RU1792270C - Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro - Google Patents

Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro

Info

Publication number
RU1792270C
RU1792270C SU914932475A SU4932475A RU1792270C RU 1792270 C RU1792270 C RU 1792270C SU 914932475 A SU914932475 A SU 914932475A SU 4932475 A SU4932475 A SU 4932475A RU 1792270 C RU1792270 C RU 1792270C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
shoots
medium
sucrose
rooting
murashige
Prior art date
Application number
SU914932475A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Николай Михайлович Пивень
Галина Григорьевна Мельничук
Акрамшо Саидшоевич Фелалиев
Original Assignee
Институт Клеточной Биологии И Генетической Инженерии Ан@ Украины
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Клеточной Биологии И Генетической Инженерии Ан@ Украины filed Critical Институт Клеточной Биологии И Генетической Инженерии Ан@ Украины
Priority to SU914932475A priority Critical patent/RU1792270C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1792270C publication Critical patent/RU1792270C/en

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

Использование: в сельском хоз йстве и биотехнологии, в частности, при получении посадочного материала орехоплодных в культуре ткани. Сущность изобретени : укоренение побегов провод т на питательной среде Мурасиге-Скуга, содержащей в своем составе макроэлементы с четырехкратным разбавлением, 60 г/л сахарозы. Культивирование осуществл ют в темноте в течение 5-7 сут, после чего пересаживают на питательную среду Мурасиге-скуга, содержащую макроэлементы в четырёхкратном разбавлении, 30 г/л сахарозы и дополни- тельно 7 г/л агара. Выращивание на этой среде провод т при шёстнадцатйчасовом фотопериоде. 2 табл. Usage: in agriculture and biotechnology, in particular, when receiving planting material of nut-bearing fruit in a tissue culture. The essence of the invention: rooting of shoots is carried out on a nutrient medium Murashige-Skoog, containing in its composition macrocells with four-fold dilution, 60 g / l of sucrose. Cultivation was carried out in the dark for 5-7 days, after which they were transplanted onto a Murasige-skug nutrient medium containing four-fold dilution macrocells, 30 g / l sucrose and an additional 7 g / l agar. Cultivation on this medium is carried out at a sixteen-hour photoperiod. 2 tab.

Description

соwith

сwith

Изобретение относитс  к биотехнологии ,, а именно к способу культивировани  растений in vitro, и может быть использовано в лесоводстве, питомниководстве.The invention relates to biotechnology, in particular to a method of cultivating plants in vitro, and can be used in forestry, nursery.

... Известно, что дл  коренени  побегов Ьрехоплодных, полученных в культуре ткани , примен ют питательные среды, содержащие ауксины, или провод т обработку базального конца побегов гормонами перед их посадкой непосредственно в субстрат.... It is known that auxin containing nutrient media are used to root the Lactiferous shoots obtained in tissue culture, or the basal end of the shoots is treated with hormones before they are planted directly on the substrate.

Предлагаетс  также двухэтапное укоренение побегов, при котором на первом этапе индуцируют корнеобрззование в темноте , в присутствии ауксинов(ИМК). По вление корней наблюдают на этой же среде, но при добавлении активированного угл  или при уменьшении ауксинов.A two-stage rooting of the shoots is also proposed, in which, at the first stage, root formation in the dark is induced in the presence of auxins (IMC). The appearance of roots is observed on the same medium, but with the addition of activated charcoal or with a decrease in auxins.

Наиболее близким к предлагаемому решению  вл етс  способ укоренени  побегов лещины, полученных in vitro, при котором побеги помещали основанием вClosest to the proposed solution is a method of rooting shoots of hazel obtained in vitro, in which the shoots were placed base in

жидкую культуральную среду K(h), состо щую из половинной концентрации минеральных солей Ченга с ИМК (10 мг/л). и выдерживали при температуре 25±2°С с фо- топерирдом 18 часов. Через 5 суток побеги переносили на свежую жидкую среду того же состава, но без ИМК.liquid culture medium K (h), consisting of half the concentration of Cheng mineral salts with IMA (10 mg / l). and kept at a temperature of 25 ± 2 ° C with a phototerride of 18 hours. After 5 days, the shoots were transferred to fresh liquid medium of the same composition, but without BCI.

Недостатком прототипа  вл етс  то, что этот способ используют дл  монокультуры.A disadvantage of the prototype is that this method is used for monoculture.

Целью изобретени   вл етс  расширение , числа укорен емых видов орехоплодных , размножаемых микроклональным способом, дл  лесоводства и питомниковод- ства. . ;... ....The aim of the invention is the expansion of the number of rooted species of walnut, propagated by the microclonal method, for forestry and nursery. . ; ... ....

