RO126014B1 - Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere - Google Patents

Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere Download PDF

Info

Publication number
RO126014B1
RO126014B1 ROA201000567A RO201000567A RO126014B1 RO 126014 B1 RO126014 B1 RO 126014B1 RO A201000567 A ROA201000567 A RO A201000567A RO 201000567 A RO201000567 A RO 201000567A RO 126014 B1 RO126014 B1 RO 126014B1
Authority
RO
Romania
Prior art keywords
solution
phosphate
magnesium
collagen
composition
Prior art date
Application number
ROA201000567A
Other languages
English (en)
Other versions
RO126014A0 (ro
Inventor
Oana Crăciunescu
Lucia Moldovan
Christu Tardei
Elena Iulia Opriţa
Otilia Zărnescu
Original Assignee
Institutul Naţional De Cercetare-Dezvoltare Pentru Ştiinţe Biologice
Institutul Naţional De Cercetare-Dezvoltare Pentru Inginerie Electrică Icpe-Ca
Universitatea Din Bucureşti
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institutul Naţional De Cercetare-Dezvoltare Pentru Ştiinţe Biologice, Institutul Naţional De Cercetare-Dezvoltare Pentru Inginerie Electrică Icpe-Ca, Universitatea Din Bucureşti filed Critical Institutul Naţional De Cercetare-Dezvoltare Pentru Ştiinţe Biologice
Priority to ROA201000567A priority Critical patent/RO126014B1/ro
Publication of RO126014A0 publication Critical patent/RO126014A0/ro
Publication of RO126014B1 publication Critical patent/RO126014B1/ro

Links

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)

