RU127074U1 - Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину - Google Patents

Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину Download PDF

Info

Publication number
RU127074U1
RU127074U1 RU2012157553/10U RU2012157553U RU127074U1 RU 127074 U1 RU127074 U1 RU 127074U1 RU 2012157553/10 U RU2012157553/10 U RU 2012157553/10U RU 2012157553 U RU2012157553 U RU 2012157553U RU 127074 U1 RU127074 U1 RU 127074U1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
drugs
microtubes
resistance
test system
mbt
Prior art date
Application number
RU2012157553/10U
Other languages
English (en)
Inventor
Яков Игоревич Алексеев
Юлия Сергеевна Аляпкина
Дмитрий Александрович Варламов
Михаил Александрович Владимирский
Любовь Климовна Шипина
Original Assignee
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России) filed Critical Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России)
Priority to RU2012157553/10U priority Critical patent/RU127074U1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU127074U1 publication Critical patent/RU127074U1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Молекулярно-генетическая тест-система на основе технологии ПЦР в реальном времени для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза (МБТ) в клинических образцах к противотуберкулезным препаратам: амикацину, капреомицину и фторхинолонам, представляющая собой совокупность микропробирок с реагентами для амплификации фрагментов ДНК МБТ, кодирующих нуклеотидные последовательности с различными, в том числе мутантными аллелями, отличающаяся тем, что совокупность микропробирок представляет собой последовательную по составу комбинацию функционально и структурно связанных микропробирок, выполненных в виде стрипа, помещаемого в прибор для ПЦР в реальном времени, содержащих реакционные смеси соответствующих специфичных 5'-флуоресцентно-меченных различными флуорофорами аллель-специфичных праймеров для мультиплексной ПЦР-амплификации фрагментов генов rrs и gyr А и gyr В с обнаружением точек мутаций, ответственных за лекарственную устойчивость к соответствующим указанным препаратам.

