PL52116B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL52116B1
PL52116B1 PL102466A PL10246663A PL52116B1 PL 52116 B1 PL52116 B1 PL 52116B1 PL 102466 A PL102466 A PL 102466A PL 10246663 A PL10246663 A PL 10246663A PL 52116 B1 PL52116 B1 PL 52116B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
conidia
lysergic
acid
strain
culture
Prior art date
Application number
PL102466A
Other languages
English (en)
Inventor
Jiirg Rutschmann dr
Hans Kobei dr
Original Assignee
Sandoz A G
Filing date
Publication date
Application filed by Sandoz A G filed Critical Sandoz A G
Publication of PL52116B1 publication Critical patent/PL52116B1/pl

Links

Description

Pierwszenstwo: 30.VIII.1962 Szwajcaria Opublikowano: 28.X.1966 52116 KI. 6 b, 16/03 MKP C12d l '0& BIBLIOTEKA UKD ' U rufowy Patentowego I "'" :i;i ;l?.';c7V|:nsf!'ilitBi LudoBej | Wspóltwórcy wynalazku: dr Jiirg Rutschmann, dr Hans Kobei Wlasciciel patentu: Sandoz A. G., Bazylea (Szwajcaria) Sposób wytwarzania amidów kwasu -lizergowego i izolizergowego Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania amidów kwasu lizergowego i izolizergowego za pomoca no¬ wego Szczepu Claviceps paspali Stevens et Hall.Rozmaite szczepy tego grzyba byly juz znane od dluzszego czasu, jednakze dopiero niedawno udalo sie po raz pierwszy z okreslonego szczepu tego ro¬ dzaju grzyba, po uprzednim „zaktywowaniu" go otrzymac pochodne kwasu lizergowego i izolizergo¬ wego. Aktywacje tego szczepu prowadzono przez przeszczepienie go na kielki traw. Pózniej inna grupa badaczy stwierdzila, ze ten sposób postepo¬ wania da sie w okreslonych warunkach ominac, jednakze tak otrzymane wydajnosci kwasu lizergo¬ wego sa dosc male, co bardzo utrudnia techniczne wykorzystanie tej metody.Znany jest na przyklad z brytyjskiego opisu pa¬ tentowego nr. 883 329 sposób otrzymywania miesza¬ niny amidu kwasu lizergowego i amidu kwasu izo¬ lizergowego na drodze fermentacji roztworu wod¬ nego pozywki, zawierajacej zródlo wegla, azotu i sole mineralne w warunkach aerobowych za po¬ moca szczepu Claviceps paspali Stevens et Hall wyodrebnionego ze sklerocji wytworzonych na ro¬ slinach Paspalum disticum, zebranych w Tivoli kolo Rzymu. Szczep ten jednak, jak równiez inne do¬ tychczas znane szczepy Claviceps paspali Stevens et Hall nie tworzy konidiów in vitro.W sposobie wedlug wyzej wymienionego brytyj¬ skiego opisu patentowego nr 883 329 prowadzi sie fermentacje glebinowa w temperature 22—30°C przy 15 20 25 30 pH = 4,6—6, w ciagu 10—15 dni. Przesacz z kultury alkalizuje i ekstrahuje rozpuszczalnikami organicz¬ nymi lub absorbuje na stalym sorbencie i wyod¬ rebnia alkaloidy.Dla wprowadzenia metod biologicznych na skale techniczna jest rzecza wielkiej wagi, czy okreslony grzyb wytwarza konidia czy tez nie. Za pomoca ko¬ nidiów mozna bowiem otrzymac kultury z jednego zarodnika i dzieki temu dochodzi sie do genetycznie jednolitego materialu. Z konidii mozna tez, dziala¬ niem promieni rentgenowskich i ultrafioletowych, jak równiez dzialaniem odczynników chemicznych, duzo latwiej otrzymac mutanty i wydzielic je ze sterylnej grzybni. Ponadto zakazajac konidiami kwi¬ tnace rosliny Paspalum mozna na naturalnym zy¬ wicielu otrzymac przetrwalniki, które doskonale na¬ daja