RU2010577C1 - Method for preparation of diagnostic serum - Google Patents
Method for preparation of diagnostic serumInfo
- Publication number
- RU2010577C1 RU2010577C1 SU5023123A RU2010577C1 RU 2010577 C1 RU2010577 C1 RU 2010577C1 SU 5023123 A SU5023123 A SU 5023123A RU 2010577 C1 RU2010577 C1 RU 2010577C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- serum
- producing
- immunization
- brucellosis
- antigen
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к получению диагностических препаратов, в частности для получения высокоактивных иммунных сывороток при иммунизации животных-продуцентов различ- ными антигенами. The invention relates to biotechnology, in particular to the production of diagnostic preparations, in particular for the production of highly active immune sera during immunization of animal producers with various antigens.
Известен способ получения диагностической туляремийной сыворотки, заключающийся в многократной внутривенной гипериммунизации лошадей-продуцентов корпускулярным бактериальным антигеном [1] . A known method for the production of diagnostic tularemia serum, which consists in repeated intravenous hyperimmunization of horses producing corpuscular bacterial antigen [1].
Известен способ получения диагностической бруцеллезной агглютинирующей сыворотки, заключающийся в иммунизации кроликов-продуцентов живыми вирулентными клетками Br. abortus 146 и Br. melitensis 565 (1.109 м. к. в 1 мл) четырехкратно. Первые три инъекции антигена в объеме 0,5; 0,75 и 1,0 мл (в смеси с равным объемом полного адъюванта Фрейнда) вводят подкожно в несколько точек вдоль позвоночника, четвертую (1 мл) - внутривенно. Интервалы между первой и второй, второй и третьей инъекциями составляют одну, между третьей и четвертой - две-три недели. Животных тотально обескровливают через две недели после заключительной инъекции антигена. Сыворотка диагностическая бруцеллезная агглютинирующая имеет титр не ниже 1: 1600 [2] .A known method of obtaining diagnostic brucellosis agglutinating serum, which consists in immunizing rabbits producing live virulent Br cells. abortus 146 and Br. melitensis 565 (1.10 9 m.k. in 1 ml) four times. The first three injections of antigen in a volume of 0.5; 0.75 and 1.0 ml (in a mixture with an equal volume of Freund's complete adjuvant) are injected subcutaneously at several points along the spine, a fourth (1 ml) - intravenously. The intervals between the first and second, second and third injections are one, between the third and fourth - two to three weeks. Animals are totally bled two weeks after the final injection of antigen. Diagnostic brucellosis agglutinating serum has a titer of at least 1: 1600 [2].
Известен также способ получения иммунных сывороток для тест-системы диагностической к возбудителям зоонозов: чумы, сапа, мелиоидоза, туляремии, сибирской язвы непрямым иммунофлуоресцентным методом. Кроликов массой 2,5-3 кг иммунизируют внутрикожно многоточечно вдоль спины смесью антигенов возбудителей чумы (0,2 мг), сапа (1 мг), мелиоидоза (1 мг), бруцеллеза (3 мг), туляремии (3 мг) с адъювантом Фрейнда гипериммунизация состоит из 4-5 инъекций с интервалами в 6 дней. Через 30 дней проводят второй цикл гипериммунизации по вышеуказанной схеме. На 7-й день животных кровопускают. Активность сывороток в непрямой реакции иммунофлуоресценции (РНИФ) 1: 256 [3] . There is also a method of obtaining immune sera for a test system diagnostic for pathogens of zoonoses: plague, glanders, melioidosis, tularemia, anthrax using the indirect immunofluorescence method. Rabbits weighing 2.5-3 kg are immunized intradermally multipoint along the back with a mixture of plague pathogen antigens (0.2 mg), glanders (1 mg), melioidosis (1 mg), brucellosis (3 mg), tularemia (3 mg) with Freund's adjuvant hyperimmunization consists of 4-5 injections at intervals of 6 days. After 30 days, a second hyperimmunization cycle is carried out according to the above scheme. On the 7th day the animals are bled. The activity of sera in the indirect immunofluorescence reaction (RNIF) 1: 256 [3].
Недостатки известных способов заключаются в том, что способы не обеспечивают получения высокоактивных сывороток, трудоемки и длительны во времени. Подготовка лошадей-продуцентов требует затрат большего количества питательных сред, рабочего и биологического времени. При использовании в качестве антигена живой вирулентной культуры возбудителя бруцеллеза необходимо строго соблюдать противоэпидемический режим работы. The disadvantages of the known methods are that the methods do not provide highly active serum, time-consuming and time-consuming. The training of producing horses requires the expenditure of more nutrient media, working and biological time. When using a live virulent culture of the causative agent of brucellosis as an antigen, it is necessary to strictly observe the anti-epidemic mode of operation.