Description

Полезная модель относится к области медицины, в частности к устройствам для лабораторной диагностики и лечения туберкулеза.
Распространение лекарственно-устойчивых штаммов микобактерий туберкулеза (МБТ) является одной из главных проблем борьбы с туберкулезом во всем мире. Множественная лекарственная устойчивость (МЛУ) МБТ, определяемая как устойчивость к рифампицину и изониазиду, в России постоянно растет, достигая, даже у впервые заболевших пациентов, по данным официальной статистики - 15,5%, а по результатам пилотных исследований - свыше 20% (М.А.Владимирский, Ю.С.Аляпкина, Д.А.Варламов, Я.И.Алексеев и др. Применение метода ПЦР в реальном времени для определения и контроля за распространением лекарственно-устойчивых штаммов микобактерий туберкулеза. Проблемы туберкулеза и болезней легких, 2008, №4 стр.38-44).
В настоящее время возникла угроза распространения крайне устойчивой формы туберкулеза - заболевания с широкой лекарственной устойчивостью (ШЛУ), вызванной МЛУ штаммами, устойчивыми не только к рифампицину и изониазиду, но и к препаратам второго ряда - фторхинолонам и, по крайней мере, к одному инъекционному препарату. Ежегодно в мире регистрируется 30,000 новых ШЛУ случаев. Более того, появились данные о случаях абсолютно устойчивого туберкулеза, т.е. формы, устойчивой ко всем существующим на сегодняшний день противотуберкулезным препаратам (Fattorini L., Migliori G.B., Cassone A. 2007. Extensively drug-resistant (XDR) tuberculosis: an old and new threat. - Ann. Ist. Super. Sanita, 43 (4), p.317-319) (Shelley E. Haydel. 2010. Extensively Drug-Resistant Tuberculosis: A Sign of the Times and an impetus for Antimicrobial Discovery. - NIH Public Access Author Manuscript. Pharmaceuticals (Basel), V.3 (7), p.2268-2290). Лекарственная устойчивость туберкулеза является одной из основных причин низкой эффективности лечения даже впервые заболевших пациентов, которая составляет около 65%, т.е. не излеченные больные становятся хрониками и продолжают заражать здоровых людей. Лечение же ШЛУ туберкулеза крайне трудно и дорого.
Анализ лекарственной устойчивости МБТ при использовании традиционных микробиологических методов очень длителен и занимает от 1 до 3 мес. с начала исследования диагностического материала и лечения больного. При этом анализ устойчивости к препаратам второго ряда возможен только в крайне ограниченном числе лабораторий. Молекулярно-генетические методы анализа и соответствующие тест-системы (наборы реагентов) начали внедряться в лабораторную диагностику туберкулеза, т.к. являются наиболее перспективными методами, альтернативными традиционным микробиологическим, и позволяющими значительно сократить сроки проведения диагностического исследования. Поэтому разработка и внедрение эффективных и быстрых новых методов лабораторной диагностики в практику фтизиатрии является чрезвычайно важной и актуальной.
Известные методы и соответствующие тест-системы (комплекты реагентов), основанные на определении мутаций в генах МБТ, ответственных за устойчивость к конкретным лекарственным препаратам, используют помимо пробирок с реагентами специальные пластинки или мембраны в виде чипа для гибридизации с олигонуклеотидными зондами.
Например, из уровня техники известны два альтернативных метода идентификации резистентных к рифампицину штаммов Mycohacterium tuberculosis на биологических микрочипах. Методы основаны на детекции точечных нуклеотидных мутаций и иных перестроек в регионе гена rpoВ, определяющем устойчивость к рифампицину. Метод гибридизации на ТБ-микрочипе позволяет обнаружить 30 мутантных вариантов ДНК, встречающихся в устойчивых к рифампицину штаммах (около 95% всех резистентных форм). Описанные методы могут быть использованы в клинико-диагностических лабораториях как для определения лекарственной устойчивости/чувствительности возбудителя туберкулеза, так и для контроля эффективности антибактериальной терапии (В.М.Михайлович и др. Использование методов гибридизации и пцр на специализированном Тб-микрочипе для обнаружения рифампицинрезистентных штаммов Mycobacterium tuberculosi, Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 2001, т.131, №1, стр.112-117.
Из RU 2376387 С2, 20.12.2009 или RU 2005140679/13 А, 26.12.2005 известен способ одновременного обнаружения микобактерий туберкулезного комплекса и идентификации мутаций в ДНК микобактерий, приводящих к устойчивости микроорганизмов к рифампицину и изониазиду,. Описанный способ включает обеспечение биочипа для одновременного обнаружения микобактерий туберкулезного комплекса и идентификации мутаций, приводящих к устойчивости к рифампицину и изониазиду и мультиплексную амплификацию фрагментов генов rpoВ, katG, inhA, ahpC, мобильного элемента IS6110 с использованием набора пар специфичных праймеров.
В статьях Innogenetics, Ghent, Belgium; Ando H. et al. - Evaluation of a line probe assay for the rapid detection of gyr A mutations associated with fluoroquinolone resistance in multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis. - J. Med. Microbiol., 2011, 60 (Pt 2), p.184-188 и Genotype MTBDR (Hain Lifescience GmbH, Nehren, Germany; Vo Sy Kiet et al. - Evaluation of the MTBDRRsl Test for Detection of Second-Line-Drug Resistance in Mycobacterium tuberculosis. - J. Clinical Microbiology, 2010, V.48, No.8, p.2934-2939 раскрывается определение лекарственной восприимчивости к препаратам группы фторхинолонов (левофлоксацин (LVFX), спарфлоксацин (SPFX) и ципрофлоксацин - CPFX) с использованием гибридизации ампликонов на полосках (стрипах) с олигонуклеотидными ДНК-зондами, комплементарными известным мутациям - анализы INNO-LiPA.