Description

Invenția se referă la un suport compozit, poros, pe bază de fosfați de calciu și magneziu, colagen și condroitin sulfat, destinatterapiei defectelor osoase (nesudări osoase, fracturi, înlocuirea osului vătămat, cancer etc.) și la un procedeu de obținere a acestuia.
Compușii utilizați în compoziția acestui suport compozit, fosfații de calciu și magneziu, colagenul și condroitin sulfatul sunt constituenți naturali, care intră în compoziția osului, proprietate ce face ca acest produs să fie suportul ideal pentru stimularea creșterii și proliferării osteoblastelor, celule implicate în sinteza componentelor matriceale ale noului țesut osos. Osul este un compozit biomineralizat complex, constând în principal dintr-o componentă anorganică (cristale de fosfat de calciu) și apă (70...80%) și o componentă organică formată din colagen tip I, proteoglicani și alte proteine (20...30%). în timpul formării acestui țesut, cristalele de fosfați de calciu se acumulează și se asociază intim la fibrilele componentei organice, astfel că se formează un compozit cu proprietăți mecanice (greutate, rezistență, duritate, elasticitate) și biologice (activități osteoinductive, osteogenice, angiogenice, chemotactice etc.) excelente. Defectul osos și necesitatea reintegrării zonei lipsă sau măririi zonei existente constituie o problemă majoră în domeniul ortopedic, maxilofacial și neurochirurgical.
Principalele componente minerale ale osului sunt calciul și fosforul, care formează săruri complexe ce se depun sub formă de microcristale de hidroxiapatită la nivelul fibrelor de colagen. Alți compuși anorganici din compoziția osului sunt fluoruri, săruri de sodiu, potasiu și magneziu. Hidroxiapatita este fosfatul de calciu cel mai des utilizat în compoziția substituenților de os. Acest material are avantajul că asigură substituenților o rezistență mecanică ridicată, dar, comparativ cu alte materiale ce conțin fosfat de calciu precum fosfatul tricalcic (TCP) sau octocalcic (OCP), prezintă o solubilitate foarte scăzută. în cazul în care se urmărește producerea de biomateriale osoase cu grad de biodegradare ridicat, se preferă utilizarea fosfatului tricalcic în formă alfa-TCP sau beta-TCP.
Colagenul tip I este componenta organică majoră a matricelor extracelulare și se cunoaște că este un substrat optim pentru atașarea și proliferarea a numeroase tipuri celulare, incluzând pe cele responsabile de menținerea și organizarea osului, precum celulele osteoprogenitoare, osteoblastele, osteocitele și osteoclastele (Barrere F., VAN BlitterswijkC. A., DeGroot K., Internat. J. Nanomed.,200Q, 1,317-332). Comparativ cu osul natural, colagenul este un material cu rezistență mecanică mai scăzută, dar proprietățile biologice sunt superioare materialelor ceramice. Este cunoscută utilizarea acestei proteine sub formă de colagen insolubil sau gelatină, mineralizată cu fosfat de calciu, pentru realizarea unor materiale polimerice destinate regenerării osoase (WO 03/071991 A1; WO 2006/031196 A1). De asemenea, se cunoaște utilizarea amestecului de colagen denaturat (gelatina) cu beta-fosfat tricalcic sub formă de particule sferice la realizarea de compozite osoase având o suprafața specifică mare pentru aderarea celulelor (CN 101401967).
Condroitin sulfatul este un glicozaminoglican prezent în matricea extracelulară și pe suprafața celulară a țesuturilor conjunctive animale, printre care și osul. în acest țesut, condroitin sulfatul face parte din structura proteoglicanilor mici, de tipul decorinei și biglicanului, care au rol în reglarea mineralizării cristalelor de fosfat de calciu din compoziția osului (BoskeyA. L., Spevak L., Doty S. B., Rosenberg L., Calcif. Tiss. Int., 1997, 61,298-305).
Diferite biomateriale au fost investigate și propuse ca substituenți osoși, care trebuie să prezinte proprietăți de biocompatibilitate ridicată și caracteristici biomimetice, pentru a activa mecanismele biologice în țesutul osos gazdă și componenta lor celulară să favorizeze procesele de formare și consolidare a osului. Materialele sunt, apoi, complet resorbite, lăsând spațiu pentru osul nou format (WO 2009/004445). Dintre factorii care controlează proprietățile mecanice și biologice ale biomaterialelor, cei mai importanți sunt compoziția chimică și microstructura acestora, iar porozitatea joacă un rol esențial. Prezența porilor este foarte importantă, pentru că permite dezvoltarea noului țesut osos în interiorul lor.
