PL43326B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL43326B1
PL43326B1 PL43326A PL4332659A PL43326B1 PL 43326 B1 PL43326 B1 PL 43326B1 PL 43326 A PL43326 A PL 43326A PL 4332659 A PL4332659 A PL 4332659A PL 43326 B1 PL43326 B1 PL 43326B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
mushroom
psilocybe
water
psilocybin
heim
Prior art date
Application number
PL43326A
Other languages
Polish (pl)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL43326B1 publication Critical patent/PL43326B1/pl

Links

Description

Wynalazek dotyczy sposobu otrzymywania z pewnych gatunków grzybów dotychczas nie¬ znanych substancji o dzialaniu psychotropo¬ wym, psylocybiny i psylocyny. Sposób wedlug wynalazku polega na tym, ze z Psilocybe mexicana Heim albo ze sztucznie wyhodowane¬ go materialu grzybowego, otrzymanego z kul¬ tur lub biologicznych wariantów albo mutan¬ tów tego grzyba przez zaszczepianie natural¬ nych lub sztucznych pozywek i dojrzewanie tych kultur na swietle lub w ciemnosci w sta¬ lej temperaturze miedzy 18 i 27°C, ekstrahuje sie wedlug znanych metod substancje czynne a nastepnie oczyszcza, oddziela od siebie i ewentualnie uwalnia od chlorowca.Prócz tego stwierdzono, ze psylocybine i psy- locyne mozna otrzymac w stanie czystym zgodnie z wyzej przytoczonym sposobem po¬ stepowania, wychodzac z materialu grzybowego *) Wlasciciel patentu oswiadczyl, ze twórca wynalazku jest Roger Cailleux. pochodzenia naturalnego rodzajów Psilocybe, Stropharia, Conocybe, Panaeolus, Amanita lub Russula lub ze sztucznie wyhodowanego mate¬ rialu grzybowego, otrzymanego z kultur po¬ szczególnych gatunków grzybów albo ich bio¬ logicznych wariantów lub mutantów.Jest juz rzecza znana (R. Heim, Cr. hebd.Seances Acad. Sci. 242, 965 (1956)), ze szereg gatunków grzybów pochodzenia naturalnego z Meksyku, Wschodniej Syberii, Kamczatki i in¬ nych krajów Azji i Ameryki stosuje sie do celów rytualnych lub jako uzywki albo srodki oszalamiajace. Wywoluja one swoiste dzialanie na cialo, a przede wszystkim na psychike czlo¬ wieka. Przy tych, tak zwanych grzybach halu- cynacyjnych chodzi o nastepujace rodzaje: Psi¬ locybe, Stropharia, Panaeolus, Conocybe, Ama¬ nita, Russula. Dotychczas nie udalo sie jednak wyizolowac substancji czynnych ani z grzybów pochodzenia naturalnego ani z materialu grzy¬ bowego sztucznie wyhodowanego. Nie potra¬ fiono równiez wychodzac z grzybów (o wlasci-wosciach halucynacyjnych) pochodzenia natu¬ ralnego wyhodowac w laboratorium takich gatunków, w których tworzylyby sie substancje czynne w ilosci wystarczajacej do otrzymania tych cial w skali preparatywnej.Wynalazek dotyczy sposobu, wedlug którego * mozna otrzymac dotychczas nieznane substan- cje czynne gatunków grzybów halucynacyjnych, ^pfzede wszystkim Psiilocybe mexicana Heim, Psilocybe caerulescens Murrill var. Mazateco- rum Heim, P. caerulescens Murrill var. nigri- pes Heim, P. Zapotecorum Heim, P. semper- viva Heim i Cailleux, P. Aztecorum Heim, Stropharia cubensis Earle. Te substancje czyn¬ ne mozna otrzymac w stanie czystym wedlug znanych metod, albo bezposrednio z materialu grzybowego pochodzenia naturalnego albo z materialu grzybowego wyhodowanego z kul¬ tur, wywodzacych sie z naturalnych lub z sztucznych substratów, przy czym hodowle tych kultur prowadzi sie wedlug takich me¬ tod, które pozwolilyby otrzymac substancje czynne w ilosci technicznie przydatnej.Sposób postepowania jest przewaznie naste¬ pujacy: dla hodowli na naturalnych substratach sporzadza sie kompost z przefermentowanej slomy pszenicznej, mieszanki lisci i lodyg ku¬ kurydzy oraz zdzbel dzikiej trawy, który na¬ stepnie przemywa sie duza iloscia biezacej wo¬ dy, rozdrabnia w glinianej misie i sterylizuje w autoklawie. Kompost zaszczepia sie grzybnia z pierwotnych kultur i poddaje dojrzewaniu w ciagu okolo dwóch tygodni w temperaturze 24—27°C, kultury zas pokrywa sie sterylnym piaskiem i pozostawia w temperaturze 18—27°C w szklanych skrzynkach na swietle dziennym, utrzymujac przy tym stala wilgotnosc. Po czterech do pieciu tygodniach ukazuja sie owoc¬ nie: zbiory nastepuja w ciagu jednego do dwóch miesiecy od zaczecia tworzenia sie za¬ rodników.Poniewaz jednak otrzymanie na tej drodze wiekszych ilosci materialu wyjsciowego jest klopotliwe, opracowano inne metody hodowli.Stwierdzono przy tym nieoczekiwanie, ze grzy¬ by in vitro nastawione na substratach boga¬ tych w pozywke tworza zamiast grzybni z owoc¬ niami w duzej ilosci prawie wylacznie aktywna grzytfhie i czesciowo sklerocje, zas na substra¬ tach ubogich w pozywke znane owocnie. Na przyklad dla pozywki na podlozu agarowym (o zawartosci 1,5% agaru) optimum wytwarza¬ nia sie owocni lezy przy stezeniu suchej sub¬ stancji ekstraktu slodowego od 0,2—0,7%, na¬ tomiast optimum wytwarzania sie grzybni i sklerocji lezy przy stezeniu 4—10% zaleznie od gatunku grzyba.Podczas gdy do tworzenia sie owocni nie¬ zbedne jest swiatlo dzienne, stwierdzono w przeciwienstwie do tego, ze przy dojrzewa¬ niu kultur w ciemnosci zachodzi glównie ob¬ fite wytwarzanie sie sklerocji lub grzybni.Najlepsze wydajnosci aktywnego materialu grzybowego (grzybni i sklerocji) otrzymuje sie wtedy, gd^ kultury powierzchniowe nastawi sie na roztworze pozywki z ekstraktu slodo¬ wego (brzeczki piwnej lub handlowego prepa¬ ratu ekstraktu slodowego) o zawartosci 4—10% suchej substancji i gdy te kultury pozostawi sie do dojrzewania w ciemnosci w stalej tem¬ peraturze miedzy 22—26°C. Dla dobrego wzro¬ stu nalezy dodac do roztworu pozywki 0,2% agaru. W tym prawie cieklym osrodku grzyb znajduje dostateczny punkt oparcia do szybkie¬ go wytworzenia zamknietej pokrywy grzybni.Dodatek soli Fe11 jest niezbedny, oprócz tego okazuje sie, ze bardzo korzystnie wplywaja dodatki soli cynku, potasu, wapnia i magnezu, zawierajace jony azotanowe, fosforanowe i siar¬ czanowe, jak równiez ekstraktu drozdzowego lub namoku kukurydzianego.Ten sposób hodowli oznacza wielki postep techniczny, gdyz pozwala w krótszym czasie i przy mniejszyin nakladzie pracy w porówna¬ niu z hodowla na naturalnych substratach, otrzymac ponad dziesieciokrotnie wieksza wy¬ dajnosc aktywnego materialu wyjsciowego.Aktywny material grzybowy (owocnie, skle¬ rocje lub grzybnie) suszy sie ostroznie w stru¬ mieniu powietrza lub w prózni w temperaturze 20—40°C, drobno miele i dokladnie ekstrahuje woda, nizszym alkoholem alifatycznym iub mieszanina wody i rozpuszczalnika organicz¬ nego mieszajacego sie z woda. Ekstrakcje przeprowadza sie w temperaturze pokojowej.Ektrakty odparowuje sie w prózni w niskiej temperaturze, a pozostalosc odtluszcza sie ete¬ rem naftowym i ekstrahuje acetonem lub mieszanina chloroform-alkohol, w celu uwol¬ nienia jej od nieaktywnych substancji towarzy¬ szacych. Pozostale substancje balastowe oddzie¬ la sie przez rozpuszczenie pozostalosci w moz¬ liwie malej ilosci wody i powtórne wytracenie za pomoca bezwodnego etanolu albo acetonu.Przesacz odparowuje sie w prózni w niskiej temperaturze.Dalsze oczyszczanie odbywa sie na drodze chromatograficznej w kolumnie z proszkiem - 2 -celulozowym. Eluacje przeprowadza sie za po¬ moca butanolu nasyconego woda lub innego alkoholu nie mieszajacego sie z woda. Pobrane frakcje poddaje sie próbie z odczynnikiem Kellera (chlorek zelaza w kwasie octowym i stezony kwas siarkowy) na zawartosc sub¬ stancji czynnych. Frakcje wykazujace dodatnia reakcje barwna laczy sie i w razie potrzeby poddaje ponownemu rozdzieleniu na kolumnie chromatograficznej wypelnionej proszkiem celu¬ lozowym. Z chromatogramu eluuje sie strefe szybciej przesuwajaca sie, k-tórla daje czysto niebieskie zabarwienie w reakcji Kellera, i z której otrzymuje sie substancje czynna zwana „psylocyna", podczas gdy z wolniej przesuwajacej sie strefy otrzymuje sie druga, przewazajaca pod wzgledem ilosciowym sub¬ stancje czynna „psylocybine", która daje fiole¬ towa reakcje barwna.Otrzymane z kolumny juz w dosc czystej postaci substancje czynne, zawieraja chloro¬ wiec i z tego wzgledu nie krystalizuja. Dopie¬ ro na drodze obróbki chemicznej mozna usu¬ nac chlorowiec, przez co otrzymuje sie zwiazki zdolne do krystalizacji. W tym celu roztwór wodny cial czynnych traktuje sie weglem srebrowym a przesacz uwalnia sie od nadmiaru jonów srebrowych za pomoca siarkowodoru.Nastepnie przesacz zageszcza sie w prózni w niskiej temperaturze, przy czym ze stezo¬ nego roztworu krystalizuja substancje czynne.Do celów analitycznych psylocybine pod¬ daje sie ponownemu przekrystalizowaniu z me¬ tanolu lub z wody. Z wody otrzymuje sie drob¬ ne, snieznobiale igielki, z metanolu — bezbarw¬ ne szesciokatne plytki lub pryzmy, zawierajace metanol, które topia sie z rozkladem w tempe¬ raturze 195—200°C. Otrzymany zwiazek rozpu¬ szcza sie w 120 czesciach objetosciowych wrza¬ cego metanolu lub w 20 czesciach objetoscio¬ wych wrzacej wody: w wyzszych alkoholach lub w innych rozpuszczalnikach organicznych jest on bardzo trudno rozpuszczalny lub cal¬ kowicie nierozpuszczalny.Do analizy suszy sie czysta substancje w prózni w temperaturze 100°C, przy czym nastepuje ubytek ciezaru równy 10,4%. Wyniki analizy elementarnej odpowiadaja wzorowi sumarycznemu Cs2Hl704N2P (ciezar czasteczko¬ wy 284,2). Psylocybina jest zwiazkiem amfote- rycznym, optycznie nieczynnym i rozpuszcza sie latwo z wytworzeniem soli w rozcienczo¬ nych wodnych roztworach kwasów mineral¬ nych i alkaliów. Roztwór psylocybiny w 80%-g- wym roztworze wodnym etanolu reaguje slabo kwasno (pH = 5,2). Widmo ultrafioletowe w roz¬ tworze metanolowym wykazuje maksima przy 222, 267 i 290 m jjl .Do analizy psylocyne oczyszcza sie przez po¬ nowne chromatografowanie na kolumnie wy¬ pelnionej proszkiem celulozowym za pomoca nasyconego woda butanolu lub przez traktowa¬ nie kwasnym weglanem sodowym w roztworze wodnym i wytrzasanie z eterem lub innym rozpuszczalnikiem organicznym. Wyniki analizy elementarnej odpowiadaja wzorowi sumarycz¬ nemu Ci2H16N02. Psylocyna krystalizuje z me¬ tanolu lub z acetonu: jest ona umiarkowanie rozpuszczalna w wodzie a latwo rozpuszczalna w rozcienczonym kwasie. Temperatura topnie¬ nia 173—176°C (rozklad).Psylocyna charakteryzuje sie widmem ultra¬ fioletowym (w roztworze metanolowym) o mak¬ simach przy 222, 260, 267, 283 i 293 mp, oraz reakcja barwna Kellera, w której w przeci¬ wienstwie do psylocybiny daje zabarwienie czysto niebieskie.Przy wstrzykiwaniu podskórnym lub poda¬ waniu doustnym 2—8 mg psylocybiny wywoluje ona u ludzi objawiajace sie na zewnatrz po¬ czucie blogostanu, któremu towarzyszy brak pobudliwosci i apatia. Przy wyzszych dawkach wystepuja obok objawów wegetatywnych pew¬ ne dostrzegalne zmiany zewnetrzne. Omówione zwiazki moga byc stosowane do badania cho¬ rób umyslowych i psychoz róznorodnego po¬ chodzenia oraz moga byc stosowane jako sku¬ teczny srodek pomocniczy przy leczeniu psycho¬ terapeutycznym psychicznie chorych.Przyklad 1. Psylocybina i psylocyna z Psi- locybe mexicana Heim pochodzenia naturalne¬ go.Do hodowli na naturalnym substracie spo¬ rzadza sie kompost z przefermentowanej *slomy pszenicznej. Kompost przemywa~ sie duza ilos¬ cia biezacej wody, rozdrabnia w glinianej misie, sterylizuje w autoklawie, a nastepnie zaszczepia grzybnia z pierwotnych kultur i pod¬ daje dojrzewaniu w ciagu okolo 2 tygodni w temperaturze 24—27°C. Po tym czasie kul¬ tury przykrywa sie sterylnym piaskiem