PL52322B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL52322B1
PL52322B1 PL105596A PL10559664A PL52322B1 PL 52322 B1 PL52322 B1 PL 52322B1 PL 105596 A PL105596 A PL 105596A PL 10559664 A PL10559664 A PL 10559664A PL 52322 B1 PL52322 B1 PL 52322B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
paspalum
conidia
ergobazine
agar
mycelium
Prior art date
Application number
PL105596A
Other languages
English (en)
Inventor
Jurg Rutschmanii dr
Hans Kobei dr
Original Assignee
Sandoz A G
Filing date
Publication date
Application filed by Sandoz A G filed Critical Sandoz A G
Publication of PL52322B1 publication Critical patent/PL52322B1/pl

Links

Description

Dwie próbki tego grzyba o nazwie Claviceps paspali 20 Stevens et Hall zostaly zdeponowane w United States Departament of Agriculture (Northern Utilization Research and Development Division) Peoria, Illinois pod numerem NRRL 3081. W prze¬ ciwienstwie do opisanych dotad szczepów Clavi- 28 ceps paspali Stevens et Hall (Arcaraooe et. aL Proc. Roy. Soc. Serials B, 155, 26, 1901; Nature 187, 236, 1960) te nowe szczepy sa zdolne do tworzenia konidiów in vitro.Nizej podano charakterystyke morfologiczna 8t grzyba Claviceps microcephala, stosowanego w 5232252322 3 znanych sposobach otrzymywania ergobazyny, jak równiez charakterystyke morfologiczna szczepu Claviceps paspali Stevens et Hall NRRL 3081 stosowanego wedlug wynalazku.Stosowany w znanych metodach otrzymywania ergobazyny grzyb Claviceps microcephala ma mniej rozwiniete spermogona niz Claviceps pur- purea. Ma on cylindryczne lub proste sklerocja, które sa bardzo male (dlugosc 3—4 mm, w nie¬ których przypadkach 7—9 mm). Ma on nitkowate nózki o dlugosci 1—2 cm, na których znajduja sie sferidia o srednicy do 0,7 mm. Wystepuje on na Phragmites communis Trin oraz na Molinia cae- rulea Moen w okolicach Paryza oraz w Niemczech Zachodnich.Innymi zywicielami jego sa: Agrostis palustris Huds.Aira caespitosa L.Aira fluxuosa L.Alopecurus agrestis L.Alopecurus geniculatus L.Alopecurus pratensis L.Ammophila arenaria L.Arrhenatherum erianthum Boiss. et Reut.Calamagrostis aleutica Bong.Calamagrostis arenaria Roth.Calamagrostis arenaria x epigeios Calamagrostis arundinacea Roth.Calamagrostis epigeios Roth.Calamagrostis Langsdorffil Trin.Cinna latifolia Griseb.Nardus Stricta L.Stosowane wedlug wynalazku szczepy Clavi- ceps paspali Stevens et Hall maja konidia (Spha- celia paspali Born.) bezbarwne, wydluzone, owalne, eliptyczne o wymiarach 3,5—1,5 X 2,5— —7,5 \x globularne sklerocja, które w stanie doj¬ rzalym sa pomarszczone, na powierzchni zóltawe, a biale w srodku, o wymiarach 2,5—0 X 2—4 mm; zóltawe, twarde cylindryczne lub z boku splasz¬ czone nózki o wymiarach 4—6,5 X 0,3—0,8 mm; globularne lub subglobularne sferidia o wymiarach 1023—1618 X774^1023 ^, owalne wydluzone peri- tecja o wymiarach 173—300 X 25—162 p, aschi cylindryczne o wymiarach 90—205 X 2,8—3,6 ^, nitkowate, nierozgalezione askospory o wymiarach 65—110 X 0,6—0,6 [*.Pasozytuje na Paspalum dilatatum Poir. oraz Paspalum laeve Michx. (Pólnocna Karolina).Innymi zywicielami sa: Paspalum almum Chase Paspalum caespitosum Fliig Paspalum ciliatifolium Michx.Paspalum cruciforme Paspalum distichum L.Paspalum distichum var. paspalodes Thell.Paspalum floridianum Michx.Paspalum floridianum var. glabratum Engelm.Paspalum giganteum Baldw.Paspalum intermedium Munro 4 Paspalum langei (Fourn.) Nash Paspalum longipilum Nash.Paspalum monostachyum Vasey Paspalum notatum Fliig. 