RU1789559C - Method of water-soluble substances toxicity determination - Google Patents
Method of water-soluble substances toxicity determinationInfo
- Publication number
- RU1789559C RU1789559C SU904883415A SU4883415A RU1789559C RU 1789559 C RU1789559 C RU 1789559C SU 904883415 A SU904883415 A SU 904883415A SU 4883415 A SU4883415 A SU 4883415A RU 1789559 C RU1789559 C RU 1789559C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- chambers
- test
- macrocolonies
- control
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Использование: токсикологи , охрана окружающей среды, экологи , химико-фармакологическа промышленность, санитар- но-гигиенического Надзора. Сущность изобретени : клетки млекопитающих, культивируемые Hela, помещают в жидкую питательную среду (20-30 клеток/мл). Туда же добавл ют 1 : 50-1 : 100 (в мае. %) раствор токсиканта. Образцы инкубируют до по влени макроколоний. 2 табл.Usage: toxicologists, environmental protection, ecologists, chemical and pharmacological industry, sanitary and hygienic supervision. SUMMARY OF THE INVENTION: Hela cultured mammalian cells are placed in a liquid culture medium (20-30 cells / ml). A 1: 50-1: 100 (in May.%) Solution of the toxicant is added thereto. Samples are incubated until macrocolonies appear. 2 tab.
Description
Изобретение относитс к способам определени биологической активности соединений в водной фазе и может быть использовано в токсикологии, охране окружающей среды, экологии, химико-фармакологической промышленности, при санитарнр-гигиенических исследовани х в научно-практических учреждени х санитар- но-шгиенического надзора.The invention relates to methods for determining the biological activity of compounds in the aqueous phase and can be used in toxicology, environmental protection, ecology, chemical-pharmacological industry, sanitary-hygienic studies in scientific and practical institutions of sanitary-hygienic supervision.
Известен способ определени токсичности жидкостей путем обработки токсикан- том микро- и макроводорослей с подсчетом соотношени живых и мертвых клеток и не- кротизированных участков. Известен способ оценки токсичности водорастворимых соединений путем обработки токсикантом культивируемых млекопитающих с последующей инкубацией и определением репродуктивной гибели клеток.A known method for determining the toxicity of liquids by treating a micro-and macroalgae with a toxicant is calculated by calculating the ratio of living and dead cells to necrotic sites. A known method for assessing the toxicity of water-soluble compounds by treatment with a toxicant of cultured mammals, followed by incubation and determination of reproductive cell death.
Цель изобретени - упрощение, повышение экономичности и точности СпособаThe purpose of the invention is to simplify, increase the efficiency and accuracy of the Method
определени токсичности водорастворимыхdetermination of the toxicity of water soluble
вещестб. г --- --...... ..........substance test. r --- --...... ..........
Способ заключаетс в следующем. Берут клетки млекопитающих Hela, культивируемые in vttro, помещают в жидкую питательную среду в ра ёной концентрации (20-30 мл/мл) в контрольных и опытных образцах . Выбор такой плотности св зан с тем, что повышенйе Пл6ТЙ1бет1й пТ5и вЬ1йТ к снижению точнбсти за счёт сТШ ни rko/ib- ний; при снижении плотности также происходит снижение точности опрёДёлёМй за счет уменьшени эффективности посева. Затем в опытные пробирки с инокулирован- ными добавл ют в соотношении 1 : 50-1 : 100 (в мае. %) раствор токсиканта (0,1-0,05 мл раствора испытуемого вещёства, жащего такую концентрацию, котора приThe method is as follows. In vttro cultured Hela mammalian cells are placed in a liquid nutrient medium at a steady concentration (20-30 ml / ml) in control and experimental samples. The choice of such a density is due to the fact that an increase in Pl6Ti1bet1y PT5 and b11T to reduce the accuracy due to the rt / ibn; with a decrease in density, there is also a decrease in the accuracy of the determination by reducing the efficiency of sowing. Then, to a test tube with inoculated ones, a toxicant solution (0.1-0.05 ml of a test substance solution, living at a concentration such that at
чh
0000
оabout
О1O1
с with
4D4D
указанной операции разбавлени создает выбранную рабочую концентрацию). В контрольные пробирки в том же соотношении добавл ют солевой раствор, используемый дл приготовлени растворов токсиканта. После этого образцы инкубируют в герметически закрытых сосудах при 37,0-37,5° С в течение времени, необходимого дл по влени макроколоний, и суд т о токсическом действии,соединени при статическом достоверном отклонении числа колоний в присутствии токс иканта по сравнению с контрольным образцом.said dilution operation creates the selected working concentration). Salt solution used to prepare toxicant solutions was added to control tubes in the same ratio. After that, the samples are incubated in hermetically sealed vessels at 37.0-37.5 ° C for the time required for the appearance of macrocolonies, and the toxic effect is judged, compounds with a statistically significant deviation of the number of colonies in the presence of a toxic agent compared with the control a sample.