i pozo¬ stawia w szklanych skrzynkach na swietle dziennym w temperaturze 21—22°C. Po 4 do 5 tygodniach pojawiaja sie owocnie: zbiór na¬ stepuje w ciagu jednego do dwóch miesiecy od chwili kiedy zaczely sie tworzyc zarodniki. - 3 -Dojrzale owocnie Psylocybe mexicana * Heim suszy sie nastepnie ostroznie w strumieniu po¬ wietrza w temperaturze 30°C. 54 g wysuszo¬ nych grzybów miele sie drobno i wytrzasa jeden raz z 600 nil i trzykrotnie z 300 ml metanolu . w ciagu 1/2 godziny. Ekstrakty oczyszcza sie i odparowuje w prózni do su¬ chosci. Pozostalsc 12 g.Pozostalosc po ekstrakcji metanolem uciera sie czterokrotnie z 250 ml eteru naftowego i jeszcze i» razy ze 100 ml chloroformu z do¬ datkiem 10% alkoholu w celu usuniecia tlusz¬ czów. Nierozpuszczona jeszcze pozostalosc roz¬ puszcza sie w 10 ml wody i powoli zadaje 100 ml absolutnego alkoholu, przy czym roz¬ twór wzbogaca sie w substancje czynna. Te operacje powtarza sie jeszcze 2 lub 3 razy.Zdekantowane roztwory odparowuje sie w prózni do suchosci, ponownie rozpuszcza w me¬ tanolu i zadaje 20 g proszku celulozowego z dodatkiem 5% wody. Metanol ponownie od¬ parowuje sie w prózni a proszek celulozowy obciazony substancja czynna wprowadza sie do kolumny wypelnionej 100 g sproszkowanej ce¬ lulozy z dodatkiem 5% wody (kolumne oczysz¬ cza sie uprzednio przez przemycie butanolem nasyconym woda). Eluacje przeprowadza sie za pomoca butanolu nasyconego woda i odbie¬ ra sie frakcje po 20 ml. Pozostalosc po odpa¬ rowaniu poszczególnych frakcji poddaje sie próbie na zawartosc substancji czynnych za pomoca barwnej reakcji Kellera. W tym celu 0,25 mg próbki z pozostalosci po odparowaniu traktuje sie 2 ml odczynnika Kellera.Frakcje o dodatniej reakcji barwnej laczy sie. Bezpostaciowy piroszek rozpuszcza bie w 20 ml wody i wytrzasa z 0,5 g weglanu srebrowego. Po przesaczeniu usuwa sie z roz¬ tworu jony srebrowe za pomoca siarkowodoru a nastepnie roztwór ostroznie zageszcza sie.Ze stezonego roztworu krystalizuje psylocybina pxl postacia bezbarwnych, drobnych igiel (wy¬ dajnosc 200 mg).Psylocyne otrzymuje sie z owocni tylko w ilosciach sladowych.Psylocybine otrzymuje sie w stanie anali¬ tycznie czystym po powtórnym przekrystalizo- waniu z metanolu lub wody. Rozpuszcza sie ja w 120 czesciach wagowych wrzacego me¬ tanolu lub w 20 czesciach wagowych wody w temperaturze wrzenia. Z metanolu otrzymuje sie bezbarwne pryzmy, które topia sie w tem¬ peraturze 195—220°C z równoczesnym rozkla¬ dem.Podane wartosci odpowiadaja wedlug analizy wzorowi sumarycznemu CiaH^Oa^P^ Widmo ultrafioletowe otrzymane w metanolu wykazuje nastepujace maxima: 222 m[i , 267 m[j, i 290 m^ Nowa substancja czynna posiada charakter amfoteryczny. Rozpuszcza sie ona zarówno w rozcienczonych wodnych roztworach alka¬ liów jak równiez w wodnych roztworach kwa¬ sów. Roztwór psylocybiny w 80%-owym wod¬ nym roztworze alkoholu reaguje kwasno (pH-5,2).Przyklad II. Otrzymywanie psylocybiny i psylocyny z Stropharia cubensis Earle po¬ chodzenia naturalnego.Owocnie Stropharia cubensis Earle zebrane w Meksyku suszy sie na powietrzu, w cieniu, w temperaturze pokojowej. 24,2 g wysuszonej owocni miele sie drobno i wytrzasa sie w tem¬ peraturze pokojowej jeden raz z 300 ml i trzy razy z 150 mi metanolu w ciagu 1/2 godziny.Ekstrakty laczy sie i odparowuje w prózni do suchosci. Pozostalosc (6 g) w celu odluszczenia uciera sie czterokrotnie z 125 ml eteru nafto¬ wego a nastepnie trzykrotnie z 50 ml chloro- fcjrmu zawierajacego 10% etanolu. Nieroz¬ puszczona jeszcze reszte w ilosci okolo 5 g rozpuszcza sie w 5 ml wody i z roztworu tego wytraca sie inne substancje towarzyszace, przez powolne traktowanie 50 ml absolutnego etanolu, przy czym roztwór wzbogaca sie w substancje czynne. Oczyszczanie na tej sa¬ mej drodze powtarza sie jeszcze dwu- lub trzykrotnie. Zdekantowane roztwory laczy sie i odparowuje w prózni do suchosci. Pozosta¬ losc roztwarza sie w metanolu i traktuje 10 g proszku celulozowego z dodatkiem 5% wody.Metanol odparowuje sie w prózni a proszek celulozowy zawierajacy substancje czynna wprowadza sie na kolumne wypelniona 50 g proszku celulozowego zawierajacego 5% wody (uprzednio kolumne przemywa sie butanolem nasyconym woda). Eluacje przeprowadza sie za pomoca nasyconego Woda butanolu i od¬ biera frakcje po 10 ml. Poszczególne frakcje odparowuje sie w wysokiej prózni przy tem¬ peraturze lazni najwyzej 50CC i przeprowadza próbe na zawartosc substancji czynnych za pomoca lodowatego kwasu octowego, zawie¬ rajacego chlorek zelazowy oraz stezonego kwa¬ su siarkawego. W tym celu próbki pozostalosci po 8,85 rtig traktuje sie 2 cm3 odczynnika Kel- - 4 -lera. Frakcje czynne daja fioletowe (psylocybi- na) lub czysto niebieskie (psylocyna) zabarwie¬ nie w reakcji Kellera.Frakcje dajace dodatnia reakcje barwna o tym samym zabarwieniu laczy sie razem.Bezpostaciowy proszek otrzymany jako pozo¬ stalosc po odparowaniu powyzszych frakcji rozpuszcza sie w 2 ml wody i wytrzasa z 0,25 g weglanu srebrowego. Po przesaczeniu usuwa sie nadmiar jonów srebrowych siarkowodorem.Z roztworu zageszczonego w warunkach za¬ chowawczych krystalizuje psylocybina pod po¬ stacia bezbarwnych drobnych igiel. Otrzymuje sie 58 g krystalicznej psylocybiny, oo odpowia¬ da wydajnosci 0,24% w odniesieniu do wysu¬ szonej owocni, oraz slady psylocyny.Przyklad III. Otrzymywanie psylocybiny i psylocyny z czystych kultur Psilocybe sem- perviva Heim et Cailleux. a. Otrzymywanie szczepionki: Czyste kultury z zarodników meksykanskich grzybów kapeluszowych Psilocybe semperviva Heim et Cailleux wprowadza sie na pozywke z brzeczki piwnej i agaru. W tym celu zarod¬ niki opadajace z blaszek dojrzalej owocni chwyta sie na sterylna podstawke, wprowadza na brzeczke piwna z agarem i poddaje dojrze¬ waniu. Z tak wytworzonych kultur pierwot¬ nych otrzymuje sie w nastepujacy sposób ma¬ terial do zaszczepienia: Grzybnie przy sterylnym doplywie wody ze- skrobuje sie ostra lopatka tak, ze powstaje zawiesina zawierajaca drobne klaczki grzybni.Ta zawiesina zaszczepia sie kolbki Erlenmeye- ra, które zawieraja pozywke i wypelnienia porcelanowe w ksztalcie siodelkowatym. Naj¬ lepiej przeprowadza sie doswiadczenia w kolb- kach Erlenmeyera o pojemnosci 300 ml, za¬ wierajacych 50 g wypelnienia w ksztalcie siodelkowatym (wielkosc 1 cm, ciezar okolo 0,9 g) i 80 ml pozywki, skladajacej sie z brzecz¬ ki piwnej o zawartosci okolo 4% suchej sub¬ stancji i 0,2% agaru.Kultura dojrzewa w temperaturze 24°C, po uplywie dwóch tygodni tworzy sie na po¬ wierzchni scisla pokrywa grzybni. Cala kultu¬ re wytrzasa sie w ciagu 30 minut na wstrza- sarce obrotowej, przy czym siodelkowate wy¬ pelnienie swymi ostrymi krawedziami powoduje zmielenie grzybni. Wytwarza sie przy tym drobna zawiesina klaczków grzybni. Tak otrzymana szczepionka wystarcza do zaszcze¬ pienia 50 litrów pozywki. b. Otrzymywanie kultury: Swieza jasna brzeczke piwna bez- dodatku chmielu rozciencza sie woda do zawartosci 8% suchej substancji/ Jeden litr tego roztworu zawiera: FeS04 . 7H20 0,00417 g ZnSC4 • 7H20 0,00172 g Ca(N03)2 1,0 g KI12P04 0,0624 g MgS04 . 7H20 0,0624 g KC1 0,0312 g Agar-Agar 2,0 g Te pozywke rozlewa sie w porcjach po 1 li¬ trze do kolb penicylinowych i sterylizuje w autoklawie w ciagu 25 minut w tempera¬ turze 108CC. Po ochlodzeniu zaszczepia sie za¬ wartosc kolb za pomoca 2 ml zawiesiny, P. semperviva Heim et Cailleux. Otrzymane kultury dojrzewaja w ciemnosci w temperatu¬ rze 24—26°C. Wytwarza sie pokrywa grzybni, jak opisano pod Ilia. c. Wyodrebnienie materialu grzybowego: Po siedmiu tygodniach dojrzala kulture prze¬ sacza sie przez gaze, material grzybowy wy¬ ciska i susz^ w prózni w temperaturze 30°C.Z jednej szarzy 100 kolb penicylinowych, za¬ wierajacych 100 litrów pozywki otrzymuje sie przy zbiorze po uplywie 49 tygodni 2540 g suchego materialu, to jest 25,4 g na litr na¬ stawionej pozywki. Przesacz z kultury, który zawiera takze pewna ilosc substancji czynnych, poddaje sie obróbce w taki sam sposób jak ponizej opisany material grzybowy. d. Otrzymywanie substancji czynnych: 306 g wysuszonego materialu grzybowego poddaje sie dokladnemu sproszkowaniu i wy¬ trzasa trzykrotnie z chloroformem w ilosci po 500 ml a nastepnie trzykrotnie z chloroformem zawierajacym 10% etanolu w ilosci po 500 ml.Nieaktywne substancje towarzyszace przecho¬ dza przy tym do roztworu w ilosci 2,8 g.Wstepnie wyekstrahowany material grzybowy luguje sie wyczerpujaco jeden raz 3 litrami i trzykrotnie po 1,5 litra metanolu. Polaczone wyciagi odparowuje sie pod zmniejszonym cisnieniem do suchosci, przy czym pozostaje jasno brunatny osad w ilosci 17,5 g. W celu oddzielenia od zanieczyszczen tluszczowych roz¬ puszcza sie ten osad w 17,5 ml wody a za¬ wiesine wytrzasa jeden raz z 500 ml i dwa razy z eterem naftowym w ilosci po 250 ml.Roztwór w eterze naftowym zawiera 0,75 g nieaktywnych substancji towarzyszacych.: Po- - 5 -zostaly roztwór wodny zageszcza sie w prózni do okolo 25 ml i zadaje przy silnym miesza¬ niu 250 ml absolutnego etanolu. Roztwór za¬ wierajacy substancje czynne oddziela sie przez dekantacje od powstalego przy tym kleistego osadu. Osad ponownie rozpuszcza sie w malej ilosci wody i traktuje dziesieciokrotna iloscia absolutnego alkoholu etylowego. To oczyszcza¬ nie osadu przez stracanie powtarza sie jeszcze dwukrotnie. Roztwory laczy sie i odparowuje w prózni do suchosci. Otrzymuje sie 11,7 g pozostalosci, która zawiera calkowita ilosc substancji czynnych.Do chromatografii w kolumnie celulozowej pozostalosc rozpuszcza sie w mozliwie niewiel¬ kiej ilosci 50%-owego metanolu a otrzymany roztwór dokladnie miesza z 40 g proszku ce¬ lulozowego i suszy w prózni. Proszek celulozo¬ wy obciazony w ten sposób substancja wpro¬ wadza sie na kolumne celulozowa, której wy¬ pelnienie przygotowano przez odszlamowanie S50 g-proszku celulozowego za pomoca butanolu nasyconego woda. Chromatogram rozwija sie za pomoca butanolu nasyconego woda, przy czym oddziela sie frakcje po 100 ml i odpa¬ rowuje w wysokiej prózni przy temperaturze lazni nie przekraczajacej 50°C. Srednie frakcje (3,35 g), które daja dodatnia reakcje barwna z odczynnikiem Kellera oczyszcza sie jeszcze raz przez chromatografowanie na proszku ce¬ lulozowym.Przy rozwijaniu chromatogramu za pomoca butanolu nasyconego woda, oddziela sie frak¬ cje po 50 ml i po odparowaniu w wysokiej prózni przy temperaturze lazni najwyzej 50°C, poddaje próbie na barwna reakcje Kellera.Otrzymuje sie przy tym nastepujacy podzial: Frakcja nr. Pozostalosc Barwna reakcja mg Kellera 1 — 7 8 — 16 17 — 20 21 — 30 31 — 43 1270 87 79 1053 758 ujemna czysto niebieska ujemna fioletowa ujemna Pozostalosc z frakcji 8—16 (87 mg) dostarcza po traktowaniu weglanem srebrowym 45 mg czystej psylocyny, jak opisano w przykladzie II. Frakcje 21—30 (1053 mg) dostarczaja po traktowaniu weglanem srebrowym 765 mg czy¬ stej psylocybiny.W taki sam sposób otrzymuje sie substancje czynne z przesaczu -po kulturze. W tym celu przesacz zageszcza sie, w prózni do okolo 1/10 objetosci. Substancje towarzyszace wytraca sie za pomoca dziesieciokrotnej objetosci metano¬ lu, nastepnie odsacza sie, a roztwór odparowu¬ je w prózni do suchosci i ekstrahuje pozosta¬ losc trzy razy dziesieciokrotna iloscia metano¬ lu. Pozostalosc po odparowaniu ekstraktów me¬ tanolowych poddaje sie dalszej obróbce jak