RU1347448C - Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation - Google Patents

Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation Download PDF

Info

Publication number
RU1347448C
RU1347448C SU3968854A RU1347448C RU 1347448 C RU1347448 C RU 1347448C SU 3968854 A SU3968854 A SU 3968854A RU 1347448 C RU1347448 C RU 1347448C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
cells
taurus
virus
calf kidney
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Л.Л. Миронова
Н.К. Преображенская
Г.С. Шитикова
В.И. Стобецкий
В.Я. Кармышева
В.Д. Попова
Г.А. Алпатова
Н.П. Пономарева
М.М. Демкина
С.И. Кудинова
И.Г. Малыгина
Original Assignee
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов Российской АМН
Миронова Любовь Леонидовна
Преображенская Нина Константиновна
Шитикова Галина Сергеевна
Стобецкий Валентин Иванович
Кармышева Валентина Яковлевна
Попова Валентина Дмитриевна
Пономарева Наталья Павловна
Демкина Марианна Михайловна
Кудинова Светлана Ивановна
Малыгина Ирина Георгиевна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов Российской АМН, Миронова Любовь Леонидовна, Преображенская Нина Константиновна, Шитикова Галина Сергеевна, Стобецкий Валентин Иванович, Кармышева Валентина Яковлевна, Попова Валентина Дмитриевна, Пономарева Наталья Павловна, Демкина Марианна Михайловна, Кудинова Светлана Ивановна, Малыгина Ирина Георгиевна filed Critical Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов Российской АМН
Priority to SU3968854 priority Critical patent/RU1347448C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1347448C publication Critical patent/RU1347448C/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: virology. SUBSTANCE: strain is prepared from calf kidney cells by trypsin treatment of minced organ pieces and adaptation of prepared cellular suspension for the growth in vitro. Strain is deposited in Collection of cellular cultures VNII-influenza of Russia Ministry Health at number VSKK (DP) 002. EFFECT: preparing of new cellular strain of calf kidney showing sensitivity to the broad virus spectrum.

Description

Изобретение относится к области вирусологии и может быть использовано для получения вируссодержащего материала на клеточных субстратах. The invention relates to the field of virology and can be used to obtain virus-containing material on cellular substrates.

Цель изобретения получение нового клеточного штамма почки теленка, чувствительного к широкому спектру вирусов. The purpose of the invention to obtain a new cell strain of the kidney of a calf sensitive to a wide range of viruses.

Данный штамм получен из клеток почки теленка путем трипсинизации измельченных кусочков органов и адаптации полученной клеточной взвеси к росту in vitro. Он хранится в коллекции клеточных культур ВНИИ гриппа Минздрава СССР под номером ВСКК(ДП) N 002. This strain was obtained from cells of a calf kidney by trypsinization of crushed pieces of organs and adaptation of the resulting cell suspension to in vitro growth. It is stored in the cell culture collection of the All-Russian Research Institute of Influenza of the USSR Ministry of Health under the number VSCK (DP) N 002.

Штамм гетероплоидных клеток почки теленка характеризуется следующими признаками. The strain of heteroploid cells of a calf kidney is characterized by the following features.

Морфологические признаки. Morphological signs.

В первичной культуре и в перевиваемой до 6-7 пассажа отмечается органотипический рост: островки эпителиодных клеток (ЭК) чередуются с тяжами, состоящими из фибробластоподобных клеток (ФК). Оба вида клеток занимают примерно равную площадь. Organotypic growth is noted in the primary culture and in the passage transplanted to 6–7: islands of epithelial cells (EC) alternate with strands consisting of fibroblast-like cells (FC). Both types of cells occupy approximately the same area.

