PL71341B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL71341B1
PL71341B1 PL1966114157A PL11415766A PL71341B1 PL 71341 B1 PL71341 B1 PL 71341B1 PL 1966114157 A PL1966114157 A PL 1966114157A PL 11415766 A PL11415766 A PL 11415766A PL 71341 B1 PL71341 B1 PL 71341B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
substance
water
extract
centrifuged
mixture
Prior art date
Application number
PL1966114157A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL71341B1 publication Critical patent/PL71341B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/30Nucleotides
    • C12P19/34Polynucleotides, e.g. nucleic acids, oligoribonucleotides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/74Bacteria
    • A61K35/741Probiotics
    • A61K35/744Lactic acid bacteria, e.g. enterococci, pediococci, lactococci, streptococci or leuconostocs
    • A61K35/747Lactobacilli, e.g. L. acidophilus or L. brevis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/04Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/225Lactobacillus

Description

Sposób wytwarzania nowej aktywnej substancji przeciwrakowej Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarza¬ nia nowej aktywnej substancji przeciwrakowej.Dotyicfnczas jako czynniki przeciwrakowe opisa¬ no Mika substancji syntetycznych, wyciagi po¬ chodzenia zwierzecego i roslinnego oraz substancje uzyskane z bakterii. Te ostatnie otrzymano w spo¬ sób nastepujacy. Mikroorganizmy hodowano na pozyiwice, nastepnie wydzielano z niej substancje aktywna, która poddawano zabiegom oczyszczaja¬ cym.Srodki te jednak nie sa zadowalajace, gdyz dzialaja nie tyllko na rakowate komórki, ale takze uszkaldizaja zdrowa tkanke.Celem wynalazku jest wytworzenie takiej sub¬ stancji przeciwrakowej, która powodowalaby tylko obumieranie (nekroze) komórek rakowaltych, nie uszkadzajac komórek zdrowych.Stwierdzono, ze taka aktywna substancje o selek¬ tywnyim oddzialywaniu, tylko na komórki rakowa¬ te, wytwarza nowy szczep bakterii z gatunku La- ctabaicillus, który zdeponowano w Ministerstwie Higieny i Ubezpieczen Spolecznych, Instytucie Kontroli Leków, Sofiia, Bulgaria pod numerem La- citobacilhis Bulgaricus Tuimoronecroticans LB5J1- Lm/05.Nowa substancja przeciwrakowa wytworzona sposobem wedlug wynalazku jest calkowicie od¬ mienna swoim dzialaniem biologicznym oraz w swej naturze Chemicznej od wszystkich dotychczas znanych substancji przeciwrakowych, przy czym atakuje wylacznie komórki rakowate. 10 15 20 25 2 Nowa substancja przeciwrakowa hamuje rozwój nowotworów oraz wykazuje silne dzialanie nekro¬ tyczne na nowotwory. Zastrzyk dozyilny substancji moze doprowadzic do calkowitego zniszczenia na¬ wet duzych guzów nowotworowych oraz do calko¬ witego wyleczenia prawie polowy sposród leczonych zwierzat, podczas, gdy znane substancje przeciw¬ rakowe tyflko wówczas wplywaja hamujaco na rozwój nowotworu, gdy sa zastosowane bezposred¬ nio po zaszczepieniu nowotworu.Nowa substancja przeciwrakowa dziala pobu¬ dzajaco na zwiekszenie odpornosci organizmu.Zaobserwowano zmiany w rakowatych tkankach juz w 8 godzin po zastnzyknieciu dozylnymi sub¬ stancji przeciwrakowej. Badania mikroskopowe wykazaly, ze substancja dziala wylacznie na rako¬ wate komórki, nie dzialajac przy tym na naczynia krwionosne oraz inne normalne tkanki. Substancja pobudza szpik kostny i czynnosc hemopoezy, pod¬ czas gdy inne preparaty przeciwrakowe czynnosc te hamuja.Powyzsze fakty wykazuja, ze substancja przeciw- rakowa rózni sie znacznie od znanych substancji tego rodzaju i jej struktura chemiczna potwierdza to calkowicie.W tablicy 1 pokazano róznice dzialania substan¬ cji piTzeciwrakowych otrzymanej sposobem wedlug wynalazku oznaczonych literami C, D, E — i dwóch znanych substancji — „Endoksan" i „Mitomycyna C". 7134171 341 Tablica 1 Myisizy: zaszczepienie sarkomy 180 Selekcja sarkomy dolbnze rozwinietej w 8 dni po zaszczepieniu i podzial na jednakowe glmpy eksperymentalne Dawka dozylnie dni podawania 8 ¦ 8 9 10 11 12 13 18 A „Endokteam" (1) 0,5 mg 0,5 mg 0,5 mg 0,5 mg 0,5 mg 0,5 mg 0,5 mg B „Mitomycyna" (1) 0,010 mg 0,010 mg 0,010 mg 0,010 mg 0,010 mg 0,010 mg 0,010 mg C D D Substancja aktywna wedlug wynalazku 20 mg 20 mg 20 mg 20 mg 20 mg 2 mg 2 mg 2 mg 2 mg 2 mg 0,200 mg 0,200 mg 0,200 mg 0,200 mg 0,200 mg Wyniki w 22 dni po zaszczepieniu Wyssdrowialo Nie wyzdrowialo Niezywe Ogólem A Ilosc 1 24 0 25 % 4 96 0 100 B Ilosc 0 21 4 25 % 0 84 16 100 C Ilosc 19 4 2 25 % 76 16 8 100 D Ilosc 16 9 0 25 % 64 36 0 100 E Ilosc 12 13 0 25 % 48 52 0 100 Substancja przeoiwrafeowa nie ma wlasciwosci baktertobójczych i jest calkowicie odmienna od substancji antyibakteryjnych produkowanych przez paleczki z gatunku Lactobacilluls i opisanych przez Bagdanowa (Geuvres scienitifiques de ISUL, Insiti- tut de speciaOliization et perfetiónnement des mede- cins, 2, 1952, str. 131^139), Whenter'a Hirach'a Mattick'a (Nature 1952, 1om 168, str. 659) i James VinJcont Co. (Bacteriology, 1959, str. 477^84). Nie ma ona nic wspólnego z kwasem mlekowym, któ¬ remu V. Canrninati przypisuje dzialanie przeciw- 65 rakowe (Boli. Imst. Sierdterap. Milanese 12, 1933, str. 205—220).Nowy szczep jest utworzony przez