RU1438235C - Method of growing microorganisms for producing l-lysine - Google Patents

Method of growing microorganisms for producing l-lysine

Info

Publication number
RU1438235C
RU1438235C SU853957517A SU3957517A RU1438235C RU 1438235 C RU1438235 C RU 1438235C SU 853957517 A SU853957517 A SU 853957517A SU 3957517 A SU3957517 A SU 3957517A RU 1438235 C RU1438235 C RU 1438235C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
emulsion
medium
antifoam
polypropylene glycol
stabilizer
Prior art date
Application number
SU853957517A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
В.Н. Чернин
Б.Е. Чистяков
В.С. Молочков
Е.И. Вальгер
Я.Б. Лиепа
А.К. Докин
В.Г. Беденко
Р.Д. Сойфер
Original Assignee
Предприятие П/Я А-1785
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Предприятие П/Я А-1785 filed Critical Предприятие П/Я А-1785
Priority to SU853957517A priority Critical patent/RU1438235C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1438235C publication Critical patent/RU1438235C/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологической промыпшецности и касаетс  способа культивировани  микроорганизмов с использованием эмульсий пеногасителей, включающих полигфопи- ленгликолевьв1 эфир, стабилизатор и воду, и может быть использовано при биосинтезе лизина. Целью изобретени   вл етс  удешевление процесса. Способ заключаетс  в том, что в качестве стабилизатора используют омыленные животные и микробные жиры в количестве 0,2-1% от массы эмульсии. Получаемую стабильную эмульсию полипропилен- гликолевого эфира, например пропино- ла Б-400, ввод т в питательную среду в количестве, содержащем 0,015-0,15% пеногасител  от объема среды, а за- о тем в периоды усиленного пе нообразова- ни  стер ильиую эмульсию подают порци- /Л  ми, содержащим 0,0002-0,02% пенога- Y сител  от объема среды. 3 табл. VMMThe invention relates to the microbiological industry and relates to a method for cultivating microorganisms using emulsifiers of antifoam agents, including polypropylene glycol ether, stabilizer and water, and can be used in lysine biosynthesis. The aim of the invention is to reduce the cost of the process. The method consists in using saponified animals and microbial fats in the amount of 0.2-1% by weight of the emulsion as stabilizer. The resulting stable emulsion of polypropylene glycol ether, for example, B-400 propinol, is introduced into the nutrient medium in an amount containing 0.015-0.15% antifoam from the volume of the medium, and then, during periods of increased foam formation, sterile the emulsion is served in portions - / L mi containing 0.0002-0.02% of the foam-Y system from the volume of the medium. 3 tab. VMM

Description

СОWith

(Х ND(X nd

СОWith

СПJoint venture

HloOpflTCIHK РТНПСИГСГ к ГПП ,рО()ИП-лог чес к о Г; каг жггсп спосюб  культ пироп ии  микроорг низ- мор г. иг.пользованнем г,инт тнческ1гх пеиогасителей и может быть использо-- п ио при 6HocnFfTP4e L-лнэииа.HloOpflTCIHK RTNPSIGSG to GLP, pO () IP log ches to o G; kag jggspspyyub cult pyrope and microorganism of the low-sea of the city of ig.use of g, intnchny1khkh dehumidifiers and can be used with 6HocnFfTP4e L-lneiiia.

Целью изобретени   вл етс  удешевление процесса.The aim of the invention is to reduce the cost of the process.

Способ осупхествл гот следующим об-- разом.The way the goth was used is as follows.

Микроорганизмы вь рал1инают ггри аэ-- рации на питательной среде, в которую добавлена стерильна  эмульси  поли- пропиленглчколевого эфира, например,, пропкнола Б-АОО, стабилизированна  омьшенкым зкиром в количестве 0,2- 1,0 мас.%.Microorganisms eliminate gamma aeration on a nutrient medium into which a sterile emulsion of polypropylene glycol ester, for example, propcnol B-AOO, is added, stabilized with omshchen zkir in an amount of 0.2-1.0 wt%.