Это достигаетс  тем, что укоренение ореха грецкого провод т в два этапа: сначала на жидкой питательной среде с ауксинами (10 мг/л), при температуре 25±3°С, а затем на безгормональной среде того же состава.This is achieved by rooting the walnut in two stages: first on a liquid nutrient medium with auxins (10 mg / l), at a temperature of 25 ± 3 ° C, and then on a hormone-free medium of the same composition.

VJ оVj o

го ю VI оth vi

CJCj

В отличие от прототипа в предлагаемом способе укоренение ореха грецкого побеги выдерживают от 5 до 7 суток в темноте на жидкой питательной среде Мурасиге-Скуга, микроэлементы которой разбавл ют в 4 раза, количество сахарозы увеличивают до 60 г/л, а затем перенос т на эту же среду, но уже с 7 г/л агара. Количество сахарозы уменьшают-до 30 г/л. Побеги культивируют при 16- чафовбм фотопериоде.Unlike the prototype in the proposed method, the rooting of walnut shoots is kept for 5 to 7 days in the dark on a liquid nutrient medium Murashige-Skoog, microelements of which are diluted 4 times, the amount of sucrose is increased to 60 g / l, and then transferred to this same medium, but already with 7 g / l agar. The amount of sucrose is reduced to 30 g / l. Shoots are cultivated with a 16-hour photoperiod.

Приме р. Побеги, полученные при микроклональном размножении ореха грецкого и достигшего высоты 18-20 мм, помещают базальными концами на мостики из фильтровальной бумаги в сахарные ста- канчики с жидкой питательной средой Мурасиге-Скуга состава, приведенного в табл. 1, и культивируют в темтоне при 25±3°С. Через 1, 3, 5, 7 или 10 суток побеги перенос т на питательную среду того же состава, но без ИМК, количество сахарозы уменьшают до 30 г/л, добавл ют 7 г/л агара и выставл ют на 16-часовый фотопериод. Побеги выдерживают на этой среде до по влени  корней.. Example p. The shoots obtained by microclonal propagation of walnut and reached a height of 18-20 mm are placed with basal ends on filter paper bridges in sugar jars with Murashige-Skoog liquid nutrient medium of the composition shown in Table. 1, and cultivated in tomton at 25 ± 3 ° C. After 1, 3, 5, 7, or 10 days, the shoots are transferred to a nutrient medium of the same composition, but without BCI, the amount of sucrose is reduced to 30 g / l, 7 g / l of agar is added and exposed to a 16-hour photoperiod. The shoots are kept on this medium until the roots appear ..

Контролем служат побеги ореха грецкого , которые выращивают 5 или 7 суток в темноте на жидкой питательной среде Мурасиге-Скуга с полным набором макроэлементов , 60 г/л сахарозы и 10 мг/л ИМК. Через 5 или 7 суток побеги перенос т на 16-часовый фотопериод на питательную среду того же состава, но без ИМК, с количеством сахарозы - 30 г/л и 7 г/л агара (табл.1).The control is walnut shoots, which are grown for 5 or 7 days in the dark on a liquid nutrient medium Murashige-Skoog with a full set of macronutrients, 60 g / l sucrose and 10 mg / l IMC. After 5 or 7 days, the shoots are transferred to a 16-hour photoperiod on a nutrient medium of the same composition, but without BCI, with the amount of sucrose - 30 g / l and 7 g / l agar (Table 1).

Как видно из табл. 2, при 5-суточном выдерживании побегов на жидкой среде сAs can be seen from the table. 2, with 5-day aging of shoots in a liquid medium with

. Состав питательных сред, используемых при укоренении побегов ореха грецкого. The composition of the nutrient media used in rooting walnut shoots

in vitro . -in vitro. -

ИМК у 9,0% побегов корни по вились через неделю выращивани  на безгормональной среде. В дальнейшем число укорененных побегов увеличиваетс  и через 4 недели достигает 72,0%. При 7-суточной экспозиции с ИМК к концу восьмой недели получают 6,0% укорененных побегов. В контрольных вариантах корни не по вились.IMA in 9.0% of shoots roots appeared after a week of cultivation on a hormone-free medium. Subsequently, the number of rooted shoots increases and after 4 weeks reaches 72.0%. With a 7-day exposure with BCI, 6.0% of rooted shoots are obtained by the end of the eighth week. In the control variants, the roots did not appear.

Таким образом, осуществлено укоренение побегов ореха грецкого, полученных в культуре In vitro.Thus, the rooting of walnut shoots obtained in an in vitro culture was carried out.

За вл емое техническое решение позвол ет расширить объект растений, укорен емых In vitro.The claimed technical solution allows to expand the object of plants rooted in vitro.