paleczki gram dodatnie o wielkosci 5 i 7 mikronów, ulozone w grupach lub lancuchach o róznych dlugosciach w zaleznosci od pozywki. Mozna go wyodrebnic z jogurtu, w srodowisku zawierajacym agar.W kuttuiracih miekkich daje on osad miekki, pod¬ czas gdy w srodowisku zawierajacyim agar tworzy male wlókniste kolonie.Charakterystyki: morfologiczna, biologiczna, fizjo¬ logiczna, przedstawiono w tablicy 2.71341 Tablica 2 1 1 2 3 1 4 5 6 7 8 9 Obserwacje mikroskopowe Pozywka kultury Nr temp. 37T! Zelatyna utrwalona Kultura na mleku Kultura sprzyjajaca wzrostowi Kultura na roztworze glukozy w temp. 37°C Kolonie na glukozieagainze w temp. 37°C Kultura na glukozieagarze w temp. 37°C Kultura na glukozie utrwalonej w temp. 37^C Wlasciwosci fizjologiczne 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 1,1 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 Paleczki Ruchliwosc Enidospory Wytwarzanie zarodników Zabiarwienie gram Zdolnosc rozpuszczania Koagulacja Reakcja mleka na papierek lakmusowy Pozywka kultury Nr Zmetnienie Opadanie Postac opisana w tekscie Wzrost Wzrost Zmniejszenie azotanów Kataflaza Temperatura wizorstu Optymalna tempe¬ ratura wzorsttu Potrzebny tlen 23^-37°C 25—45°C 30—50°C 40^_60°C 25^37°C 30—40°C 32—45°C 35-h50°C Aoserobiosa Skret optyczny kwasu mlekowego Cukry Potnzebmy aminokwas Potrzebna witamina Glukoza Manrooza Sacharoza Laktoza Maltoza Skrobia Insulina Melecytoza L-aspargina L-triptofan Czynnik Bac. Bul- garicus +5-^19u — — — + — + R 11 — + + + + — + + + DC—) -j- + + + + — — — + | + | +71341 8 Jako substancje wyjsciowa stosuje sie komórki bakteryjne pochodzace od mfikatoarganSzniów ma¬ cierzystych, jak równiez komórki bakteryjne liofili¬ zowane, odtluszczone suche komórki bakteryjne, komórki bakteryjne z których uprzednio elimino¬ wano pewne ciala zbedne oraz preparaty substancji przeciwrakowej, uzyskane droga chemicznego ooczyszczania.Substancja pizeciwrafcowa otinzyimaina w sposób opisany powyzej rozpuszczalna jest w wodzie obo¬ jetnej lub alkalicznej, przy czyim straca sie przy wartosci pH nizszej od 4. Substancja ta praktycz¬ nie nie rozpuszcza sie w rozpuszczalnikach orga¬ nicznych takich, jak alkohol, aceton, octan etylowy, eter, benzen, cMoroform, eter naftowy. Nie diali¬ zuje sie w wodzie poprzez menubrane celofanowa.Substancja przeciwrakowa traci dzialanie przeciw¬ rakowe pod wplytwem podgrzewania jej do tem- peraitury 120^C w czasie 10 minut w obojetnym roztworze wodnym. Traci ona swoja aktywnosc w temperaturze otoczenia w roztworze alkalicznym.Najbardziej charakterystyczna wlasciwoscia sub¬ stancji przeciwrakowej jest jej biologiczne dziala¬ nie przeciwrakowe. Gdy zastrzyk dozylny odipo- wdedniej dawki tej substancji daje sie myszom, które maja sarkomy Krocfcera (Sarkoma 160) w pelni rozwoju w skórze lufo tez raki sródskórne ErJMha, wówczas powstaje wyraznie zaznaczona nekroza prawie wszystkich guzów nowotworowych, a w ciagu kilku dni nasitetpnych^ prawie polowa zwierzat calkowicie zostaje wyleczona.Powyzsze wlasciwosci substancji pnzeciwirakowej pozwalaja wnioskowac, ze posiada ona zlozona bu¬ dowe czajsiteczki. Rózni sie ona swymi wlasciwos¬ ciami od wszystkich znanych dotychczas srodków przeciwrakowych.Liczne analizy chemiczne substancji przeciwra- kowej wykazaly, ze ma ona zlozony sklad chemicz¬ ny oraz, ze zawiera takze kwas ryfoonukleinowy, którego wlasciwosci chemiczne i fizyczne moglyby pozwolic na okreslenie charaktteru substancji pffzeciwrakowej.Na przyklad fig. 1 przedstawia widmo ultrafio¬ letowe, a fig. 2 widmo podczerwone substancji przeoiwrakowej. Fig. 3 i 4 przedstawiaja wiidmo ultrafioletowe i podczerwone kwasu rylbonukleiino- wego, który zawiera substancje przeciwirakowa.Mozna zauwazyc, ze na fig. 3 przy stezeniu kwasu rytooniukleinowego 0,00)11% maksimum absorpcji jest przy 258 mikronach i tak samo jest dla sub¬ stancji przeciwrakowej (fig. 1).Kwas rybonukieiniowy, który wchodzi w sklad substancji przeciwa-akowej zawiera jako sól sodu: wegiel wodór azot fosfor — 33,35% — 4,43% — 13,70% — 9,80% Po hydrolizie analiza chromatograficzna weglo¬ wodanów za pomoca metody rozpuszczonego buta¬ nolu : propanofliu : wody w stosunku 1 : ii : 1, wy¬ kazuje plazme 0,35 HF, która odpowiada ryibozie.Sposób wytwarzania nowej aktywnej substancji przeciwirakowej wedlug wynalazku polega na tym, ze mikroorganizm Lactolbacilllus Buligaricus Tuimo- roneeroticans LB51—lni/65 poddaje sie hodowli 5 w warunkach beztlenowych, w temperaturze 28— 509C, w ciagu 18—24 godzin, w srodowisku odzyw¬ czym zawierajacylm przynajmniej jedna z takich substancji jak wyciag z soi, pepton, wyciag z droz¬ dzy, wyciag z kukurydzy, wyciag z miesa, glikoza, 10 maltoza, laktoza, sacharoza, dekstryna i melasa oraz sole nieorganiczne, nastepnie rozbija sie ko¬ mórki bakteryjne, po czym aktywna substancje przeciwrakowa ekstrahuje sie za pomoca wody lub fenolu i wytraca z wyciajgu. 