sie do konserwowania szczepu. Z tego trwale¬ go materialu mozna na przyklad otrzymac swiezy material do szczepien, o ile kultury in vitro dege¬ neruja sie. Konidia moga byc równiez poddawane liofilizacji i w postaci zliofilizowanej moga byc prze¬ chowywane bez ograniczen. Do szczepienia pozywki najlepiej nadaje sie zawiesina konidiów, poniewaz w takiej postaci mozna ja najdogodniej dawkowac do szczepienia i mozna z nia najlatwiej pracowac w warunkach jalowych. Natomiast jalowa grzybnia musi byc na poczatku zhomogenizowana.W sposobie wedlug wynalazku zastosowano nowy szczep Claviceps paspali Stevens et Hall, zdolny do wytwarzania konidiów in vitro, Szczep ten znale- 521165*110 S 4 nono w Nowej Gwinei na trawie Paspalum dilata- tum Poir. Zdolnosc wytwarzania konidiów stanowi ceche odrózniajaca ten nowy szczep pod wzgledem morfologicznym od dotychczasowych szczepów uzy¬ wanych do otrzymywania amidów kwasu lizergo- wego i izolizergowego. Dalsza róznice stanowi to, ze nowy szczep ma srednie wymiary glówek 2,8 X X 3,2 mm (w porównaniu z wymiarami glówek 3,4 X 3,2 mm u szczepu stosowanego wedlug brytyj¬ skiego opisu patentowego nr. 883 329). Próbki nowe¬ go szczepu grzyba zostaly zdeponowane w Departa¬ mencie Rolnictwa Stanów Zjednoczonych (Northern Utilization Research and Development Division), pod numerem NRRL 3027. W przeciwienstwie do dotychczas opisanych szczepów Claviceps paspali Stevens et Hall przetrwalniki szczepu NRRL 3027 zawieraja alkaloidy. Zawartosc alkaloidów w tych próbkach przetrwalników wynosi 0,04Vt, w tym: amidu kwasu lizergowegó 40V» amidu kwasu izolizergowego 20°/t ergobazyny 15°/t ergobazyniny * l&h chanoklawiny 10^/t nieznanych W% Nalezy zwrócic uwage na fakt, ze stosowane do¬ tad szczepy Claviceps paspali Stevens et Hall two¬ rzyly tylko amidy kwasu lizergowegó i izolizergo¬ wego. Szczep wedlug wynalazku tworzy natomiast dodatkowo ergobazyne, ergobazynine i chanókla- wine. Wyróznia to nowy szczep od znanych pod wzgledem fizjologicznym.Analize mieszaniny alkaloidów przeprowadza sie metoda chromatografii bibulowej a procentowy udzial poszczególnych skladników oznaczono na podstawie intensywnosci barwy plamek.Wydzielanie i rozmnazanie nowego szczepu grzy¬ ba odbywa sie w nastepujacy sposób: Z wewnetrznej czesci sklerocjum pobiera sie ste¬ rylnie maly kawalek tkanki i przenosi na pozywke z agaru i brzeczki piwnej o skladzie: 250 ml bez- chmielowej jasnej brzeczki piwnej (lWt suchej substancji), 18 g agam, wody destylowanej do 1 1 (pH = 5,2)). Rozwija sie okragla kolonia, która po uplywie 14 dni w temperaturze 24°C osiaga sred¬ nice 15 mm. Sklada sie ona z blony grubosci okolo 1 mm o strukturze pseudoprzetrwalnikowej, oraz z bialej grzybni powietrznej. Brunatny barwnik dy- funduje'do wnetrza agaru. Konidia nie wytwarzaja sie. Kolonie te rozdrabnia sie za pomoca lopatki i przenosi do probówki zawierajacej 12 cm9 pozywki agarowej o nastepujacym skladzie: brzeczka piwna 500 ml moczone ziarno 60 g kwas mlekowy 1 ml roztwór salmiaku do pH — 4,8 agar-agar 20 g woda destylowana do 1 1 Wokól kazdej szczepionki powstaje mala kolonia o poczatkowo bialej, pózniej czerwonobrunatnej grzybni. Po 10 dniach na wierzcholkach strzepków grzybni zaczynaja zawiazywac