Предлагаемый способ определени токсичности водорастворимых веществ имеет вные преимущества перед известным, чувствительность способа повышаетс в 30 раз. Материалы, представленные в таблице, иллюстрируют достижение цели,The proposed method for determining the toxicity of water-soluble substances has obvious advantages over the known one, the sensitivity of the method is increased by 30 times. The materials presented in the table illustrate the achievement of the goal,
Предлагаемый способ более экономи- мен, так как отпадает необходимость в использовании дорогосто щего оборудовани дл создани стерильной газовой среды посто нного состава и влажности в термоста- тируемой. камере, более прост, так как не содержит операций, необходимых дл создани различных концентраций клеток в опытных и контрольных образцах, а также операций, св занных с внесением токсиканта в физиологическом растворе, а затем заменой раствора на среду культивировани , потому что в предлагаемом способе токсикант внос т непосредственно весь срок инкубации до по влени видимых макроколоний .The proposed method is more economical, since there is no need to use expensive equipment to create a sterile gas environment of constant composition and humidity in a thermostatic. the chamber is simpler because it does not contain the operations necessary to create different concentrations of cells in the experimental and control samples, as well as operations associated with the introduction of a toxicant in physiological saline, and then replacing the solution with the culture medium, because the proposed method has a toxicant the entire incubation period is introduced directly until the appearance of visible macrocolonies.
Пример 1. Дл подготовки культуры клеток берут в виде моносло в стекл нном матрасе емкостью 0,5 л в среде следующего состава: среда 199-45 %, среда Игла 48 %, сыворотка крупного рогатого скота без консерванта 7 %, стрептомицина по 250 ед/мл. На третий день культивировани клетки снимают со стекла 0,25 %-рас- твором трипсина, ресуспендируют в питательной среде, разбивают комки клеток пипетированием, подсчитывают число клеток в 1 мл и готов т суспензию одиночных клеток в культуральной среде с плотностью 20.клеток/мл, по 5 мл суспензии клеток, т, е. 100 клеток на пробу, инокулируют в 10 камер , 5 из них служат контролем, в 5 внос т 5 х м.г процента хлорофоса. Клетки культивируют при 37° С до по влени видимых невооруженным глазом макроколоний, затем подсчитывают число выросших колоний в контрольных и опытных камерах. Среднее число колоний в контрольных пробирках 98, + 1,16, среднее число колоний в опытных камерах 82,5 + 1,5, т, е. выживаемость клеток при действии хлорофоса в концентраExample 1. To prepare a cell culture, they take as a monolayer in a glass mattress with a capacity of 0.5 l in an environment of the following composition: medium 199-45%, medium Needle 48%, cattle serum without preservative 7%, streptomycin 250 units / ml On the third day of cultivation, the cells were removed from the glass with a 0.25% trypsin solution, resuspended in nutrient medium, lumps of cells were broken by pipetting, the number of cells per 1 ml was counted, and a single cell suspension was prepared in a culture medium with a density of 20. cells / ml , 5 ml of a suspension of cells, i.e., 100 cells per sample, are inoculated in 10 chambers, 5 of them serve as a control, 5 x mg g of chlorophos are added in 5. Cells were cultured at 37 ° C until macrocolonies were visible to the naked eye, then the number of colonies grown in control and experimental chambers was counted. The average number of colonies in control tubes is 98, + 1.16, the average number of colonies in experimental chambers is 82.5 + 1.5, i.e., cell survival under the action of chlorophos in concentration
й th
JOJo
15fifteen
20 2520 25
30thirty
3535
4040
4545
50fifty
5555
ции 5 х мг % равна 84,2 % от контрол . Получают нижний предел определени хлорофоса , равный 5 х 10 мг %.tion 5 x mg% is equal to 84.2% of the control. A lower limit of chlorophos determination of 5 x 10 mg% is obtained.