15 Hodowla kultur i otrzymywanie substancji przeciwrakowej wytwarzanej przez bakterie La- otobaoillus Rulgairiiouls Tumoronecroticans LB51— lm/65 uzalezniona jest od rodzaju pozywki. Mozna Stosowac pozywki zawierajace rózne czynniki od- 20 zywcze. Jako zródlo azotu mozna stosowac pepto¬ ny, wyciagi z miesa, kukurydzy, soi, drozdzy itp., a jako zródlo wegla glukoze, maltoze, laktoze, sacharoze, melase itp. Jako zródlo fosforu stosuje sie hydrolizaty drozdzy, fosfaty itp. Jako substancje 25 odzywcze mozna stosowac co najmniej jeden zwia¬ zek z grupy zawierajacej azot i wegiel. Stwierdzo¬ no, ze przez dodanie malych ilosci soli nieorga¬ nicznych, takich jak fosforan sodiu i fosforan potasu, siarczan magnezu i inne, zwieksza sie 30 dzialanie przeciwrakowe.Hodowla kultur moze byc prowadzona w wa¬ runkach beztlenowych, bez doplywu powietrza, w temperaturze w granicach 45—35°C, która oka¬ zala sie najkorzystniejsza wówczas, gdy byla 35 stosowana przez okres 18—24 godzin.W czasie fermentacji wartosc pH kultury bakte¬ ryjnej spada do 3,8. W tym czasie nie jest koniecz¬ ne kontrolowanie pH.W czasie fermentacji substancja przeciwrakowa 40 gromadzi sie zwlaszcza w komórkach bakteryjnych.W przypadku, gdy wytwarza sie autoliza ko¬ mórek bakteryjinyich, dzialanie przeciwrakowe jest równoczesnie stwierdzone w kulturach plynnych.Substancja przeciwrakowa moze byc ekstrahowana 45 woda po zniszczeniu blony komórek bakteryjnych.Z chwila zakonczenia fermentacji substancja przeciwrakowa zawarta w komórkach bakteryjnych moze byc ekstrahowana i oczyszczona róznymi spo¬ sobami. 50 Oczyszczenie obejmuje co najmniej operacje ekstrakcji i operacje stracania, które moga byc stosowane same lub szereg razy w róznych kombi¬ nacjach, jak przedstawiono w nastepujacym sche¬ macie: 55 E — ekstrakcja E^P P — stracanie E — P — E E—P—E—P E —P —E —P —E —P itd. 60 Ekstrakcje substancji rakowej przeprowadza sie za pomoca co najmniej jednego z rozpuszczalników z grupy wody i fenolu. Pierwotna substancje w postaci ciala stalego uzywa sie przy wyciagu wod- 6g nym, podczas gdy dla ekstnakcji za pomoca fenolu9 mozna sie poslugiwac roztworem wodnymi sub¬ stancji pmzeciwrakiowej lub tez tkanki, które ja zawieraja.Jatko ciala stale zawierajace substancje przeciw- rakowe nalezy wymienic komórki bakteryjne w stanie naturalnym, komórM bakteryjne suche od¬ tluszczone, komórki bakteryjne wyekstrahowane uprzednio w celu usuniecia cial zbednych oraz ciala suche otrzymane jako produkty ekstrakcji i stracania, opisane pózniej.Wyciag wodny uzyskuje sie mieszajac wode oraz ciala zawierajace substancje pmzeciwrakowa. Gdy ciala te sa utworzone z komórek bakteryjnych, trzeba je rozczlonkowac za pomoca homogenizato- ra, mlyna koloidalnego, ultradzwieków lub enzy¬ mów, takich jak lizozyim, pepsyna i inne. Miesza¬ nine przefiltrowuje sie luib odwirowuje w celu usuniecia materialów nierozpuszczalnych. Wówczas wieksza czesc wlasciwosci przeciwrakowych prze¬ chodzi do wyciagu wodnego. Ekstrakcja wodna za¬ chodzi w temperaturze od 0°C do 18°C. Korzystnie jest, aby wartosc pH wiody wynosila od 4—9. War¬ tosc pH nizsza wywoluje stracanie, podczas gdy wartosc pH wyzsza czyni substancje przeciwrakowa nieaktywna. Dodanie fosforanu oraz 0,01 mola siarczanu magnezu poprawia wlasciwosci wyciagu wodnego.Proces ekstrahowania fenolem moze byc prowa¬ dzony aiUbo przez ekstrakcje cial stalych 96% fe¬ nolem lub przez dodanie równej ilosci 96% fenolu do roztworów wodnych lub do zawiesin zawieraja¬ cych substancje przeciwrakowa.W obydwu przypadkach, po energicznym wstrza¬ saniu mieszanin, odwirowuje sie je w celu oddzie¬ lenia warstwy fenolu, osadu nierozpuszczaiLnego oraz warstwy wody. Substancja przeciwrakowa przechodzi do fenolu i oddziela sie za pomoca pro¬ cesów opisanych ponizej. Ekstrakcje fenolem pro¬ wadzi sie w temipieratuirze od 4—'70°C.Proces stracania substancji przeciwrakowej pro¬ wadzi sie za pomoca dodania róznych soli, roz¬ puszczalników organicznych rozpuszczalnych w wo¬ dzie i/lub kwasów. Te procesy stracania moga byc prowadzone na wyciagach wodnych oraz na wy¬ ciagach fenolowych.Gdy proces stracania prowadzi sie za pomoca dodania róznych soli, wówczas zaleca sie zwlaszcza siarczan amonowy, chlorek amonowy, siarczan so¬ dowy, chlorek wapnia lub siarczan magnezu. G*dy stosuje sie siarczan amonowy, ilosc zalezna jest od nasycenia, jakie chce sie osiagnac, a które po¬ winno zawierac sie miedzy 0,1 i 0,8. Substancja przeciwrakowa przechodzi do osadu. Reszte soli osadu eliminuje sie za pomoca postepowania takie¬ go jak dializa, przesaczenie za pomoca „sephadeK^" lub rozpuszczenie, a nastepnie powtarza sie proces stracania przy uzyciu kwasu.Gdy stracanie prowadzi sie za pomoca rozpusz¬ czalników organicznych rozpuszczalnych w wodzie, mozna stosowac metanol, etanol, aceton itp. Ko¬ rzystne jest stosowanie od jednej do trzech obje¬ tosci rozpuszczalnika na jedna objetosc roztworu podstawowego. 