powyzej. Z 12 litrów przesaczu po kulturze otrzymuje sie 80 mg psylocybiny i 6 mg psylo¬ cyny. Ogólna wydajnosc: 845 mg psylocybiny i 51 mg psylocyny, co odpowiada zawartosci 0,28% lub 0,017% w odniesieniu do suchego \ materialu grzybowego.Przyklad IV. Otrzymanie psylocybi¬ ny i psylocyny z czystych kultur Psilocybe me- xicana Heim.W przykladzie tym podaje sie dokladny opis hodowli grzybów Psilocybe mexicana Heim in vitro w celu wytworzenia grzybni i sklerocji, jak równiez otrzymywanie czystych substan¬ cji czynnych.Swieza, pozbawiona chmielu brzeczke piwna rozciencza sie woda do zawartosci 4,0—4,5% suchej substancji. Na kazdy litr tego roztworu dodaje sie: FeS04-7H20 0,00417 g ZnS04-7H20 0,00172 g agar-agar 2,0 g Pozywke te rozlewa sie porcjami po 500 ml do kolb Fernbacha o pojemnosci 1,6 litra i ste¬ rylizuje w autoklawie w ciagu 25 minut w tem¬ peraturze 108°C. Po ochlodzeniu zaszczepia sie zawartosc kolb 2 ml zawiesiny grzyba Psilocy¬ be mexicana Heim. Szczepionke otrzymuje ( sie przez umieszczenie zarodników czystych kultur wymienionych grzybów kapeluszowych na brzeczce piwnej i agarze. Zarodniki opa¬ dajace z blaszek dojrzalej owocni, wprowadza sie na pozywke z brzeczki piwnej i agaru i poddaje dojrzewaniu. Z wytworzonych w ten sposób kultur pierwotnych mozna otrzymac szczepionke w sposób nastepujacy: grzybnie przy sterylnym doplywie wody zeskrobuje sie ostra lopatka tak, ze wytwarza sie zawiesina drobnych klaczków grzybni. Ta szczepionka zaszczepia sie umieszczona w kolbkach Erlen- meyera pozywke (w której umieszczone sa sio¬ delkowate porcelanowe ksztaltki wypelniajace).Najlepiej przeprowadza sie doswiadczenia z kolbami Erlenmeyera zawierajacymi 50 g sio¬ delkowatych ksztaltek wypelniajacych (wiel¬ kosc — 1 cm, ciezar okolo 0,9 g) i 80 ml po¬ zywki, skladajacej sie z brzeczki piwnej o za¬ wartosci 'okolo 4P/o suchej substancji i 0,^% - 6 -'agaru. W czacie dojrzewania w temperaturze 24PC, po~ uplywie 2 tygodni tworzy sie na po¬ wierzchni szczelna pokrywa grzybni. Cala ho¬ dowle wiruje sie w ciagu 30 minut na wstrza- sarce, przy czym ksztaltki siodelkowe rozdrab¬ niaja grzybnie, tak ze powstaje drobna zawie¬ sina klaczków grzybni. Tak otrzymana szcze¬ pionka wystarcza do zaszczepienia 25 litrów pozywki..Zaszczepione kultury dojrzewaja w ciemnosci w temperaturze 24—26°C. Tworzy sie przy tym juz opisana pokrywa grzybni, zacierajaca bardzo liczne sklerocje, które ogólnie biorac osiagaja wielkosc okolo 1 cm (w poszczególnych przy¬ padkach moga byc znacznie wieksze). W celu oddzielenia grzybni i sklerocjii przesacza sie czyste kultury przez gaze, sprasowuje sie i su¬ szy w suszarce w temperaturze 35—40CC. Z jednej szarzy 135 kolb Fernbadha, zawierajacych 67 li¬ trów pozywki, otrzymuje sie przy zbiorze po uplywie 62 dni 1149 g suchego materialu (sklerocji i grzybni), co odpowiada 17,14 g na lrtr nastawionej pozywki.W celu otrzymania substancji czynnych, sproszkowuje sie dokladnie na przyklad 612 g wysuszonego materialu, skladajacego sie z skie¬ rocji i grzybni i ekstrahuje 3 razy chlorofor¬ mem w ilosci po 1 litrze i jeszcze 3 razy chloro¬ formem z dodatkiem 10% etanolu w ilosci po 1 litrze. Do ekstraktu przechodzi przy tym 5,6 g nieaktywnych cial towarzyszacych. Wstepnie wyekstrahowany material grzybowy luguje sie nastepnie dokladnie metanolem (jeden raz w ilo¬ sci 6 litrów i 3 razy w ilosci 3 litrów). Polaczone wyciagi metanolowe odparowuje sie pod zmniej¬ szonym cisnieniem do suchosci i otrzymuje sie przy tym 35 g jasno brunatnej pozostalosci- Te pozostalosc w celu usuniecia zanieczyszczen tlu¬ szczowych zalewa sie 35 ml wody i wytrzasa sie jeden raz z 1 litrem i dwa razy po 0,5 libra eteru naftowego. Eter naftowy zawiera teraz 1,5 g nieaktywnych substancji towarzyszacych.Pozostaly roztwór wodny zageszcza sie uprzed¬ nio w prózni do okolo 50 ml i nastepnie silnie mieszajac zadaje 500 ml bezwodnego etanolu.Roztwór zawierajacy substancje czynne oddzie¬ la sie przez dekantacje od powstalego kleistego osadu. Osad rozpuszcza sie jeszcze raz w malej ilosci wody i ponownie traktuje dziesieciokrot¬ na iloscia bezwodnego alkoholu. Te operacje stracania powtarza sie jeszcze 2 razy. Roztwory laczy sie i odparowuje w prózni do suchosci.Otrzymuje sie stala pozostalosc w ilosci 23,4 g, która zawiera calkowita ilosc substancji czyn¬ nych.Do chromatografowania na kolumnie celulozo¬ wej rozpuszcza sie csad w mozliwie malej ilosci 50%-owego metanolu, a roztwór miesza sie do¬ kladnie z 80 g proszku celulozowego, .po czym tak otrzymany material suszy sie w prózni. Pro¬ szek celulozowy obciazony w ten sposób sub¬ stancja wprowadza sie na kolumne celulozowa, której wypelnienie przygotowano przez odszla- mowanie 700 g proszku celulozowego za pomoca butanolu nasyconego woda. Chromatogram roz¬ wija sie butanolem nasyconym woda, przy czym wydziela sie frakcje po 200 ml, które odparowuje sie w wysokiej prózni w temperaturze lazni nie przekraczajacej 50°C. Otrzymuje sie przy tym nastepujacy podzial: Frakcja nr 1-14 15-34 35-40 Tabela 1 Pozostalosc S 2,170 6,660 3,540 12,370 Reakcja barwna Kellera ujemna dodatnia - ujemna Reszta w ilosci okolo 11 g zostaje zatrzymana na kolumnie.Frakcje 15—34, które dostarczaja lacznie 6,660 g pozostalosci, zawieraja pewna ilosd substancji czynnych. W celu dalszego oczyszczenia poddaje sie je ponownie chroim&tografawaniu w sposób ponizej opisany. 6,6 g pozostalosci rozpuszcza sie w mozliwie malej ilosci metanolu, otrzymanym roztworem nasyca sie'20 g proszku celulozowe¬ go, suszy i nastepnie wprowadza na kolumne wypelniona 600 g proszku celulozowego podda¬ nego obróbce jak wyzej. Przy rozwijaniu chro^ matogramu za pomoca butanolu nasyconego wo¬ da wydziela sie frakcje po 100 ml, które po od¬ parowaniu w wysokiej prózni poddlaje sie próbie na reakcje barwna. Otrzymuje sie przy tym na¬ stepujacy podzial: Tabela 2 Frakcja nr 1- 8 9-17 18-21 22-31 32-45 Pozostalosc mg 2,950 180 155 912 1,510 Reakcja barwna Kellera ujemna czysto niebieska ujemna fioletowa ujemna """ Pozostalosc frakcji 9-17 (180 mg) dostarcza po obróbce weglanem srebrowym, jak opisano w przykladzie I, 90 mg czystej "psylocyny.Fraikcje 22—31 (tabela 2) dostarczaja po obróbce za pomoca weglanu srebrowego, opisanej w przy¬ kladzie I, 619 mg czystej psylocybiny o wlasci¬ wosciach opisanych w przykladzie I. Z przesa¬ czu po kulturach otrzymuje sie substancje czyn¬ ne w taki sam sposób jak powyzej opisano dla sklerocji. W tym celu przesacz po kulturach zageszcza sie w prózni do okolo 1/10 jego obje¬ tosci, zadaje dziesieciokrotna objetoscia meta¬ nolu, przesacza, a pozostalosc ekstrahuje 3 razy dziesieciokrotna iloscia metanolu. Pozostalosc po odparowaniu ekstraktów metanolowych prze¬ rabia sie dalej, jak opisano wyzej. Z 10 litrów przesaczu po kulturach otrzymuje sie na przy¬ klad 220 mg psylocybiny i 12 mg psylocyny.PrzykladV. Otrzymywanie psylocybiny i psy¬ locyny z czystych kultur Stropharia cubensis Earle.Pozywke przyrzadza sie nastepujaco: swieza, jasna brzeczke piwna bez dodatku chmielu roz¬ ciencza sie woda biezaca do 6% zawartosci su¬ chej substancji. Do kazdego litra tego roztworu dodaje sie: FeS04-7H20 0,0021 g ZnS04.7H20 0,0009 g Ca/N03/2 1,0 g KH2P04 0,0624 g MgS04.7H20 0,0624 g KC1 0,0312 g Agar-agar 2,0 g Pozywke te sterylizuje sie jak w przykladzie III i zaszczepia 2 ml zawiesiny grzyba Stopharia cubensis Earle na litr pozywki. Otrzymywanie tej szczepionki w zawiesinie odbywa sie tak, jak podano w przykladzie III. Po 52 dniach doj¬ rzewania w ciemnosci w temperaturze 24°C otrzymuje sie z ladunku 20 litrów 452 g suchego materialu grzybowego, to jest 22,6 g na litr po¬ zywki. Otrzymanie substancji czynnych z ma¬ terialu grzybowego przeprowadza sie w spo¬ sób opisany w przykladzie III. Wydajnosc: 1083 mg czystej krystalicznej psylocybiny i 45 mg psylocyny, co odpowiada wydajnosci 0,24% lub 0,010% w odniesieniu do suchego ma¬ terialu grzybowego.Przyklad VI. Otrzymywanie psylocybiny i psylocyny z Psilocybe semperviva Heim et Cailleux pochodzenia naturalnego.Dojrzale owocnie grzyba Psilocybe semperviva Heim et Cailleux otrzymane na drodze sztucznej hodowli ma naturalnej pozywce (kompost) suszy sie ostroznie w strumieniu powietrza w tempe¬ raturze 30°C. 32 g wysuszonej owocni miele sie drobno i wytrzasa w temperaturze pokojowej po 1/2 godziny raz z 300 ml metanolu i trzy¬ krotnie z metanolem w ilosci po 150 ml. Pola¬ czone ekstrakty odparowuje sie w prózni do suchosci. Pozostalosc (3,3 g) w celu odtluszcze¬ nia uciera sie czterokrotnie z eterem naftowym w ilosci po 125 ml i trzykrotnie z chloroformem, który zawiera 10% etanolu w ilosci po 50 ml.Otrzymuje sie 6,5 g pozostalosci, która rozpusz¬ cza sie w 6 ml wody. Roztwór ten traktuje sie powoli 60 ml bezwodnego etanolu w celu wy¬ tracenia pozostalych substancji towarzyszacych, przy czym roztwór wzbogaca sie w substancje czynne. Oczyszczanie na tej drodze powtarza sie jeszcze dwa razy. Roztwory dekantuje sie, laczy sie razem i odparowuje w prózni do suchosci.Pozostalosc rozpuszcza sie w metanolu i chro¬ matografuje na proszku celulozowym, jak to opisano w przykladzie II. Tak otrzymane ciala czynne uwalnia sie od chlorowca przez obróbke weglanem srebrowym. Po przekrystalizowaniu otrzymuje sie 160 mg krystalicznej psylocybiny i 32 mg psylocyny, co odpowiada zawartosci 0,5% lub 0,1% w odniesieniu do wysuszonego materialu grzybowego.Przyklad VII. Otrzymywanie psylocybiny z Psilocibe caerulescens Murril var. Mazatecorum Heim pochodzenia naturalnego.Dojrzale owocnie grzyba Psilocibe caerusce- lens Murrill var. Mazatecorum Heim otrzymane droga sztucznej hodowli na naturalnej pozywce (kompost), suszy sie <«stroznie, po czym wysu¬ szony material grzybowy (7,3 g) miele sie drobno i ekstrahuje dokladnie metanolem, jak opisano w przykladzie II. Ekstrakty laczy sie i odparo¬ wuje w prózni do suchosci. Otrzymana jak w przykladzie II pozostalosc poddaje sie dalszej przeróbce w celu otrzymania substancji czyn¬ nych. Otrzymuje sie 14,6 mg psylocybiny (w od¬ niesieniu do materialu grzybowego wysuszone¬ go). Z przerobionej próbki grzyba nie otrzymuje sie psylocyny.Przyklad VIII. Otrzymywanie psylocybiny z czystych kultur Psilocibe carulescens Murrill var. Mazatecorum Heim.