В процессе дальнейших перевивок количество ЭК постепенно увеличивается, а ФК уменьшается. Смешанный клеточный состав в разных культурах сохраняется до 25-27 пассажа. Только после дробной обработки трипсином получается однородная культура ЭК. На фиксированных и окрашенных препаратах культуры 34-99 пассажей установлено, что клеточный пласт на 3-4 день инкубации состоит из тесно прилегающих друг к другу полигональных клеток с четко выраженными границами. In the course of further inoculations, the amount of EC gradually increases, and FC decreases. Mixed cell composition in different cultures lasts up to 25-27 passage. Only after fractional trypsin treatment is a homogeneous EC culture obtained. On fixed and stained culture preparations of 34-99 passages, it was found that the cell layer on the 3-4th day of incubation consists of polygonal cells with closely defined boundaries with clearly defined boundaries.

При электронно-микроскопическом излучении штамма Таурус-1 на уровне 69 пассажа было установлено, что культура представлена клетками эпителиоидного типа, которые имеют овальную или слегка вытянутую форму с крупным центрально расположенным ядром. По периферии ядра четко выражен ободок пристеночно расположенного хроматина. Контуры ядра ровные, но иногда наблюдают инвагинацию ядерной мембраны. В цитоплазме обнаруживают относительно крупные митохондрии со слабоконтрастным матриксом и небольшим количеством крист, расширенные канальцы зернистой эндоплазматической сети и хорошо развитый комплекс Гольджи. When electron microscopic radiation of strain Taurus-1 at passage 69, it was found that the culture is represented by epithelioid cells, which have an oval or slightly elongated shape with a large centrally located nucleus. At the periphery of the nucleus, the rim of a wall-mounted chromatin is clearly pronounced. The contours of the nucleus are even, but sometimes invagination of the nuclear membrane is observed. In the cytoplasm, relatively large mitochondria with a low-contrast matrix and a small number of cristae are found, enlarged tubules of the granular endoplasmic reticulum, and a well-developed Golgi complex.

Кариологические признаки. Karyological signs.

На уровне 65 пассажа установлена гетероплоидность штамма Таурус-1. Модальное число хромосом 57 (74%). Анеуплоидные клетки составили 24% Все 98% клеток содержат от одного до трех двуплечих маркеров; 2% клеток оказались тетраплоидными с четырьмя двуплечими маркерными хромосомами. At passage 65, the heteroploidy of Taurus-1 strain was established. The modal number of chromosomes is 57 (74%). Aneuploid cells accounted for 24%. All 98% of the cells contain one to three two-arm markers; 2% of the cells were tetraploid with four two-arm marker chromosomes.

Культуральные признаки. Cultural signs.

Штамм поддерживается на среде Игла МЕМ с 10% сыворотки крупного рогатого скота. Клетки инкубируют при 37оС, кратность рассева 1:2; 1:3. Характерной особенностью клеток является их способность на уровне 1-40 пассажей сохраняться на стекле в жизнеспособном состоянии до 3 мес. без смены среды, а со сменой среды до 1 года. Количество клеток в монослое 1,5 матраса достигает 80-90 млн.The strain is maintained on the environment of the Needle MEM with 10% serum of cattle. Cells were incubated at 37 ° C, multiplicity sieving 1: 2; 1: 3. A characteristic feature of cells is their ability at the level of 1-40 passages to remain on glass in a viable state for up to 3 months. without changing the environment, but with a change of environment up to 1 year. The number of cells in a monolayer of 1.5 mattresses reaches 80-90 million.

Изоферментная характеристика. Isozyme characteristic.

Клетки штамма обладают глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназной и лактатдегидрогеназной активностью, свойственной клеткам коровы. The cells of the strain possess glucose-6-phosphate-dehydrogenase and lactate dehydrogenase activity, characteristic of cow cells.

При обследовании клеток штамма Таурус-1 на стерильность (наличие грибов, бактерий, микоплазм) получены отрицательные результаты на уровнях 5, 8, 9, 15, 20, 27, 34, 40, 45, 55, 65, 7, 77, 81, 86, 89, 94, 100 пассажей. When examining the cells of the Taurus-1 strain for sterility (the presence of fungi, bacteria, mycoplasmas), negative results were obtained at levels 5, 8, 9, 15, 20, 27, 34, 40, 45, 55, 65, 7, 77, 81, 86, 89, 94, 100 passages.