341 10 W przypadku stracania za pomoca kwasów, ko¬ rzystne jest aby wartosc pH wynosila od 1,5—4.Do tego celu mozna stosowac kwasy nieorganiczne, takie jak kwas chlorowodorowy, kwas siarkowy, 5 kwas fosforowy oraz kwasy organiczne, takie jak kwas octowy, kwas szczawiowy itp.Komórki bakteryjne rozbija sie w homogeniza- torze, mlynie koloidalnym za pomoca uO/tradzwie- ków, bialka jaja, liaozymu lub enzymów proteoM- 10 tycznych takich, jak pepsyna i trypsyna.Do ekstrakcji substancji przediwrakowej mozna uzywac bialko jaja kurzego i enzymy, przy czym enzymy nie wchodza w reakcje chemiczna z sub¬ stancja czynna. Wplywaja one jedynie na usuniecie materialów zbednych i nie maja zadnego zwiazku z dzfralaniem przeciwrakowyim.Enzymy stosuje sie kolejno w róznych komflbd- nacjach w zaleznosci od celu, jaki chce sie osiag- 20 nac, korzytetnie jest stosowac nastepujaca kolejnosc: lizozyim, pepsyna, trypsyna i pepsyna.Przyklad I. LactobacMus bulgaricus var. tu- moronecroticans LB51—lm/65 zaszczepiono na po- 25 zywce w ilosci 200 ml, zawierajacej 3% wyciajgu z soi, 0,5% peptonu, 0,5% wyciagu z miesa, 0,5% wyciajgu z drozdzy, 0,5% sacharozy i 0,1% sftancza- nu magnezu. Hodowle prowadzono w temperaturze 37°C w czasie 24 godzin. Wartosc pH kultury bak- 30 teryjnej doprowadzona zostala do 6,5 nastepnie kulture odwirowano do 5000 g przez okres 30 mi¬ nut.Ciecz powierzchniowa 1 zostala zastrzyknieta do¬ zylnie w ilosci 0y5ma myszom z sarkoma 180 w 35 stadium rozwoju, zaszczepiona podlskórnie. Nie wy¬ stapila jakakolwiek nekroza guza nowotworowego u zadnej z 20 leczonych myszy. Osad 2 komórek bakteryjnych zmielono z piaskiem z kwarcu w mozdzierzu i wyeksitraihowano za pomoca 100 ml 40 wody destylowanej. Mieszanine odwirowano do 5000 g i dawke 0,5 mi cieczy powiercoohniowej 3 zastrzyknieto dozylnie myszom z sarkoma 180. Po 24 godzinach zaobserwowano obumarcie guza no¬ wotworowego u 17 sposród 20 leczonych myszy, 45 a w 10 dni pózniej 8 myszy zostalo calkowicie wyfleczonych.Przyklad II. Lactóbacillus bulgairicus var. tu- moronecroticans LB51—lm/65 zaszczepiono na po- 50 zywce w ilosci 1200 litrów mieszanki skladajajcei sie z 3% wyciagu z soi, 0,5% wyciagu z miesa, 0,5% peptonu, 2% melasy, w przeliczeniu na cu¬ kier, 0,1% siarczanu magnezu i 1200 litrów wody z rurociagu. Kulture hodowano w temperaturze 55 37°C w czasie 24 godzin. pH kultury wynosilo 6,5.Nastepnie kulture odwirowano, osad przemyto 50 objetosciami roztworu fizjologicznego i ponownie odwirowano. Otrzymano 14,200 gramów naturalnych wilgotnych komórek bakteryjnych. 60 5,000 g tych komórek bakteryjnych rozcienczono 15000 mililitrami wody i rozczlonkowano w homo- genezatorze. Itoodutot ^homogenizowany odwirowa¬ no do 5.000 g i ciecz powierzchniowa 1 oddzielono. 10 miliflitrów tej cieczy rozcienczono woda desty- 65 lowana do stezenia wynoszacego 8 mg substancji/ 11 100 mdMitrów cieczy powiea^cliniiowej 1 liofiGizo- rnefto dozylnie myszom z sarkoma Krockera roz¬ winieta. Zaznaczyla sie znaczna nekroza guza u 19 sposród 20 leczonych myszy, z których 12 zostalo w nastepstwie calkowicie wyleczonych. 100 mffiiljrów cdeozy powierzchniowej 1 liofilizo¬ wano. Analiza caheniiczna substancji zliofilizowanej wykazywala sklad nastepujacy. 9,5% kwasu nuklei¬ nowego i 70% proteiny.Przyklad III. Dodano 3000 mililitrów cieczy 1, takiej sarniej jak w przykladzie II do 6000 mili¬ litrów 90% etanolu. Ultazyimano mieszanine przez 2 godziny w temperaturze 4°C, a nastepnie odwiro¬ wano.Ciecz powierzchniowa oddzielono zas osad 3 rozpuszczono w 600 ml wody, nastepnie odwirowa¬ no w celu usuniecia zbednych pozostalosci. Roz¬ twór czysty 4 rozdzielono na trzy czesci równe dla dalszej obróbki. 200 mililiitrów roztworu 4 zakwaszono kwasem cMorowodorowymi do pH=2. Osad 5 oddzielono przez odwirowanie. Ciecz powierzchniowa 6 rów¬ niez oddzielono. Osad przemyto etanolem i aceto¬ nem i nastepnie osuszono. Otrzymano 9,4 g suchej substancji. 30 miligramów tej substancji rozpusz¬ czono w 15 mililitrach wody a nastepnie dawke 0,5 nil zastrzyknieto dozylnie myszom z sarkoma 180.Wystapila nekroza roztworu u 17 sposród '18 leczo¬ nych myszy, z których 10 calkowicie w nastepstwie wyzdrowialo. Wyniki analizy wykazaly obecnosc 13,7% kwasu nukleinowego i 74% proteiny.Przyklad IV. 200 mililiitrów roztworu 4, ta¬ kiego sarniego, jak w przykladzie III zmieszano z siarczaneni amonu do nasycenia 0,4 i umieszczo¬ no w chlodziarce na przeciag 2 godzin w tempe¬ raturze 4°C, nastepnie mieszanine odwirowano.Ciecz powierzchniowa oddzielono i osad rozcien¬ czono w 50 mililiitrach wody do pH=2, a nastepnie ponownie odwirowano. Ciecz powierzchniowa usu¬ nieto i osad rozpuszczono w wodzie, do której doda¬ wano sody, az do osiagniecia pH=7. Roztwór pod¬ dano dializie poprzez „celofan" w wodzie biezacej w czasie 18 godzin. Ciecz zdializowana odwirowa¬ no w ceflu oddzielenia malej ilosci nierozpuszozo- nej (zbednej) pozostalosci, a nastepnie liofilizowano.Otrzymano 7,4 g suchej substancji. Badanie dziala¬ nia przeoiwrakowego, przeprowadzone w ten sam sptosób, jak w przykladzie III, doprowadzilo do nekrozy nowottworu u wszystkich 20 leczonych zwierzat, z których 12 w nastepstwie calkowicie zostalo wyleczonych.Przyklad V. Do 200 mililitrów roztworu 4 takiego samego, jak w przykladzie III, dodano 2 mMilitry 20% roztworu chlorku wapnia. Osad 1 oddzielono przez odwirowanie. Ciecz powierzchnio¬ wa 2 zakwaszono kwasem chlorowodorowym do pH=2. Nowy osad oddzielono przez odwirowanie i (Siecz powierzchniowa 4 usunieto. Osad 3 rozpusz¬ czono w wodzie, do której dodawano sody az do osiagniecia pH=7. Nastepnie osad poddano liofili- zie. Otrzymano 3,2 g suchej substancji. Dawka jed- L341 12 nomiligramowa na kazda mysz doprowadzila do calkowitej nekrozy nowotworu u wszystkich leczo¬ nych myiszy. Wyniki analizy wykazaly obecnosc 14,3% kwasu niukUeinowego i 69% proteiny. 