RU2014609C1 - Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину - Google Patents

Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину Download PDF

Info

Publication number
RU2014609C1
RU2014609C1 SU4943605A RU2014609C1 RU 2014609 C1 RU2014609 C1 RU 2014609C1 SU 4943605 A SU4943605 A SU 4943605A RU 2014609 C1 RU2014609 C1 RU 2014609C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
determination
phosphorylcholine
tablet
plate
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Г.Ф. Шеманова
Т.М. Постникова
Н.Г. Евстратова
В.В. Чупин
А.В. Аникин
Н.Г. Морозова
Г.А. Серебренникова
Original Assignee
Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова filed Critical Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова
Priority to SU4943605 priority Critical patent/RU2014609C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2014609C1 publication Critical patent/RU2014609C1/ru

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование: в медицине для количественного определения белков, специфичных к фосфорилхолину: C-реактивного белка (СРБ), антител к фосфорилхолину (ФХ), фосфолипазы C ( α - токсина) Cl.perfringens. (ФЛС) и соответствующей антифосфолипазы C ( a -антитоксина). Сущность изобретения: планшеты обрабатывают смесью лизофосфатидилхолина и гликозилглицерида при соотношении 1 : 1,5 с последующим иммуноферментным определением белков, специфичных к фосфорилхолину.

