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в вакцинно-сывороточном производстве для приготовления инактвивированных вакцин против Ку-лихорадки.
Известен штамм "М-44" - производный итало-греческого штамма "Грита", используемый для изготовления живой вакцины.
Однако в результате длительного пассирования на куриных эмбрионах он находится во втором фазовом состоянии, т.е. утратил некоторые антигенные субстанции, не может вызывать образование антител к антигенам первой фазы коксиелл [1] и обладает значительно менее выраженными протективными свойствами в отношении вирулентных штаммов коксиел по сравнению с коксиеллами, находящимися в первом фазовом состоянии [2], т.е. не может быть использован для приготовления инактивированных вакцин.
Известны зарубежные штаммы коксиелл Бернета "Найн-Майл" и др., однако их пассажная история недостоверна, они многократно пассировались на развивающихся куриных эмбрионах, что приводило к снижению их антигенной активности.
Целью изобретения является получение отечественного штамма, обладающего выраженными протективными свойствами с последующим использованием его для получения инактивированной вакцины против Ку-лихорадки.
Предлагаемый штамм коксиелл Бернета, названный "Луга-1", выделен из внутренних органов мыши Apodemus flavicollis в Ленинградской области. Депонирован во Всесоюзном музее риккетсиальных культур научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.Гамалеи АМН СССР под N 102 от 26 мая 1987 г.
Характеристика штамма
Морфология и культуральные свойства. Коксиеллы находятся в 1-м фазовом состоянии, при окраске по Романовскому-Гимза и Гименеп морфология типичная. Культивируются в развивающихся куриных эмбрионах или в селезенке белых мышей. Наибольшее накопление возбудителя в оболочке желточного мешка при заражении 6-7-дневного куриного эмбриона получают при инфицировании их материалом, содержащим риккетсии в больших концентрациях (+++), в разведении 10-4 - 10-5 в объеме 0,4 мл. Минимальная инфицирующая доза для куриных эмбрионов 10-9.
Морфология и культуральные свойства. Коксиеллы находятся в 1-м фазовом состоянии, при окраске по Романовскому-Гимза и Гименеп морфология типичная. Культивируются в развивающихся куриных эмбрионах или в селезенке белых мышей. Наибольшее накопление возбудителя в оболочке желточного мешка при заражении 6-7-дневного куриного эмбриона получают при инфицировании их материалом, содержащим риккетсии в больших концентрациях (+++), в разведении 10-4 - 10-5 в объеме 0,4 мл. Минимальная инфицирующая доза для куриных эмбрионов 10-9.
Патогенные свойства. Штамм обладает выраженной вирулентностью для морских свинок. При внутрибрюшинном заражении морских свинок массой 850-400 г 1,0 мл "яичной" культуры (+++) - минимальная инфицирующая доза равна разведению 10-10, а минимальная ЛД 10-8.
Антигенность. Антигенная активность штамма выражена: в ответ на однократное внутрибрюшинное введение кроликам массой 3-3,5 кг 1,0 мл яичной культуры (+++) в разведении 10-7 - 10-8, на 7-й день после иммунизации с помощью реакции связывания комплемента (РСК) выявляются антитела к антигену 2-й фазы в титрах 1:20-1:40, а к концу 3-й недели - 1:160-1:320.
Использование штамма для приготовления инактивированной вакцины иллюстрируется следующим примером.