5 Osad 1 rozcienczono 50 mililj.itrami wody i do¬ dano 3 g amberlitu. Mieszanine odwirowano i ciecz powierzchniowa zliofildzowano. Otrzymano 7,4 g suldhejj sulbatanoji. Dawka 1 rniiligramowa na mysz tej substancji, wywolala gleboka nekroze nowo- 10 tworu u wszystkich 20 leczonych zwierzat, z któ¬ rych 11 zostalo calkowicie wyleczonych.Wyniki analizy wykazaly obecnosc 11,9% kwasu nulkUeinowago i 70% proteiny. 15 Przyklad VI. 1000 ml cieczy powierzchniowej 1, takiej samej, jak w przykladzie II zakwaszono kwasem chlorowodorowym do pH=2. Osad oddzie¬ lono przez odwirowanie i rozpuszczono w 100 mi¬ lilitrach wody, do której dodawano sody az do piH=7. Roztwór wmieszano z dwiema objetosciami 98% etanolu. Osad oddzielono przez odwirowanie, nastepnie przemyto etanolem i acetonem i osuszo¬ no. Obrzymano 7,2 g suchej substancji Dawka 1 miligrama na mysz wywolala nekroze nowotworu u 20 leczonych zwierzat, z których 13 zostalo cal¬ kowicie wytleazonych. Wyniki analizy tej substancji wykazaly obecnosc 10,8% kwasu nukleinowego i 74% proteiny. 30 Przyklad VII. Do 1000 mililitrów cieczy po- wierzchmiiowej, takiej saimej jak w przykladzie II, dodano siarczanu amonu do nasycenia 0,4. Osad odwirowano i rozpuszczono w wodzie. Roztwór za- n kwaszono kwasem chlorowodorowym az do pH=2. 35 Osad rozpuszczono w wodzie, zobojetniono do pH = 7, nastepnie liofilizowano. Otrzymano 8,2 g suchej substancji. Dawka 1 mg na mysz doprowadzila do nekrozy guza u 18 leczonych myszy, z których 12 w nastepsitwie zostalo wyleczonych.Wyniki analizy wykazaly 9,9% kwasu nukleino¬ wego i 77% proteiny.Przyklad VIII. Do 1O00 mililitrów cieczy po- 45 wiiarzahiniowej 1, takiej samej jak w przykladzie II, dodano 10 mililitrów 20% roztworu chlorku wap¬ nia. Osad odwirowano i rozpuszczono w 100 mili¬ litrach wody destylowanej. Do tej zawiesiny do¬ dano 3 g ambeiiiiki. Po energicznym wstrzasaniu 50 mieszanine odwirowano i ciecz powierzchniowa liofilizowano. Otrzymano 6,8 g suchej substancji.Dawka 1 mg na mysz wywolala znaczna nekroze nowotworu u kazdej z 24 leczonych myszy, z któ¬ rych 11 calkowicie w nastepstwie wyzdrowialo. 55 Wyniki analizy wykazaly Obecnosc 12% kwasu nukleinowego i 69% proteiny.Przyklad IX. 500 mililitrów cieczy powierzch¬ niowej 1, takiej samej jak w przykladzie II, zmie- 60 szano z 500 milliMitraini 90% fenolu. Mieszanine energicznie wstrzasano przez 1 godzine w tempe¬ raturze 4°C i odwirowano do 5000 g przez 30 minut.Faze wody i fenolu oddzielono.Faze wody zakwaszono kwasem cMorowodoro- 65 wym do pH=2. Osad oddzielono przez odwirowa-71341 13 nie, nastepnie przemyta etanolem i acetonem i w koncu osuszono. Otrzymano 1,8 g suchej substancji.Dawka 2 mg na mysz wywolala nekroze nowotworu tylko u 12 sposród leczonych myszy, z których je¬ dynie 5 calkowicie wyzdrowialo.Faze fenolu zmieszano z octanem sodu do 1% stezenie, po czym dodano 4 objetosci etanolu. Osad odwirowano, przemyto etanolem i acetonem, a na¬ stepnie osuszono. Otrzymano 6,4 g suchej substancji.Dawka 1 mg na mysz wywolala nekroze nowo¬ tworu u 20 leczonych zwierzat, z których 12 zosta¬ lo w nastepstwie calkowicie wyleczonych.Wyniki analizy tej substancji wykazaly obecnosc 7,9% kwasu nukleinowego i 84% proteiny.Przyklad X. 100g wilgotnych komórek bak¬ teryjnych w stanie naturalnym, takich jak w przy¬ kladzie II, zmieszano z 1000 miliildtrarmi 90% fenolu swiezo zdestylowanego. Mieszamine wstrzasano przez 1 godzine w temperaturze lO^C, nastepnie od¬ wirowano. Warstwe fenolu oddzielono. 100 mdili- litrów tej wartetwy zmieszano z 1% octanem sodo¬ wym i 4 objetosciarnd 96% etanolu. Osad otrzymano odwirowano, przemyto etanolem i acetonem, na¬ stepnie osuszono. Otrzymano 3,2 g suchej substancji.Dawka 2 mg na mysz wywolala nekroze nowotwo¬ ru u 20 leczonych myszy, z których 9 w nastepstwie calkowicie zostalo wyleczonych.Przyklad XI. 500 g wilgotnych komórek bak¬ teryjnych, takich jak w przykladzie II, rozcienczo¬ no 1000 mifliililtrami wody i dodano nastepnie 1000 milililirów 90% fenolu. Mieszanine wstrzasano przez 1 godzine w temperaturze 4°C i nastepnie odwiro¬ wywano przez 30 minut do 5000 g. Faze wody 1 i faze fenolu 2 oddzielono. Do fazy wodnej dodano 1% oobanu sodu i nastepnie 2 objetosci etanolu.Mieszanine odwirowano. Ciecz powierzchniowa 2 usunieto. Osad 4 rozpuszczono w 50 mtililitrach wo¬ dy, do której dodawano sode w celu doprowadze¬ nia do pH=7. Nastepnie roztwór zakwaszono kwasem chiloroWoidorowym do pH=2. Mieszanine odwirowano. Oiecz powierzchniowa 5 oddzielono i osad 6 rozpuszczono ponownie w 50 miliMitrach wody, do której dodawano sode, a nastepnie za¬ kwaszono kwasem cMonowodorowym az do uzyska¬ nia pH=2 i odwirowano. Ciecz powierzchniowa usunieto i osad 8 przemyto etanolem i acetonem, nastepnie rozpuszczono w 20 miliilitrach wody, do której dodawano sode w celu doprowadzenia do pH=7 i liofilizowano. Otrzymano 0,8 g suchej sub¬ stancji. Dawka ling tej substancji na mysz wy¬ wolala calkowita nekroze nowotworu u 20 leczo¬ nych myszy, z których