Омыление животного или микробного лшра провод т 40%-ным водным раство- ром гидроокиси кали  или натри  при в течение 1-1,5 ч в зависимости от вида жирового сырь  при перемешивании реакционной массы. .Saponification of animal or microbial hspre is carried out with a 40% aqueous solution of potassium or sodium hydroxide for 1-1.5 hours, depending on the type of fatty raw materials while stirring the reaction mixture. .

Стерильную эмульсию внос т в та- ком количестве, чтобы содержание по- липропилеигликолевого эфира в питательной среде составило 0,015-0,15%,, В процессе культивировани  стериль- нукз эмульсию добавл ют в периоды уси лени  вспенивани  порци ми, содержащми 0,0002-0,02% полипропиленгликолев го эфира от объема среды.The sterile emulsion is added in such an amount that the content of polypropylene glycol ether in the nutrient medium is 0.015-0.15%. During cultivation, the sterile nucc emulsion is added during periods of intensification of foaming in portions containing 0.0002- 0.02% polypropylene glycol ether from the volume of the medium.

П р и м е р 1. Осуществл ют биосн тез лизина с помощью культуры микроо ганиэма Brevibacterium sp.22L в ферментере емкостью 100 м . Выралщваиие микроорганизма ведут в 50 м стериль- ной гштательной среды, содержащей 10 т (20% к объему) свеклосахарной мелассы; 1 м (2%) кукурузного экстракта; 5,3 м (10,6%) ферментализата BBKj 0,9 т (1,8%) хлористого аммони  55 кг (0,11%) двузамещенного фосфата аммони  и 30 кг (0,015% пропино- ла Б-400 к объему среды) 25%-ной эмульсии пропинола Б-400, стабилизированной омыленным рыбьим жиром в коицеитрац ш 0,5 мас.%.Example 1. Lysine biosynthesis was carried out using a microorganism culture Brevibacterium sp.22L in a 100 m fermenter. The growth of the microorganism is carried out in 50 m of a sterile gestational medium containing 10 tons (20% by volume) of sugar beet molasses; 1 m (2%) of corn extract; 5.3 m (10.6%) of BBKj fermentalizate 0.9 t (1.8%) of ammonium chloride 55 kg (0.11%) of disubstituted ammonium phosphate and 30 kg (0.015% of propanol B-400 to the volume of medium ) A 25% emulsion of propinol B-400 stabilized by saponified fish oil in a co-nitrate of 0.5 wt.%.

Эмульсию готов т следующим обра- зом.The emulsion is prepared as follows.

В реактор с мешалкой загружают 3 т воды и 20 кг омыленного рыбьего  ира. После полного растворени  ста- Силз1затора в реактор добавл ют 1т полипропиленгликолевого эфира-пропилена , смесь перемешивают и про пускают через диспергирующее устрой- стпо. Получают 4020 кг 25%-ной эмульсии пен И  гител , ст биличиропамной 0,5 м;и: , % , nMiri.iiRMHOfo рыбьрг о жнра. Определ ют устойчивость пмульсии к коп.лг.спенции путем иеитрифу1 И зоп - ни  ее п церп рифуге при 000 об./мин в течение 15 мни. Вег1 1чину устойчивости в npoiieHTax р ссчитывпют по формуле3 tons of water and 20 kg of saponified fish ira are loaded into a stirred reactor. After complete dissolution of the stabilizer, 1 ton of polypropylene glycol propylene ether is added to the reactor, the mixture is stirred and passed through a dispersing device. 4020 kg of a 25% emulsion of foams and gels are obtained, which is 0.5 m; and:,%, nMiri.iiRMHOfo fish. The resistance of the emulsion to cop. Lg of spensia is determined by means of iitrifu1 and zop - nor its function in the rifuge at 000 rpm for 15 min. Veg1 1 the cause of stability in npoiieHTax p is calculated using the formula

V . V.