* Srodowisko hodowlane przygotowuje sie przez rozcienczenie woda biezaca swiezej brzeczki piwnej bez dodatku chmielu do zawartosci 4,0% suchej substancji. Na kazdy litr tego roztworu dodaje sie: namoku kukurydzianego 10,0 g FeS04-7H20 0,00834 g Ca/OH/2 0,20 g K2HP04 0,20 g NH4ÓH 0,25 g Agar-agar 2,0 g - 8 -Pozywke te sterylizuje sie jak podano w przy¬ kladzie III, zaszczepia zawiesina grzybni czystej hodowli Psilócibe caerulescens Murrill var. Ma- zate-cerum Heim z Mek?yku, a wytworzone kul^ tury poddaje dojrzewaniu w ciemnosci w tem¬ peraturze 26°C. Po 48 dniach zbiega sie 20,4 g suchego materialu grzybowego na litr roztworu.Wyodrebnienie i oczyszczenie substancji czyn¬ nych z tego materialu odbywa sie tak, jak poda¬ no w przykladzie III. Wydajnosc z jednego la¬ dunki; z 10 litrów pozywki wynosi: 449 mg psy¬ iocybiny, co odpowiada zawartosci 0,23% w od¬ niesieniu do wysuszonego materialu grzybowe¬ go. W ladunku tym nie znaleziono psylocyny.Przyklad IX. Otrzymywanie psyiocybiny z Psilccibe Zapotecorum Heim pochodzenia na¬ turalnego.Dojrzale owocnie Psilccibe Zapotecorum Heim zebrane i przebrane w Meksyku w okolicach zwanych „pays chatino" ostroznie suszy sie (po¬ zostalosc 42,4 g) drobno miele i wytrzasa sie z metanolem jak podano w przykladzie II. Po¬ laczone ekstrakty metanolowe odparowuje sie w prózni do suchosci. Pozostalosc przerabia sie dalej jak podano w przykladzie II. Otrzymuje sie 212 mg czystej psyiocybiny, co odpowiada zawartosci 0,5%. Z przerobionego materialu grzybowego nie otrzymuje sie psylocyny.Przyklad X. Otrzymywanie psyiocybiny z czystych kultur Psilócibe Zapotecorum Heim.Swieza, jasna brzeczke piwna bez dodatku chmielu rozciencza sie woda biezaca do zawar¬ tosci 4,5% suchej substancji. Na kazdy litr tego roztworu dodajesie: * FeS04 namoku kukurydzianego NH4OH K2HPO4 Agar-agar pH roztworu: 5,5 To srodowisko hodowlane sterylizuje sie jak opisano w przykladzie III i zaszczepia zawiesina grzybni czystej kultury, która otrzymano z za¬ rodników dojrzalej owocni Psilócibe Zapotecorum Heim z „pays chatamo" w Meksyku. Po 57 dniach dojrzewania w ciemnosci w temperaturze 24°C otrzymuje sie z ladunku 25 litrów, 430 g wysu¬ szonego materialu grzybowego, to jest 17,2 g na litr pozywki. Otrzymywanie substancji czynnych z tego materialu odbywa sie wedlug sposobu po¬ danego w przykladzie III. Wydajnosc: 903 mg czystej psyiocybiny, co odpowiada zawartosci 0,21% w odniesieniu do suchego materialu grzy¬ bowego. Psylocyny aiie otrzymuje sie.« Przyklad XI. Otrzymywanie psyiocybiny i psylocyny z Psilócibe Aztecorum Heim pocho- *¦¦¦¦ dzenia naturalnego.Dojrzale owocnie Psilócibe Aztecorum Heim zebrane w Meksyku w kraju Azteków (Na Popo- catepetl na wysokosci 3300—3500 m nad pozio¬ mem morza) suszy sie ostroznie, miele drobno i dokladnie ekstrahuje metanolem jak opisano w przykladzie II. Ekstrakty laczy sie i odparo¬ wuje w prózni do suchosci. Pozostalosc przera¬ bia sie w celu wyizolowania substancji czynnych jak podano w przykladzie II. Otrzymuje sie 570 mg czystej psyiocybiny i 47 mg psylocyny, co odpowiada zawartosci 0,2% lub, 0,017% w od¬ niesieniu do suchego materialu grzybowego (285 g).Przyk lad XII. Otrzymywanie psyiocybiny i psylocyny z czystych kultur Psilócibe Azteco¬ rum Heim.W sklad pozywki wchodza: 0,00834 g 10,0 0,30 0,30 2,0 g g era era ekstrakt slodowy - FeS047H20 ZnOS4-7H,C Ca/NOjj/a KH2P04 MgS04-7H20 KC1 Agar-agar 100 g 0,00417 g 0,00172 g 1,0 g 0,25 g 0,25 g J 0,125 g 2,0 g woda biezaca do 1000 ml Pozywke sterylizuje sie w autoklawie w ciagu 25 minut w temperaturze 108°C. 1 litr zaszczepia sie 2 ml zawiesiny grzyba Psilócibe Aztecorum Heim. Otrzymywanie tej szczepionki zawiesino¬ wej przeprowadza sie jak podano w przykladzie Ilia. Kultury dojrzewaja w ciemnosci przez 45 dni w temperaturze 24CC a zbiór przeprowadza sie jak opisano w przykladzie Hic. *Wydajnosc z 10 litrów pozywki wynosi 86,5 g suchej grzybni.Drobno zmielona grzybnie wytrzasa sie w tem¬ peraturze pokojowej przez 1/2 godzony z 1 litrem 80%-owego etanolu. Pozostalosc po odsaczeniu ekstrahuje sie jeszcze* trzykrotnie w ten sam sposób. Pozostalosc otrzymana przez odparowa¬ nie polaczonych ekstraktów (8,9 g), w celu od¬ dzielenia od tluszczowych substancji towarzy¬ szacych 1 nieaktywnych substancji balastowych, luguje sie kolejno dwukrotnie 100 ml eteru naftowego, dwukrotnie 80 ml chloroformu i dwukrotnie 50 ml' acetonu. Otrzymuje sie 5,6 g proszku rozpuszczalnego w wodzie, który rozpuszcza sie w 6 ml wody. Roztwór mieszajac traktuje sie powoli 80 ml acetonu, oddziela wytracony osad, który rozpuszcza sie nastepnie w malej ilosci wody i wytraca jeszcze raz. dziesieciokrotna iloscia acetonu. - 9 - /To oczyszczanie przez stracanie osadu po¬ wtarza sie jeszcze dwa razy, przy czym pewna ilosc substancji cynaiych przechodzi do ekstraktu wodirwnacetonowego. Ekstrakty odparowuje sie w prózni, a pozostalosc (2,8 g) oczyszcza sie i roz¬ dziela przez chromiatografowanie na kolumnie z proszkiem celulozowym.Po dwukrotnym chromatografowaniu otrzymu¬ je sie 225 mg krystalicznej psylocybiny 1 15 mg psylocyny, co odpowiada wydajnosci 0,26% lub 0,017% w odniesieniu do suchego materialu grzybowego.Przyklad XIII. Otrzymywanie kultury.Pozywke otrzymuje sie nastepujaco: Swieza brzeczke piwna (jasna bez chmielu) rozciencza sie biezaca woda do zawartosci su¬ chej substancji od 4,0 do 4,5%. Do jednego litra tego roztworu dodaje sie: FeS04.7H20 0,00209 g ZnS04-7H20 0,00086 g Ca/N03/2 0,25 g KH2P04 0,0625 g MgS04 0,0625 g KC1 0,031 g Agar-agar 2,0 g Pozywke te starylizuje sie i zaszczepia jak w przykladzie IV. Po 48^dniowym dojrzewaniu w temperaturze 24°C, osiaga sie na niej z jedne¬ go ladunku 55 litrów, wydajnosc 924 g sklerocji i grzybni (suchej substancji), co stanowi 16,6 g na litr pozywki. Otrzymanie z tego materialu cial czynnych przeprowadza sie jak opisano w przykladzie IV. Wydajnosc: 0,018% psylocyny i 0,12% psylocybiny w odniesieniu do suchego materialu grzybowego.Przyklad XIV. Otrzymywanie kultury.Pozywke otrzymuje sie nastepujaco: Swieza brzeczke piwna (jasna, bez chmielu) rozciencza sie woda biezaca do zawartosci su¬ chej substancji 4,0—4,5%. Na kazdy litr tego roztworu dodaje sie: FeS04'7H20 0,00209 g ZnS04.7H20 0,00086 g Ca/NOa/a 1,0 g Agar-agar 2,0 g Pozywka sterylizuje sie, zaszczepia i poddaje dojrzewaniu jak w przykladzie IV. Po 48 dniach zbiera sie 20,5 g suchej grzybni i sklerocji na litr pozywki, z których wydziela sie substancja czynne jak w przykladzie IV. Wydajnosc: 0,011% psylocyny i 0,14% psylocybiny w stosunku do wysuszonego materialu grzybowego.Przyklad XV. Otrzymywanie kultury.Pozywke otrzymuje sie nastepujaco: Swieza brzeczke piwna (jasna, bez chmielu) rozciencza sie woda biezaca do zawartosci su¬ chej substancji 4,0—4,5%. Do kazdego litra tego roztworu dodaje sie: FeS04.7H20 0,00209 g ZnS04.7H20 0,00086 g KH2P04 0,25 g Agar-agar 2,0 g Dalsza obróbke przeprowadza sie jak opisano w przykladzie IV. Wydajnosc wysuszonych skle¬ rocji i grzybni wynosi po 48 dniach 15,9 g na litr pozywki. Wydzielenie substancji czynnych prze¬ prowadza sie jak opisano w przykladzie IV. Wy¬ dajnosc: 0,02% psylocyny i 0,11% psylocybiny w stosunku do wysuszonego materialu grzybo¬ wego.Przyklad XVI. Otrzymywanie kultury.Pozywke otrzymuje sie nastepujaco: Swieza brzeczke piwna (jasna, bez chmielu* rozciencza sie woda biezaca do zawartosci su¬ chej substancji 4,0—4,5%. Do kazdego litra tego roztworu dodaje sie: FeS04.7H20 0,00209 g ZnS04.7H20 0,00086 g namoku kukurydzianego 20,0 g Agar-agar 2,0 g Dalsza obróbke przeprowadza sie jak opisano w przykladzie IV. Wydajnosc wysuszonych skle¬ rocji i grzybni po 48 dniach wynosi 29,3 g na litr pozywki. Wydzielenie cial czynnych prze¬ prowadza sie tak jak opisano w przykladzie IV.Wydajnosc: 0,012% psjdocyny i 0,22% psylocy¬ biny w stosunku do suchego materialu grzybo¬ wego.Przyklad XVII. Otrzymywanie kultury.Jako pozywke stosuje sie: ekstrakt slodowy 45 g FeS04-7H20 0,00417 g ZnS04.7H20 0,00172 g wode biezaca 1000 ml Pozywke sterylizuje sie w autoklawie w tem¬ peraturze 108°C w ciagu 25 minut. 1 litr pozywki zaszczepia sie 10 ml zawiesiny grzyba Psilocibe mexicana, przy czym otrzymywanie szczepionki w zawiesinie odbywa sie tak jak opisano w przy¬ kladzie IV. Po zaszczepieniu grzyb rozmnaza si? na tej pozywce w temperaturze 24°C. Tworza sie przy tym, kuleczki grzybni podobne do sago, co jest rzecza znana przy rozmnazaniu sie niz¬ szych grzybów. Po 30 dniach grzybnie oddziela sie przez odsaczenie. Otrzymuje sie 7,0 g suchej grzybni na litr pozywki. 430 g wysuszonej, drobno zmielonej grzybni wytrzasa sie w temperaturze pokojowej przez 1/9 godziny z 4,5 litra 80%-owego etanolu. Po -- 10 -odsaczeniu pozostalosci ekstrahuje sie w ten sam sposób jeszcze trzy razy. Pozostalosc po odpa¬ rowaniu polaczonych ekstraktów (41 g) luguje sie kolejno dwukrotnie 500 nil eteru naftowego, dwukrotnie 400 ml chloroformu i dwukrotnie 200 ml acetonu w celu oddzielenia substancji balastowych. Pozostaje 25 g rozpuszczalnego w wodzie proszku, który rozpuszcza sie w 25 ml wody. Do roztworu dodaje sie powoli, dobrze mieszajac, 250 ml acetonu, a wytracony osad po oddzieleniu od cieczy rozpuszcza jeszcze raz w malej ilosci wody i ponownie wytraca za po¬ moca dziesieciokrotnej ilosci acetonu. Te opera¬ cje z osadem nierozpuszczalnym w acetonie, po¬ wtarza sie jeszcze dwukrotnie, przy czym wszystkie substancje czynne przechodza do wy¬ ciagów wodno-acetonowych. Wyciagi te odparo¬ wuje sie dobrze mieszajac, a pozostalosc (9,8 g) rozdziela dalej przez chromatografie na kolum¬ nie celulozowej jak opasano w przykladzie IV.Po dwukrotnym chromatografowaniu otrzymuje sie 32 mg krystalicznej psylocyny i 225 mg psy- locybiny, co odpowiada wydajnosci 0,007 lub 0,05% w odniesieniu do suchej grzybni. PLThe invention relates to a method for the preparation of psychotropic substances psilocybin and psilocin from certain species of mushrooms. The method according to the invention consists in the fact that from Psilocybe mexicana Heim or from artificially grown mushroom material obtained from cultures or biological variants or mutants of this fungus by inoculating natural or artificial cultures and maturing these cultures in light or in the dark at a constant temperature between 18 and 27 ° C, the active substances are extracted according to known methods and then purified, separated from each other and possibly freed from the halogen. Moreover, it was found that psilocybin and psy- locin can be obtained pure according to with the above-mentioned tap method, starting from the mushroom material *) The patent owner stated that the inventor was Roger Cailleux. of natural origin of the genera Psilocybe, Stropharia, Conocybe, Panaeolus, Amanita, or Russula, or of artificially grown mushroom material obtained from the cultures of individual species of fungi or their biological variants or mutants. It is already known (R. Heim, Cr Hebd.Seances Acad. Sci. 242, 965 (1956)) that several species of mushrooms of natural origin from Mexico, Eastern Siberia, Kamchatka and other countries of Asia and America are used for ritual purposes or as stimulants or stunning agents. They have a specific effect on the body, and above all on the human psyche. These so-called hallucination mushrooms are of the following genera: Psylocybe, Stropharia, Panaeolus, Conocybe, Amanita, Russula. Hitherto, however, it has not been possible to isolate the active substances from fungi of natural origin or from artificially grown fungi. It was also impossible to start from fungi (with hallucinatory properties) of natural origin in the laboratory to grow species in which active substances would be formed in sufficient quantity to obtain these bodies on a preparative scale. The invention relates to a method by which it is possible to to obtain hitherto unknown active substances of hallucinating mushroom species, ^ first of all Psiilocybe mexicana Heim, Psilocybe caerulescens Murrill var. Mazatecorum Heim, P. caerulescens Murrill var. nigripes Heim, P. Zapotecorum Heim, P. semperviva Heim and Cailleux, P. Aztecorum Heim, Stropharia cubensis Earle. These active substances can be obtained pure according to known methods, either directly from mushroom material of natural origin or from mushroom material grown from cultures derived from natural or artificial substrates, the cultures of these cultures being carried out