Claims (1)

Формула изобретени  Способ укоренени  побегов орехоплодных , полученных in vitro, включающий культивирование побегов при температуре 25±2°С на жидкой питательной среде, содержащей в своем составе макроэлементы, индолилмасл ную кислоту в количестве 10 мг/л и сахарозу, последующую пересадку на безгормональную питательную среду и выращивание до корнеобразовани  и получени  растений-регенерантов, отличающийс  тем, что культивируют побеги в течение 5-7 сут, в темноте на питательной среде Мурасиге-Скуга, с четырехкратным разбавлением макроэлементов, содержащей 60 г/л сахарозы, последующую пересадку на питательную среду Мурасиге-Скуга с четырехкратным разбавлением макроэлементов , содержащую 30 г/л сахарозы и дополнительно 7 г/л агара, а выращивание на этой среде провод т при шестнадцатичасовом фотопериоде.SUMMARY OF THE INVENTION A method for rooting nut shoots obtained in vitro, including cultivating shoots at a temperature of 25 ± 2 ° C in a liquid nutrient medium containing macronutrients, indolylbutyric acid in an amount of 10 mg / l and sucrose, followed by transplantation to a hormone-free nutrient medium and growing to root formation and obtaining regenerated plants, characterized in that the shoots are cultivated for 5-7 days, in the dark on a Murashige-Skoog medium, with four-fold dilution of the macroelement comrade, containing 60 g / l sucrose, subsequent change to the culture medium of Murashige-Skoog medium with a fourfold dilution macrocells containing 30 g / l sucrose and an additional 7 g / l agar, and cultivation on this medium is carried out at a sixteen-hour photoperiod. Таблица 1Table 1 Количество укорененных побегов ореха грецкого на питательной среде Мурасиге-Скуга при разведении 1:4 макроэлементов и с добавлением ИМКThe number of rooted shoots of walnut on a nutrient medium Murashige-Skoog at a dilution of 1: 4 macrocells and with the addition of IMC (Юмг/л)(Yumg / l) Продолжение табл.1Continuation of table 1 Таблица 2table 2
SU914932475A 1991-04-29 1991-04-29 Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro RU1792270C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU914932475A RU1792270C (en) 1991-04-29 1991-04-29 Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU914932475A RU1792270C (en) 1991-04-29 1991-04-29 Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1792270C true RU1792270C (en) 1993-01-30

Family

ID=21572525

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU914932475A RU1792270C (en) 1991-04-29 1991-04-29 Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1792270C (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Perez С. - Rodriguez R, Tomes R.S., In vitro filbert (Corylus avellana L) micropropagation from shoot and cotyledonary node segments. Plant Cell Reports, 1985, 4, N 3, p. 137-139. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2619512B2 (en) How to regulate plant growth
Huang et al. Rejuvenation of Sequoia sempervirens by repeated grafting of shoot tips onto juvenile rootstocks in vitro: model for phase reversal of trees
JPS5914725A (en) Production of plant propagating material
Lundquist et al. The propagation of Casuarina species from rooted stem cuttings
Chabukswar et al. Rooting and hardening of in vitro plantlets of Garcinia indica Chois
Agnihotri et al. In vitro cloning of female and male Carica papaya through tips of shoots and inflorescences
KR0160086B1 (en) The method of cultivating ginger seedlings
RU1792270C (en) Method of rooting nut-fruited crop shoots obtained in vitro
Walker et al. Action of light on rooting in vitro and acclimatization of Sequoia sempervirens to soil
JPS63297304A (en) Method for culturing and cultivating araceous plant
RU2092036C1 (en) Method of micromultiplication of stevia, stevia rebaudiona l
JPH0463527A (en) Production of seedling by clone proliferation
HU183433B (en) Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture
RU2793254C1 (en) Method for clonal micropropagation of paulownia tomentosa
Seelye et al. Micropropagation of Telopea speciosissima
HU206012B (en) In vitro - in vivo method of high activity for producing potato small sized tubers
SU1729337A1 (en) Method for initial seed-farming of corn hybrids
SU1417787A3 (en) Method of propagating cultivated plants in vitro
SU1761049A1 (en) Method of growing planting material
JP3715689B2 (en) Mass propagation of Gmelina trees using tissue culture
Crawford et al. Micropropagation of Acacia mangium and Acacia stenophylla
SU1665986A1 (en) Tissue culture method of cherry tree propagation
SU1601117A1 (en) Method of reproducing grapes in vitro
SU1581741A1 (en) Method of microclonal reproduction of aspen hybrides
JP3585050B2 (en) Method for producing virus-free hop stick seedlings