5 Paspalum orbiculare Paspalum plicatulum Michx. (Brazylia) Paspalum ploriferum (Brazylia) Paspalum pubescens Muhl.Paspalum pubiflorum Rupr. io Paspalum auadrifarium Lam.Paspalum supinum Bose.Paspalum Urvillei Steud.Dla wprowadzenia sposobu wytwarzania ergo- 15 bazyny metoda mikrobiologiczna na skale tech¬ niczna ogromne znaczenie ma fakt, czy stosowany w niej grzyb tworzy konidia in vitro czy tez nie.Za pomoca konidiów mozna bowiem uzyskac material genetycznie jednorodny, a przez dziala- 20 nie promieniami Roentgena i promieniami nad¬ fioletowymi, jak równiez zwiazkami chemicznymi mozna z konidiów o wiele latwiej wytworzyc i wyodrebnic mutanty niz z jalowej grzybni. Po¬ nadto za pomoca konidiów mozna infekowac 25 kwitnace rosliny Paspalum uzyskujac w ten spo¬ sób na naturalnym podlozu sklerocja nadajace sie bardzo dobrze do zakonserwowania szczepów.Mozna na przyklad z tego trwalego materialu uzyskac w kazdej chwili swiezy material do 30 szczepienia wtedy, kiedy hodowle prowadzone in vitro ulegna juz po wielu przeszczepach degene¬ racji. Konidia mozna takze nieograniczenie dlugo przechowywac w postaci zliofilizowanej, co rów¬ niez umozliwia zakonserwowanie szczepu. Do za- 35 szczepienia plynnej pozywki nadaje sie najlepiej zawiesina konidiów, poniewaz w takiej postaci mozna najdogodniej dawkowac ilosc materialu do szczepienia i mozna z nia najlatwiej pracowac w warunkach jalowych (podczas gdy jalowa grzyb¬ no nie trzeba z poczatku zhomogenizowac w mik¬ serze).Wyodrebnienia i rozmnazania nawego szczepu grzyba Claviceps paspali Stevens et Hall NRRL 3081 mozna dokonac w nastepujacy sposób: 45 z wnetrza sklerocji pobiera sie w sposób jalowy maly kawalek tkanki i przenosi na pozywke o skladzie: 250 ml jasnej brzeczki piwnej bez chmielu, sucha masa 17%- 18 g agar-agar, woda destylowana do 1 litra i pH = 5,2. Wyrasta kolista 50 kolonia, która po 14 dniach w temperaturze 24° C osiaga srednice 15 mm. Tworzy ona na agarze powloke o strukturze pseudoskleroejalnej o gru¬ bosci okolo 1 mm, na której znajduje sie warstwa bialej grzybni powietrznej. Brunatny barwnik dy- 55 funduje do agaru. Nie tworza sie zadne konidia.Te kolonie dzieli sie za pomoca szpatulki na czesci i przenosi do probówki, w której znajduje sie 12 ml pozywki agarowej o nastepujacym skladzie: co brzeczka piwna — 500 ml suszony wyciag z kukurydzy — 60 g kwas mlekowy — 1 ml roztwór salmiaku w ilosci po- 65 trzebnej do uzyskania pH = 4,85 52322 6 agar-agar — 20 g woda destylowana — do 1 litra Wokól kazdej szczepionki tworzy sie mala kolo¬ nia o strzepkach grzybni najpierw bialych, póz¬ niej czerwono-brazowych. Po 10 dniach na kon¬ cach nitkowatych rozgalezien grzybni zaczynaja sie tworzyc zarodniki. Po 20 dniach jest wystar¬ czajaca ilosc zarodników (konidiów), aby z nich sporzadzic zawiesine wodna, która mozna za¬ szczepic 20 probówek z agarem skosnym (ta sama pozywka agarowa jak wyzej). Kultury te poddaje sie inkubacji w temperaturze 24° C. Konidia wy¬ puszczaja kielki po 24—36 godzinach. Po 6 dniach powierzchnia agaru powleka sie równomier¬ nie delikatnymi bialymi strzepkami grzybni, po 10 dniach wytwarza sie brunatno-szara delikatnie pobryzdzona powloka strzepków grzybni, która przylega szczelnie do agaru i posiada tylko krót¬ kie nitkowate rozgalezienia powietrzne. Na nich wyksztalcaja sie. konidia. Po 12 dniach powstaja w licznych miejscach na strzepkach grzybni cen¬ tra, z których wydzielaja sia male kropelki czer- wono-brunatnej cieczy. Kropelki osiagaja srednice 1—3 mm i wkrótce staja sie wskutek bardzo licz¬ nych konidiów mleczno-metne. Po 16—18 dniach tworzenie sie konidiów jest praktycznie zakon¬ czone. Kultura na agarze w probówce o