При исследовании культуральной жидкости и самих клеток на уровнях 8 и 75 пассажей в чувствительных клеточных системах, а также в реакциях гемадесорбции не выявлены вирусы-контаминанты. In the study of the culture fluid and the cells themselves at levels 8 and 75 of the passages in sensitive cell systems, as well as in hemedesorption reactions, no contaminants were detected.

При обследовании клеток штамма Таурус-1 на тех же уровнях пассажей в опытах на взрослых и сосунках белых мышей, кроликах, морских свинках, а также клеток на уровнях 9 и 81 в опытах на куриных эмбрионах и иммунодепрессированных мышах линии СВА посторонних агентов, в том числе и онкогенных, не обнаружено. When examining cells of the Taurus-1 strain at the same levels of passages in experiments on adult and suckers of white mice, rabbits, guinea pigs, as well as cells at levels 9 and 81 in experiments on chicken embryos and immunosuppressed mice of the CBA line of extraneous agents, including and oncogenic, not detected.

Клетки штамма Таурус-1 сохраняют жизнеспособность (не менее 85%) при консервировании в жидком азоте. The cells of the Taurus-1 strain retain viability (at least 85%) when preserved in liquid nitrogen.

Создан банк посевных клеток на уровне 65 пассажа в количестве 340 ампул по 10 млн в каждой. Этот пул клеток отконтролирован на безопасность. A seed bank was created at passage 65 at a rate of 340 ampoules of 10 million each. This pool of cells is monitored for safety.

Штамм клеток почек теленка Таурус-1 чувствителен к заражению вирусами человека и животных. The Taurus-1 calf kidney cell strain is susceptible to infection by human and animal viruses.

П р и м е р 1. Культивирование вируса гриппа А. PRI me R 1. The cultivation of influenza A.

В матрасы объемом 1 л с монослоем клеток штамма Таурус-1 на уровне 90 пассажа вносят смесь растворов 0,25%-ного трипсина и 0,02%-ного версена в количестве 20 мл. Легким покачиванием ополаскивают монослой, и раствор сливают. Через 5-10 мин в матрас вносят 5-10 мл ростовой среды, и клетки тщательно пипетируют. Определяют количество клеток и разводят средой до посевной концентрации: 100 тыс. клеток в 1,0 мл для стационарного культивирования; 150 тыс. клеток в 1 мл при культивировании в пробирках и в роллерных флаконах. В качестве среды роста используют среду Игла с 10% сыворотки телят. Суспензию клеток разливают по пробиркам, матрасам объемом 1 л, роллером объемом 3,0 или 5,0 л и культивируют при 37оС в течение 48-72 ч до образования монослоя. Полученную культуру отмывают раствором Хенкса или фосфатно-солевым буфером (рН 7,2-7,4) от ростовой среды, после чего используют для накопления вируса или титрования его инфекционной активности на пробирках.A mixture of solutions of 0.25% trypsin and 0.02% versene in an amount of 20 ml is introduced into 1-liter mattresses with a monolayer of Taurus-1 strain cells at passage level 90. Rinse the monolayer with gentle swaying and the solution is drained. After 5-10 minutes, 5-10 ml of growth medium is introduced into the mattress, and the cells are thoroughly pipetted. The number of cells is determined and diluted with medium to a seed concentration: 100 thousand cells in 1.0 ml for stationary cultivation; 150 thousand cells in 1 ml when cultured in test tubes and in roller bottles. As a growth medium, Eagle’s medium with 10% calf serum is used. The cell suspension is poured into test tubes, mattresses with a volume of 1 l, a roller of 3.0 or 5.0 l and cultured at 37 about C for 48-72 hours until a monolayer is formed. The resulting culture is washed with a Hanks solution or phosphate-buffered saline (pH 7.2-7.4) from the growth medium, after which it is used to accumulate the virus or titrate its infectious activity in test tubes.