. 100%,. 100%,

где V - объем полипропиленгликолевого эфира в эмульсии, У - объем выделившейс  фазы,where V is the volume of polypropylene glycol ether in the emulsion, Y is the volume of the precipitated phase,

смcm

Дл  данной эмульсии X 99%. После стерш изации паром при в течение 2 ч эмульсию используют дл  добавлени  в ферментер. Величина устойчивости эмульсии после стерилизации X 95%.For this emulsion, X 99%. After steaming by steam for 2 hours, the emulsion is used to add to the fermenter. The stability of the emulsion after sterilization X 95%.

Омыление рыбьего жира провод т следующим образом.Saponification of fish oil is carried out as follows.

В реактор, снабженный тихоходной мешалкой и греющей рубашкой, загружают рыбий жир с числом омытени  178,2 мг КОН/Г в количестве 25 л и добавл ют рассчитанные по числу омылени  5,1 л 40%-ного водного раствора едкого натра. Щелочной гидролиз ведут при 80-85 С в течение 1,5 ч при периодическом перемешивании. Процесс прекращают при достижении реакционной массой рН 8.A fish oil with a sludge number of 178.2 mg KOH / G in an amount of 25 L is loaded into a reactor equipped with a low-speed stirrer and a heating jacket, and 5.1 l saponified with a saponification number of 5.1 L of a 40% aqueous solution of sodium hydroxide are added. Alkaline hydrolysis is carried out at 80-85 C for 1.5 hours with periodic stirring. The process is stopped when the reaction mass reaches pH 8.

В качестве посевного материала используют 24-часовую культуру продуцента в количестве 5 м , выращенную на питательной среде с 4% мелассы, 7% кукурузного экстракта, 1% хлористого аммони .A 5-m producer 24-hour culture grown on culture medium with 4% molasses, 7% corn extract, 1% ammonium chloride was used as seed.

Ферментацию провод т в айептичес- ких услови х при 30-32 с, непрерывной азрации и перемешивании сжатым воздухом в количестве 1 м /мин на 1 м культуральной жидкости, при рН среды в пределах 7,3-7,5; давлен1-ш в аппарате 0,2-0,3 ати. Регулирование пе- нообразовани  осуществл ют путем добавлени  в ферментер из колб стерильной эмульсии пеногасител  порци ми по 0,4 л (0,0002% пропинола Б-400 от объема среды) в периоды резкого усилени  вспенивани . Процесс биосинтеза ведут 59 ч. Получают 50 м культуральной жидкости с содержанием лизина 32,5 г/л. Выход биомассы 36 г/л.Fermentation is carried out under ayeptic conditions at 30-32 s, continuous azration and stirring with compressed air in an amount of 1 m / min per 1 m of culture liquid, at a pH of between 7.3-7.5; pressure 1-h in the apparatus 0.2-0.3 ati. Foam control is carried out by adding defoamers in 0.4 L portions (0.0002% of propinol B-400 from the volume of medium) to the fermenter from the flasks of the sterile emulsion during periods of sharp increase in foaming. The biosynthesis process is carried out for 59 hours. 50 m of culture fluid is obtained with a lysine content of 32.5 g / l. Biomass yield 36 g / l.

Суммарный расход стабштизированной эмульсии пропипола Б-400 пл операциюThe total consumption of stabilized emulsion propipol B-400 pl operation

гост;шил 298 л, что в пересчете мл собстпемно пропипол Б- 400 составл ет Ik, кг.gost; sewed 298 l, which in terms of ml, the propypol B-400 is Ik, kg.

П р и м е р 2, Осугаествл ют биосинтез лизина с помощью культуры микроорганизма Micrococcns glutamicuin fr 95 D ферментере емкостью. 100 усло и х, аналогичных описанным в примере 1.EXAMPLE 2 Lysine biosynthesis is carried out using a microorganism culture Micrococcns glutamicuin fr 95 D with a fermenter with a capacity. 100 conditions and x, similar to those described in example 1.

В питательную среду до стерилизации ввод т 300 кг (0,15% пропинола Б-400 от объема среды) 25%-ной эмульсии пропинола Б-400, приготовленной следующим образом.Before sterilization, 300 kg (0.15% propinol B-400 of the volume of medium) of a 25% propinol B-400 emulsion prepared as follows are introduced into the growth medium.