П р и м е р. Куриные эмбрионы заражают разведениями яичной культуры штамма 10-4 - 10-5, содержащей по данным метода флуоресцирующих антител (МФА) коксиеллы на (+++) в объеме 0,4 мл. Куриные эмбрионы инкубируют при температуре 37оС в течение 13 сут. Эмбрионы, павшие до 4-х сут включительно для приготовления антигена не используют. Эмбрионы, павшие на 5-13-е сутки вскрывают и из оболочки желточного мешка каждого эмбриона в отдельности готовят мазки, подвергают обработке МФА и микроскопируют. Эмбрионы, которые по данным МФА содержат коксиеллы не менее чем на два креста и не содержат посторонней флоры (для ее определения каплю содержимого желточного мешка вносят в питательную среду), тщательно гомогенизируют, добавляя физиологический раствор, инактивируют формалином. Затем коксиеллы очищают от тканевых примесей дифференциальным центрифугированием и обработкой эфиром. Полученный корпускулярный антиген лиофильно высушивают, определяют массу, а затем суспендируют в фосфатно-физиологическом буферном растворе (ФБР) рН 7,4. Суспензией антигена (100 мкг/мл) однократно подкожно в объеме 0,5 мл иммунизируют 10 морских свинок массой 350-400 г. Таким образом каждое животное получает дозу антигена равную 50 мкг.
Напряженность иммунитета у вакцинированных животных проверяют через 28-45 сут путем внутрибрюшинного заражения 10000 ИД вирулентной культурой коксиелл Бернета штамма "Хензерлинг" (для объективной оценки протективности штамма в качестве вирулентной культуры использовали гетерологичный, по отношению к заявляемому, штамм) в объеме 1 мл, Оценку иммунитета у вакцинированных животных проводят на основании наблюдений за температурой и местной реакцией в течение 15 сут, а также результатов определения наличия коксиелл в селезенке опытных животных по истечению 6-ти суток после заражения (период максимального накопления коксиелл в этом органе). С этой целью часть животных вскрывают, извлекают селезенку, делают мазки-отпечатки из этого органа и исследуют с помощью МФА.
Установлено, что у всех иммунизированных животных не наблюдалось повышения температуры, местная реакция отсутствовала. При вскрытии 5-ти животных на 6-й день после заражения коксиеллы Бернета в их селезенке не определялись. У всех контрольных (не иммунизированных) животных, зараженных вирулентной культурой в этой же дозе, наблюдалась выраженная лихорадочная реакция продолжительностью не менее 4 дней. На месте введения обнаруживался инфильтрат и на 6-й день после заражения в их селезенке определялось количество коксиелл Бернета.
Для сравнения протективных свойств заявляемого штамма с международным штаммом "Найн-Майл" были поставлены аналогичным образом параллельные опыты. У всех животных иммунизированных 100 мкг антигена наблюдали полный иммунитет в отношении 10000 ИД вирулентной культуры штамма "Хензерлинг".
Иммунизация 50 мкг антигена, приготовленного из штамма "Луга-1" также обеспечивала полный иммунитет, в то же время из 10 животных, получивших такую же дозу антигена, приготовленного из штамма "Найн-Майл", после заражения вирулентной культурой дали лихорадочную реакцию только пять животных, а коксиеллы в селезенке были обнаружены лишь у 50% морских свинок.
Уменьшение иммунизирующей дозы до 10 мкг на животное обеспечивало только частичный иммунитет у животных, однако в этом случае применение антигена, приготовленного из штамма "Луга-1", создавало более эффективную защиту по сравнению с антигеном, приготовленным из штамма "Найн-Майл" (табл.1).