RO 126014 Β1
S-a raportat obținerea unui material pentru înlocuirea osului, conținând hidroxiapatită, 1 colagen și condroitin sulfat, prin amestecarea mecanică a celor 3 componente și reticularea dehidrotermală (EP 0214070 A1). Acest material a prezentat o bună compatibilitate, dar o 3 remodelare limitată a țesutului lezat. Hae-Won Kim et al. descriu un nanocompozit biomimetic obținut prin coprecipitarea hidroxiapatitei cu o soluție de gelatină și liofilizarea 5 ulterioară a amestecului (Kim H.-W., Kim Η.- E., Salih V., Biomaterials, 2005, 26, 52215230). Produsul s-a obținut prin adăugarea de ioni de calciu și fosfat în soluția de gelatină, 7 rezultând un compozit poros, util în regenerarea osului și a cartilajului, datorită unei viteze de resorbție in vivo adecvată, proporțională cu procesele de formare rapidă a noului țesut. 9
Problema tehnică pe care urmărește să o rezolve invenția constă în regenerarea țesutului osos după traumatisme, nesudări osoase, cancere, inflamații etc. 11
Produsul conform invenției reprezintă un suport compozit, poros, cu dimensiunea medie a porilorvariindîntre20și200 pm, biocompatibil și bioresorbabil, și este constituit din: 13
35.. .60% beta-fosfat tricalcic substituit cu 2,5...10 mol% magneziu, cu dimensiunea medie a particulelor cuprinsă între 1 și 5 pm, 25...40% colagen tip I acido-solubil, cu greutatea 15 moleculară medie între 280 și 330 kDa, și conținut în colagen mai mare de 80%, 12...20% condroitin sulfat cu greutatea moleculară medie de 9...30 kDa și conținut în acizi uronici de 17 minimum 25% și 2...4% acid hidroxietil-piperazin-etan-sulfonic, părțile fiind exprimate în greutate. 19
Procedeul de obținere a produsului, conform invenției, constă în aceea că se amestecă prin vortexare puternică, timp de 10...50 min, la temperatura camerei: 9...18 părți 21 compoziție 1, constituită dintr-o soluție de beta-fosfat tricalcic substituit cu 2,5...10 mol % magneziu, de concentrație 4...9%, preparată în tampon fosfat salin 2...4% și pH 7...7,7, cu 23
74.. .85 părți compoziție 2, constituită dintr-o soluție vâscoasă de 4...6% colagen acido- solubil, dializatîn prealabil față de apă distilată și o soluție opalescentă de 2...4% condroitin 25 sulfat și cu 9...10 părți compoziție 3, constituită dintr-o soluție de acid hidroxietil-piperazinetan-sulfonic, de concentrație 0,3...0,5%; amestecul astfel obținut se liofilizează prin înghe- 27 țâre la-30...-40°C și uscare sub vid la+18...+25°C, apoi se introduce într-o soluție de etanol
30.. .50%, timp de 30...60 min, la temperatura camerei, apoi, într-o soluție de etil-dimetil- 29 aminopropil carbodiimidă de concentrație 5...30 mM, preparată, în prealabil, în tampon acid morfolino-etanol-sulfonic ce conține etanol 70%, la pH 5,5...6, timp de 15...24 h, la tempe- 31 ratura camerei, prin agitare continuă.
Beta-fosfatul tricalcic substituit cu magneziu se obține prin amestecarea a 40... 100 g 33 carbonat de calciu cu 30...70 g fosfat acid de amoniu, 1...3 g oxid de magneziu și 0,200...0,500 I etanol, solvent ce se evaporă ulterior prin uscare, urmată de calcinarea 35 amestecului de componente la 900°C și sinterizarea acestuia la 1000...1200°C.
înainte de amestecarea cu compozițiile 2 și 3, compoziția 1 conținând beta-fosfat 37 tricalcic substituit cu magneziu se omogenizează prin vortexare la temperatura camerei.
Suportul compozit, poros, reticulat este supus unor spălări repetate cu o soluție de 39 fosfat disodic 0,1...0,2 M, de 1...2 ori, timp de 1...2 h, apoi cu o soluție de clorură de sodiu 0,5...1 M, de 1...2 ori, timp de 1...2 h, după care se realizează 5...6 spălări cu o soluție de 41 clorură de sodiu 1,5...2 M, timp de 2...4 h și, în final, 5...6 spălări cu apă distilată, timp de
3.. .5 h, fiecare. Condiționarea produsului se realizează prin liofilizare, în condițiile prezentate 43 anterior, după care se ambalează în pungi de polietilenă și se sterilizează prin expunere la radiații gamma, la doze de 15...20 kGy. 45
Prin aplicarea invenției, se obțin următoarele avantaje:
- eficiență mare în tratarea afecțiunilor osoase (nesudări osoase, fracturi, înlocuirea 47 osului vătămat, cancer etc.) conținând, în compoziția sa, biopolimeri care se găsesc, în mod natural, în țesutul osos; 49
RO 126014 Β1
- produsul este implicat în procesul de inițiere a depozitării de țesut osos nou, datorită substanțelor organice și anorganice din compoziția acestuia (efect osteoinductiv). Datorită structurii sale poroase, produsul realizează un contact strâns cu zona lezată, facilitând, astfel, influxul celulelor din țesutul neafectat înconjurător și proliferarea acestora;