В реактор с мешалкой загр тгают 3 т воды и 40 кг омыленного микробного жира. После полного растворени  стабилизатора в реактор добавл ют 1 т пропинола , смесь перемешивают и пропускают через диспергатор. Получают 4040 кг 25%-ной эмульсии пропинола Б-400, стабилизированной 1 мас.% омыленного микробного жира. Устойчивость данной эмульсии составл ет , После стерилизации паром, как в примере 1, устойчивость эмульсии равна и ее используют дл  добавлени  в ферментер и внесени  в питательную среду,3 tons of water and 40 kg of saponified microbial fat are loaded into a stirred reactor. After the stabilizer is completely dissolved, 1 ton of propinol is added to the reactor, the mixture is stirred and passed through a dispersant. Get 4040 kg of a 25% emulsion of propinol B-400, stabilized with 1 wt.% Saponified microbial fat. The stability of this emulsion is, After steam sterilization, as in example 1, the stability of the emulsion is equal and it is used to add to the fermenter and introduce into the nutrient medium,

Омыление микробного жира провод т следующим образом.Saponification of microbial fat is carried out as follows.

В реактор, снабженный .тихоходной мешалкой и греющей рубашкой, загру- жают микробный жир с числом омылени  179,2 кг КОН/Г в количестве 20 л и добавл ют рассчитанные по числу омылени  4,5 л 40%-ного водного раствора едкого кали. Щелочной гидро- ЛИЗ ведут при 80-85°С в течение 1,5 ч при периодическом перемешивании. Процесс прекращают при достижении реакционной массой рН В,Microbial fat with a saponification number of 179.2 kg KOH / G in an amount of 20 L is loaded into a reactor equipped with a silent mixer and a heating jacket and 4.5 l of a 40% aqueous solution of potassium hydroxide calculated from the saponification number are added. Alkaline hydrolysis is carried out at 80-85 ° C for 1.5 hours with periodic stirring. The process is stopped when the reaction mass reaches pH B,

Ферментацию ведут как указано вFermentation is carried out as indicated in

примере 1, регулиру  пенообразование добавлением в ферментер по трубопроводу стерильной эмульсии пропинола Б-400, стабилизированной омыленным микробным жиром, порци ми, содержащи 0,02% полипропиленгликолевого эфира от объема среды. Продолжительность ферментации 64 ч. Получают 49 м куль туральной жидкости с содержанием лизи на 34,2 г/л. Выход биомассы 40 г/л. Суммарный расход стабилизированной эмульсии пропилена Б-400 на. операцию составил 250 л, что в пересчете на Example 1, I regulate foaming by adding a sterile emulsion of propinol B-400 stabilized with saponified microbial fat to the fermenter via pipelines containing 0.02% polypropylene glycol ether based on the volume of the medium. The duration of the fermentation is 64 hours. 49 m of culture fluid is obtained with a lys content of 34.2 g / l. The biomass yield of 40 g / l. The total consumption of stabilized emulsion of propylene B-400 on. the operation was 250 liters, which is calculated on

,  ,

СОбсУГГ Пр.ЧП Чп;; - lOl.) (.-ОГТ;Ч Ч |(--;62 ,. -j Ki-;SOBsUGG Ave. - lOl.) (.-ОГТ; Ч Ч | (-; 62,. -j Ki-;