srednicy 2 cm, zawierajacej 12 ml pozywki agarowej po¬ siada okolo 109 konidiów.W celu prowadzenia hodowli glebinowej przy¬ gotowuje sie najpierw hodowle wstepna w nastepu¬ jacy sposób: jako podloze hodowlane stosuje sie 4,5- -procentowy wodny roztwór ekstraktu slodowego o pH = 5.4. Jeden litr tego roztworu poddaje sie sterylizacji w kolbie stozkowej o pojemnosci 2 litrów w ciagu 20 minut w temperaturze 110° C, po czym zaszczepia sie konidiami w ilosci 4 X 108 otrzymanymi z 17 dniowej hodowli na agarze opisanej poprzednio, a nastepnie poddaje inkubacji na wytrzasarce rotacyjnej w ciagu 3 dni w temperaturze 24° C. Powstaje zwarta hodowla, skladajaca sie z delikatnych strzepków grzybni.Strzepki tworza luzne peczki nitkowatych roz¬ galezien grzybni i maja srednice 2—4 mm. Nie stwierdzono obecnosci alkaloidów.W celu sporzadzenia wiekszych ilosci hodowli wstepnej zaszczepia sie wyzej opisane podloze w szklanych naczyniach do fermentacji, zawiera¬ jacych po 10 litrów podloza, konidiami w ilosci 4 X 109 sztuk na kazde naczynie i poddaje inku¬ bacji w ciagu 3 dni w temperaturze 23° C z równoczesnym napowietrzaniem (6 litrów po¬ wietrza/minute i mieszaniem) 300 obrotów na minute. W celu przeciwdzialania pienieniu sie uzywa sie emulsji silikonowej. Tak otrzymane hodowle z naczyn fermentacyjnych maja te sama konsystencje co hodowle z wytrzasarek.Do otrzymywania hodowli glównej szczególnie korzystne okazalo sie podloze, zawierajace w 1 litrze wody destylowanej: sorbitu — 50 g kwasu bursztynowego — 36 g KH2PQ4 — 2 g MgS04 — 0,3 g FeS04-7H20 — 1 mg ZnS04-7H20 — 10 mg 5 Podloze to nastawia sie na pH = 5,4 za pomoca NH4OH.To podloze zaszczepia sie 10-procentami 3 dnio¬ wej hodowli wstepnej i poddaje inkubacji w por¬ cjach po 100 ml w kolbach stozkowych o pojem- 10 nosci 500 ml na wytrzasarce wahadlowej w tem¬ peraturze 23° C. Inne hodowle prowadzi sie w analogiczny sposób w naczyniu fermentacyjnym z nierdzewnej stali, zawierajacym 170 1 podloza.Stosuje sie przy tym napowietrzanie z szybkoscia 15 1701 powietrza na minute oraz mieszanie poczatko¬ wo z szybkoscia 70, pózniej 180 obrotów na minute.W celu przeciwdzialania pienieniu sie dodaje sie emulsji silikonowej. W ten sposób powstaja ho¬ dowle, zlozone z licznych jednakowych strzepków 20 grzybni. Srednica ich wynosi okolo 5 mm i po¬ siadaja one kuliste zwarte jadro o srednicy okolo 1 mm, zbudowane z tkanki pseudoparenchyma- tycznej. Jadro to posiada gwiazdziscie ulozone 0 dlugosci okolo 2 mm wypustki z równolegle 25 polozonych nitkowatych rozgalezien grzybni. Przy koncu 12 dniowej hodowli strzepki grzybni sa za¬ barwione na ciemno-brunatno, a przesacz ma barwe intensywnie czerwono-brunatna. Wartosc pH zmienia sie nieznacznie. Z przesaczu tak otrzy- 30 manej hodowli mozna na przyklad w nastepujacy sposób wydzielic wytworzone alkaloidy: 20 litrowa porcje przesaczu doprowadza sie za pomoca okolo 1,2 kg sody do pH = 9,75 i ekstrahuje 3-krotnie chlorkiem etylu w ilosci po 20 litrów. Warstwe 35 organiczna przemywa sie kazdorazowo 5 1 wody, a nastepnie podgeszcza w prózni do lacznej ob¬ jetosci 4 1. Podgeszczony roztwór ekstrahuje sie 5-procentowym kwasem winowym 3-krotnie po 1 litrze, kwasne wyciagi doprowadza sie weglanem 40 sodowym do pH = 9,0 po czym ekstrahuje chlor¬ kiem etylenu 3-krotnie po 2 litry. Polaczone wy¬ ciagi organiczne, wymyte mala iloscia wody i osuszone nad siarczanem sodowym zawieraja 8 g alkaloidów. Analize tak uzyskanej mieszaniny 4- alkaloidów dokonano na drodze chromatografii bibulowej i procentowy udzial poszczególnych skladników okreslono na podstawie identycznosci plamy barwnej z plama wzorca. 