- produsul obținut poate servi și ca matrice suport pentru celulele osului (osteoblaste) sau celulele stern mezenchimale, oferind acestora o rețea tridimensională, asemănătoare matricei extracelulare osoase - condiție esențială pentru menținerea fenotipului celular;
- suportul este biocompatibil și biodegradabil în timp, asigurând, astfel, substratul ideal pentru formarea de țesut nou, în timp ce produsul este degradat, condiție esențială în chirurgia osoasă;
- produsul este stabil în timp, nu creează antigenicitate în contact cu organismul;
- procedeul de obținere este relativ simplu și fezabil.
în vederea îmbunătățirii calităților osteoinductive ale beta-fosfatului tricalcic, s-a adăugat, în compoziția acestuia, magneziul, care reduce degradarea fosfatului tricalcic și este implicat în metabolismul mineral și previne osteoporoza. Pentru realizarea prezentei invenții, s-a utilizat, ca sursă anorganică, un beta-fosfat tricalcic substituit cu magneziu în raportul molar (MgxCa3.x):(PO4) de 1,5, în care substituția calciului cu magneziu a fost de maximum 10 mol%. Verificarea purității compușilor ceramici elaborați s-a realizat prin măsurători de difracție de raze X și spectroscopie în infraroșu. Morfologia și dimensiunile granulelor au fost măsurate prin microscopie electronică de baleiaj.
Exemplul 1. într-o moară planetară, prevăzută cu două incinte de măcinare din poliamidă, cu un volum util de minimum 200 ml, se introduc 70 g carbonat de calciu, 50 g fosfat acid de amoniu, 2 g oxid de magneziu și 250 ml etanol și se omogenizează, timp de 6 h, folosind bile de alumină. Suspensia rezultată se usucă într-o etuvă, la o temperatură de 80°C, timp de 8 h și, apoi, se calcinează într-un cuptor, timp de 2 h, la 900°C, temperatură la care are loc formarea compusului fosfat tricalcic. Materialul calcinat este măcinat din nou, în același tip de moară, în raportul materiakbile de măcinare de 1:1,5, după care este sinterizat la temperatura de 1100°C, timp de 2 h, în prezență de aer, când are loc formarea de beta-fosfat tricalcic cu substituție izomorfă de ioni de magneziu -(P-Ca3.x,Mgx(PO4)2), conținând magneziu 5 mol%, cu dimensiunea medie a particulelor de 4 pm.
Se iau 20 g de pulbere de beta-fosfat tricalcic substituit cu magneziu astfel preparată și se introduc într-un vas de sticlă, prevăzut cu agitare. Se adaugă apoi 0,4 I tampon fosfat salin 0,2 M, pH 7,4 și se omogenizează minimum 15 min, la temperatura camerei. în final, se obține o soluție opalescentă în care beta-fosfatul de calciu și magneziu este în suspensie (compoziția 1).
Separat, într-un vas de inox, cu agitare continuă, se introduc 3 I soluție de colagen 0,4% (g/g), cu greutatea moleculară medie 300 kDa, obținută din tendon bovin prin extracție cu pepsina dizolvată, în prealabil, în soluție de acid citric 0,1 M (raportul pepsină:țesut este de 1:10), la 4°C, timp de 24 h și dializă excesivă față de apă distilată. Peste soluția de colagen, se adaugă 0,151 soluție de condroitin sulfat 5%, cu greutatea moleculară medie 10 kDa și conținut în acizi uronici de 27% (compoziția 2).
într-un alt vas prevăzut cu agitare, se introduc 1,5 g HEPES și 400 ml apă distilată și se agită până la dizolvarea completă (compoziția 3).
Compozițiile obținute din amestecul de colagen și condroitin sulfat și cea de HEPES se adaugă peste suspensia de beta-fosfat tricalcic substituit cu magneziu, la temperatura camerei, și se vortexează puternic, timp de 50 min, până la omogenizarea completă. Se obține o soluție vâscoasă, cu aspect de gel, care se toarnă în tăvițe de inox și se liofilizează prin înghețare la temperatura de -40°C și uscare sub vid la +25°C.
RO 126014 Β1 în vederea reticulării, bucăți de suport liofilizat se introduc în etanol 40%, timp de 1 40 min, la temperatura camerei. Apoi, se prepară o soluție de EDC 30 mM în tampon MES dizolvat în etanol 70%, pH 5,5, în care se incubează suporturile compozite, timp de 18 h, la 3 temperatura camerei, prin agitare continuă pe un shaker. în scopul eliminării reziduurilor de reticulant, produsul se spală de două ori cu o soluție de fosfat disodic 0,1 M, timp de 2 h, 5 apoi, de două ori cu o soluție de clorură de sodiu 1 M, timp de 1 h, fiecare, de 6 ori cu o soluție de clorură de sodiu 2 M, timp de 3 h și, în final, se fac 6 spălări cu apă distilată, timp 7 de 4 h, fiecare. Apoi, suporturile reticulate se usucă prin liofilizare în condițiile prezentate anterior. După liofilizare, suportul poros se ambalează etanș în pungi de polietilenă și se 9 sterilizează prin expunere la radiații gamma, la o doză de 15 kGy.