Fl р и м е р, Ч. Ocyiuec ri j;4 ; f Ппо- г.нпте  липинп с тюмощьрт ку. микрос1П а11пзмп lU twibncLefi iini  р. E-53I р ферментере с;мкост.ч1 100 м м теченг е 72 ч, как опистмо и примрро 1. В питательную среду до стсрилпзп 1И ввод т 100 л (0,08% пропчнола (-. от объема среды) 40%-пой змулт сии пропинола Б-400, стаСшлизирочлмнон омыпе шым рыбьим жиром в количестве 1 мас.%. Омьше(ие рыбьего жира .и при- готопление эмульсии гтроводпт по примеру 1. Устойчивость исходной эмуль- суш , после стерилизации устойчивость эмульсии .Fl rimer, C. Ocyiuec ri j; 4; f Ppo-gnte lipinp with tymoshchirt ku. microsip 1P a11ppm lU twibncLefi iini p. E-53I r fermenter with; mkost.ch1 100 m m for 72 h, both opistmo and primro 1. Into the nutrient medium before stsrilpz 1I injected 100 l (0.08% propcnol (- from the volume of medium) 40% - Sing out the propylol B-400 propylol, staschlizirochlmnon with mild fish oil in the amount of 1 wt.%. Less than (fish oil. And emulsion attenuation gtrovodpt according to example 1. Stability of the original emulsifier, after sterilization emulsion stability.

Пеногатение на режиме осуществл ют путем подачи в ферментер данной стерильной эмульсии порци ми, содержащими 0,008% пропинола от среды, .Получают 52 м культуральной жидкости с содержанием лизина 35,4 г/л. Выход биомассы 36 г/л. Суммарный расход стабилизированной эмульсии на операцию составил 166 л, что п пересчете на пропинол Б-400 составило 70,5 кг,The mode of foaming is carried out by feeding this sterile emulsion into portions of the fermenter in portions containing 0.008% propinol from the medium. 52 m of culture liquid with a lysine content of 35.4 g / l is obtained. Biomass yield 36 g / l. The total consumption of stabilized emulsion for the operation was 166 l, which, in terms of B-400 propinol, was 70.5 kg,

П р и н е р 4, Осуществл ют биосинтез с помощью культуры микроорганизма Brevibacterium sp. Е-531 в ферментере емкостью 100 м в течение 69 ч, как описано в примере 1. В питательную среду звод т 300 кг (0,15% пропинола Б-400 от. объема среды) 25%-ной эмульсии пропинола Б-400, приготовленной следующим образом. .PRI me R 4, Biosynthesis was carried out using a culture of the microorganism Brevibacterium sp. E-531 in a fermenter with a capacity of 100 m for 69 hours, as described in example 1. 300 kg (0.15% of propinol B-400 from the volume of medium) of 25% propinol B-400 emulsion are fed into the nutrient medium cooked as follows. .

В реактор, снабженный мешалкой, загружают 3 т воды и 10 кг сорбита- л  С-20 и перемешивают систему до полного растворени  стабилизатора, В другой ,реактор, снабженньв мешалкой и греющей рубашкой, загружают 1 т про- пипола Б-400. и 10 т сорбитана С, представл ющего твердое вещество. После нагревани  и перемешивани  до полного растворени  сорбитана С про- пинол Б-400 передавливаетс  в первый реактор, смесь перемешиваетс  и пропускаетс  через диспергатор. Получают 4020 кг 25%-ной эмульсии пропинола Б-400, стабилизированной 0,5 мас.Х смеси сорбитана С-20/сорбитана С.Устойчивость эмульсий , после стерилизации ,3 tons of water and 10 kg of C-20 sorbitol are loaded into a reactor equipped with a stirrer and the system is stirred until the stabilizer is completely dissolved. In another, equipped with a stirrer and a heating jacket, 1 ton of B-400 propipol is loaded. and 10 tons of sorbitan C, which is a solid. After heating and stirring until sorbitan C is completely dissolved, the pinol B-400 is transferred to the first reactor, the mixture is mixed and passed through a dispersant. Get 4020 kg of a 25% emulsion of propinol B-400, stabilized with 0.5 wt.X mixture of sorbitan C-20 / sorbitan C. The stability of the emulsions, after sterilization,

Пеногашение на режиме осуществл етс  путем подачи данной стерильной эмульсии в ферментер порци ми,со5i .i lH.DSThe mode of foaming is carried out by feeding this sterile emulsion into the fermenter in portions, co5i .i lH.DS

С1,П, л. 1Г1к) J-j- iOO отмере 2 пут м д(15лп;им)и  F3 рсрме тер C1, P, l. 1Г1к) J-j- iOO from 2 put m d (15lp; im) and F3