Claims (1)
- ШТАММ КОКСИЕЛЛ COXIELLA BURNETII, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ КУ-ЛИХОРАДКИ.Штамм коксиелл Coxiella burnetti "Луга-1" НИИЭМ N 102, используемый для получения инактивированной вакцины против Ку-лихорадки.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4938459 RU2026342C1 (ru) | 1991-05-20 | 1991-05-20 | Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4938459 RU2026342C1 (ru) | 1991-05-20 | 1991-05-20 | Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2026342C1 true RU2026342C1 (ru) | 1995-01-09 |
Family
ID=21575663
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4938459 RU2026342C1 (ru) | 1991-05-20 | 1991-05-20 | Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2026342C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU720327B2 (en) * | 1996-03-14 | 2000-05-25 | Vaxine Pty Ltd | A method for the prophylaxis and treatment of an autoimmune disease |
-
1991
- 1991-05-20 RU SU4938459 patent/RU2026342C1/ru active
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
1. Гениг В.А., Фрязинова И.Б. Вопросы инфекционной патологии и иммунологии. М., Медицина. 1976. С.171-186. * |
2. Vortruba D. et al. // Proc. 111 rd. In t. Symp. Ricket. and Ricket. Dis., Veda Brat., 1985. -P.289-296. * |
3. Waag D.M. et al. // Rickettsiology: carrent issnes and perspect. The New York acad. of Seilnces. - N.Y.. - 1990. - P.203-214. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU720327B2 (en) * | 1996-03-14 | 2000-05-25 | Vaxine Pty Ltd | A method for the prophylaxis and treatment of an autoimmune disease |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Friend et al. | Bovine pneumonic pasteurellosis: experimental induction in vaccinated and nonvaccinated calves. | |
Randall et al. | The development of a formalin-killed Rift Valley fever virus vaccine for use in man | |
Heddleston et al. | Fowl cholera: cross-immunity induced in turkeys with formalin-killed in-vivo-propagated Pasteurella multocida | |
Deb et al. | Laboratory trials with inactivated vaccines against Escherichia coli (O78 K80) infection in fowls | |
IE53872B1 (en) | Infectious-bronchitis vaccines for poultry, combined infectious-bronchitis vaccines, process for preparing such vaccines, process for preventing infectious bronchitis and infectious-bronchitis virus strain | |
UA121193C2 (uk) | Спосіб одержання імуногенної композиції проти мікоплазми | |
US5807551A (en) | Method to provide artificial passive immunity in birds | |
US4302444A (en) | Vaccines for immunizing egg-laying birds against Egg Drop disease, preparation of said vaccines, and method of use of said vaccines | |
EP0030063A2 (en) | Infectious-bronchitis vaccines for poultry, combined infectious-bronchitis vaccines, process for preparing such vaccines, process for preventing infectious bronchitis and infectious-bronchitis virus strains | |
UA121097C2 (uk) | Імуногенна композиція, що містить антигени мікоплазм | |
Maheswaran et al. | Studies on Pasteurella multocida. I. Efficacy of an avirulent mutant as a live vaccine in turkeys | |
US5925361A (en) | Ornithobacterium rhinotracheale vaccines | |
US5429818A (en) | Non-capsulated mutants of Actinobacillus pleuropneumoniae useful as vaccines | |
RU2026342C1 (ru) | Штамм коксиелл coxiella burnetii, используемый для получения инактивированной вакцины против ку-лихорадки | |
Saito et al. | Attenuation of the myxoma virus and use of the living attenuated virus as an immunizing agent for myxomatosis | |
AU711915B2 (en) | Plasmid vaccine against pseudorabies virus | |
Kenyon et al. | Preparation of vaccines for Rocky Mountain spotted fever from rickettsiae propagated in cell culture | |
Smith et al. | Intranasal immunization of mice against Pasteurella multocida | |
Jeggo et al. | Production of murine cytotoxic T lymphocytes by bluetongue virus following various immunisation procedures | |
Homayoon et al. | Adjuvant activity of Pasteurella multocida A strain, Pasteurella multocida B strain and Salmonella typhimurium bacterial DNA on cellular and humoral immunity responses against Pasteurella multocida specific strain infections in Balb/c mice | |
Okerman et al. | Failure of oil adjuvants to enhance immunity induced in mice by an inactivated rabbit Pasteurella multocida vaccine | |
Abusalab et al. | Strains of P. mulocida (B and E) | |
Ilyas et al. | An aluminium hydroxide gel adsorbed inactivated egg drop syndrome vaccine | |
JPS62275680A (ja) | 家禽の伝染性気管支炎ウイルス株 | |
SU1724683A1 (ru) | Штамм CoxIeLLa вURNеттI, используемый дл получени гипериммунных сывороток |