Exemplul 2. Compoziția 1, formată din beta-fosfat tricalcic, substituit cu magneziu, 11 se prepară în aceleași condiții ca în exemplul 1, cu deosebirea că magneziul din compoziție are o concentrație de 10 mol %. 13
Compoziția 2 se prepară prin amestecarea a 2,51 soluție de colagen 0,6%, cu greutatea moleculară de 320 kDa, extrasă din piele bovină cu pepsină în mediu de acid acetic 15 0,5 M, la temperatura camerei, cu o soluție de condroitin sulfat, preparată în prealabil din 8 g de condroitin sulfat cu greutatea moleculară de 12 kDa, dizolvat prin agitare în 0,3 I de apă 17 distilată.
Prepararea soluției de HEPES și amestecarea acesteia cu soluția de beta-fosfat 19 tricalcic substituit cu magneziu și cea de colagen-condroitin sulfat s-a realizat conform exemplului 1. După liofilizarea soluției opalescente obținută, prin înghețare la -35°C și uscare 21 la 20°C, produsul poros obținut se tratează cu o soluție de EDC 20 mM, preparată ca în exemplul 1. Pentru eliminarea reziduurilor de reticulant, produsul se spală, pe rând, cu o 23 soluție de fosfat disodic 0,2 M, o soluție de NaC11 M, o soluție de NaCI 2 M și apă distilată, în condițiile prezentate în exemplul 1. Apoi, suporturile reticulate se usucă prin liofilizare în 25 condițiile prezentate anterior. După liofilizare, suportul poros se ambalează etanș în pungi de polietilenă și se sterilizează prin expunere la radiații gamma, la o doză de 20 kGy. 27 în vederea evaluării gradului de reticulare al materialului compozit obținut, conform exemplelor de mai sus, s-au determinat spectrofotometric grupările amino libere din structura 29 materialului înainte (proba martor) și după reticularea cu EDC, și s-a testat degradarea in vitro a materialului, în prezența colagenazei bacteriene. Gradul de reticulare al compozitului 31 tratat cu EDC a fost de 3 ori mai mare față de proba martor, iar biodegradabilitatea, după 6 h de menținere în prezența colagenazei, a fost de 2 ori mai mică decât martorul. Caracteri- 33 zarea morfologică a suportului compozit prin microscopie electronică de baleiaj a evidențiat structura lui microporoasă, mărimea porilor variind între 20 și 200 pm, și prezența particulelor 35 de beta-fosfat tricalcic substituit cu magneziu, care sunt dispuse neomogen pe suprafața fibrilelor de colagen. 37
Suportul compozit a fost testat din punct de vedere al biocompatibilitatii atât in vitro, cât și in vivo. Testarea in vitro s-a realizat pe un model experimental reprezentat de culturi 39 primare de osteoblaste obținute din oase parietale de la șobolani nou-născuți. Osteoblastele au fost injectate în probele de suport, la o densitate celulară de 1x106 celule/ml și cultivate 41 în mediu de cultură, timp de 21 de zile. S-au investigat viabilitatea și proliferarea celulelor, morfologia acestora și adeziunea lor la suport, comparativ cu doua probe martor: material 43 plastic și un suport care conține COL/beta-fosfat tricalcic fără magneziu. Rezultatele obținute au demonstrat ca produsul realizat favorizează viabilitatea și proliferarea celulară, menține 45 morfologia normală a celulelor, cu nuclee eucromatice având 1-2 nucleoli și o citoplasmă clar delimitată. în cazul osteoblastelor cultivate în proba conținând magneziu, s-a observat o rată 47 mai mare de proliferare a celulelor și o adeziune mai bună a acestora, comparativ cu
RO 126014 Β1 suportul de COL/beta-fosfat tricalcic simplu. Celulele implantate în suportul de COL/betafosfattricalcic substituit cu magneziu au prezentat fenotip osteoblastic, chiar după perioade lungi de cultivare (21 de zile), fiind detectați in vitro markerii specifici osteoblastelor: fosfataza alcalină și osteocalcin.
Efectul in vivo al suportului compozit a fost demonstrat pe animale de laborator (șobolani Wistar) cărora li s-au implantat subcutanat probe din compozitul poros, acestea recoltându-se, apoi, la timpi variind între 2 și 6 săptămâni. Rezultatele testărilor au arătat că, după 6 săptămâni de la implantare, suportul compozit poros a prezentat o activitate osteo9 inductivă, evidențiindu-se, la locul implantării, prezența substanței fundamentale preosoase depuse de osteocite, precum și a substanței osoase mineralizate.