мГп.емл г,1)глм. Tln.iiy tnKvi S6 м кулг-ту-цп трубопроводу стерильной эмульсииm.p.ml g, 1) glm. Tln.iiy tnKvi S6 m kulg-tu-cp pipeline sterile emulsion

рлпъиои жнл.к()сти с сл. дертчлнием лизи-пеиогасител . По окончании фермептана U , 5 г/л. Выход Гп омассы 38 г/л.цни ппрел,елпют содержпние лизина иrlpioio zhnl.k () sti with a lysi-peo-extinguisher. At the end of the fermeptan U, 5 g / l. The yield of GP omassa is 38 g / l.

Суммприк-й рпстсод пмульсии H;I опера-кулг.-туральной жидкости и выход биоп .ию составл ет З (0 л, что в пересче- .массы, а также расход пеиогасител  наThe total sum of the pulsation of the pulsation H; I of the opera-pulp-fluid and the biopsy yield is 3 (0 l, which is in terms of mass, as well as the flow rate of the desiccant on

те на пропннол состэ.о. 85кг.пеногашение. Данные по культивироваПолучркные результаты приведены вsij-no продуцентов лизина с использоватабл ,1.10кипм эмульсии по табл.2 приведены вthose on propnnol sost.o. 85kg defoaming. Cultivation data Semi-aromatic results are given in sij-no producers of lysine using a table of contents, 1.10 km of emulsion according to Table 2 are given in

Как видно из-таб тицы, при ис.поль-табл.3. . зевании в качестве стабилизатораAs can be seen from the table, when using the floor table 3. . yawning as a stabilizer

эмульсии полипрогпшент ликолевого эфи- Анализ табл.2 и 3 показывает суг ipa, например пропинола Б-АОО, омьшен-ществекное преимущество омыленных жи- IHbtx ж роп, имеет место повышение по 15ров по сравнению с мылом как стабили- сравнению с: иэвестньм способом устой-заторов эмульсий полипропиленгликоле- чивости гзмульсин при одинаковой кон-вых зфиров. При использовании омылен- цр.нтрации стабилизатора.ных жиров сокращаетс  врем  приготовПример ы 5-10. Осуществл ютлени  эмульсин, получаютс  эмульсин Гп осинтез лизина с помощью культуры 20с меньшим, чем в случае с хоз йствен- микроорганизма Brevibacterium sp.ным мьшом, размером капель, а следова- , либо другой культуры в фермен-тельно и с большей их численной кон- тере на питательной среде, как описа-центрацией. Это приводит к возраста- no п примере 1. В качестве пеногасите-нню пеногас щей эффективности и, как л  используют 25%-ные эмульсии пропи- 25следствие, к снижению расхода пенога- нола В-400 или полипропиленгликолево-сител . Последнее, как видно из дан- го эфира спиртов фракции С-р-С,со,ных табл.3, благопри тно вли ет на средней мол. м. 1000, стабилизирован-рост культуры и биосинтез лизина. Кро- ные омыленным рыбьим или микробнымме того, в О1 1ыленных жирах имеет мес- лсирон и дл  сравнени  мьшом хоз йст-- 30то сочетание свойств компонентов, по- венным.звол ющее получить устойчивые, эмуль- Эмульсию готов т следующим образом.сии полипропиленгликолевых эфиров. В реактор с мешалкой загру т;ают 3тemulsions polypropylene of glycolic ether. The analysis of Tables 2 and 3 shows ipa, for example, propinol B-AOO, the immense advantage of saponified veins of IHbtx lipoproteins, there is an increase of 15 rubles compared to soap as a stabilization compared to -zator emulsions of polypropylene glycol gzmulsin with the same con-zfirs. Using stabilizer saponified fats reduces cooking time. Examples 5-10. The emulsin is carried out, the emulsin is obtained. GP synthesis of lysine using a culture 20 with a smaller droplet size than in the case of the host microorganism Brevibacterium sp., And the next or other culture in the enzyme and with a larger number of them on a nutrient medium, as described by centering. This leads to age- example 1. As an anti-foaming agent, it has an anti-foaming efficiency and, as l use 25% propulsion emulsions, to reduce the consumption of foam-alcohol B-400 or polypropylene glycol-sieve. The latter, as can be seen from this ether of the alcohols of the С-р-С fraction, co, table 3, favorably affects the average mol. m. 1000, stabilized-growth culture and lysine biosynthesis. They are mixed with saponified fish or microbial, in O1 saponified fats it has mesiron and, for comparison, it has 30 combination of properties of components, which allows to obtain stable emulsion. The emulsion is prepared as follows. . Loaded into a stirred reactor; 3t