Наиболее близким по технической сущности является способ получения туляремийной диагностической сыворотки. Лошадей-продуцентов гипериммунизируют культурой туляремийного микроба, убитой кипячением. Гипериммунизацию проводят циклами, состоящими из 5-6 внутривенных инъекций в возрастающих дозах с пятидневными интервалами. Таких инъекций проводят до 17 и более. The closest in technical essence is a method for producing tularemia diagnostic serum. Production horses are hyper-immunized with a tularemia microbe culture killed by boiling. Hyperimmunization is carried out in cycles consisting of 5-6 intravenous injections in increasing doses at five-day intervals. Such injections are carried out up to 17 or more.
Недостатки известного способа: требуется 2,5-3 года кропотливой работы, прежде чем удается получить нужного титра сыворотку (1: 3200). The disadvantages of this method: it takes 2.5-3 years of painstaking work before you can get the right titer of serum (1: 3200).
Целью изобретения является уменьшение сроков подготовки животных-продуцентов и повышение специфической активности целевого продукта. The aim of the invention is to reduce the preparation time of animal producers and increase the specific activity of the target product.
Цель достигается тем, что животных иммунизируют антигенами в лимфоузлы и внутримышечно раствором феракрила, берут кровь, выделяют сыворотку, добавляют антиген, получают комплекс антиген-антитело и проводят цикл внутри венных инъекций. The goal is achieved by the fact that animals are immunized with antigens in the lymph nodes and intramuscularly with Feracryl solution, blood is taken, serum is isolated, antigen is added, the antigen-antibody complex is obtained and the cycle is administered intravenously.
П р и м е р 1. Получение туляремийной диагностической сыворотки. Лошадям-продуцентам вводят подкожно в область нижней трети шеи по 2 мл 3% водно-спиртового раствора феракрила. На 5-7-й день вводят по 300 млрд м. к. инактивированной формалином культуры туляремийного микроба в предлопаточные лимфатические узлы в смеси с 2 мл 1 % -ного раствора феракрила. Через 3 дня такую же смесь вводят внутримышечно в увеличивающихся дозах (400, 500, 600, 700 млрд. м. к. ) с промежутком в 4 дня. На 7-8-й день после введения последней инъекции антигена берут пробу крови, получают сыворотку и определяют титр антител. Если титр антител ниже 1: 3200, делают стимулирующее кровопускание 2-3 л. Получают иммунную сыворотку. Берут четыре порции сыворотки по 100 мл, из них в каждую добавляют антиген - инактивированную культуру туляремийного микроба в вышеуказанных возрастающих дозах и назначают второй цикл иммунизации из четырех внутривенных инъекций с 4-дневными интервалами комплекса антиген-антител (АГ-АТ). PRI me R 1. Obtaining tularemia diagnostic serum. Production horses are injected subcutaneously in the region of the lower third of the neck with 2 ml of a 3% aqueous-alcoholic solution of feracryl. On the 5-7th day, 300 billion m of cu. Are injected with formalin-inactivated tularemia microbe culture into the pre-scapular lymph nodes mixed with 2 ml of a 1% solution of feracryl. After 3 days, the same mixture is administered intramuscularly in increasing doses (400, 500, 600, 700 billion m. K.) with an interval of 4 days. On the 7-8th day after the last injection of the antigen, a blood sample is taken, serum is obtained and the antibody titer is determined. If the antibody titer is lower than 1: 3200, they do stimulating bloodletting 2-3 l. Get immune serum. Four servings of serum are taken in 100 ml each, of which an antigen - inactivated tularemia microbe culture is added to each of the above increasing doses and a second immunization cycle of four intravenous injections with 4-day intervals of the antigen-antibody complex (AG-AT) is prescribed.
На 7-8-й день берут пробу крови, получают иммунную сыворотку и определяют титр антител. Он бывает достаточным (1: 3200) для производственного кровопускания. Таким образом, срок подготовки лошадей-продуцентов сокращается с 3 лет до 2-3 месяцев. On the 7-8th day, a blood sample is taken, immune serum is obtained, and the antibody titer is determined. It is sufficient (1: 3200) for industrial bloodletting. Thus, the training period for producing horses is reduced from 3 years to 2-3 months.