tylko 5 w nastepstwie zo¬ stalo calkowicie wyleczonych.Faze fenolu 2 sitrajcono 4 Objeitosciami etanolu.Osaid przemyto etanolem i acetonem a nastepnie osuszono. Dawka lmg tej substancji na mysz wy¬ wolala nekroze nowotworu u 22 leczonych myszy, z których 10 calkowicie w nastepstwie zostalo wy¬ leczonych.Przyklad XII. 10 g komórek bakteryjnych liofilizowanych rozcienczono 100 ml wody. Dodano 14 25 do tego 100 mg liizozytmy. Mieszanine ciagle wstrza¬ sano przez 3 godziny w temperaturze 37°C i otrzy¬ mano calkowita homogenizacje. Mieszanie odwiro¬ wano do 10 000 g przez okres 1 godziny. Ciecz 5 powierzchniowa 1 liofilizowano. Dawka 2 mg na mysz wywolala nekroze nowotworu u 17 z 20 le¬ czonych myszy. Osad 2 ponownie rozpuszczono w wodzie zakwaszonej kwasem chlorowodorowym do pH=2 i dodano 100 mg pepsyny. Mieszanine io utrzymano przez 2 godziny w temperaturze 37°G, a nastepnie ja odwirowano. Ciecz powlerztohniowa 3 usunieto. Osad 4 rozpuszczono w wodzie zobojet¬ nionej do pH=7. Po ponownym odwirowaniu osad 5 oddzielono, podczas gdy ciecz powierzchniowa 6 is liofilizowano.W wyniku nastapila calkowita nekroza nowo¬ tworu u wszystkich leczonych myszy za pomoca zastrzykniecia dawki 1 mg. 20 Przyklad XIII. 4800g w stanie naluirailnyni, wilgoibnych komórek bakteryjnych LacAobaiciillus bulgaricuis var. tumoronecroticanB IiB51^1m/85 rozcienczono 2000 ml bialka kurzego dodajac roz¬ twór soli do uzyskania calkowitej objetosci 14000 ml. Zawiesine utrzymywana w temperatturze 37°C poddano ciaglemu wstrzasaniu przez 3 godziny, po czym mieszanine zakwaszono kwasem chlorowodo¬ rowym do pH=2.Do lOOOml mieszaniny 1 dodano Ig pepsyny mieszajac wszystko stale przez 4 godziny i utrzy¬ mujac w temperaturze 37°C. Nastepnie za pomoca sody doprowadzono do pH=7. Dodano do tego jeszcze Ig tnipsyny „Diifico". Obróbke trypsyna prowadzono przez 12 godzin w temperaturze 37°C ciagle wstrzasajac, przy czym dodawano chloro¬ form. 500 ml mieszaniny obrobionej w taki sposób, od¬ wirowano z szybkoscia 8000 abr/mdn. w czasie 30 40 minut. Osad nie calkowicie zekstrahowanych po¬ zostalosci 2 przemyto alkoholem a nastepnie osu¬ szono. Otrzymano 5g suchej substancji. Ciecz po¬ wierzchniowa 3 zmieszano z równa objetoscia alko¬ holu. Osad otrzymany odwirowano z szybkoscia 45 2700 obr/min. przez 15 minut, nastepnie rozpusz¬ czono go w niewielkiej liilosci wody zlioffiilizowanej.Otrzymano 3500 mig suchej substancji. Analiza wy¬ kazala obecnosc 62% proteiny i 13,54% kwasu nukleinowego. 50 Dawka 4 mg zafitrzyiknieta dozylnie myszom z dobrze rozwinieta sarkoma 180, wywolala glebo¬ ka nekroze nowotworu u wszystkich 10 leczonych zwiierzajt. 55 Przyklad XIV. 13 000 ml mieszaniny 1, takiej samej jak w przykladzie XIII odwirowano z szyb¬ koscia 8000 obr/min. w czasie 30 mdnut. Ciecz powierzchniowa 1 oddzielono. Osad 2 poddano trzy¬ krotnie odtluszczeniu mieszanina o równej objetosci 6o alkoholu i eteru. Po odparowaniu rozpuszczaHnika otrzymano 544 g suchej substancji 3.Przyklad XV. 10g substancji 3, takiej samej jak w przykladzie XIV, rozcienczono 100 md roz- 65 tworu soli. Po zakwaszeniu mieszaniny kwasem71341 15 cihlorowodarx)wyim do pH=2, dodano 100 mig pepsy¬ ny. Mieszanine utrzymano w temperaturze 37°C przez 4 godzimy, ciagle ja wstrzasajac. Nastepnie mieszaninie odwirowano z szylbkoscia 2700 obr/niin. przez 15 miinut. Giecz powierzchniowa 1 oddzielo¬ no. Osad 2 rozpuszczono w wyjsciowej objetosci roztworu soli, nastepnie zobojetniono do pH=7, po czym odwirowano z szylbkoscia 8000 obr/niin. pnzez 30 minut. Osad 3 niewyekislTahowanych pozostalosci przemyto alkoholem i nastepnie osuszano. Otrzy¬ mano 3900 mig suchej substancji, której analiza wy¬ kazala obecnosc 88% proteiny i 10,09% kwasu nuk¬ leinowego.Dawka 2 mig wstrzyknieta dozylnie myszom z sar¬ koma 180 dobrze rozwinieta, wywolala gleboka nekroze nowotworów u 17 z 20 leczonych myszy.W dziesiec dni pózniej 9 zwierzat zostalo komplet¬ nie wyleczonych.Przyklad XVI. 10g substancji 3, takiej samej jak w przykladzie XIV, rozcienczono 100 ml roztwo¬ ru soli, skorygowano pH do 7 i dodano 100 mg tripsyny „Difco". Mieszanine poddano w tempera¬ turze 37^C energicznemu wstrzasaniu w czasie 4 godizin, nastepnie odwirowano ja z szybkoscia 2700 oibr/irnin. w czasie 15 minut. Osald 1 zawiera¬ jacy pozostalosci niewyekstrahowane przemyto al¬ koholem i nastepnie osuszono. Otrzymano 2550 mg suchej substancji.Ciecz powierzchniowa 2 zmieszano z równa ilos¬ cia alkoholu. W wyniku otrzymano obfity osald.Ciecz powierzchniowa 3 oddzielono po odwirowa¬ niu i osald 4 rozpuszczono w wodzie i nastepnie zliofiUilzowano. Otrzymano 2800 mg suchej sulbstan- cji, której analiza wykazala obeonosc 92% proteiny i 7% kwasu nukleinowego.Dawki 4 mg zastrzykniete dozylnie myszom z sarkoma 180 dobrze rozwinieta, spowodowaly gleboka nekroze nowotworów u 18 z 20 leczonych zwierzat. Dziesiec dni pózniej, 10 zwierzat calko¬ wicie wyzdrowialo.Przyklad XVII. 10g substancji 3, takiej samej jak w przykladzie XIV, rozcienczono 10 miMlitrami roztworu soli. Mieszanine zakwaszono az do pH=2 za pomoca kwasu chlorowodorowego i dodano do tego 100 mig pepsyny. Po 4 gdzinnej obróbce w temperaturze 37*C, mieszanine zobojetniono do pH=7 dodajac do niej 100 mig tripsyny „Difco".Mieszanine uitrzymano ponownie w temperaturze 37°C przez okres 4 godzin i odwirowano z szybkos¬ cia 8000 obr/min. przez 30 minut. Osad zawiera¬ jacy pozostalosci niewyekstrahowane 1 przemyto alkoholem i wysuszono. Otrzymano 1350 mg suchej substancji.Ciecz powierzchniowa 2 zmieszano z równa ob¬ jetoscia alkoholu i odwirowano. Giecz powierzch¬ niowa 3 oddzielono. Po rozpuszczeniu w malej ilosci wody osad liofilizowano. Otrzymano 2200mg suchej substancji, której analiza wykazala obecnosc 68% proteiny i 8,84% kwasu nukleinowego. 