Claims (6)

  1. Revendicări
    1. Suport compozit, poros, pe bază de fosfați de calciu și magneziu, colagen și 3 condroitin sulfat, destinat terapiei defectelor osoase, caracterizat prin aceea că prezintă dimensiunea medie a porilor variind între 20 și 200 um, este biocompatibil și bioresorbabil, 5 și este constituit din: 35...60% beta-fosfat tricalcic substituit cu 2,5...10 mol % magneziu, cu dimensiunea medie a particulelor cuprinsă între 1 și 5 pm, 25 și 40% colagen tip I acido- 7 solubil, cu greutatea moleculară medie între 280 și 330 kDa și conținut în colagen mai mare de 80%, 12...20% condroitin sulfat cu greutatea moleculară medie de 9...30 kDa și conținut 9 în acizi uronici de minimum 25% și 2...4% acid hidroxietil-piperazin-etan-sulfonic, părțile fiind exprimate în greutate. 11
  2. 2. Procedeu de obținere a produsului definit la revendicarea 1, caracterizat prin aceea că se amestecă prin vortexare puternică, timp de 10...50 min, la temperatura camerei: 13
    9.. .18 părți compoziție 1, constituită dintr-o soluție de beta-fosfat tricalcic substituit cu
    2.5.. .10 mol% magneziu, de concentrație 4...9%, preparată în tampon fosfat salin 2...4% și 15 pH 7...7,7, cu 74...85 părți compoziție 2, constituită dintr-o soluție vâscoasă de 4...6% colagen acido-solubil, dializat în prealabil față de apă distilată, și o soluție opalescentă de 17
    2.. .4% condroitin sulfat și cu 9...10 părți compoziție 3, constituită dintr-o soluție de acid hidroxietil-piperazin-etan-sulfonic, cu o concentrație 0,3...0,5%; amestecul astfel obținut se 19 liofilizează prin înghețare la -3O...-4O°C și uscare sub vid la +18...+25°C, apoi se introduce într-o soluție de etanol 30...50%, timp de 30...60 min, la temperatura camerei, apoi, într-o 21 soluție de etil-dimetil-aminopropil carbodiimidă cu o concentrație 5...30 mM, preparată, în prealabil, în tampon acid morfolino-etanol-sulfonicce conține etanol 70%, la pH 5,5...6, timp 23 de 15...24 h, la temperatura camerei, prin agitare continuă.
  3. 3. Procedeu conform revendicării 2, caracterizat prin aceea că beta-fosfatul tricalcic 25 substituit cu magneziu se obține prin amestecarea a 40... 100 g carbonat de calciu cu 30...70 g fosfat acid de amoniu, 1...3 g oxid de magneziu și 0,200...0,500 I etanol, solvent ce se 27 evaporă ulterior prin uscare, urmată de calcinarea amestecului de componente la 900°C și sinterizarea acestuia la 1000...1200°C. 29
  4. 4. Procedeu conform revendicării 2, caracterizat prin aceea că, înainte de amestecarea cu compozițiile 2 și 3, compoziția 1, conținând beta-fosfat tricalcic substituit cu mag- 31 neziu, se omogenizează prin vortexare la temperatura camerei.
  5. 5. Procedeu conform revendicării 2, caracterizat prin aceea că suportul poros 33 reticulat este supus unor spălări repetate cu o soluție de fosfat disodic 0,1...0,2 M, de
    1.. .2 ori, timp de 1...2 h, apoi cu o soluție de clorură de sodiu 0,5...1 M, de 1...2 ori, timp de35
    1...2 h, după care se realizează 5...6 spălări cu o soluție de clorură de sodiu 1,5...2 M, timp de 2...4 h și, în final, 5...6 spălări cu apă distilată, timp de 3...5 h, fiecare.37
  6. 6. Procedeu conform revendicării 2, caracterizat prin aceea că, respectiv, condiționarea produsului se realizează prin liofilizare, în condițiile prezentate anterior, după 39 care se ambalează în pungi de polietilenă și se sterilizează prin expunere la radiații gamma, la doze de 15...20 kGy.41
ROA201000567A 2010-06-30 2010-06-30 Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere RO126014B1 (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201000567A RO126014B1 (ro) 2010-06-30 2010-06-30 Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ROA201000567A RO126014B1 (ro) 2010-06-30 2010-06-30 Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RO126014A0 RO126014A0 (ro) 2011-02-28
RO126014B1 true RO126014B1 (ro) 2013-08-30