Claims (1)

; воды и 20 кг стабилизатора эмульсииФормулаизобретеии  I и фиксируют врем  его полного раство- 35; water and 20 kg of emulsion stabilizer of the Formula of the invention I and fix the time of its complete dissolution - 35 ; рени . После полного растворени  ста- Способ культивировани  микроорга- билизатора в реактор добавл ют 1 тнизмов - продуцентов L-лизина, пре-. пеногасител , смксь перемешивают и ,дусматривающий приготовле ше питатель- пропускают через диспергирующее уст--ной среды и эмульсии пеногасител  из ройство. После перемешивани  отбирают 40полипропиленгликолевого эфира со ста- пробу эмульсии дл  определени  сред-билизатором, добавление ее в питатель- него диаметра капель, а затем по хо-ную среду, засев и последующее проведу диспергировани  провод т отбордение процесса ферментации с контро- проб дл  дисперсионного анализа.лем уровн  пенообразовани  и дробной ; Reni. After complete dissolution, the method of culturing the microorganizer in the reactor is added 1 tnism - producers of L-lysine, pre-. antifoam, mixed with antifoam, and a pre-absorbing feeder, is passed through a dispersing oral medium and emulsifiers of antifoam from the food. After stirring, 40 polypropylene glycol ether is taken from the emulsion sample to be determined as a medium-diluent, adding it to the droplet feeding diameter, and then, using a good medium, inoculation and subsequent dispersion, the fermentation process is selected from control samples for analysis of variance .leam of the level of foaming and fractional Устойчипость эмульсии до и после -45подачей эмульсии пеногаснтел , о тстерилизации определ ют, как в приме-л и ч а ю щ и и с   тем, что, сThe stability of the emulsion before and after -45 filing of the emulsion defoamer, about sterilization is determined, as in the example and with the fact that, with ре 1.,целью удешевлени  процесса, в качестРезультаты определени  параметровве стабилизатор а используют животныеRe 1., in order to reduce the cost of the process, as the results of determining the parameters of the stabilizer, animals use эмульсий с различными стабилизаторамиили микробные жилы, которые предвари (содержание пеногасител  в эмульсии 50 тельно омыл ют при 80...85 с в тече25 об.%) приведены в табл;.2. ние 60...90 мин до установлени emulsions with various stabilizers or microbial veins, which are preliminary (the content of antifoam in the emulsion is 50 saponified at 80 ... 85 s for 25 vol.%) are given in Table 2. 60 ... 90 min before setting Ферментацию провод т в асептичес--рН 8, при этом эмульсию готов т изFermentation is carried out in aseptic pH 8, while the emulsion is prepared from Kifx услови х при 20-32°С, непрерывнойрасчета содержани  в ней омьшенныхKifx conditions at 20-32 ° С, continuous calculation of content in it аэрации и перемешивании сжатым воз-жиров 0,2...1 мас.% и в питательнуюaeration and mixing with compressed air 0.2 ... 1 wt.% and in nutrient духом в колич( 1 м /мин на 1м 55QP AV ввод т из расчета 0,015культуральной жвдкости, при рН среды0,15 мас.% полипропиленгликолевогоin quantity (1 m / min per 1 m 55QP AV is introduced at the rate of 0.015 cultural fluidity, at a pH of 0.15 wt.% polypropylene glycol а пределах 7,3-7, 5 и.п.авлечии в аппа-эфира от объема среды, а дробную по рате 0,2-0,3 ати. Регулирование пенс-J ;a4y ведут из расчета 0,0002образовзнич осущестйлметсл, как в при-о 02 мас.%.within the range of 7.3–7, 5, and .p.involutions in the appa-ether of the volume of the medium, and a fractional dose of 0.2-0.3 ati. Pension-J; a4y is regulated at the rate of 0.0002 imaging entities, as in pr-02 wt.%. tjtj in даin yes гоgo vDvD 1Г|1G | ff ChCh аand о оoh oh гg 0404 о оoh oh 1L смcm оabout «" о about 00 го00 th со with 1L м ™m ™ пP «л"L соwith г4 4 VOg4 4 VO vv о со ««гabout s .-Si.-Si м mm m сх «оcx "oh и см М гand cm M g фf 4J О ОО4J OO rt ю дэ Пrt yu de p 1-1 Ы1-1 s 5) . м о.5) . m about. PQ ЛPQ L BrevibacteriumBrevibacterium I 38235I 38235 12 Таблица 312 table 3
SU853957517A 1985-09-26 1985-09-26 Method of growing microorganisms for producing l-lysine RU1438235C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853957517A RU1438235C (en) 1985-09-26 1985-09-26 Method of growing microorganisms for producing l-lysine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853957517A RU1438235C (en) 1985-09-26 1985-09-26 Method of growing microorganisms for producing l-lysine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1438235C true RU1438235C (en) 1992-10-15