according to such methods. Generally, the procedure is as follows: for cultivation on natural substrates, compost is made of fermented wheat straw, a mixture of leaves and stems of corn, and a bit of wild grass, which is rinsed with plenty of running water, ground in a clay bowl and autoclaved. The compost is inoculated with the mycelium of the original cultures and matured for about two weeks at 24-27 ° C, while the cultures are covered with sterile sand and left at 18-27 ° C in glass boxes under daylight, while maintaining a constant humidity . After four to five weeks, fruit appears: harvesting takes place within one to two months of the onset of spore formation. However, since obtaining more starting material in this way is troublesome, other methods of breeding have been developed. that mushrooms in vitro set on nutrient-rich substrates, instead of mycelium with fruits, in large quantities, almost exclusively active fungus and partially sclerosis, and on substrates poor in nutrient known fruitfuls. For example, for nutrient solution on an agar medium (with 1.5% agar content), the optimum pericarp production at the dry matter concentration of the sweet extract is from 0.2 to 0.7%, while the optimum for mycelium and sclerotia production is it lies at a concentration of 4-10% depending on the species of fungus. While daylight is necessary for the formation of the pericarp, it has been found, in contrast, that when the cultures mature in the dark, there is mainly abundant sclerotia or mycelium formation. The best yields of active mushroom material (mycelium and sclerotia) are obtained when the surface cultures are placed on a nutrient solution of sweet extract (beer wort or commercial preparation of malt extract) with a dry substance content of 4-10% and when these the cultures are allowed to mature in the dark at a constant temperature between 22 ° and 26 ° C. For good growth, 0.2% agar should be added to the nutrient solution. In this almost liquid medium the fungus has a sufficient support to quickly create a closed mycelium cover. The addition of Fe11 salt is necessary, and it turns out that the addition of zinc, potassium, calcium and magnesium salts, containing nitrate, phosphate and This method of breeding represents a great technical advance, as it allows in a shorter time and with less labor compared to the cultivation on natural substrates, obtaining more than ten times greater yield of active starting material. The active mushroom material (fruit, sclerosis or mycelia) is carefully dried in a stream of air or in a vacuum at a temperature of 20-40 ° C, finely ground and thoroughly extracted with water, a lower aliphatic alcohol or a mixture of water and organic solvent. mixing with water. Extractions are carried out at room temperature. The extracts are evaporated in a low-temperature vacuum, the residue is degreased with petroleum ether and extracted with acetone or a chloroform-alcohol mixture to free it from inactive accompanying substances. The remaining ballast substances are separated by dissolving the residue in as little water as possible and reducing it again with anhydrous ethanol or acetone. The filtrate is evaporated under vacuum at low temperature. Further purification is carried out by chromatography in a column with a powder - 2 - cellulosic. Elution is carried out with water-saturated butanol or other water-immiscible alcohol. The collected fractions are tested with Keller's reagent (iron chloride in acetic acid and concentrated sulfuric acid) for the content of active substances. The fractions showing a positive color reaction are pooled and, if necessary, separated again on a chromatographic column filled with cellulose powder. The faster moving zone is eluted from the chromatogram, which gives a pure blue color in the Keller reaction, from which the active ingredient called "psilocin" is obtained, while the slower moving zone yields a second, quantitatively predominant active ingredient "Psilocybin", which gives a violet color reaction. The active substances obtained from the column already in a fairly pure form contain chlorine and therefore do not crystallize. It is only by chemical treatment that the halogen can be removed, thereby obtaining crystallizable compounds. To this end, the aqueous solution of the active bodies is treated with silver carbon and the permeate is freed of the excess silver ions with the aid of hydrogen sulphide. The permeate is then concentrated in a vacuum at low temperature, the active substances crystallizing from the concentrated solution. For analytical purposes, psilocybin is added can be recrystallized again from methanol or from water. Fine, snow-white needles are obtained from water, and from methanol - colorless hexagonal plates or prisms, containing methanol, which melt decomposed at 195-200 ° C. The obtained compound is dissolved in 120 parts by volume of boiling methanol or in 20 parts by volume of boiling water: in higher alcohols or other organic solvents it is very sparingly or completely insoluble. For analysis, pure substances are dried in vacuum at 100 ° C, with a weight loss of 10.4%. The elemental analysis results correspond to the sum formula Cs2Hl704N2P (molecular weight 284.2). Psilocybin is an amphoteric compound, optically inactive, and dissolves readily to form salts in dilute aqueous solutions of mineral acids and alkalis. A solution of psilocybin in 80% aqueous ethanol is slightly acidic (pH = 5.2). The ultraviolet spectrum in methanol solution shows peaks at 222, 267 and 290 µl. For analysis, the psilocins are purified by rechromatography on a column packed with cellulose powder with saturated butanol water or by treatment with acidic sodium carbonate in the solution. and shaking with ether or other organic solvent. The elemental analysis results are in accordance with the formula C 2 H 16 NO 2. Psilocin crystallizes from methanol or acetone: it is moderately soluble in water and readily soluble in dilute acid. Melting point 173-176 ° C (decomposition) Psilocin is characterized by an ultraviolet spectrum (in methanol solution) with maxima at 222, 260, 267, 283 and 293 mp, and a Keller color reaction, The exertion of psilocybin gives a pure blue color. When injected subcutaneously or orally, 2-8 mg of psilocybin produces an externally manifested sense of blogostasis, accompanied by a lack of excitability and apathy. At higher doses, apart from the vegetative symptoms, some perceptible external changes occur. The discussed compounds can be used to study mental disorders and psychoses of various origins and can be used as an effective aid in the psychotherapeutic treatment of the mentally ill. Example 1. Psilocybin and psilocin from Psilocybin mexicana Heim of natural origin For cultivation on natural substrate, compost is made from fermented wheat straw. The compost is washed with plenty of running water, ground in an earthenware bowl, autoclaved, then inoculated with mycelium from the original cultures and matured for approximately 2 weeks at 24-27 ° C. After this time, the cultures are covered with sterile sand and left in glass boxes under daylight at a temperature of 21-22 ° C. After 4 to 5 weeks they appear fruitfully: harvesting takes place within one to two months after the spores began to form. - 3 - Ripe fruitfuls of Psylocybe mexicana Heim are then carefully dried in a stream of air at 30 ° C. 54 g of the dried mushrooms are finely ground and shaken once with 600 ml and three times with 300 ml of methanol. within 1/2 hour. The extracts are purified and evaporated to dryness in a vacuum. Remaining 12 g. The residue after extraction with methanol is rubbed four times with 250 ml of petroleum ether and more than once with 100 ml of chloroform with the addition of 10% alcohol to remove fats. The still undissolved residue is dissolved in 10 ml of water and 100 ml of absolute alcohol are slowly added, while the solution is enriched with active ingredients. These operations are repeated 2 or 3 more times. The decanted solutions are vacuum evaporated to dryness, redissolved in methanol and 20 g of cellulose powder with 5% water added are added. The methanol is evaporated again in a vacuum and the cellulose powder, loaded with active ingredient, is introduced into a column filled with 100 g of powdered cellulose with 5% water added (the column is previously purified by washing with butanol saturated with water). Elution is carried out with butanol saturated with water and fractions of 20 ml are collected. After evaporation of the individual fractions, the residue is tested for the content of active substances by means of a color Keller reaction. To this end, 0.25 mg of a sample from the evaporation residue is treated with 2 ml of Keller's reagent. The fractions with a positive color reaction are pooled. Dissolve the amorphous powder in 20 ml of water and shake it with 0.5 g of silver carbonate. After filtering, the silver ions are removed from the solution with hydrogen sulphide and the solution then carefully thickens. From the concentrated solution, psilocybin crystallizes in the form of colorless, fine needles (yield 200 mg). Psilocybin is obtained from the pericarp only in trace amounts. is obtained in an analytically pure state after recrystallization from methanol or water. It is dissolved in 120 parts by weight of boiling methanol or in 20 parts by weight of water at the boiling point. Colorless prisms are obtained from methanol, which melt at a temperature of 195-220 ° C with simultaneous decomposition. The given values correspond, according to the analysis, to the sum formula CiaH ^ Oa ^ P ^ The ultraviolet spectrum obtained in methanol shows the following maxima: 222 m [ i. 267 µm. i 290 µm. The new active ingredient is amphoteric in nature. It dissolves in both dilute aqueous alkali solutions as well as aqueous acid solutions. A solution of psilocybin in an 80% aqueous alcohol solution reacts acidically (pH-5.2). Example II. Preparation of Psilocybin and Psilocin from Stropharia cubensis Earle of Natural Origin. Stropharia cubensis Earle fruit harvested in Mexico are air-dried in the shade at room temperature. 24.2 g of the dried pericarp is finely ground and shaken at room temperature once with 300 ml and three times with 150 ml of methanol for 1/2 hour. The extracts are combined and evaporated to dry under vacuum. For degreasing, the residue (6 g) is rubbed four times with 125 ml of petroleum ether and then three times with 50 ml of chloroform containing 10% ethanol. The still undissolved, about 5 g., Are dissolved in 5 ml. Of water, and other accompanying substances are precipitated from this solution by slowly treating with 50 ml. Absolute ethanol, the solution enriched with active substances. Purification in the same way is repeated two or three more times. The decanted solutions are combined and evaporated to dryness in a vacuum. The residue is taken up in methanol and 10 g of cellulose powder with 5% water are added. The methanol is evaporated off in a vacuum and the cellulose powder containing the active substance is placed on a column filled with 50 g of cellulose powder containing 5% water (previously the column is washed with saturated butanol). water). Elution is carried out with water-saturated butanol and 10 ml fractions are collected. The individual fractions are evaporated under high vacuum at a bath temperature of not more than 50 ° C, and the active substance content is tested with glacial acetic acid containing ferric chloride and concentrated sulfuric acid. To this end, samples of the residue of 8.85 rtig are treated with 2 cm3 of the reagent Kel- - 4 -lera. The active fractions give a purple (psilocybin) or pure blue (psilocin) color in the Keller reaction. Fractions yielding a positive color reaction of the same color are combined together. The amorphous powder obtained as a residue after evaporation of the above fractions dissolves in 2 ml of water and shaken it with 0.25 g of silver carbonate. After filtering, the excess silver ions are removed with hydrogen sulfide. Psilocybin crystallizes from the concentrated solution under conservation conditions in the form of colorless fine needles. 