Китайский патент (CN 101580879 А, 2009-11-18, Drug-resistance gene film chip for detecting Mycobacterium tuberculosis) описывает гибридизационный чип, представляющий собой нейлоновую мембрану, несущую 54 олигонуклеотидных зонда, специфичных для сайтов мутаций лекарственной устойчивости в генах rpoB, katG, embB, inhA, ahpC, gyrA, rrs, rpsL и pncА возбудителя туберкулеза. Набор регентов позволяет выявлять мутации, определяющие устойчивость к изониазиду, рифампицину, стрептомицину, этамбутолу, пиразинамиду, фторхинолонам. Специфические фрагменты ДНК, полученные в результате ПЦР-амплификации с использованием 12 пар биотинилированных праймеров, гибридизуют с мембраной чипа, отмывают и выявляют продукты гибридизации за счет цветовой реакции со стрептавидиновым конъюгатом.
Однако, многие из этих методов, вследствие трудоемкости, сложности, малой технологичности и высокой стоимости не имеют практической реализации в виде коммерческих продуктов. Но даже коммерчески реализованные - биочипы, INNO-LiPA, Genotype MTBDR, GeneXpert MTB/RIF обладают различными недостатками и могут использоваться в практике лишь с ограничениями, в том числе, в частности, важным недостатком наборов на основе биочипов является затруднение интерпретации результатов при анализе клинических образцов, содержащих смесь микобактерий дикого и мутантного штаммов. Недостатками GeneXpert MTB/RIF являются определение лекарственной устойчивости только к одному рифампицину, а также очень высокая стоимость расходных материалов. INNO-LiPA и Genotype MTBDR трудоемки и многостадийны, т.к. включают несколько стадий постамплификационных процедур, что требует использования для предотвращения внутрилабораторной контаминации дополнительных изолированных помещений.
Наиболее близким к заявляемой нами полезной модели для экспресс-определения лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза к первому и второму ряду противотуберкулезных препаратов является полезная модель по корейскому патенту (KR 20050009052 А, 24.01.2005, «Microarray comprising probes for accurately detection of antibiotic-resistance of Mycobacterium tuberculosis at one time). Описанный набор включает набор пробирок с реагентами для ПЦР-амплификации специфических фрагментов с 8 парами биотинилированных праймеров и чип-мембраной, предназначенный для определения ДНК-мутаций в генах rpoB, katG, embB, inhA, ahpC, gyrA, rrs, rpsL и pncA возбудителя туберкулеза, обусловливающих лекарственную устойчивость, в том числе и, в большей степени, в отношении препаратов 2-го ряда: к изониазиду, рифампицину, стрептомицину, этамбутолу, пиразинамиду, фторхинолонам и канамицину/амикацину.
Описанная тест-система (набор микропробирок с реагентами и чип-мембрана) также требует для осуществления задачи быстрого определения лекарственной чувствительности/устойчивости проведения ряда последовательных процедур с возможностью внутрилабораторной контаминации, для предотвращения которой необходимо использовать дополнительные изолированные помещения.
Задачей предлагаемой полезной модели является повышение технологичности процесса определения лекарственной устойчивости к противотуберкулезным препаратам, за счет исключения использования специального чип-детектора, сокращения числа необходимых последовательных процедур при проведении анализа и уменьшения возможностей внутрилабораторной контаминации.
Поставленная задача решается с помощью молекулярно-генетической тест-системы на основе технологии ПЦР в реальном времени для экспресс-определения лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза (МБТ) в клинических образцах к противотуберкулезным препаратам: амикацину, капреомицину и фторхинолонам, представляющей собой стрип микропробирки (см. рис.1) с реагентами для амплификации фрагментов ДНК МБТ, кодирующих нуклеотидные последовательности с различными, в том числе мутантными аллелями, с обнаружением точек мутаций, ответственных за лекарственную устойчивость к соответствующим препаратам.
Представленная тест-система отличается от известной тем, что набор реагентов состоит из стрипа - последовательной комбинации микропробирок (панель), функционально и структурно связанных между собой, каждая из которых имеет определенный состав. Такая панель содержит соответствующие специальные 5'-флуоресцентно-меченные различными флуорофорами аллель-специфичные праймеры, которые при проведении ПЦР в реальном времени, с использованием компьютерной программы, соответствующей расположению реагентов в стрипе, позволяют определить, в результате аллель-специфической амплификации, мутации в генах МБТ rrs 16S РНК, gyr А и gyr В, ответственных за возникновение лекарственной устойчивости к указанным препаратам (рис.1). Для исследования каждого образца, содержащего ДНК микобактерий туберкулеза, с целью определения