sie konidia. Po 20 dniach konidia sa juz w wystarczajacej ilosci, aby otrzymac z nich wodna zawiesine, która mozna za¬ szczepic 20 probówek skosnego agaru (o skladzie jak wyzej) Kultury te poddaje sie dojrzewaniu w tempe¬ raturze 24°C. Konidia kielkuja po uplywie 24—36 godzin. Po 6 dniach powierzchnia agaru pokrywa sie równomiernie subtelna, biala grzybnia, po 10 dniach 5 tworzy sie brunatnoszara, delikatnie zmarszczona wierzchnia warstwa grzybni, która scisle pokrywa agar i posiada krótkie strzepki powietrzne. Na nich zawiazuja sie. konidia. Po uplywie 12 tygodni w wielu miejscach grzybni tworza sie centra, na których wydzielaja sie male kropelki czerwono¬ brunatnej cieczy. Kropelki osiagaja srednice 1— 3 mm i wkrótce z bardzo licznych konidiów po¬ wstaje mleczne zmetnienie. Po uplywie 16—18 dni tworzenie sie konidiów jest praktycznie zakonczo¬ ne. Kultura na ukosnym agarze w probówce o sred¬ nicy 2 cm i w 12 ml pozywki agarowej zawiera okolo 10* konidiów.Kulture wstepna przygotowuje sie w nastepujacy sposób: Jako medium stosuje sie 4,5-procentowy wodny roztwór wyciagu slodowego o pH=5,4. Jeden litr tego roztworu poddaje sie sterylizacji w kolbie stozkowej o pojemnosci 2 litrów w ciagu 20 minut w temperaturze 110 °C, nastepnie przeszczepia sie 5,10* konidiów z dwudziestodniowej kultury agaro¬ wej przeszczepów otrzymanych z jednego zarodnika szczepu z Nowej Gwinei i poddaje sie inkubacji w ciagu 3 dni w obrotowej wytrzasarce w tempe¬ raturze 23 °C. Powstaje gesta kultura zlozona z drobnych platków grzybni. Platki skladaja sie z luznych klebków strzepków i posiadaja srednice od 2—4 mm. Nie daje sie wykryc zadnych alka¬ loidów.W celu otrzymania wiekszych ilosci wstepnej kul¬ tury, przeszczepia sie 5.109 konidiów w szklanym aparacie do fermentacji, zawierajacym 10 1 tego samego medium, i poddaje dojrzewaniu w ciagu 3 dni w temperaturze 23 °C przepuszczajac powie¬ trze z szybkoscia 6 1 powietrza na minute oraz mie¬ szajac z szybkoscia 200 obrotów mieszadla na mi¬ nute. Dla zwalczania piany stosuje sie emulsje sili¬ konowa. Otrzymane w aparacie fermentacyjnym kultury sa takiej samej jakosci jak kultury otrzy¬ mane przez wytrzasanie. Dla glównej kultury oka¬ zuje sie szczególnie korzystna pozywka, zawiera¬ jaca w 1 1 wody destylowanej: sorbit 50 g kwas bursztynowy 36 g KH1PO4 2 g MgSOi 0,3 g FeS04 1 mg • 7 H2O Z11SO4 10 mg • 7 H2O o pH=5,4 ustalonym za pomoca NH4OH.O wplywie jonów cynku i zelaza na wzrost grzy¬ ba i zawartosc alkaidów w roztworze kultury infor¬ muja dwie nastepujace tablice: 1. Wzrost wyrazony w g suchej grzybni na 1 litr roztworu kultury ZnS04»7 H2O w mg/l 0 1 FeS04 0 7.2 4,2 • 7 H2O w mg/l 1 1 6,1 U.7 10 6,1 17,1 | 15 20 25 80 85 45 50 55 605 5«1« • 2. Zawartoftc alkaloidów Wszedzie 1 mg FeS04«7 HO na 1 litr roztworu kultury 1 ZnSO* • 7 H2O w mg/l 1 ° 1 15 60 Zawartosc alkaloidów w mg/l. 8 1060 985 950 Pozywke te zaszczepia sie 10-procentowym roz¬ tworem trzydniowej kultury wstepnej i poddaje inkubacji w porcjach po 100 ml w kolbach stozko¬ wych o pojemnosci 500 ml, umieszczonych w wy¬ trzasarce rewersyjnej w temperaturze 23 °C. Dal¬ sze kultury poddaje sie rozmnazaniu w analogiczny sposób w aparacie de fermentacji, zawierajacym 170 1 