RU2014609C1 - Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину - Google Patents
Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину Download PDFInfo
- Publication number
- RU2014609C1 RU2014609C1 SU4943605A RU2014609C1 RU 2014609 C1 RU2014609 C1 RU 2014609C1 SU 4943605 A SU4943605 A SU 4943605A RU 2014609 C1 RU2014609 C1 RU 2014609C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- solution
- determination
- phosphorylcholine
- tablet
- plate
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Использование: в медицине для количественного определения белков, специфичных к фосфорилхолину: C-реактивного белка (СРБ), антител к фосфорилхолину (ФХ), фосфолипазы C ( α - токсина) Cl.perfringens. (ФЛС) и соответствующей антифосфолипазы C ( a -антитоксина). Сущность изобретения: планшеты обрабатывают смесью лизофосфатидилхолина и гликозилглицерида при соотношении 1 : 1,5 с последующим иммуноферментным определением белков, специфичных к фосфорилхолину.
Description
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для количественного определения белков, специфичных к фосфорилхолину (ФХ): С-реактивного белка (СРБ), антител к фосфорилхолину, фосфолипазы С- α -токсина Cl. perfringens типа А (ФЛС) и соответствующей антифосфолипазы С- α -антитоксина (антиФЛС).
Известен полуколичественный способ определения СРБ путем взаимодействия исследуемой пробы с антителами к СРБ в капилляре.
Известен способ определения СРБ путем твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА) на планшете, модифицированном ФХ, конъюгированным с бычьим сывороточным альбумином (БСА), с последующей обработкой специфическим субстратом (прототип). Способ включает длительный (до 12 дней) и дорогостоящий 5-этапный синтез, требующий использования водорастворимых карбодиимидов импортного производства.
Известен способ определения антител к ФХ в твердофазном ИФА, связанный с использованием для модификации планшета фосфатидилхолина, растворенного в смеси хлороформа и метилового спирта. Данный способ требует значительных количеств ингредиентов и недостаточно специфичен.
Известен способ определения ФЛС в реакции нейтрализации токсина in vivo и in vitro. При определении микроколичеств ФЛС в крови с диагностической целью чувствительности этого способа недостаточно.
Известен способ определения антиФЛС в твердофазном ИФА с использованием планшета, модифицированного анатоксином El. perfringens типа А, который требует применения серологически чистого анатоксина, получение которого связано с большой сложностью: требуется получить культуральную жидкость микроорганизма, содержащую ФЛС, очистить ФЛС, провести ее детоксикацию и затем очистить полученный таким образом анатоксин.
Целью изобретения является унификация и упрощение способа определения белков, специфических к фосфорилхолину.
Это достигается тем, что в способе, предусматривающем проведение твердофазного ИФА на планшете, в качестве модификатора планшета используют смесь лизолецитина и гликозилдиглицерида при соотношении 1:1,5.
Предлагаемый способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину, позволяет повысить по сравнению с аналогом чувствительность определения СРБ в 18-20 тыс. раз. Способ по сравнению с прототипом при той же чувствительности (10 нг/мл) значительно проще, так как исключает необходимость синтеза ФХ с БСА и основан на использовании ингредиентов отечественного производства.
Чувствительность определения ФЛС превышает чувствительность аналога в 50 раз и антиФЛС - в 150 ра. Помимо того, исключается необходимость изготовления экспериментального препарата α-анатоксина Cl. perfringens типа А.
Определение СРБ осуществляют следующим образом. Перед употреблением планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия и 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1, и жидкость из его лунок удаляют встряхиванием планшета. Затем в лунки вносят по 200 мкл исследуемых сывороток, разведенных в отношении 1: 500, а в контрольный ряд - стандартный образец СРБ от 0,8 до 267,0 нг/мл в растворе 2, содержащем в 200 мл дистиллированной воды 1,7 г хлористого натрия, 2 мл 10%-ного раствора хлористого кальция и 500 мг БСА, pH 7,3± 0,1.