мутаций, ассоциированных с лекарственной устойчивостью к указанным резервным препаратам, используют отдельный стрип микропробирок с реагентами. Кроме того, тест-система содержит также контрольный стрип с набором фрагментов ДНК, содержащих соответствующие мутации и пробирки с реакционной смесью для предварительной мультиплексной ПЦР-амплификации фрагментов генов rrs, gyr А и gyr В. Обнаружение мутаций обеспечивается использованием стрипа микропробирок, содержащих реакционные смеси, включающих последовательную комбинацию специально сконструированных олигонуклеотидных праймеров, гибридизация которых с точками мутаций специфических фрагментов ДНК приводит к появлению измеряемой флуоресценции при использовании соответствующей компьютерной программы, определяющей результаты исследования.
По результатам культуральных микробиологических исследований были отобраны и изучены с помощью разработанной тест-системы 46 штаммов устойчивых к препаратам фторхинолонового ряда и 68 штаммов, устойчивых к амикацину или капреомицину (табл.1).
Таблица 1
Результаты сравнительного изучения лекарственной устойчивости к противотуберкулезным препаратам резервного ряда (амикацину, капреомицину и фторхинолонам) при использовании молекулярно-генетической тест-системы ПЦР-РВ и традиционных культуральных исследований в клинических образцах мокроты
№ п/п Кол-во МБТ/пр Фторхинолоныы амикацин/капреомицин фторхинолоны Амикацин/капреомицин
Молекулярно-генетическая тест-система Культуральные исследования
1 1,80Е+03 S S R S
2 8,14Е+02 S S S S
3 1,44Е+04 S S S S
4 1,23Е+03 R gyrA 94 Alm1 GAC-AAC (Asp-Asn) R A1401G S R
5 3,49Е+03 S S S S
6 4,34Е+02 R gyrA 94 Alm1 GAC-AAC (Asp-Asn) R A514C R R
R A1401G
7 2,50Е+06 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) R C517T R R
8 4,00Е+01 S S S S
9 2,37Е+04 S S S S
10 8,72Е+02 S R A1401G S R
11 5,20Е+03 S R A1401G R R
12 4,20Е+02 S S S S
13 1,52Е+01 R S R S
14 5,99Е+04 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) S R S
15 8,68Е+00 S S S S
16 1,70E+04 S S S S
17 2,04Е+01 R S R S
18 1,46Е+05 S S S S
19 1,81Е+04 S S S S
20 6,27Е+03 S S S S
21 7,25Е+05 S S S S
22 4,83Е+03 S S S S
23 2,92Е+04 S R A1401G контаминация
24 1,13E+04 R gyrA 94 Alm1 GAC-AAC (Asp-Asn) R R R
25 3,75Е+03 R gyrA 94 Alm1 GAC-AAC (Asp-Asn) S R S
26 2,12Е+04 S S S S
27 3,23Е+03 S S S S
28 8,02Е+02 S R C517T S R
29 2,59Е+03 R gyrA 94 Alm4 GAC-TAC (Asp-Tyr) S R S
30 2,60Е+05 R gyrA 94 Alm2 GAC-GGC (Asp-Gly) S R S
31 1,05Е+04 R gyrA 94 Alm2 GAC-GGC (Asp-Gly) R A1401G R R
32 8,95Е+02 S S S S
33 1,99Е+03 S S S S
34 3,05Е+03 S S S S
35 3,28Е+05 R gyrA 94 Alm3 GAC-GCC (Asp-Ala) S R S
36 4,15Е+03 S S S S
37 1,23Е+04 S S S S
38 3,11Е+05 R gyrA 94 Alm2 GAC-GGC (Asp-Gly) R A1401G R R
39 2,15Е+05 S R A514C S R
R A1401G
40 1,04Е+05 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) R gyrA 94 Alm1 GAC-AAC (Asp-Asn) R A1401G R R
41 4,72Е+05 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) R A1401G R R
42 5,12Е+06 S R A1401G S R
43 1,16Е+05 R gyrA 94 Alm2 GAC-GGC (Asp-Gly) R A1401G R R
44 5,89Е+05 S S S S
45 9,90Е+03 S S S S
46 1,27Е+03 S S S S
47 6,92Е+03 S S S S
48 1,44Е+05 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) R A1401G R R
49 1,09Е+04 S S S R
50 1,21Е+04 S S S S
51 1,53Е+05 S S S S
52 1,37Е+05 R gyrA 90 Alm10 GCG-GTG (Ala-Val) R A1401G R R
53 1,46Е+03 S S S S
Примечания:
S - чувствительные; R - устойчивые
Только в номерах №1, 4, 11 и 49 имеются несовпадения результатов определения лекарственной устойчивости методом ПЦР-РВ и традиционными культуральными методами.
Совпадение результатов по двум видам антибиотиков - 92,5%
Результаты экспресс-анализа исследованных штаммов МБТ показали достаточно высокую чувствительность определения мутаций ДНК, ассоциированных с лекарственной устойчивостью: для фторхинолонов - 100%, для капреомицина - 96,3%, а для амикацина - 86%.
При апробации тест-системы с исследованием непосредственно клинических образцов мокроты 48 пациентов, выделявших МБТ устойчивые к рифампицину и изониазиду, устойчивость к офлоксацину методом ПЦР определена у 20 пациентов (41,7%), а к капреомицину/амикацину у 23 (47,9%). Из 20 больных с устойчивостью к фторхинолонам у 11 отмечена устойчивость и капреомицину/амикацину (55%), из 23 больных с устойчивостью к капреомицину/амикацину устойчивость к фторхинолонам отмечена у 10 пациентов (43,5%).
Уровень совпадений результатов определения лекарственной чувствительности/устойчивости стандартных культуральных исследований и с результатов, полученных с помощью разработанной тест-системы на основе ПЦР в реальном времени составил: по двум типам антибиотиков (фторхинолоны и капреомицин/амикацин) - 92,5%. Чувствительность анализа - по отношению к культуральному методу составила 90% (фторхинолоны - 90%, капреомицин/амикацин - 90%), а специфичность - 98% (фторхинолоны - 96%, капреомицин/амикацин - 100%).
Разработанная нами молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения лекарственной устойчивости возбудителя туберкулеза к противотуберкулезным препаратам: фторхинолонам, амикацину и капреомицину способствует повышению эффективности лечения туберкулеза.
Таким образом, объект разработки обладает новизной и превосходит ближайшие аналоги.
Рисунок 1