pozywki, wykonanym ze stali nierdzewnej.Przepuszcza sie przy tym powietrze z szybkoscia 170 1 na minute oraz miesza sie poczatkowo z szyb¬ koscia 70 obrotów na minute, pózniej 180 obrotów na minute. W celu zwalczania piany stosuje sie emulsje silikonowa.W ten sposób powstaja kultury, zlozone z licznych jednakowych czastek grzybni. Ich srednica wynosi okolo 5 mm oraz posiadaja one kuliste, zwarte jadro o srednicy okolo 1 mm utworzone z tkanki pseudoparenchymatycznej. Jadro to posiada roz¬ mieszczone gwiazdziscie, dlugosci okolo 2 mm wy¬ rostki z równolegle ulozonych strzepków. Pod ko¬ niec dziesieciodniowego okresu istnienia kultury grzybnia jest jasnobrunatna, a przesacz zabarwiony intensywnie na kolor czerwonobrunatny.Tak otrzymany przesacz kultury moze byc pod¬ dawany na przyklad nastepujacej przeróbce: 20 1 przesaczu kultury traktuje sie okolo 1,2 kg sody az do ustalenia pH = 9,75 i trzykrotnie ekstrahuje sie 20 1 chlorku etylenu. Faze organiczna przemywa sie jeden raz 5 1 wody i nastepnie zageszcza sie w prózni do ogólnej objetosci 4 L Koncentrat ekstrahuje sie trzykrotnie 1115 procentowego kwa¬ su winowego. Wyciagi kwasu winowego traktuje soda do pH — 9,0 i ekstrahuje trzykrotnie 2 1 chlorku etylenu. Wyciagi przemyte mala iloscia wo¬ dy i wysuszone siarczanem daja 16,7 g zasad, które wedlug van Urka zawieraja 12,2 g substancji indo- lowych, wzglednie po badaniu chromatografia bibu¬ lowa zawieraja 11,3 g zmydlajacyeh sie indoli.Tak otrzymana mieszanina zasad, po zanalizowa¬ niu metoda chromatografii bibulowej wykazuje na¬ stepujacy sklad: amid kwasu amid kwasu ergobazyna ergobazynina chanoklawina elimoklawina penniklawina lizergowego izolizergowego 45«/e 42°/e 3Vt 3Vo 3Vo 2% 2*/o Wychodzac z kultury fermentacyjnej otrzymuje sie z niej po 12 dniach hodowli 145 1 przesaczu. Ten przesacz po zalkalizowaniu 2n lugiem sodowym ekstrahuje sie 5 razy 200 1 estru octowego przy pH = 7,4 i 3 razy 200 1 estru octowego przy pH — = 10. Oba wyciagi z octanem etylu zageszcza sie do objetosci 101 i z koncentratu ekstrahuje sie alkaloi- s dy wodnym roztworem kwasu winowego. Wyciagi uzyskane z ekstrakcji wodnym roztworem kwasu winowego ekstrahuje sie po zalkalizowaniu ponow¬ nie przy pH = 7,4 i pH = 10 octanem etylu i po przemyciu mala iloscia wody odparowuje do sucho- 10 sci. Pozostalosc ekstrakcyjna po zanalizowaniu metoda chromatografii bibulowej wykazuje naste¬ pujacy sklad: amid kwasu lizergowepo amid kwasu izolizergowego ergobazyna ergobazynina chanoklawina elomoklawina agroklawina penniklawina 60*/. 21»/t *•/• */• 2Vt Xh 2Vt !•/• Otrzymana mieszanina jest szczególnie bogata w amid kwasu lizergowego wzglednie amid kwasu izolizergowego. Oba te zwiazki w przeciwienstwie 25 do naturalnych alkaloidów sporyszu, takich jak na przyklad ergobazyna daja sie znacznie latwiej hy- / drolizowac do wolnego kwasu lizergowego, który jest waznym produktem posrednim dla syntezy w^ysokoaktywnych preparatów farmaceutycznych. 80 W razie potrzeby mozna równiez te hydrolize prze¬ prowadzac bezposrednio w cyklu roboczym, wy¬ dzielajac mieszanine alkaloidów z przesaczu kultu¬ ry, na przyklad w nastepujacy sposób: 16,7 g otrzymanej wedlug powyzszej metody mie- 80 szaniny surowych alkaloidów rozpuszcza sie w 50 procentowym alkoholu i alkaliczny roztwór po do¬ daniu 75 g wodorotlenku barowego i 2 g dwutionia- nu sodowego ogrzewa sie w ciagu H godziny pod chlodnica zwrotna. 