2 mg dawka zasitrzylknieta dozylnie myszom z dobrze rozwinieta sarkoma 180, wywolala glebo¬ ka nekroze nowofoworu u kazdego z 20 leczonych 16 15 20 30 zwierzat, a w 10 dni pózniej 8 zwierzat zostalo wyleczonych.Przyklad XVIII. 1500mg frakcji 4, takiej 5 samej jak w przykladzie XV, rozpuszczono w 45 ml roztworu soli, dodajac do tego 15 mg rekrystaflizo- wanej trypsyny. Mieszanine utrzymano w tempe¬ raturze 37X! ciagle ja wstrzasajac, przy czym okresowo korygowano pH do wairtosci wynoszacej 10 7. Po obróbce trwajacej 20 godzin, niieszanine od¬ wirowano. Osad 1 zawierajacy mewyekstrahowane ciala oddzielono. Do cieczy powierzchniowej 2 do¬ dano chlorku sodu az do 12% stezenia. "W wyniku nastapilo osadzenie sie osadu, który zostal odwiro¬ wany z szylbkoscia 2700 obr/min. w czasie 30 minut, nastepnie osad 3 rozpuszczono w wodzie i liofilizowano. Otrzymano 400 mg suchej substan¬ cji, której analiza wykazala obecnosc 11% proteiny i 0,5% kwasu nukleinowego.Nawet \ 8 mg dawka na mysz tej substancji za- strzyknieta dozylnie, nie wywolala zadnej zmiany nowotworów u 20 leczonych zwierzat.Dodano 1/2 objetosci alkoholu do cieczy po¬ wierzchniowej 4. Osad otrzymany oddzielono za pomoca odwirowania, nastepnie rozpuszczono w niewielkiej ilosci wody i liofilizowano. Otrzymano 120 mg suchej substancji 5, której analiza wykaza¬ la obecnosc 21% proteiny i 7,3% kwasu nukleino¬ wego. 4img dawka zastrzykmiejta dozylnie myszom z dobrze rozwinieta sarkoma 180 wywolala gleboka nekroze nowotworu u 18 z 20 leczonych zwierzat, a w 10 dni pózniej 8 zwierzat zostalo calkowicie wyleczonych.Przyklad XIX. 5g liofilizowanych komórek bakteryjnych Ladxbacilllus bulgaricus var. tumoro- necroticans LB51—lm/65 rozcienczono 50 ml roz- 40 tworu soli, którego pH wynosil 7. Do mieszaniny dodano 50 mg lizozymu. Obróbke lizozymem pro¬ wadzono w temperaturze 37°C wstrzasajac przez okres 2 godzin. Mieszanine zakwaszono kwasem chlorowodorowyim do pH=2 i dodano do niej 50 mg 45 pepsyny. Po 4 godzinnej obróbce w temperaturze 37^C, mieszanine odwirowano z szybkoscia 2700 obr/min. w czasie 30 minut. Ciecz powierzchniowa oddzielono.Osad 2 rozpuszczano w roztworze soli o pH=7 so i dodano do tego 50 mg tnipsyny „Difco". Po 4 godzinnej obróbce w temperaturze 37°C stale •wstrzasajac, mieszanine odwirowano z szybkoscia 27O0 obr/min. przez 30 minut. Osad niewyekstra- howanych pozostalosci 3 przemyto alkoholem i wy- 55 suszono. Otrzymano 640 mg suchej substancji.Ciecz powierzchniowa 4 zmieszano z równa ob¬ jetoscia alkoholu. Po odwirowaniu mieszaniny osad 5 rozpuszczano w malej ilosci wody i dializowano poprzez blone „celofanowa" w wodzie biezacej 60 i nastepnie liofiMzowiano. Otrzymano 500 mg suchej substancji, której analiza wykazala obecnosc 37% proteiny i 11,36% kwasu nukleinowego.Ciecz powierzchniowa 6 zmieszano z równa ilos¬ cia alkoholu i odwirowano. Osad 7 rozpuszczono 65 w niewielkiej ilosci wody i poddano dializie w17 wodzie biezacej przez okres 24 godzin, a nastepnie liaffiMaowano. Otrzymano 80 mig suchej substancji, kftórej analiza wykazala obecnosc 29% proteiny i 41,24% kwasu nukleinowego.Osady 5 i 7 wykazaly, przy 4 mg dawce, silne dzialanie nekrotyczne nowotworu u 20 leczonych mytszy. PL PL PL PL PL

Claims (7)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania nowej aktywnej substan¬ cji przecijwrakowej, polegajacy na hodowli mikro- arganiizmiu w pozywce i nastepnym wydzieleniu i oczyszczeniu substancji, znamienny tym, ze mik¬ roorganizm LactobacMus BuHgaricus Tumoronec- roDicans LD51—llim/65 hoduje sie w warunkach beztlenowych, w temperaturze w granicach 28— 50°C, w ciagu 18—24 godzin, w srodowisku odzyw¬ czym zawierajacym przynajmniej jedna z suibsltan- cji takich, jak wyciag z soi, pepton, wyciag z droz¬ dzy, wyciag z kukurydzy, wyciag z miesa, glikoza, maltoza, laktoza, sacharoza, dekstryna czy melasa oraz sole nieorganiczne, nastepnie rozbija sie ko- 341 18 morki bakteryjne a substancje przeedwrakowa ekstrahuje za pomoca wody lub fenolu i wytraca z wyciagu.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze 5 hodowle prowadzi sie w srodowisku odzywczym zawierajacym organiczne i nieorganiczne fosforany oraz siarczan magnezu.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze wyekstrahowana substancje przeciwrakowa wytra- io ca sie przez dodanie do wyfciajgu przynajmniej jed¬ nej z suibstanicji takich jak rozpuszczalne w wodzie rozpuszczalniki organiczne, sole i kwasy. 4. Sposób wedlug zastrz. 3, znamienny tym, ze do rozpuszczalnika dodaje sie kwas az do uzyska- 15 nia wartosci pH=,l,5—
4.