Claims (1)

  1. Молекулярно-генетическая тест-система на основе технологии ПЦР в реальном времени для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза (МБТ) в клинических образцах к противотуберкулезным препаратам: амикацину, капреомицину и фторхинолонам, представляющая собой совокупность микропробирок с реагентами для амплификации фрагментов ДНК МБТ, кодирующих нуклеотидные последовательности с различными, в том числе мутантными аллелями, отличающаяся тем, что совокупность микропробирок представляет собой последовательную по составу комбинацию функционально и структурно связанных микропробирок, выполненных в виде стрипа, помещаемого в прибор для ПЦР в реальном времени, содержащих реакционные смеси соответствующих специфичных 5'-флуоресцентно-меченных различными флуорофорами аллель-специфичных праймеров для мультиплексной ПЦР-амплификации фрагментов генов rrs и gyr А и gyr В с обнаружением точек мутаций, ответственных за лекарственную устойчивость к соответствующим указанным препаратам.
    Figure 00000001
RU2012157553/10U 2012-12-27 2012-12-27 Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину RU127074U1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012157553/10U RU127074U1 (ru) 2012-12-27 2012-12-27 Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012157553/10U RU127074U1 (ru) 2012-12-27 2012-12-27 Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU127074U1 true RU127074U1 (ru) 2013-04-20

Family

ID=49153848

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012157553/10U RU127074U1 (ru) 2012-12-27 2012-12-27 Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU127074U1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2562866C1 (ru) * 2014-11-11 2015-09-10 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Способ обнаружения днк возбудителя туберкулеза с одновременным установлением его генотипа и определением генетических детерминант множественной и широкой лекарственной устойчивости, олигонуклеотидный микрочип, набор праймеров и набор олигонуклеотидных зондов, используемые в способе
RU2717655C2 (ru) * 2014-10-10 2020-03-24 Рутгерс, Зе Стейт Юниверсити Оф Нью-Джерси Праймеры и зонды для полимеразной цепной реакции для обнаружения mycobacterium tuberculosis