Предлагаемый способ по сравнению с известным имеет повышенную чувствительность при упрощении определени токсичности водорастворимых веществ.The proposed method, in comparison with the known one, has an increased sensitivity while simplifying the determination of the toxicity of water-soluble substances.
Пример 2. Осуществл ют, как пример 1, но в опытные камеры внос т мг % хлорофоса, контрольные и опытные пробы культивируют около 8 дней. Среднее число колоний в контрольных пробирках 98,0 ± 1,6, в опытных 48,2±1,8, т. е. вьркШаёйость равна 46,1 % от контрол , что свидетельствует о высокой токсичности данной концентрации хлорофоса на репродуктивную способность клеток млекопитающих ,Example 2. Carried out as example 1, but mg% chlorophos was added to the test chambers, control and experimental samples were cultured for about 8 days. The average number of colonies in the control tubes was 98.0 ± 1.6, in the experimental ones 48.2 ± 1.8, i.e., the test rate was 46.1% of the control, which indicates the high toxicity of this concentration of chlorophos on the reproductive capacity of mammalian cells ,
При м е р 3. Осуществл ют, как пример 1, но в опытные пробирки внос т 5-меток- ситритамин в концентрации 1 х мг %. Среднее число колоний в контрольных пробирках 91,1 ±2,2, в опытных - 42,2 ± 1,4 т, е. выживаемость равна 46,1 %, высокотоксичное соединение.Example 3. Carry out, as example 1, but 5-methoxitritamine at a concentration of 1 x mg% was added to the test tubes. The average number of colonies in control tubes was 91.1 ± 2.2 tons, in experimental ones - 42.2 ± 1.4 tons, i.e., survival was 46.1%, and a highly toxic compound.
Прим е р 4. Осуществл ют, как пример 1, но в опытные пробирки внос т 2-амиачно- 2-тиазолин мг % и получают выживаемость 49 % по сравнению с контролем.Example 4. Carried out as example 1, but 2% ammonia-2-thiazoline mg% was added to the test tubes and a 49% survival rate was obtained compared to the control.
Пример 5. Осуществл ют, как пример 1, но в опытные камеры не внос т токсикант , а производ т замену среды на свежую среду того же состава. После образовани видимых макроколоний производ т их подсчет в опытных и контрольных камерах. В контроле среднее число колоний составл ет 82,0 ±6,3, в опытах-74,8 ±5,9, т. е. 91,2 % от контрол . Таким образом, процедуре смены среды приводит к снижению числа колоний пор дка 10 %.Example 5. Carried out as example 1, but the toxicant is not added to the test chambers, but the medium is replaced with fresh medium of the same composition. After the formation of visible macrocolonies, they are counted in experimental and control chambers. In the control, the average number of colonies is 82.0 ± 6.3; in the experiments, 74.8 ± 5.9, i.e., 91.2% of the control. Thus, the medium change procedure leads to a decrease in the number of colonies of the order of 10%.
П р и м е р 6. Осуществл ют, как призер 1, лишь суспензию одиночных клеток берут в концентрации 30 клеток/мл. Выживаемость клеток при действии хлорофоса в концентрации 5x10 мг-% равна 84,1 ±0,1, что свидетельствует о высокой сходимости результатов в диапазоне клеток в концентрации от 20-30 клеток/мл (сравнение с примером 1). Данные об эффективности и посева в этих опытах приведены в. таблице.PRI me R 6. Carry out, as the winner 1, only a suspension of single cells is taken at a concentration of 30 cells / ml. Cell survival under the action of chlorophos at a concentration of 5x10 mg-% is 84.1 ± 0.1, which indicates a high convergence of the results in the range of cells at a concentration of 20-30 cells / ml (comparison with example 1). Data on efficiency and seeding in these experiments are given in. table.
Из данных, представленных в таблице, следует, что именно концентраци 20-30 клеток/мл дает допустимую эффективность посева и нагл дно иллюстрирует преимущества предлагаемого способа по .сравнению с прототипом.From the data presented in the table, it follows that it is the concentration of 20-30 cells / ml that gives the acceptable seeding efficiency and clearly illustrates the advantages of the proposed method in comparison with the prototype.