5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze komórki bakteryjne rozbija slie w homogenizaltOTBe, mlynie koloidalnym za pomoca ultradzwieków, bialka jaja, lizozyimiu lub enzymów proteolitycz- 20 nydh takich, jak pepteyina i tripsyna.
6. Sposób wedlug zastrz. 5, znamienny tym, ze enzymy stosuje sie w nastepujacej kolejnosci: lizozym, pepsyna, trypsyna i peplsyna.KI. 30h,6 71341 MKP C12d 13/00 36 34 32 30-1 28-1 26 2^ 22 20- 18 16 14H 12 8-
7. - 6- 5H O CM r' i—i ° ? ~ II II Q I ' O. Fig. 1 Fig. 2KI. 30h,6 71341 MKP C12d 13/00 Fiq3 Fiq4 czytelnia] Urzedu Pot*nlo«ego PL PL PL PL PL
PL1966114157A 1965-06-01 1966-04-21 PL71341B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BG509165 1965-06-01
BG612966 1966-03-07

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL71341B1 true PL71341B1 (pl) 1974-06-29

Family

ID=25663272

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1966114157A PL71341B1 (pl) 1965-06-01 1966-04-21

Country Status (17)

Country Link
US (1) US3762998A (pl)
AT (1) AT267058B (pl)
BE (1) BE681876A (pl)
BR (1) BR6679943D0 (pl)
CH (1) CH459469A (pl)
DE (1) DE1617868C3 (pl)
DK (1) DK120610B (pl)
ES (1) ES327373A1 (pl)
FI (1) FI45764C (pl)
GB (1) GB1146626A (pl)
IL (1) IL25759A (pl)
LU (1) LU51226A1 (pl)
NL (1) NL153939B (pl)
NO (1) NO134752C (pl)
PL (1) PL71341B1 (pl)
SE (1) SE351675B (pl)
SU (1) SU390699A3 (pl)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
BG19633A1 (pl) * 1973-10-11 1975-10-10
CH680192A5 (pl) * 1989-12-13 1992-07-15 Nestle Sa
US20020182274A1 (en) * 2001-03-21 2002-12-05 Kung-Ming Lu Methods for inhibiting cancer growth, reducing infection and promoting general health with a fermented soy extract

Also Published As

Publication number Publication date
US3762998A (en) 1973-10-02
SE351675B (pl) 1972-12-04
DK120610B (da) 1971-06-21
NO134752C (pl) 1976-12-08
IL25759A (en) 1969-11-12
FI45764B (pl) 1972-05-31
BE681876A (pl) 1966-11-30
DE1617868C3 (de) 1975-07-17
NL153939B (nl) 1977-07-15
GB1146626A (en) 1969-03-26
DE1617868A1 (de) 1971-04-15
SU390699A3 (pl) 1973-07-11
ES327373A1 (es) 1967-07-16
NO134752B (pl) 1976-08-30
CH459469A (fr) 1968-07-15
BR6679943D0 (pt) 1973-09-20
FI45764C (fi) 1972-09-11
NL6607345A (pl) 1966-12-02
AT267058B (de) 1968-12-10
LU51226A1 (pl) 1966-12-01
DE1617868B2 (pl) 1974-12-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kalinin et al. Biological activities and biological role of triterpene glycosides from holothuroids (Echinodermata)
RU2571924C2 (ru) Способ и вещество для активируемого сайтом комплексообразования биологических молекул
JPS6216638B2 (pl)
CA2212563C (en) Process for obtaining medically active fractions from sea cucumbers
CN107614005A (zh) 具有抗病原菌功效的抗菌胜肽及其制药用途
PL71341B1 (pl)
DE2738652C3 (de) Lactobacillus-Präparat und seine Verwendung bei der Bekämpfung bakterieller Infektionen und Entzündungen
KR102099788B1 (ko) 왜주름불가사리 추출물을 유효성분으로 함유하는 항산화 및 항염증용 조성물 및 그 제조 방법
EP0153995B1 (de) Verfahren zur schonenden Sterilisation von biologischen Wirkstoffen, insbesondere von Organgeweben für therapeutische Zwecke gegenüber Mikroorganismen und Viren
CH639133A5 (de) Verfahren zur herstellung einer antitumor wirksamen substanz mit immunostimulierender wirkung.
JPH0665041A (ja) 皮膚外用剤
Chambers et al. On a growth-promoting factor in tumour tissue
US6083928A (en) Skin healing method
Panagopoulos et al. A bacterial leafspot of strawberry in Greece caused by Xanthomonas fragariae.
CN109400669A (zh) 核桃仁皮的小分子蛋白质提取方法及应用
CN108739836A (zh) 一种防治甘薯病毒病的农药组合物
HINMAN The role of bacteria in the nutrition of mosquito larvae. The growth-stimulating factor
JPS6153033B2 (pl)
KR100599343B1 (ko) 항알레르기 활성을 갖는 조성물
WO2020203966A1 (ja) エラスターゼ活性抑制剤、エラスターゼ活性抑制外用剤、及びエラスターゼ活性抑制飲食用組成物
Beebe THE GROWTH OF LYMPHOSARCOMA IN DOGS. SUMMARY OF RECENT OBSERVATIONS.
KR101960284B1 (ko) 광합성 박테리아 추출물을 포함하는 화장품 원료 및 그 제조방법
RU2155812C1 (ru) Биотехнологический способ получения ранозаживляющего препарата
AP818A (en) Process for the preparation of a natural medicinal liquor based on carica papaya and vinca rosea.
JPH0648904A (ja) 抗菌性・抗線虫組成物