Description

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для количественного определения белков, специфичных к фосфорилхолину (ФХ): С-реактивного белка (СРБ), антител к фосфорилхолину, фосфолипазы С- α -токсина Cl. perfringens типа А (ФЛС) и соответствующей антифосфолипазы С- α -антитоксина (антиФЛС).
Известен полуколичественный способ определения СРБ путем взаимодействия исследуемой пробы с антителами к СРБ в капилляре.
Известен способ определения СРБ путем твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА) на планшете, модифицированном ФХ, конъюгированным с бычьим сывороточным альбумином (БСА), с последующей обработкой специфическим субстратом (прототип). Способ включает длительный (до 12 дней) и дорогостоящий 5-этапный синтез, требующий использования водорастворимых карбодиимидов импортного производства.
Известен способ определения антител к ФХ в твердофазном ИФА, связанный с использованием для модификации планшета фосфатидилхолина, растворенного в смеси хлороформа и метилового спирта. Данный способ требует значительных количеств ингредиентов и недостаточно специфичен.
Известен способ определения ФЛС в реакции нейтрализации токсина in vivo и in vitro. При определении микроколичеств ФЛС в крови с диагностической целью чувствительности этого способа недостаточно.
Известен способ определения антиФЛС в твердофазном ИФА с использованием планшета, модифицированного анатоксином El. perfringens типа А, который требует применения серологически чистого анатоксина, получение которого связано с большой сложностью: требуется получить культуральную жидкость микроорганизма, содержащую ФЛС, очистить ФЛС, провести ее детоксикацию и затем очистить полученный таким образом анатоксин.
Целью изобретения является унификация и упрощение способа определения белков, специфических к фосфорилхолину.
Это достигается тем, что в способе, предусматривающем проведение твердофазного ИФА на планшете, в качестве модификатора планшета используют смесь лизолецитина и гликозилдиглицерида при соотношении 1:1,5.
Предлагаемый способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину, позволяет повысить по сравнению с аналогом чувствительность определения СРБ в 18-20 тыс. раз. Способ по сравнению с прототипом при той же чувствительности (10 нг/мл) значительно проще, так как исключает необходимость синтеза ФХ с БСА и основан на использовании ингредиентов отечественного производства.
Чувствительность определения ФЛС превышает чувствительность аналога в 50 раз и антиФЛС - в 150 ра. Помимо того, исключается необходимость изготовления экспериментального препарата α-анатоксина Cl. perfringens типа А.
Определение СРБ осуществляют следующим образом. Перед употреблением планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия и 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1, и жидкость из его лунок удаляют встряхиванием планшета. Затем в лунки вносят по 200 мкл исследуемых сывороток, разведенных в отношении 1: 500, а в контрольный ряд - стандартный образец СРБ от 0,8 до 267,0 нг/мл в растворе 2, содержащем в 200 мл дистиллированной воды 1,7 г хлористого натрия, 2 мл 10%-ного раствора хлористого кальция и 500 мг БСА, pH 7,3± 0,1.
Планшет оставляют при температуре (20 ± 2)оС на 18-24 ч для образования комплекса СРБ-ФХ, после чего отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированой воды 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10% -ного раствора хлористого кальция, 0,5 мл твина-80, pH 7,3± 0,1. После отмывания планшета в каждую лунку вносят по 200 мкл кроличьей сыворотки к СРБ, разведенной до 1:1000 раствором 3. Планшет оставляют при температуре (37 ± 1)оС на 1 ч, после чего его отмывают как описано выше. Затем в каждую лунку планшета вносят по 200 мкл козьих антител против IgG кролика, конъюгированных с пероксидазой и разведенных раствором 3. Планшет оставляют при температуре (37± 1)оС на 1 ч, после чего отмывают раствором 3 как указано выше. В лунки отмытого планшета добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси, приготовленной следующим образом: 15 мг 5-аминосалициловой кислоты растворяют в 20 мл дистиллированной воды, нагретой до температуры (70 ± 3)оС, раствор фильтруют через бумажный фильтр и устанавливают pH 6,0 0,05, затем в готовый раствор добавляют 2,3 мл раствора перекиси водорода, разведенной непосредственно перед опытом из расчета 0,1 мл 33%-ной перекиси в 60 мл дистиллированной воды. Планшет оставляют с субстрат-индикаторной смесью при температуре (20 ± 2)оС на 25-40 мин в темноте. Интенсивность окрашивания регистрируют на Multiscan при длине волны 450 нм.
Содержание СРБ рассчитывают по калибровочному графику, построенному по стандартному образцу СРБ.
Определение антител к фосфорилхолину осуществляют следующим образом. Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из планшета удаляют встряхиванием и затем вносят по 200 мкл контрольных (положительная и отрицательная) и исследуемых сывороток человека, разведенных при соотношении 1: 100 и 1:500 раствором 2, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия и 250 мг БСА, pH 7,3 ±0,1. Планшет выдерживают при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч для образования комплекса антитело-ФХ. Затем все исследуемые образцы удаляют и планшет отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированной воды 4,25 г хлористого натрия и 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1. В лунки планшета вносят по 200 мкл раствора антител кроличьих против IgG человека, конъюгированных с пероксидазой и разведенных в том же растворе. Планшет выдерживают при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 и в каждую лунку добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры выполняют как указано выше.
Результат рассчитывают по разнице в показаниях экстинкции при анализе как контрольных сывороток, разведенных при соотношении 1:100 и 1:500, так и исследуемых, разведенных таким же образом.
Определение фосфолипазы С осуществляют следующим образом. Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из лунок удаляют встряхиванием планшета. Затем в лунки его вносят по 200 мкл раствора ФЛС, содержащего от 1 до 25 лецитиназных единиц в мл, а также исследуемые сыворотки, содержащие ФЛС, в разведениях 1:100 и 1:500. Используют для этого раствор 2, содержащий в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция и 250 мг БСА, pH 7,3 ± 0,1. Планшет оставляют на 18-24 ч при температуре (20 ± 2)оС для образования комплекса ФЛС-ФХ, затем его отмывают 5 раз с интервалом 5 мин раствором 3, содержащим в 500 мл дистиллированной воды 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10% -ного раствора хлористого кальция и 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1. Затем в лунки планшета вносят по 200 мкл раствора гипериммуной кроличьей антисыворотки, содержащей 12-16 МЕ антитоксина Cl. perfringens типа А, разведенной при соотношении 1:1000 раствором 3. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, затем отмывают как указано ранее и в лунки вносят по 200 мкл антител козьих против IgG кролика, конъюгированных с пероксидазой. Икубируют при температуре (37 ±1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 как указано ранее и в лунки добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры - как описано выше. Активность ФЛС рассчитывают по калибровочному графику.
Определение антифосфолипазы С осуществляют следующим образом.
Планшет промывают раствором 1, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, pH 7,3 ± 0,1. Жидкость из лунок удаляют встряхиванием планшета. В лунки его вносят по 200 мкл первичного концентрата ФЛС, содержащего 0,25 мг/мл и разведенного раствором 3, содержащим в 100 мл дистиллированной воды 0,85 г хлористого натрия, 1 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, pH 7,3 ± 0,1. Планшет выдерживают при температуре (20 ± 2)оС в течение 18-24 ч для образования комплекса ФЛС-ФХ. Затем содержимое лунок удаляют, планшет промывают 5 раз с интервалом 5 мин и в лунки его вносят по 200 мкл контрольной сыворотки, содержащей 1 МЕ антитоксина Cl. perfringens типа А и разведенной от 1:500 до 1:25000 раствором 3, содержащим в 500 мл 4,25 г хлористого натрия, 5 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, 0,5 мл твина-80, pH 7,3 ± 0,1, а также исследуемые сыворотки, разведенные при соотношении 1:1000. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС, а затем отмывают раствором 3 как описано ранее и в лунки планшета добавляют по 200 мкл антител кроличьих против IgG человека, конъюгированных с пероксидазой. Планшет инкубируют при температуре (37 ± 1)оС в течение 1 ч, отмывают раствором 3 как указано выше и в лунки добавляют по 200 мкл субстрат-индикаторной смеси. Приготовление ее и последующие процедуры - как указано выше. Титр сывороток устанавливают по калибровочному графику.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ БЕЛКОВ, СПЕЦИФИЧНЫХ К ФОСФОРИЛХОЛИНУ, включающий обработку планшета с последующим проведением иммуноферментного анализа и регистрацией результатов, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа, планшет обрабатывают смесью лизофосфатидилхолина и гликозидилдиглицерином в соотношении 1 : 1,5.
SU4943605 1991-06-06 1991-06-06 Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину RU2014609C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4943605 RU2014609C1 (ru) 1991-06-06 1991-06-06 Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4943605 RU2014609C1 (ru) 1991-06-06 1991-06-06 Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2014609C1 true RU2014609C1 (ru) 1994-06-15