40 Do oziebionej mieszaniny reakcyjnej dodaje sie 16 ml stezonego amoniaku i 218 ml 2n kwasu siar¬ kowego. Nastepnie osad odfiltrowuje sie. Pozo¬ stalosc odszlamowuje sie jeszcze 5 razy za pomoca 200 ml goracej mieszaniny metanolu i amoniaku 45 (9:1). Przesacz oczyszcza sie przez przemywanie roztworem mieszaniny metanolu i amoniaku i za¬ geszcza w prózni. Tak otrzymany surowy kwas li- zergowy wytraca sie z mieszaniny o zawartosci 75 ml metanolu i 75 ml 2n lugu sodowego przez 50 dodatek 33 ml lodowatego kwasu octowego. Wydaj¬ nosc czystego kwasu lizergowego wynosi 6,5 g. PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe x 55 Sposób wytwarzania amidów kwasu lizergowego i izolfzergowego na drodze mikrobiologicznej, ina- mienny tym, ze tworzacy konidia szczep Claviceps paspali Stevens et Hall nr NRRL poddaje sie gle¬ binowej hodowli saprofitycznej na pozywce, skla- 60 dajacej sie z polialkoholu jako zródla wegla, soli amonowej kwasu organicznego jako zródla azotu i soli mineralnych, uzyskana mase saczy, a z prze¬ saczu wyodrebnia amidy kwasu lizergowego i/lub izolizergowego przez ekstrakcje organicznym roz- 65 puszczalnikiem. PL
PL102466A 1963-08-29 PL52116B1 (pl)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL52116B1 true PL52116B1 (pl) 1966-08-25

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI112503B (fi) Polysyklisiä antiparasiittisia aineita ja niiden käyttö
SK722589A3 (en) Fungi strain tolypocladium varium and microbial process for the production of cyclosporine complex
US3183172A (en) Obtaining psilocybin and psilocin from fungal material
Volk Antialgal activity of several cyanobacterial exometabolites
De Vogel et al. A Rapid Screening Test for Aflatoxin‐synthesizing Aspergilli of the flavus‐oryzae Group
Drews et al. Production of protochlorophyll, protopheophytin, and bacteriochlorophyll by the mutant A1a of Rhodopseudomonas capsulata
TW212182B (pl)
KR960016874B1 (ko) 미생물에 의한 트랜스-4-히드록시-l-프롤린의 제조방법
PL52116B1 (pl)
CN110066283A (zh) 一种吲哚二酮哌嗪类生物碱及其制备方法和用途
US3224945A (en) Process for the production of ergot alkaloids
US3853709A (en) Process for preparing nebramycin factors ii and vii
CA1154699A (en) FERMENTATION PROCESS FOR THE PREPARATION OF ERGOT ALKALOIDS, PRIMARILY ERGOCORNINE AND .beta.- ERGOCRYPTINE
US4128563A (en) Allylic methyl-hydroxylated novobiocins
US3219545A (en) Microbiological production of lysergic acid derivatives
US5266484A (en) Streptomyces spectabilis strains employed for producing streptovaricin C
US3975235A (en) Process for the production of cephamycin type antibiotic substances
DE3881566T2 (de) Antitumor-derivate, verfahren zu ihrer herstellung und pharmazeutische zusammensetzungen, die sie enthalten.
RU2065462C1 (ru) Способ получения красителя
Shirane et al. Mineral salt medium for the growth of Botrytis cinerea in vitro
JPH01273598A (ja) ミクソコッカスからの新規抗生物質
US5236929A (en) Compound uca1064-b
MC493A1 (fr) Nouveau procédé microbiologique
US3485722A (en) Fermentative process for producing ergocryptine
JPH03294289A (ja) 新規抗かび性抗生物質2′―デメチルベナノマイシンaならびにその製造法