Family

ID=21198797

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853957517A RU1438235C (en) 1985-09-26 1985-09-26 Method of growing microorganisms for producing l-lysine

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1438235C (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Виестур У.Э. и др. Способы и устройства дл пеногашени в микробиологических процессах. М.: ОНТИТЭИ- микробиопром, 1973. Носова А.В. и др. Исследование стабилизаторов пеногасительных эмульсий . Химико-фармацевтический журнал, 1984, А, с. 474-477. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Goodhue et al. Preparation of L (+) β‐hydroxyisobutyric acid by bacterial oxidation of isobutyric acid
US5426024A (en) Fermentation method and fermentor
US5660977A (en) Fermentation method and fermentor
US5260216A (en) Apparatus for amino acid fermentation
NO156612B (en) Polyether.
CN107557309A (en) The method that microbial fermentation produces single cell protein and Unicell Oils and Fats
CN110964755B (en) Method for treating foam in microbial fermentation process
RU1438235C (en) Method of growing microorganisms for producing l-lysine
US4352882A (en) Production of xanthan gum by emulsion fermentation
WO2003048335A2 (en) A fermentation process for lipstatin and method of extracting lipstatin from a fermentation broth
CN1045312C (en) Antifoaming agent for fermentation, L-amino acid-producing medium and production process of L-amino acids
Yoshida et al. Effect of lipid materials on the production of lipase by Torulopsis ernobii
RU1838417C (en) Method of preparing of polysaccharides of xanthane type
DK171735B1 (en) Use of lime soaps and / or magnesium soaps in biogas production and method of biogas production
Anderson et al. Penicillin production, effect of oil in pilot plant fermentations
RU1061464C (en) Method of cultivating bacterium
EP0095862A1 (en) Fermentation process for production of alpha-isopropylmalic acid
US4851235A (en) Production of fermented whey products containing an emulsifier
DK157891B (en) METHOD FOR PREPARING 11BETA, 21-DIHYDROXY-2'-METHYL-5'-BETAH-1,4-PREGNADIENO (16,17-D) -OXAZOLE-3,20-DION
US6946282B2 (en) Process for decreasing the reducing sugars content of light steepwater
SU611594A3 (en) Method of isolating unicellular microorganisms
SU1157059A1 (en) Method of obtaining l-lysine
JPH0654680A (en) Defoaming agent for fermentation
SU1723114A1 (en) Apparatus for cultivating microorganisms
SU1193169A1 (en) Method of producing l-lysine