Для накопления вируса гриппа А (Ленинград) 385/80 в монослойную культуру, выращенную на роллерных флаконах объемом 3,0 и 5,0 л вносят 5,0-7,0 мл инфекционного вируса в концентрации 6,0-7,0 lg ТЦД50/мл. Адсорбцию вируса проводят в течение часа, затем вносят поддерживающую среду. Культуры инкубируют при 37оС. Через 5-7 сут после заражения развиваются цитопатические изменения. Уровень накопления вируса определяют по его инфекционному титру и гемагглютинирующей активности. Инфекционный титр определяют путем титрования вируссо- держащей жидкости на 10-11-дневных куриных эмбрионах. Уровень гемагглютинирующей активности вируса определяют в реакции гемагглютинации с 1% -ной взвесью свежеприготовленных куриных эритроцитов и выражают величиной, обратной наибольшему разведению, вызывающему их агглютинацию.For the accumulation of influenza A virus (Leningrad) 385/80, 5.0-7.0 ml of the infectious virus at a concentration of 6.0-7.0 lg TCD is added to a monolayer culture grown on 3.0 and 5.0 l roller bottles 50 / ml. Virus adsorption is carried out for an hour, then a support medium is introduced. The cultures are incubated at 37 ° C. After 5-7 days after infection develop cytopathic changes. The level of virus accumulation is determined by its infectious titer and hemagglutinating activity. An infectious titer is determined by titration of a virus-containing fluid in 10-11 day old chicken embryos. The level of hemagglutinating activity of the virus is determined in the hemagglutination reaction with a 1% suspension of freshly prepared chicken red blood cells and is expressed as the reciprocal of the highest dilution that causes their agglutination.

Инфекционный титр вируса гриппа А, репродуцированного на клетках штамма Таурус-1, равен 8,5 lg ТЦД50/мл, тогда как его гемагглютинирующая активность соответственно составляет 1:64 ед.The infectious titer of influenza A virus reproduced on the cells of Taurus-1 strain is 8.5 lg TCD 50 / ml, while its hemagglutinating activity is 1:64, respectively.

П р и м е р 2. Культивирование аденовируса человека. PRI me R 2. The cultivation of human adenovirus.

Для размножения аденовирусов 1-7 типов в монослойную культуру клеток штамма Таурус-1, выращенную на матрасах или роллерных бутылях, как описано в примере 1, вносят 3,0-5,0 мл инфекционного вируса в концентрации 5,0 lg ТЦД50/мл. Адсорбцию проводят в течение получаса, затем вносят поддерживающую среду (среда Игла без сыворотки). Культуры инкубируют в течение 6-7 дней с ежедневным просмотром под малым увеличением микроскопа. Цитопатический эффект развивается под действием всех типов аденовируса, кроме 5. Уровень вирусной репродукции определяют в параллельном титровании зараженных материалов на пробирочной культуре клеток штамма Таурус-1 и в сравнении с линией Нер-2.To propagate type 1–7 adenoviruses, 3.0–5.0 ml of the infectious virus at a concentration of 5.0 lg TCD 50 / ml . Adsorption is carried out for half an hour, then a support medium is introduced (Eagle’s medium without serum). The cultures are incubated for 6-7 days with daily viewing under a small magnification of the microscope. The cytopathic effect develops under the influence of all types of adenovirus, except 5. The level of viral reproduction is determined in parallel titration of infected materials in a test tube culture of cells of strain Taurus-1 and in comparison with the line of Hep-2.

Учет результатов проводят по цитопатическому эффекту, который наступает на 8-10 день. Analysis is carried out according to the cytopathic effect, which occurs on the 8-10th day.

Инфекционный титр на клетках штамма Таурус-1 аденовирусов 1, 2, 3, 4, 6, 7 типов равен 4,0-6,5 lg ТЦД50/мл, на линии Нер-2 соответственно 5,0-67,0 lg ТЦД50/мл (а по типам следующие: 1 6,5 и 7,0; 2 6,0 и 7,0; 3 5,2 и 5,0; 4 5,0 и 7,0; 6 6,0 и 7,0; 7 4,0 и 7,0).The infectious titer on the cells of the Taurus-1 strain of adenoviruses 1, 2, 3, 4, 6, 7 types is 4.0-6.5 lg TCD 50 / ml, on the Ner-2 line, respectively 5.0-67.0 lg TCD 50 / ml (and the types are as follows: 1 6.5 and 7.0; 2 6.0 and 7.0; 3 5.2 and 5.0; 4 5.0 and 7.0; 6 6.0 and 7.0; 7 4.0 and 7.0).