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2717655C2 (ru) * 2014-10-10 2020-03-24 Рутгерс, Зе Стейт Юниверсити Оф Нью-Джерси Праймеры и зонды для полимеразной цепной реакции для обнаружения mycobacterium tuberculosis
US11180816B2 (en) 2014-10-10 2021-11-23 Rutgers, The State University Of New Jersey Polymerase chain reaction primers and probes for Mycobacterium tuberculosis
RU2562866C1 (ru) * 2014-11-11 2015-09-10 Федеральное Государственное Бюджетное Учреждение Науки Институт Молекулярной Биологии Им. В.А. Энгельгардта Российской Академии Наук (Имб Ран) Способ обнаружения днк возбудителя туберкулеза с одновременным установлением его генотипа и определением генетических детерминант множественной и широкой лекарственной устойчивости, олигонуклеотидный микрочип, набор праймеров и набор олигонуклеотидных зондов, используемые в способе

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Saravanan et al. Review on emergence of drug-resistant tuberculosis (MDR & XDR-TB) and its molecular diagnosis in Ethiopia
Kiet et al. Evaluation of the MTBDRsl test for detection of second-line-drug resistance in Mycobacterium tuberculosis
CN111662958A (zh) 基于纳米孔测序平台的文库的构建方法、鉴定微生物的方法及应用
CN104212890A (zh) 诊断传染病病原体及其药物敏感性的方法
CN1995380B (zh) 一种检测和鉴定分枝杆菌菌种的方法及其专用试剂盒
Sharma et al. Differential growth of Mycobacterium leprae strains (SNP genotypes) in armadillos
Erster et al. Specific detection of SARS-CoV-2 variants B. 1.1. 7 (Alpha) and B. 1.617. 2 (Delta) using a one-step quantitative PCR assay
Farjo et al. Within-host evolutionary dynamics and tissue compartmentalization during acute SARS-CoV-2 infection
RU127074U1 (ru) Молекулярно-генетическая тест-система для экспресс-определения устойчивости микобактерий туберкулеза к противотуберкулезным препаратам группы фторхинолонов, аминогликозидам (амикацину, канамицину) и капреомицину
US20230183818A1 (en) Antibiotic susceptibility of microorganisms and related markers, compositions, methods and systems
Wawina-Bokalanga et al. Genetic diversity and evolution of SARS-CoV-2 in Belgium during the first wave outbreak
CN109402276A (zh) 一种用于多重耐药鲍曼不动杆菌lamp检测的引物组、试剂盒及应用
JP2014057572A (ja) 結核病快速診断と薬効検知構造
Frickmann et al. Rapid identification of Acinetobacter spp. by fluorescence in situ hybridization (FISH) from colony and blood culture material
Huang et al. MTBDRplus results correlate with treatment outcome in previously treated tuberculosis patients
Nambiar et al. Evaluation of pyrosequencing for extensive drug resistance-defining anti-tuberculosis drugs for use in public healthcare
Nono et al. Prevalence of katG and inhA mutations in genes associated with isoniazid resistance in Mycobacterium tuberculosis clinical isolates in Cameroon
US11453918B2 (en) Method for detecting live Mycobacterium tuberculosis
Lugonzo et al. Epidemiology of multi-drug resistant Tuberculosis in the western region of Kenya
Akram et al. Determination of infectious diseases by polymerase chain reaction.
Andreevskaya et al. Isoniazid-resistant Mycobacterium tuberculosis: prevalence, resistance spectrum and genetic determinants of resistance
Gaber Detection and identification of Mycobacterium species
Chengalroyen et al. The detection of mixed tuberculosis infections using culture filtrate and resuscitation promoting factor deficient filtrate
Palomino et al. Challenges associated with diagnostics, drug resistance, and pathogenesis of Mycobacterium Tuberculosis
WO2023223354A1 (en) Novel mutations for determining drug resistance in tuberculosis treatment and implementations thereof

Legal Events

Date Code Title Description
MM9K Utility model has become invalid (non-payment of fees)

Effective date: 20181228

NF9K Utility model reinstated

Effective date: 20211014