Планшет оставляют при температуре (20 ± 2)оС на 18-24 ч для образования комплекса СРБ-ФХ, после чего отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированой воды 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10% -ного раствора хлористого кальция, 0,5 мл твина-80, pH 7,3± 0,1. После отмывания планшета в каждую лунку вносят по 200 мкл кроличьей сыворотки к СРБ, разведенной до 1:1000 раствором 3. Планшет оставляют при температуре (37 ± 1)оС на 1 ч, после чего его отмывают как описано выше. Затем в каждую лунку планшета вносят по 200 мкл козьих антител против IgG кролика, конъюгированных с пероксидазой и разведенных раствором 3. Планшет оставляют при температуре (37± 1)оС на 1 ч, после чего отмывают раствором 3 как указано выше. В лунки отмытого планшета добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси, приготовленной следующим образом: 15 мг 5-аминосалициловой кислоты растворяют в 20 мл дистиллированной воды, нагретой до температуры (70 ± 3)оС, раствор фильтруют через бумажный фильтр и устанавливают pH 6,0 0,05, затем в готовый раствор добавляют 2,3 мл раствора перекиси водорода, разведенной непосредственно перед опытом из расчета 0,1 мл 33%-ной перекиси в 60 мл дистиллированной воды. Планшет оставляют с субстрат-индикаторной смесью при температуре (20 ± 2)оС на 25-40 мин в темноте. Интенсивность окрашивания регистрируют на Multiscan при длине волны 450 нм.
Содержание СРБ рассчитывают по калибровочному графику, построенному по стандартному образцу СРБ.
Определение антител к фосфорилхолину осуществляют следующим образом. Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из планшета удаляют встряхиванием и затем вносят по 200 мкл контрольных (положительная и отрицательная) и исследуемых сывороток человека, разведенных при соотношении 1: 100 и 1:500 раствором 2, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия и 250 мг БСА, pH 7,3 ±0,1. Планшет выдерживают при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч для образования комплекса антитело-ФХ. Затем все исследуемые образцы удаляют и планшет отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированной воды 4,25 г хлористого натрия и 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1. В лунки планшета вносят по 200 мкл раствора антител кроличьих против IgG человека, конъюгированных с пероксидазой и разведенных в том же растворе. Планшет выдерживают при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 и в каждую лунку добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры выполняют как указано выше.
Результат рассчитывают по разнице в показаниях экстинкции при анализе как контрольных сывороток, разведенных при соотношении 1:100 и 1:500, так и исследуемых, разведенных таким же образом.
Определение фосфолипазы С осуществляют следующим образом. Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из лунок удаляют встряхиванием планшета. Затем в лунки его вносят по 200 мкл раствора ФЛС, содержащего от 1 до 25 лецитиназных единиц в мл, а также исследуемые сыворотки, содержащие ФЛС, в разведениях 1:100 и 1:500. Используют для этого раствор 2, содержащий в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция и 250 мг БСА, pH 7,3 ± 0,1. Планшет оставляют на 18-24 ч при температуре (20 ± 2)оС для образования комплекса ФЛС-ФХ, затем его отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированной воды 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10% -ного раствора хлористого кальция и 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1. Затем в лунки планшета вносят по 200 мкл раствора гипериммуной кроличьей антисыворотки, содержащей 12-16 МЕ антитоксина Cl. perfringens типа А, разведенной при соотношении 1:1000 раствором 3. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, затем отмывают как указано ранее и в лунки вносят по 200 мкл антител козьих против IgG кролика, конъюгированных с пероксидазой. Икубируют при температуре (37 ±1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 как указано ранее и в лунки добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры - как описано выше. Активность ФЛС рассчитывают по калибровочному графику.
Определение антифосфолипазы С осуществляют следующим образом.
Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из лунок удаляют встряхиванием планшета. В лунки его вносят по 200 мкл первичного концентрата ФЛС, содержащего 0,25 мг/мл и разведенного раствором 3, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1. Планшет выдерживают при температуре (20 ± 2)оС в течение 18-24 ч для образования комплекса ФЛС-ФХ. Затем содержимое лунок удаляют, планшет промывают 5 раз с интервалом 5 мин и в лунки его вносят по 200 мкл контрольной сыворотки, содержащей 1 МЕ антитоксина Cl. perfringens типа А и разведенной от 1:500 до 1:25000 раствором 3, содержащим в 500 мл 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1, а также исследуемые сыворотки, разведенные при соотношении 1:1000. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС, а затем отмывают раствором 3 как описано ранее и в лунки планшета добавляют по 200 мкл антител кроличьих против IgG человека, конъюгированных с пероксидазой. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 как указано выше и в лунки добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры - как указано выше. Титр сывороток устанавливают по калибровочному графику.