58 g of crystalline psilocybin are obtained, with a yield of 0.24% in relation to the dry pericarp, and traces of psilocin. Example III. Obtaining psilocybin and psilocin from pure cultures of Psilocybe sem- perviva Heim et Cailleux. a. Preparation of the vaccine: Pure spore cultures of the Mexican hat mushrooms Psilocybe semperviva Heim et Cailleux are fed to the broth and agar culture. For this purpose, the spores falling from the gills of the ripe pericarp are placed on a sterile tray, placed on the beer wort with agar and matured. The material for inoculation is obtained from the primary cultures prepared in this way: The mycelium is scraped with a sterile water supply so as to form a suspension containing fine mycelium clots. This suspension is inoculated into Erlenmeyer flasks which contain porcelain pot and fillings in the shape of a saddle. The experiments are best carried out in 300 ml Erlenmeyer flasks containing 50 g of a saddle-shaped filling (size 1 cm, weight about 0.9 g) and 80 ml of nutrient solution, consisting of a beer wort of the content of about 4% of dry substance and 0.2% of agar. The culture matures at 24 ° C, after two weeks a tight cover of mycelium forms on the surface. The whole culture is shaken for 30 minutes on a rotary shaker, the saddle-like filling with its sharp edges grinding the mycelium. In the process, a fine suspension of mycelium filaments is produced. The vaccine thus obtained is sufficient to inoculate 50 liters of medium. b. Production of culture: Fresh, light beer wort without the addition of hops is diluted with water to the content of 8% dry substance / One liter of this solution contains: FeSO4. 7H 2 O 0.00417 g ZnSC 4 • 7H 2 O 0.00172 g Ca (NO 3) 2 1.0 g KI 12 PO 4 0.0624 g MgSO 4. 7H 2 O 0.0624 g KCl 0.0312 g Agar-Agar 2.0 g This medium is dispensed in 1 liter aliquots into penicillin flasks and autoclaved for 25 minutes at 108 ° C. After cooling, the contents of the flasks are inoculated with 2 ml of a suspension, P. semperviva Heim et Cailleux. The resulting cultures mature in the dark at 24-26 ° C. A mycelial cover is produced as described under Ilia. c. Isolation of mushroom material: After seven weeks, the mature culture is passed through gauze, the mushroom material is squeezed and dried in a vacuum at 30 ° C. of one gray 100 penicillin flasks, containing 100 liters of nutrient after 49 weeks 2540 g of dry material, ie 25.4 g per liter of nutrient set. The culture effluent, which also contains some active substances, is processed in the same way as the mushroom material described below. d. Preparation of active substances: 306 g of the dried mushroom material is thoroughly pulverized and shaken three times with chloroform in the amount of 500 ml each, and then three times with chloroform containing 10% ethanol in the amount of 500 ml. Inactive accompanying substances are deposited in the process. to the solution in an amount of 2.8 g. The pre-extracted mushroom material is leached exhaustively once with 3 liters and three times with 1.5 liters of methanol. The combined extracts are evaporated to dryness under reduced pressure, leaving a 17.5 g light brown precipitate. To separate from the fatty impurities, this precipitate is dissolved in 17.5 ml of water and the slurry shaken once with 500 ml and twice with 250 ml of petroleum ether. The solution in petroleum ether contains 0.75 g of inactive accompanying substances: The residual aqueous solution is concentrated in a vacuum to about 25 ml and mixed with vigorous stirring. 250 ml of absolute ethanol. The solution containing the active substances is separated by decantation from the sticky precipitate which is thereby formed. The precipitate is redissolved in a small amount of water and treated with ten times the amount of absolute ethyl alcohol. This sludge treatment by loss is repeated twice more. The solutions are combined and evaporated in a vacuum to dryness. 11.7 g of a residue is obtained, which contains the total amount of active substances. For chromatography in a cellulose column, the residue is dissolved in as little as possible of 50% methanol and the resulting solution is thoroughly mixed with 40 g of cellulose powder and dried in a vacuum. . The cellulose powder, thus loaded with the substance, is introduced into a cellulose column, the filling of which was prepared by the desliming of S50 g of cellulose powder with butanol saturated with water. The chromatogram is developed with butanol saturated with water, the 100 ml fractions are separated and evaporated under high vacuum at the bath temperature not exceeding 50 ° C. The intermediate fractions (3.35 g) which give a positive reaction to the color with Keller's reagent are purified once more by chromatography on cellulose powder. When developing the chromatogram with water-saturated butanol, the fractions of 50 ml are separated and, after evaporation in high vacuum at a bath temperature of 50 ° C or less, tests the color Keller reaction, in the following division: Fraction no. Residue Color reaction Keller mg 1 - 7 8 - 16 17 - 20 21 - 30 31 - 43 1270 87 79 1053 758 negative pure blue negative violet negative The residue of fractions 8-16 (87 mg) provides 45 mg of pure psilocin after silver carbonate treatment as described in example II. Fractions 21-30 (1053 mg) yield 765 mg of pure psilocybin after treatment with silver carbonate. In the same manner, the active ingredients are obtained from the feed after culture. For this purpose, the percolate is concentrated in a vacuum to about 1/10 of its volume. The accompanying substances are precipitated with ten times the volume of methanol, then filtered off, and the solution is evaporated to dryness under a vacuum and the residue is extracted three times with ten times the amount of methanol. The residue after evaporation of the methanol extracts is further processed as above. From 12 liters of culture feed, 80 mg of psilocybin and 6 mg of psilycin are obtained. Overall yield: 845 mg psilocybin and 51 mg psilocin, corresponding to 0.28% or 0.017% of dry mushroom material. Example IV. Obtaining psilocybin and psilocin from pure cultures of Psilocybe mexicana Heim. This example gives a detailed description of the in vitro cultivation of Psilocybe mexicana Heim mushrooms to produce mycelium and sclerotia, as well as the preparation of pure active substances. Fresh, hop-free wort. The beer is diluted with water to the content of 4.0-4.5% of dry substance. For each liter of this solution is added: FeSO4-7H2O 0.00417 g ZnSO4-7H2O 0.00172 g agar-agar 2.0 g This medium is poured in 500 ml portions into 1.6 liter Fernbach flasks and sterilized in an autoclave for 25 minutes at 108 ° C. After cooling, the contents of the flasks were inoculated with 2 ml of the Psilocybe mexicana Heim mushroom suspension. The vaccine is obtained (by placing the spores of pure cultures of the mentioned cap fungi on the beer wort and agar. Spores falling off the gills of the ripe pericarp, are placed on the broth and agar medium and matured. From the thus produced primary cultures, the vaccine can be obtained. as follows: the mycelium, with a sterile water supply, scrape off a sharp spatula so that a suspension of fine mycelium filaments is formed This vaccine is inoculated into a culture medium placed in Erlenmeyer flasks (in which the brine-like porcelain fillers are placed). Experiments with Erlenmeyer flasks containing 50 g of saliva-like filling shapes (size - 1 cm, weight about 0.9 g) and 80 ml of medium, consisting of a beer wort with a value of about 4% of dry substance and 0, ^% - 6 -'agar. In the maturation period at 24 ° C, after 2 weeks it forms for the mycelium is tightly covered. The entire culture is rotated for 30 minutes on an agitator, the saddle shapes grinding the mycelium so that a fine suspension of mycelium filaments is formed. The vaccine obtained in this way is sufficient to inoculate 25 liters of nutrient medium. The inoculated cultures mature in the dark at a temperature of 24-26 ° C. The already described mycelium cover is formed, obliterating numerous sclerotia, which generally reach a size of about 1 cm (in individual cases they can be much larger). In order to separate the mycelium and sclerotia, the pure cultures are filtered through gauze, pressed and dried in an oven at 35-40 ° C. After 62 days of harvesting, 1149 g of dry material (sclerotia and mycelium) are obtained from one gray 135 Fernbadh flasks, containing 67 liters of nutrient solution, which corresponds to 17.14 g per liter of nutrient solution. for example, 612 g of dried material, consisting of starch and mycelium, are extracted and extracted 3 times with chlorophore in the amount of 1 liter and 3 times with chloroform with the addition of 10% ethanol in the amount of 1 liter. 5.6 g of inactive companion bodies are transferred to the extract. The pre-extracted mushroom material is then leached thoroughly with methanol (once for 6 liters and 3 times for 3 liters). The combined methanol extracts are evaporated to dryness under reduced pressure and 35 g of a light brown residue is obtained. This residue is poured with 35 ml of water to remove fatty contamination and shaken once with 1 liter and twice for 0 . 5 libra of petroleum ether. The petroleum ether now contains 1.5 g of inactive accompanying substances. The remaining aqueous solution is previously concentrated in a vacuum to about 50 ml and then 500 ml of anhydrous ethanol are added with vigorous stirring. The active substance solution is separated by decantation from the sticky precipitate formed. . The precipitate is once more dissolved in a little water and re-treated with ten times the amount of absolute alcohol. These lose operations are repeated 2 more times. The solutions are combined and evaporated in a vacuum to dryness. A solid residue of 23.4 g is obtained, which contains the total amount of the active substances. For chromatography on a cellulose column, the cadmium is dissolved in as little as possible 50% methanol. and the solution is thoroughly mixed with 80 g of cellulose powder, after which the material thus obtained is dried in a vacuum. The cellulose powder, thus loaded, is loaded onto a cellulose column, the packing of which was prepared by desludging 700 g of cellulose powder with butanol saturated with water. The chromatogram is developed with butanol saturated with water, and fractions of 200 ml are separated, which are evaporated under high vacuum at a bath temperature not exceeding 50 ° C. The following division is obtained: Fraction No. 1-14 15-34 35-40 Table 1 Residue S 2.170 6.660 3.540 12.370 Keller color reaction negative positive - negative The remainder of about 11 g is retained on the column. Fractions 15-34, which provide a total of 6.660 g of residue, contain a certain amount of active substances. For further purification, they are again chilled & graphed as described below. 