50 ergobazyna — 65% ergobazynina — 13% amid kwasu lizergowego — 9% amid kwasu izolizergowego — 5% chanoklawina — 4% 55 elymoklawina — 1% peniklawina — 2% nieznane skladniki — 1% Ergobazyne mozna wyodrebnic w czystej po- 60 staci z osuszonych wyciagów organicznych, spo¬ rzadzonych z przesaczu z hodowli na drodze chro¬ matografii, przez przekrystalizowanie lub wyko¬ rzystujac zdolnosc ergobazyny do tworzenia soli na przyklad z kwasami organicznymi. Tym spo- 65 sobem mozna z 8 g otrzymanej sumy alkaloidów52322 uzyskac 5,39 g wodoromaleinianu w czystej, krystalicznej postaci. ergobazyny PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób wytwarzania ergobazyny na drodze mikrobiologicznej, znamienny tym, ze szczep Claviceps paspali Stevens et Hall nr NRRL 3081 poddaje sie glebinowej J^odowli saprofitycznej na pozywce, skladajacej sie z polialkoholu jako zródla wegla, z soli amonowej organicznego kwasu jako zródla azotu i soli mineralnych, a wytworzona przy tym ergobazyne ekstrahuje sie z przesaczu kultury organicznym rozpuszczalnikiem i nastep¬ nie wyodrebnia w znany sposób. J3IBLIOTEKA] (Urzedu Pa te nfowego „Prasa" Wr. Zam. 7258/66. Naklad 260 egz. PL
PL105596A 1964-08-29 PL52322B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL52322B1 true PL52322B1 (pl) 1966-10-25

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Phae et al. Biological control of crown and root rot and bacterial wilt of tomato by Bacillus subtilis NB22
Hetrick et al. Effects of soil microorganisms on mycorrhizal contribution to growth of big bluestem grass in non-sterile soil
Papavizas et al. Selective isolation of Phytophthora capsici from soils
Amsellem et al. Recent advances in the biocontrol of Orobanche (broomrape) species
JPH0532514A (ja) 有害生物の制御のための病原性菌類調製物の製造工程および製造方法および使用法
CN114196580A (zh) 一种淡紫灰链霉菌海南变种菌株及利用其制备中生菌素制品的方法
JPS63501924A (ja) 新規微生物
CN116024095B (zh) 一株来自海底沉积物的用于防治烟蚜的枝孢霉菌株
RU2313941C2 (ru) Препарат для защиты растений от возбудителей болезней сельскохозяйственных культур и винограда с ростстимулирующим эффектом, способ получения этого препарата и штаммы для его осуществления
Walther et al. Biological control of Phoma and Pythium damping‐off of sugar‐beet with Pythium oligandrum
CN116694501A (zh) 一株极端东方化假单胞菌及其应用
JPH10506288A (ja) 植物の病気の生物学的防除のための真菌 Gliocladium catenulatum
CN119799514A (zh) 一种棉铃虫莱氏绿僵菌mrdl2024菌株及其应用
PL52322B1 (pl)
US4711656A (en) Enhancement of nitrogen-fixation with rhizobial tan variants
Ko et al. Distribution of Phytophthora cinnamomi‐Supprcssive Soil in Nature
Lewis et al. Stilbella aciculosa: a potential biocontrol fungus against Rhizoctonia solani
Shimazu et al. Density dynamics of the entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana Vuillemin (Deuteromycotina: Hyphomycetes) introduced into forest soil, and its influence on other soil microorganisms
Meyers et al. Thalassiomycetes: VI. Comparative Growth Studies of Lindra Thalassiae and Lignicolous Ascomycete Species
Mondal et al. Decreased germinability and virulence of oospores of Pythium aphanidermatum in relation to loss of endogenous carbon during incubation on soil
US20020177528A1 (en) Biocontrol of weeds
Keim et al. Fungistasis of sclerotia of Sclerotium oryzae
CN110724640B (zh) 番茄根结线虫生防菌、其制剂及其应用
Mitsuhashi Cultivation of Intracellular Yeast-like Organisms in the Smaller Brown Planthopper, Laodelphax striatellus FALLEN: Hemiptera, Delphacidae
Architha BIOCONTROL POTENTIALITY OF FLUORESCENT PSEUDOMONADS AGAINST MAJOR SOIL BORNE FUNGAL PATHOGENS OF CHICKPEA (Cicer arietinum L.)