П р и м е р 3. Способ культивирования вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. PRI me R 3. The method of cultivation of the virus of infectious rhinotracheitis in cattle.

В культуральный сосуд с клетками штамма Таурус-1 на уровне 95 пассажа вводят 0,25%-ный раствор трипсина, подогретого до 37оС. Через 1-1,5 мин раствор удаляют, а сосуд с клетками помещают в термостат при температуре 37оС на 2-3 мин. После этого в него вносят небольшое количество питательной среды и энергичным встряхиванием заканчивают процесс отделения клеток от стекла. Затем готовят клеточную взвесь в среде Игла МЕМ с 10% СКРС и эксплантируют в пробирки по 1 мл, содержащие 200 тыс. клеток. Культуры инкубируют при 37оС в течение 3 сут до момента формирования монослоя.The culture vessel with cells Taurus-1 strain at passage level 95 administered 0.25% strength trypsin solution warmed to 37 C. After about 1-1.5 minutes, the solution was removed, and the vessel containing the cells were placed in a thermostat at a temperature of about 37 C for 2-3 minutes. After that, a small amount of the nutrient medium is introduced into it and the process of separation of cells from the glass is completed with vigorous shaking. Then prepare a cell suspension in the medium Needle MEM with 10% SCRS and explanted in 1 ml tubes containing 200 thousand cells. Cultures were incubated at 37 ° C for 3 days until the formation of a monolayer.

При заражении вирусом (изолят 4016) среду из пробирок удаляют, клетки однократно промывают раствором Хенкса и вводят 0,2 мл вируссодержащей жидкости из расчета 1 ТЦД50/мл на клетку. Адсорбцию вируса проводят в течение 1 ч при 37оС. Затем добавляют 1 мл той же среды без сыворотки. Культуры инкубируют при 37оС. Сбор вируса проводят на 5-6 сут. Титр вируса определяют по развитию цитопатического эффекта. Титр вируса 6,5 lg ТЦД50/мл.If the virus is infected (isolate 4016), the medium is removed from the tubes, the cells are washed once with Hanks solution and 0.2 ml of virus-containing liquid is introduced at the rate of 1 TCD 50 / ml per cell. The adsorption of the virus is carried out for 1 h at 37 about C. Then add 1 ml of the same medium without serum. The cultures are incubated at 37 ° C. Collect the virus is carried out for 5-6 days. The virus titer is determined by the development of a cytopathic effect. The titer of the virus is 6.5 lg TCD 50 / ml.

П р и м е р 4. Способ культивирования аденовируса крупного рогатого скота. PRI me R 4. The method of cultivation of adenovirus cattle.

Клетки штамма Таурус-1 на уровне пассажа готовят к заражению вирусом, по способу, описанному в примере 3. Вводят вирусы (изоляты Русь 18/81 и Москва 3056) из расчета 0,03 ТЦД50/мл на клетку. Сбор вируса проводят через 12 сут.The cells of the Taurus-1 strain at the passage level are prepared for infection with the virus according to the method described in Example 3. Viruses (isolates Rus 18/81 and Moscow 3056) are introduced at the rate of 0.03 TCD 50 / ml per cell. The virus is collected after 12 days.

Титр вируса для обоих изолятов равен 5,5 lg ТЦД50/мл.The virus titer for both isolates is 5.5 lg TCD 50 / ml.