6.6 g of the residue is dissolved in as little methanol as possible, the resulting solution is saturated with 20 g of cellulose powder, dried and then charged to a column filled with 600 g of cellulose powder treated as above. When developing the chromatogram with water-saturated butanol, fractions of 100 ml are separated, which, after evaporation in a high vacuum, are tested for a color reaction. The following division is obtained: Table 2 Fraction No. 1- 8 9-17 18-21 22-31 32-45 Residue mg 2.950 180 155 912 1.510 Keller color reaction negative pure blue negative violet negative "" "Fraction residue 9 -17 (180 mg) provides after treatment with silver carbonate as described in example 1, 90 mg of pure "psilocin. Fractions 22-31 (table 2) provide, after treatment with silver carbonate described in example I, 619 mg of pure" psilocin ". Psilocybin having the properties described in Example 1. The active substances were obtained from the culture filtrate in the same manner as described above for sclerotia. To this end, the percolation of the cultures is concentrated in vacuo to about 1/10 of its volume, infused with ten times the volume of methanol, percolated and the residue extracted three times with ten times the amount of methanol. The residue after evaporation of the methanol extracts is worked up further as described above. 10 liters of culture feed yield, for example, 220 mg of psilocybin and 12 mg of psilocin. Preparation of psilocybin and psy-lynin from pure cultures of Stropharia cubensis Earle. The nutrient is prepared as follows: fresh, light beer wort without the addition of hops diluted in running water to 6% of the dry substance content. To each liter of this solution is added: FeSO4-7H20 0.0021 g ZnSO4.7H20 0.0009 g Ca / NO3 / 2 1.0 g KH2P04 0.0624 g MgSO4.7H20 0.0624 g KCl 0.0312 g Agar- 2.0 g agar. This medium is sterilized as in example III and inoculated with 2 ml of Stopharia cubensis Earle mushroom suspension per liter of medium. The preparation of this vaccine in suspension is carried out as in example III. After 52 days of dark aging at 24 ° C., from a charge of 20 liters, 452 g of dry mushroom material, ie 22.6 g per liter of medium, are obtained. The preparation of the active ingredients from the mushroom material is carried out as described in Example III. Yield: 1083 mg of pure crystalline psilocybin and 45 mg of psilocin, corresponding to a yield of 0.24% or 0.010% of dry mushroom material. Example VI. Preparation of psilocybin and psilocin from Psilocybe semperviva Heim et Cailleux of natural origin. Mature fruit bearing fruit of Psilocybe semperviva Heim et Cailleux obtained by artificial cultivation on a natural nutrient (compost) is carefully dried in a stream of air at a temperature of 30 ° C. 32 g of the dried pericarp is finely ground and shaken at room temperature for 1/2 hour, once with 300 ml of methanol and three times with 150 ml of methanol. The combined extracts are evaporated to dryness in a vacuum. For degreasing, the residue (3.3 g) is rubbed four times with 125 ml of petroleum ether and three times with chloroform, which contains 10% ethanol in an amount of 50 ml each. A residue of 6.5 g is obtained, which is dissolved. It hides in 6 ml of water. This solution is treated slowly with 60 ml of absolute ethanol in order to precipitate the remaining accompanying substances, the solution being enriched with the active substances. Cleansing in this way is repeated two more times. The solutions are decanted, blended together and evaporated to dryness in a vacuum. The residue is dissolved in methanol and chromatographed on cellulose powder as described in Example II. The active bodies thus obtained are freed from halogen by treatment with silver carbonate. After recrystallization, 160 mg of crystalline psilocybin and 32 mg of psilocin are obtained, corresponding to a content of 0.5% or 0.1% of the dried mushroom material. Example VII. Preparation of psilocybin from Psilocybe caerulescens Murril var. Mazatecorum Heim of natural origin. Mature fruit bearing fruit of Psilocybe caerusce lens Murrill var. Mazatecorum Heim obtained by artificial cultivation on natural nutrient medium (compost) is carefully dried, then the dried mushroom material (7.3 g) is finely ground and extracted thoroughly with methanol as described in Example 2. The extracts are combined and evaporated in a vacuum to dryness. The residue obtained as in Example II is further processed to obtain the active ingredients. 14.6 mg of psilocybin are obtained (relative to dried mushroom material). Psilocin is not obtained from a processed mushroom sample. Example VIII. Obtaining psilocybin from pure cultures of Psilocybe carulescens Murrill var. Mazatecorum Heim. * The breeding environment is prepared by diluting the fresh beer wort with running water without the addition of hops to a dry substance content of 4.0%. For each liter of this solution is added: corn steep 10.0 g FeSO4-7H20 0.00834 g Ca / OH / 2 0.20 g K2HP04 0.20 g NH4ÓH 0.25 g Agar-agar 2.0 g - 8 - This medium is sterilized as described in Example III, and inoculated with a mycelial suspension of pure culture of Psilocibe caerulescens Murrill var. Heim ma- terum from Meklik, and the produced cultures are matured in the dark at a temperature of 26 ° C. After 48 days, 20.4 g of dry mushroom material were collected per liter of solution. The separation and purification of the active substances from this material was carried out as described in Example III. Single Landing Yield; from 10 liters of nutrient solution: 449 mg of psiocybin, corresponding to 0.23% of the dried mushroom material. No psilocin was found in this load. Example IX. Obtaining psyiocybin from Psilccibe Zapotecorum Heim of natural origin. Fruitful fruitful Psilccibe Zapotecorum Heim harvested and picked in Mexico in the area called "pays chatino" is carefully dried (remaining 42.4 g), finely ground and shaken with methanol as indicated in Example 2 The combined methanol extracts are evaporated to dryness under vacuum. The residue is further worked up as indicated in Example 2. 212 mg of pure psyiocybin, corresponding to 0.5%, is obtained. Psilocin is not obtained from the processed mushroom material. X. Obtaining psyiocybin from pure cultures of Psilócibe Zapotecorum Heim. Fresh, pale beer wort without the addition of hops is diluted in running water to 4.5% dry substance. For each liter of this solution is added: * FeSO4 corn steep NH4OH K2HPO4 Agar-agar pH of the solution: 5.5 This culture medium is sterilized as described in example III and inoculated with a mycelial suspension of a pure culture which obtained from the spores of a mature pericarp of Psilocibe Zapotecorum Heim from "pays chatamo", Mexico. After 57 days of dark maturation at 24 ° C., a charge of 25 liters is obtained, 430 g of dried mushroom material, ie 17.2 g per liter of nutrient solution. The preparation of the active ingredients from this material is carried out according to the method of Example III. Yield: 903 mg of pure psyiocybin, which corresponds to a content of 0.21% in relation to the dry mushroom material. Psilocins aiie are obtained. «Example XI. Obtaining psyiocybin and psilocin from Psilócibe Aztecorum Heim of natural origin. Ripe fruitful Psilócibe Aztecorum Heim harvested in Mexico in the Aztec country (On Popo-catepetl at an altitude of 3300-3500 m above sea level) is carefully dried, it is ground finely and thoroughly extracted with methanol as described in example II. The extracts are combined and evaporated in a vacuum to dryness. The residue is worked up in order to isolate the active ingredients as set out in Example 2. 570 mg of pure psyiocybin and 47 mg of psilocin are obtained, corresponding to a content of 0.2% or 0.017% of the dry mushroom material (285 g). Example XII. Obtaining psyiocybin and psilocin from pure cultures of Psilócibe Aztecrum Heim. The composition of the nutrient medium is: 0.00834 g 10.0 0.30 0.30 2.0 gg era malt extract - FeS047H20 ZnOS4-7H, C Ca / NOjj / a KH2P04 MgSO4-7H20 KC1 Agar-agar 100 g 0.00417 g 0.00172 g 1.0 g 0.25 g 0.25 g J 0.125 g 2.0 g running water to 1000 ml The medium is autoclaved during 25 minutes at 108 ° C. 1 liter is inoculated with 2 ml of Psilócibe Aztecorum Heim mushroom suspension. The preparation of this suspension vaccine is carried out as described in the example of Ilia. Cultures mature in the dark for 45 days at 24 ° C and harvested as described in example Hic. * The yield from 10 liters of nutrient medium is 86.5 g of dry mycelium. The finely ground mycelium is shaken at room temperature for 1/2 hour with 1 liter of 80% ethanol. The filtration residue is extracted * three more times in the same manner. The residue obtained by evaporating the combined extracts (8.9 g) is leached successively twice with 100 ml of petroleum ether, twice with 80 ml of chloroform and twice with 50 ml of acetone in order to separate from fatty substances and inactive ballast substances. . This gives 5.6 g of a water-soluble powder which is dissolved in 6 ml of water. The solution is slowly mixed with 80 ml of acetone while stirring, the precipitate is separated off, which then dissolves in a little water and is precipitated again. ten times the amount of acetone. This sludge treatment is repeated two more times with some tin substances passing into the acetone-water extract. The extracts are evaporated in a vacuum and the residue (2.8 g) is purified and separated by chromatography on a cellulose column. After chromatography twice, 225 mg of crystalline psilocybin and 15 mg of psilocin are obtained, corresponding to a yield of 0.26 % or 0.017% of dry mushroom material. Example XIII. Preparation of the culture. The nutrient solution is obtained as follows: The fresh wort (pale without hops) is diluted with running water to a dry substance content of 4.0 to 4.5%. To one liter of this solution is added: FeSO4.7H20 0.00209 g ZnSO4-7H20 0.00086 g Ca / NO3 / 2 0.25 g KH2P04 0.0625 g MgSO4 0.0625 g KC1 0.031 g Agar-agar 2.0 g This medium is aged and inoculated as in example IV. After 48 days of maturation at 24 ° C, it achieves a yield of 55 liters from one charge, a yield of 924 g of sclerotia and mycelium (dry matter), which is 16.6 g per liter of nutrient solution. The preparation of active bodies from this material is carried out as described in example IV. Yield: 0.018% psilocin and 0.12% psilocybin based on dry mushroom material. Example XIV. Obtaining the culture. The nutrient solution is obtained as follows: Fresh beer wort (light, hop-free) is