Температура культиёйрЪванМ дл клеток млекопитающих допустима в приведенных пределах. Врем культивировани The temperature of the cultivar for mammalian cells is acceptable within the given limits. Cultivation time
клеток зависит от токсиканта, поэтому отмечают по вление видимых макроколоний (пор дка 8-10 дней со дн посева, но не болееcells depends on the toxicant, therefore, the appearance of visible macrocolonies is noted (about 8-10 days from the day of sowing, but not more than
12 дней, так как после этого колонии из-за изменени рН сползают со стекла и их невозможно подсчитать).12 days, because after this the colonies slide off the glass due to a change in pH and cannot be counted).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904883415A RU1789559C (en) | 1990-08-08 | 1990-08-08 | Method of water-soluble substances toxicity determination |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904883415A RU1789559C (en) | 1990-08-08 | 1990-08-08 | Method of water-soluble substances toxicity determination |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1789559C true RU1789559C (en) | 1993-01-23 |
Family
ID=21545750
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904883415A RU1789559C (en) | 1990-08-08 | 1990-08-08 | Method of water-soluble substances toxicity determination |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1789559C (en) |
-
1990
- 1990-08-08 RU SU904883415A patent/RU1789559C/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Строганов Н.С., Дмитриева А.Г., Король В,М. Водоросли и макрофиты как объекты дл биотестировани . Волгоград, 1983, с. 153-158. Пакхам Е.Д., Дуксбури С.О., Майфилд С. О. и др. Количественный анализ вызванных загр знителем летальных и сублетальных поражений культивируемых клеток млекопитающих: Экспресс-информаци ВНИИ- МИ. Гигиена окр. среды, № 6. - М., 1983, с, 26. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Jensen et al. | Temporal changes in pH within the phagocytic vacuole of the polymorphonuclear neutrophilic leukocyte | |
Francki et al. | Metabolism of Separated Leaf Cells: II. Uptake and Incorporation of Protein and Ribonucleic Acid Precursors by Tobacco Cells | |
RU1789559C (en) | Method of water-soluble substances toxicity determination | |
Tu et al. | Maize dwarf mosaic virus predisposes corn to root rot infection | |
Warren et al. | The effect of heparin on the growth of bacteria and yeasts | |
Beutler et al. | Incidence of the erythrocytic defect associated with drug-sensitivity among oriental subjects | |
Fenn et al. | Oxygen poisoning in Drosophila | |
RU2098486C1 (en) | Method of bacteremia diagnosis | |
Weber | The preservation of phytoplankton grab samples | |
Corper | Sodium Tellurite as a Rapid Test for the Viability of Tubercle Bacilli Studies on the Biochemistry and Chemotherapy of Tuberculosis, XIII | |
Burt | Narcosis and cell division in Colpoda steinii | |
RU2012331C1 (en) | Solution for preserving of enzyme treated erythrocyte used in isoserological reactions | |
RU2193061C1 (en) | Nutrient medium for tuberculosis mycobacterium culturing (mbt-broth) | |
RU2106879C1 (en) | Method for culturing slowly growing mycobacteria | |
RU2111245C1 (en) | Nutrient medium for yeast-like fungi of genus candida culturing | |
Barasa et al. | Biochemical lesions of respiratory enzymes and configurational changes of mitochondria in vivo: I. The effect of fluoroacetate: A study by phase-contrast microscopy and time-lapse cinemicrography | |
SU1082399A1 (en) | Method of determining immunologic reactivity of the organism | |
SU1606535A1 (en) | Transport medium for corynebacterium diphtheriae | |
SU1513034A1 (en) | Nutrient medium for extracting parahemolytic vibrio | |
RU2070934C1 (en) | Method of identification of fungus candida albicans and fungus candida tropicalis | |
SU690070A1 (en) | Method of determining biological activity of hypophysis back part hormones | |
SU1017727A1 (en) | Culture medium for culturing blanatidia of pigs | |
SU1451161A1 (en) | Method of storing shigellae | |
RU2121506C1 (en) | Method of determination of hemolytic activity in bacillus anthracis | |
RU2117046C1 (en) | Finn-ii-base medium nutrient medium for the accelerated isolation of tuberculosis pathogen from extrapulmonary localization foci |