П р и м е р 2. Получение диагностической бруцеллюлозной агглютинирующей сыворотки. PRI me R 2. Obtaining diagnostic brucellulose agglutinating serum.
Кроликам-продуцентам массой 2,5-3 кг вводят по 0,6 мл 3% -ного водно-спиртового раствора феракрила в подушечки задних лап. На 5-7-й день липополисахаридный антиген (ЛПС) Br. melitensis 16М в количестве 1 мг смешивают с 1,2 мл 1% водно-спиртового раствора феракрила и по 0,6 мл вводят в подколенные лимфатические узлы. Через три дня такую же смесь вводят внутримышечно трехкратно с промежутками в 4 дня. На 30 день от животных получают по 4 мл иммунной сыворотки, добавляют в нее 4 мг Br. melitensis 16М, растворенного 1 мл ЛПС 0,9% -ного хлорида натрия. Получают комплекс АГ-АТ и вводят четырехкратно по 1 мл с промежутками в 3-4 дня внутривенно тому же животному, от которого получена иммунная сыворотка. На 7-8 день животных кровопускают. Активность сывороток в РИД 1: 32, в ИФА - 1: 7.106, в объемной реакции агглютинации 1: 2560 - 1: 5120.To production rabbits weighing 2.5-3 kg, 0.6 ml of a 3% aqueous-alcoholic solution of feracryl is introduced into the pads of the hind legs. On the 5-7th day, the lipopolysaccharide antigen (LPS) Br. melitensis 16M in an amount of 1 mg is mixed with 1.2 ml of a 1% aqueous-alcoholic solution of feracryl and 0.6 ml are injected into the popliteal lymph nodes. After three days, the same mixture is administered intramuscularly three times at intervals of 4 days. On day 30, 4 ml of immune serum is obtained from animals, 4 mg of Br is added to it. melitensis 16M dissolved in 1 ml of LPS 0.9% sodium chloride. The AG-AT complex is prepared and administered four times 1 ml at intervals of 3-4 days intravenously to the same animal from which the immune serum was obtained. On day 7-8, animals are bled. The activity of sera in RID is 1: 32, in ELISA - 1: 7.10 6 , in the volumetric agglutination reaction 1: 2560 - 1: 5120.
П р и м е р 3. Получение сыворотки для тест-системы диагностической к возбудителям чумы, сапа, мелиоидоза, бруцеллеза, туляремии. PRI me R 3. Obtaining serum for the test system diagnostic to the causative agents of plague, glanders, melioidosis, brucellosis, tularemia.
Все операции, связанные с иммунизацией кроликов-продуцентов, выполняются в той же последовательности, что и при получении бруцеллезной агглютинирующей сыворотки. Антигены возбудителей инъеци- руют в комплексе в следующих дозах: чумы 0,2 мг, сапа 1 мг, мелиоидоза 1 мг, бруцеллеза 3 мг, туляремии 3 мг. Для формирования комплекса АГ-АТ используют половинные дозы. Активность сыворотки для тест-системы в РНИФ 1: 512 - 1: 2048. All operations associated with the immunization of producer rabbits are performed in the same sequence as in the preparation of brucellosis agglutinating serum. Pathogen antigens are injected in the complex in the following doses: plague 0.2 mg, glanders 1 mg, melioidosis 1 mg, brucellosis 3 mg, tularemia 3 mg. Half doses are used to form the AG-AT complex. The serum activity for the test system in RNIF 1: 512 - 1: 2048.
Преимущества предлагаемого способа: получение высокоактивных сывороток; сокращение сроков подготовки продуцентов; не требуется строгого соблюдения противоэпидемического режима работы с животными, так как при иммунизации используют инактивированные антигены. (56) Сыворотка диагностическая туляремийная сухая для РА. Регламент производства ФС 42-112ВС-88. Иркутский научно-исследовательский противочумный институт. The advantages of the proposed method: obtaining highly active serums; shortening the training of producers; strict adherence to the anti-epidemic regimen of work with animals is not required, since inactivated antigens are used during immunization. (56) Tularemia diagnostic dry serum for RA. Production regulations FS 42-112BC-88. Irkutsk Research Anti-Plague Institute.
Сыворотка диагностическая бруцеллезная агглютинирующая сухая. Регламент производства. Одесское предприятие бакпрепаратов. Dry serum diagnostic brucellosis agglutinating. Production regulations. Odessa enterprise of pharmaceuticals.