Claims (1)

Штамм гетероплоидных клеток почки теленка Таурус-1 ВСКК(ДП) N 002 (коллекция культур клеток ВНИИ гриппа МЗ СССР), используемый для культивирования вирусов. The strain of heteroploid cells of the kidney of a calf Taurus-1 VSCK (DP) N 002 (collection of cell cultures of the All-Russian Research Institute of Influenza of the USSR Ministry of Health) used for the cultivation of viruses.
SU3968854 1985-09-27 1985-09-27 Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation RU1347448C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU3968854 RU1347448C (en) 1985-09-27 1985-09-27 Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU3968854 RU1347448C (en) 1985-09-27 1985-09-27 Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1347448C true RU1347448C (en) 1995-04-10

Family

ID=30440330

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU3968854 RU1347448C (en) 1985-09-27 1985-09-27 Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1347448C (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999021967A1 (en) * 1997-10-25 1999-05-06 Roche Diagnostics Gmbh Suspension packing cell lines for retrovirus vectors
RU2515915C1 (en) * 2012-10-02 2014-05-20 ГНУ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко Россельхозакадемии Strain of diploid cells of fetal lung of cattle for reproduction of viruses

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Madin S.M., Darfy W.B. Establis hed Kidney cell lines from normal bovine and ovine origin Proc. Soc. Exp. Biol. Med, 1958, 98, 574-576. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999021967A1 (en) * 1997-10-25 1999-05-06 Roche Diagnostics Gmbh Suspension packing cell lines for retrovirus vectors
RU2515915C1 (en) * 2012-10-02 2014-05-20 ГНУ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени Я.Р. Коваленко Россельхозакадемии Strain of diploid cells of fetal lung of cattle for reproduction of viruses

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wong et al. Changing viral susceptibility of a human cell line in continuous cultivation: I. Production of infective virus in a variant of the Chang conjunctival cell following infection with swine or N-WS influenza viruses
Wheelock et al. Enumeration of cell-infecting particles of Newcastle disease virus by the fluorescent antibody technique
KR20070060049A (en) Process for the production of an influenza vaccine
KR20050027164A (en) Multiplication of viruses in a cell culture
Schell et al. Potentiation of oncogenicity of adenovirus type 12 grown in African green monkey kidney cell cultures preinfected with SV40 virus. Persistence of both T antigens in the tumors and evidence for possible hybridization.
Rapp et al. Viruses and mammalian chromosomes IV. Replication of herpes simplex virus in diploid Chinese hamster cells
Black Vector cell monolayers and plant viruses
McClain et al. A comparative study of the growth of vesicular stomatitis virus in five tissue culture systems
Weiss et al. The infected cell count method of titration of feline pneumonitis virus
RU1347448C (en) Strain taurus-1 of heteroploid cells of calf kidney used for virus cultivation
Morann et al. Poliomyelitis Virus in Tissue Culture VI. Use of Kidney Epithelium Grown on Glass.
CN103074300A (en) Co-culture system establishment of mesenchymal stem cells and tumor cells as well as mesenchymal stem cells heredity stability change characteristic in tumor microenvironment
Grimes et al. Application of a microtiter cell-culture method to characterization of avian adenoviruses
CN103146655A (en) Seed selection of high-immunogenicity rabies virus fixed strain and application thereof in vaccine development
WO2004110484A1 (en) Method for producing a live tissue-cultural vaccine against influenza virus
CN103387958B (en) The application of human embryonic lung fibroblast SV-7 in virus culture
Kaplan et al. Demonstration of rabies virus in tissue culture with fluorescent antibody technique
Poste et al. Rescue of simian virus 40 (SV40) from SV40-transformed cells by fusion with anucleate monkey cells and variation in the yield of virus rescued by fusion with replicating or nonreplicating monkey cells
Huang et al. The susceptibility of chick embryo skin organ cultures to influenza virus following excess vitamin A
Omura et al. Leafhopper cell culture for virus research
Brown et al. A non-productive subacute sclerosing panencephalitis (SSPE) virus of human and ferret: an ultrastructural study
SU1317021A1 (en) Manъs embryo skin and muscle diploid cells strain used for cultivating viruses
RU1440029C (en) Strain of human embryo muscle skin cell used for as a test-system for assay of antiviral activity of human interferon activity and virus multiplication
Nester et al. Antheridiogen activity of Anemia mexicana
Weber et al. Light and electron microscopy of virus-associated, intranuclear paracrystals in cultured cells infected with types 2, 4, 6, and 18 human adenoviruses