Claims (1)
- СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЛКОВ, СПЕЦИФИЧНЫХ К ФОСФОРИЛХОЛИНУ, включающий обработку планшета с последующим проведением иммуноферментного анализа и регистрацией результатов, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа, планшет обрабатывают смесью лизофосфатидилхолина и гликозидилдиглицерином в соотношении 1 : 1,5.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4943605 RU2014609C1 (ru) | 1991-06-06 | 1991-06-06 | Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4943605 RU2014609C1 (ru) | 1991-06-06 | 1991-06-06 | Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2014609C1 true RU2014609C1 (ru) | 1994-06-15 |
Family
ID=21578342
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4943605 RU2014609C1 (ru) | 1991-06-06 | 1991-06-06 | Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2014609C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2654584C2 (ru) * | 2011-08-09 | 2018-05-21 | Атера Биотекнолоджиз Аб | Новые антитела к фосфорилхолину |
-
1991
- 1991-06-06 RU SU4943605 patent/RU2014609C1/ru active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2654584C2 (ru) * | 2011-08-09 | 2018-05-21 | Атера Биотекнолоджиз Аб | Новые антитела к фосфорилхолину |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Macdonald et al. | Inducible proteinase of Candida albicans in diagnostic serology and in the pathogenesis of systemic candidosis | |
Ikeda et al. | A sandwich-enzyme immunoassay for the quantification of lipoprotein lipase and hepatic triglyceride lipase in human postheparin plasma using monoclonal antibodies to the corresponding enzymes | |
EP0008432B1 (de) | Immunologisches Bestimmungsverfahren | |
US5855886A (en) | Antibodies, and methods for their use | |
CA1160566A (en) | Immunological determination method | |
Baek | New, sensitive rocket immunoelectrophoretic assay for measurement of the reaction between endotoxin and Limulus amoebocyte lysate | |
US4508829A (en) | Method and kit for pregnancy detection | |
Epstein et al. | The clinical use of alkaline phosphatase enzymes | |
Rossen et al. | The separation and characterization of proteins intrinsic to nasal secretion | |
Matsuda et al. | Development of a radioimmunoassay for human group-II phospholipase A2 and demonstration of postoperative elevation | |
EA002520B1 (ru) | Выделенное антитело и его фрагмент, способы и набор для оценки уровня перекисного окисления липидов в биологическом образце и способ диагностики заболеваний, обусловленных перекисным окислением липидов | |
KR960016717B1 (ko) | 검체의 검출방법 및 시약 | |
Figarella et al. | Presence of colipase in a congenital pancreatic lipase deficiency | |
RU2014609C1 (ru) | Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину | |
Chandler Jr et al. | Immunology of the mycoses. II. Characterization of the immunoglobulin and antibody responses in histoplasmosis | |
US6830895B2 (en) | Method and kit for typing feline blood | |
EP0864863A2 (de) | Verwendung von Anti-Creatinin-Antikörpern oder anderen Creatinin bindenden Substanzen zur Bestimmung von Creatinin in physiologischen Flüssigkeiten und Verfahren zu ihrer Herstellung | |
Kurup | Murine monoclonal antibodies binding to the specific antigens of Aspergillus fumigatus associated with allergic bronchopulmonary aspergillosis | |
KR100188816B1 (ko) | 막형 포스포리파제 a2를 인식하는 모노크로날 항체 및 막형 포스포리파제 a2의 면역 측정법 | |
RU2203499C1 (ru) | Способ постановки диагностической реакции при бруцеллезе | |
DK165075B (da) | Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden | |
Li et al. | Development of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for identification of venoms from snakes in the Agkistrodon genus | |
Kondo et al. | Standardization of Trimeresurus flavoviridis (Habu) antivenin | |
RU2152036C1 (ru) | Способ определения и дифференциации ботулинических токсинов типов а и в | |
CA2092637A1 (en) | Glycolipids for serodiagnosis of tuberculosis and leprosy |