Инструкция по изготовлению и контролю тест-системы диагностической для обнаружения возбудителей чумы, сапа, мелиоидоза, туляремии, бруцеллеза, сибирской язвы непрямым иммунофлуоресцентным методом. Научно-исследовательский противочумный институт Кавказа и Закавказья. Instructions for the manufacture and control of a diagnostic test system for the detection of pathogens of plague, glanders, melioidosis, tularemia, brucellosis, anthrax using the indirect immunofluorescence method. Research Anti-Plague Institute of the Caucasus and Transcaucasia.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5023123 RU2010577C1 (en) | 1991-07-09 | 1991-07-09 | Method for preparation of diagnostic serum |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5023123 RU2010577C1 (en) | 1991-07-09 | 1991-07-09 | Method for preparation of diagnostic serum |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2010577C1 true RU2010577C1 (en) | 1994-04-15 |
Family
ID=21594869
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5023123 RU2010577C1 (en) | 1991-07-09 | 1991-07-09 | Method for preparation of diagnostic serum |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2010577C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA017617B1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-01-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for producing serum for diagnosis of anthrax and a diagnostics kit |
RU2549434C2 (en) * | 2013-07-30 | 2015-04-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ Россельхозакадемии) | Method for making brucellosis diagnostic serum |
-
1991
- 1991-07-09 RU SU5023123 patent/RU2010577C1/en active
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EA017617B1 (en) * | 2011-08-10 | 2013-01-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Method for producing serum for diagnosis of anthrax and a diagnostics kit |
RU2549434C2 (en) * | 2013-07-30 | 2015-04-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ Россельхозакадемии) | Method for making brucellosis diagnostic serum |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Nielsen | Animal brucellosis | |
Erskine et al. | Bovine leukemia virus infection in dairy cattle: effect on serological response to immunization against J5 Escherichia coli bacterin | |
Harrell et al. | Humoral factors important in resistance of salmonid fish to bacterial disease. I. Serum antibody protection of rainbow trout (Salmo gairdneri) against vibriosis | |
US4311797A (en) | Anucleated live E. coli vaccine | |
Bjornson et al. | Decreased opsonization for Streptococcus pneumoniae in sickle cell disease: studies on selected complement components and immunoglobulins | |
RU2010577C1 (en) | Method for preparation of diagnostic serum | |
Thiele | Studies on the hemagglutinin of Hemophilus pertussis | |
RU2549434C2 (en) | Method for making brucellosis diagnostic serum | |
GILMARTIN et al. | Vaccination of porpoises (Tursiops truncatus) against Erysipelothrix rhusiopathiae infection | |
Cameron et al. | Immunization of mice against Corynebacterium pseudotuberculosis infection | |
Alm | In vitro Studies of Chicken Lymphoid Cells: IV. The Effect of Thymectomy on the Antibody Response in vivo and on the in vitro Reactivity of Spleen Cells to Sheep Erythrocytes, Allogeneic Cells and Phytohemagglutinin | |
RU2002119313A (en) | METHOD FOR OBTAINING ANTULOTUREMIAID HYPERIMMUNE SERUM AND DIAGNOSTICUM OF ERYTHROCYTAR TULAREMIAUM IMMUNOGLOBULIN DRY | |
Winter et al. | Rapid identification of Pasteurella pestis with fluorescent antibody: I. Production of specific antiserum with whole cell Pasteurella pestis antigen | |
Chukwu | Differentation of Brucella abortus and Yersinia enterocolitica serotype 09 infections in cattle: The use of specific lymphocyte transformation and brucellin skin tests | |
RU2104031C1 (en) | Method of preparing monospecific sera for brucellosis pathogens differentiation | |
RU2183972C2 (en) | Method to obtain highly active pig blood serum specific to classic hog cholera | |
Greenblatt et al. | Factors that enhance the potency of streptococcal group-specific antisera | |
RU2812350C1 (en) | Method of obtaining diagnostic serum against brucella in r-form | |
Morita | Studies on Fowlpox Viruses II. Plaque-Neutralization Test | |
Schutzer et al. | Early OspA immune complex formation in animal models of Lyme disease | |
Einarsdottir | Vaccine responses after chemotherapy or stem cell transplantation in patients with hematological malignancies | |
RU2135210C1 (en) | Method of diagnostic serum preparing | |
Davies | Observations on the growth-inhibiting properties of some antisera to Mycoplasma mycoides | |
RU2232989C1 (en) | Method for preparing test-system for determination of helicobacter pylori cytotoxin-associated protein antigens in biological material in infected patients by co-agglutination reaction | |
CN107674118A (en) | Recombinant protein PspA1, PspA2 and PspA3 and the polysaccharide conjugate vaccine for including it |