diluted in running water to a dry substance content of 4.0-4.5%. For each liter of this solution is added: FeSO4'7H20 0.00209 g ZnS04.7H20 0.00086 g Ca / NOa / a 1.0 g Agar-agar 2.0 g The growth medium is sterilized, inoculated and matured as in example IV . After 48 days, 20.5 g of dry mycelium and sclerotia are collected per liter of nutrient solution, from which the active substance is isolated as in Example IV. Yield: 0.011% psilocin and 0.14% psilocybin on dried mushroom material. Example XV. Obtaining the culture. The nutrient solution is obtained as follows: Fresh beer wort (light, hop-free) is diluted in running water to a dry substance content of 4.0-4.5%. To each liter of this solution is added: FeSO4.7H2O 0.00209 g ZnSO4.7H2O 0.00086 g KH2PO4 0.25 g Agar-agar 2.0 g. Further treatment is performed as described in example IV. After 48 days, the yield of dried sclerosis and mycelium amounts to 15.9 g per liter of nutrient solution. The active ingredients are isolated as described in Example IV. Yield: 0.02% psilocin and 0.11% psilocybin on dried mushroom material. Example XVI. Obtaining the culture. The nutrient solution is obtained as follows: Fresh beer wort (light, hop-free * diluted in running water to a dry substance content of 4.0-4.5%. To each liter of this solution is added: FeSO4.7H20 0.00209 g ZnSO4.7H2O 0.00086 g corn steep 20.0 g Agar-agar 2.0 g. The further treatment is carried out as described in Example 4. The yield of dried clusters and mycelium after 48 days is 29.3 g per liter of nutrient solution. The isolation of the active bodies is carried out as described in example IV. Yield: 0.012% psidocin and 0.22% psilocybin in relation to the dry mushroom material. Example XVII. Culture production. g FeSO4-7H20 0.00417 g ZnSO4.7H20 0.00172 g running water 1000 ml The medium is sterilized in an autoclave at 108 ° C for 25 minutes. 1 liter of the medium is inoculated with 10 ml of Psilocibe mexicana mushroom suspension, the preparation of the vaccine in suspension is as described in p December IV. After inoculation, the fungus multiplies? on this medium at 24 ° C. In doing so, mycelium spheres similar to sago are formed, as is known in the propagation of lower fungi. After 30 days, the mycelium is separated by drainage. 7.0 g of dry mycelium per liter of nutrient solution are obtained. 430 g of dried, finely ground mycelium is shaken at room temperature for 1/9 hour with 4.5 liters of 80% ethanol. After filtering off the residue, it is extracted in the same way three more times. The residue from the evaporation of the combined extracts (41 g) is leached successively twice with 500 ml of petroleum ether, twice with 400 ml of chloroform and twice with 200 ml of acetone to separate the ballast substances. There is 25 g of a water-soluble powder which is dissolved in 25 ml of water. 250 ml of acetone are slowly added to the solution with good stirring, and the precipitate, separated from the liquid, is dissolved again in a small amount of water and re-precipitated with ten times the amount of acetone. These operations with the acetone-insoluble precipitate are repeated twice more, with all active substances passing into the water-acetone flow. These extracts are evaporated with good stirring and the residue (9.8 g) is separated further by chromatography on a cellulose column as described in Example IV. After chromatography twice, 32 mg of crystalline psilocin and 225 mg of psilocin are obtained, corresponding to yield 0.007 or 0.05% on dry mycelium. PL

Claims (11)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób otrzymywania psylocybiny i psylocy¬ ny w stanie czystym z pewnych gatunków grzyibów, znamienny tym, ze z materialu grzybowego pochodzenia naturalnego rodza¬ jów Psilocibe, Stropharia, Painaeolus, Cono- cybe, Amaróta lub Russula, albo ze sztucz¬ nie rozmnozonego materialu girzybowego, otrzymanego z kultur tych grzybów lub ich biologicznych wariantów i mutantów przez zaszczepienie sztucznej pozywki i dojrzewa¬ nie tych kultur na swietle dziennym albo w ciemnosci w stalej temperaturze miedzy 18—27°C, ekstrahuje sie znanymi metodami substancje czynne, psylocybine i psylocyne( oczyszcza, rozdziela sie jedna substancje od drugiej i uwalnia od chlorowca. 1. Claims 1. A method for obtaining pure psilocybin and psilocin from certain species of fungi, characterized in that the mushroom material of natural origin of the genus Psilocybe, Stropharia, Painaeolus, Conocybe, Amaróta or Russula, or with artificial ¬ the non-propagated mushroom material obtained from the cultures of these fungi or their biological variants and mutants by inoculation of artificial medium and maturation of these cultures in daylight or in the dark at a constant temperature between 18-27 ° C, the active substances are extracted by known methods, psilocybin and psilocybin (purifies, separates one substance from another and frees from halogen. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, zg jako grzyb w rodzaju Psdlocibe stosuje sie Psilocibe mexicana Heim. 2. The method according to claim Psilocybe mexicana Heim is used as a fungus of the genus Psdlocybe. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako grzyb z rodzaju Psilocibe stosuje sie grzyb kapeluszowy Psilocibe semperviva Heim et Cadlleux. 3. The method according to p. The mushroom of the genus Psilocybe the mushroom Psilocybe semperviva Heim et Cadlleux is used. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym* ze jako grzyb z rodzaju Psilocibe stosuje sie grzyb kapeluszowy Psilocibe caerulescens Munill var. Mazatecomm Heim. 4. The method according to p. The mushroom of the genus Psilocybe, Psilocybe caerulescens Munill var. Mazatecomm Heim. 5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako grzyb z rodzaju Psdlocibe stosuje sie grzyb kapeluszowy Psilocibe Zapotecorum Heim. 5. The method according to p. The mushroom of the genus Psdlocibe is Psilocybe Zapotecorum Heim. 6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako grzyb z rodzaju Psilocibe stosuje sie grzyb kapeluszowy Psilocibe Aztecorum Heim. 6. The method according to p. The mushroom of the genus Psilocybe the mushroom Psilocybe Aztecorum Heim is used. 7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako grzyb z rodzaju Stropharia stosuje sie grzyb kapeluszowy Stropharia cubensis Earle. 7. The method according to p. The mushroom of claim 1, wherein the Stropharia cubensis Earle mushroom is used as the mushroom of the genus Stropharia. 8. Sposób wedlug zastrz. 1—7, znamienny tym, ze grzyby rozmnaza sie na naturalnym sub- stracie, a kultury pozostawia sie do dojrze¬ wania na swietle dziennym w stalej tempe¬ raturze miedzy 18—27°C. 8. The method according to p. A method according to any of the preceding claims, characterized in that the fungi are propagated on the natural substrate and the cultures are allowed to mature in daylight at a constant temperature between 18-27 ° C. 9. Sposób wedlug zastrz. 1—7, znamienny tym, ze jako material wyjsciowy stosuje sie grzy¬ bnie i sklerocje, a grzyby hoduje sie w szkle na sztucznych pozywkach z ekstraktu slodo¬ wego o stezeniu suchej substancji od 4—10% w zaleznosci od rodzaju grzyba, przy czym pozywki dodaje sie 0,0004—0,0010 g/l jonu ze¬ lazawego i 2 g/l agaru, a kultury pozostawia sie do dojrzewania w ciemnosci w stalej temperaturze od 22 do 26°C. 9. The method according to p. 1 to 7, characterized in that the starting material is mycelium and sclerotia, and the fungi are grown in glass on artificial nutrients from sweet extract with a dry matter concentration of 4-10% depending on the type of fungus, and the nutrients are added to 0.0004-0.0010 g / l of gall ion and 2 g / l of agar and the cultures are allowed to mature in the dark at a constant temperature of 22 to 26 ° C. 10. Sposób wedlug zastrz. 1—7, znamienny tym, ze odtluszczony material grzybowy ekstrahu¬ je sie za pomoca wody lub organicznego roz¬ puszczalnika mieszajacego sie z woda, po czym wydziela sie z roztworu wodnego niet czynne substancje towarzyszace za pomoca frakcjonowanego wytracenia rozpuszczalni¬ kiem organicznym mieszajacym sie z woda, a zawarte w przesaczu substancje czynne rozdziela sie przez absorpcje na proszku ce¬ lulozowym i eluuje butanolem nasyconym woda. 10. The method according to p. The process according to any of the claims 1-7, characterized in that the degreased mushroom material is extracted with water or with an organic solvent which is miscible with water, and the non-active accompanying substances are separated from the aqueous solution by fractionated precipitation with an organic solvent which is miscible with water. water, and the active substances contained in the filtrate are separated by absorption on cellulose powder and eluted with butanol saturated with water. 11. Sposób wedlug zastrz. 1—7, znamienny tym, ze psylocybine i psylocyne przed lub po od¬ dzieleniu ich od siebie uwalnia sie od chlo¬ rowca w znany sposób za pomoca weglanu srebrowego. SANDOZ A. G. Zastepca: dr Andrzej Au, rzecznik patentowy 930. RSW „Prasa", Kielce PL11. The method according to p. A method according to any one of claims 1-7, characterized in that psilocybin and psilocybin are freed from the halogen before or after separating them from the halogen in a known manner by means of silver carbonate. SANDOZ A. G. Zastepca: dr Andrzej Au, patent attorney 930. RSW "Press", Kielce PL
PL43326A 1959-01-10 PL43326B1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL43326B1 true PL43326B1 (en) 1960-04-15

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Babadzhanov et al. Chemical Composition of Spirulina platensis Cultivated in Uzbekistan.
SU1360574A3 (en) Acaricidic composition
US3192111A (en) Method of inducing therapeutic tranquilization with psilocybin and psilocin
US4248789A (en) Process for producing catechins
US3183172A (en) Obtaining psilocybin and psilocin from fungal material
Rombouts et al. The chemical nature of the antibacterial substance present in Aucuba japonica Thunbg
Heatley et al. The preparation and some properties of purified micrococcin
JPS6016236B2 (en) Production method of antibiotic C-15003 P-3
PL43326B1 (en)
JPS6010718B2 (en) Process for producing maytansinol, maytanacin and maytansinol propionate
Takeuchi et al. Nicotinamide as a plant growth regulator isolated from rice hulls
CN1544426A (en) Extraction and separation method and application of chamaejama chamaejasma chromone in Daphne chamaejasmin
DE2746209C2 (en)
JPS59102398A (en) Novel antibiotic substance and preparation thereof
DE3003359C2 (en)
FR2557455A1 (en) ANTIBIOTIC NEW 81-484 ANTITUMER AND ITS PRODUCTION
CN115414421B (en) Extraction method and application of active ingredients of cortex dictamni
Ueno Citreoviridin
BE575588A (en)
US4740521A (en) Saudin, a novel hypoglycemic agent
JPS6034556B2 (en) Antibiotic C-15003
CN118459518A (en) A furanone compound and its preparation method and application
Slavík et al. Quaternary alkaloids of some species of the Papaveraceae family
NO143107B (en) PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF ANTIBIOTIC MIXTURE CONTAINING MACROCYCLIC LAKTONS AND DEPSIPEPTIDES OR ITS INGREDIENTS
EP0206691A2 (en) Production of deuterium-containing chemical substances