Family

ID=21578342

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4943605 RU2014609C1 (ru) 1991-06-06 1991-06-06 Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2014609C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2654584C2 (ru) * 2011-08-09 2018-05-21 Атера Биотекнолоджиз Аб Новые антитела к фосфорилхолину

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2654584C2 (ru) * 2011-08-09 2018-05-21 Атера Биотекнолоджиз Аб Новые антитела к фосфорилхолину

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Macdonald et al. Inducible proteinase of Candida albicans in diagnostic serology and in the pathogenesis of systemic candidosis
Ikeda et al. A sandwich-enzyme immunoassay for the quantification of lipoprotein lipase and hepatic triglyceride lipase in human postheparin plasma using monoclonal antibodies to the corresponding enzymes
EP0008432B1 (de) Immunologisches Bestimmungsverfahren
US5855886A (en) Antibodies, and methods for their use
CA1160566A (en) Immunological determination method
Baek New, sensitive rocket immunoelectrophoretic assay for measurement of the reaction between endotoxin and Limulus amoebocyte lysate
US4508829A (en) Method and kit for pregnancy detection
Epstein et al. The clinical use of alkaline phosphatase enzymes
Rossen et al. The separation and characterization of proteins intrinsic to nasal secretion
Matsuda et al. Development of a radioimmunoassay for human group-II phospholipase A2 and demonstration of postoperative elevation
EA002520B1 (ru) Выделенное антитело и его фрагмент, способы и набор для оценки уровня перекисного окисления липидов в биологическом образце и способ диагностики заболеваний, обусловленных перекисным окислением липидов
KR960016717B1 (ko) 검체의 검출방법 및 시약
Figarella et al. Presence of colipase in a congenital pancreatic lipase deficiency
RU2014609C1 (ru) Способ определения белков, специфичных к фосфорилхолину
Chandler Jr et al. Immunology of the mycoses. II. Characterization of the immunoglobulin and antibody responses in histoplasmosis
US6830895B2 (en) Method and kit for typing feline blood
EP0864863A2 (de) Verwendung von Anti-Creatinin-Antikörpern oder anderen Creatinin bindenden Substanzen zur Bestimmung von Creatinin in physiologischen Flüssigkeiten und Verfahren zu ihrer Herstellung
Kurup Murine monoclonal antibodies binding to the specific antigens of Aspergillus fumigatus associated with allergic bronchopulmonary aspergillosis
KR100188816B1 (ko) 막형 포스포리파제 a2를 인식하는 모노크로날 항체 및 막형 포스포리파제 a2의 면역 측정법
RU2203499C1 (ru) Способ постановки диагностической реакции при бруцеллезе
DK165075B (da) Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden
Li et al. Development of an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for identification of venoms from snakes in the Agkistrodon genus
Kondo et al. Standardization of Trimeresurus flavoviridis (Habu) antivenin
RU2152036C1 (ru) Способ определения и дифференциации ботулинических токсинов типов а и в
CA2092637A1 (en) Glycolipids for serodiagnosis of tuberculosis and leprosy