Family

ID=46581541

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ROA201000567A RO126014B1 (ro) 2010-06-30 2010-06-30 Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere

Country Status (1)

Country Link
RO (1) RO126014B1 (ro)

Also Published As

Publication number Publication date
RO126014A0 (ro) 2011-02-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wu et al. Biomimetic mineralization of novel hydroxyethyl cellulose/soy protein isolate scaffolds promote bone regeneration in vitro and in vivo
Minardi et al. Evaluation of the osteoinductive potential of a bio-inspired scaffold mimicking the osteogenic niche for bone augmentation
Bradt et al. Biomimetic mineralization of collagen by combined fibril assembly and calcium phosphate formation
Miranda et al. Three-dimensional culture of rat BMMSCs in a porous chitosan-gelatin scaffold: A promising association for bone tissue engineering in oral reconstruction
Yazdimamaghani et al. Hybrid macroporous gelatin/bioactive-glass/nanosilver scaffolds with controlled degradation behavior and antimicrobial activity for bone tissue engineering
US8742072B2 (en) Bone growth particles and osteoinductive composition thereof
Arosarena et al. Bone regeneration in the rat mandible with bone morphogenetic protein-2: a comparison of two carriers
Nie et al. Nano-hydroxyapatite mineralized silk fibroin porous scaffold for tooth extraction site preservation
Munhoz et al. Use of collagen/chitosan sponges mineralized with hydroxyapatite for the repair of cranial defects in rats
RU2376019C2 (ru) Пористые композиционные материалы на основе хитозана для заполнения костных дефектов
Ye et al. Rapid biomimetic mineralization of collagen fibrils and combining with human umbilical cord mesenchymal stem cells for bone defects healing
Han et al. In situ silk fibroin-mediated crystal formation of octacalcium phosphate and its application in bone repair
JP7104425B2 (ja) 細胞外マトリックス材料
Ramalingam et al. Biomimetics: Advancing nanobiomaterials and tissue engineering
Gallego et al. Three-dimensional culture of mandibular human osteoblasts on a novel albumin scaffold: growth, proliferation, and differentiation potential in vitro.
CN114867500B (zh) 骨复合材料以及用于制备骨复合材料的组合物
Fassina et al. Electromagnetic stimulation to optimize the bone regeneration capacity of gelatin-based cryogels
Krasnov et al. Changes in rat bone tissue at the site of the defect in vivo under the effect of a cryogenically structured albumin sponge containing a bioregulator
RO126014B1 (ro) Suport compozit poros pentru tratarea defectelor osoase şi procedeu de obţinere
CN110624129B (zh) 一种耐溶蚀的骨诱导性丝素蛋白/羟基磷灰石/氧化镁凝胶海绵及制备方法
Craciunescu et al. Designing bio-inspired composite materials for medical applications
Tan et al. Structure and biocompatibility of an injectable bone regeneration composite
CA3161061C (en) Bone composite and compositions for preparing same
Wu et al. The injectable nano-scaled artificial bone promotes the bone regeneration and angiogenesis of rabbit in vivo
Arshad et al. Succinic Acid functionalized, Silk Fibroin and Hydroxyapatite Based Scaffolds for Craniofacial Deformity Repair