PL243162B1 - Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową - Google Patents
Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową Download PDFInfo
- Publication number
- PL243162B1 PL243162B1 PL434516A PL43451620A PL243162B1 PL 243162 B1 PL243162 B1 PL 243162B1 PL 434516 A PL434516 A PL 434516A PL 43451620 A PL43451620 A PL 43451620A PL 243162 B1 PL243162 B1 PL 243162B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- amniotic membrane
- dressing
- polymer
- water
- temperature
- Prior art date
Links
- 210000001691 amnion Anatomy 0.000 title claims abstract description 108
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 44
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims abstract description 61
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 23
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims abstract description 12
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 claims abstract description 5
- 238000007710 freezing Methods 0.000 claims abstract description 5
- 230000008014 freezing Effects 0.000 claims abstract description 5
- 230000005865 ionizing radiation Effects 0.000 claims abstract description 5
- 210000002826 placenta Anatomy 0.000 claims abstract description 5
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 claims abstract description 4
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 claims abstract description 4
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 claims abstract description 4
- 229920000249 biocompatible polymer Polymers 0.000 claims abstract description 3
- 229910017052 cobalt Inorganic materials 0.000 claims abstract description 3
- 239000010941 cobalt Substances 0.000 claims abstract description 3
- GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N cobalt atom Chemical compound [Co] GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- 239000002131 composite material Substances 0.000 claims abstract description 3
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 claims abstract description 3
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 claims abstract description 3
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 claims abstract description 3
- 229920000307 polymer substrate Polymers 0.000 claims description 13
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 claims description 12
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 12
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 10
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 9
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 8
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 8
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 8
- 239000000843 powder Substances 0.000 claims description 6
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims description 6
- 239000013543 active substance Substances 0.000 claims description 4
- RDEIXVOBVLKYNT-VQBXQJRRSA-N (2r,3r,4r,5r)-2-[(1s,2s,3r,4s,6r)-4,6-diamino-3-[(2r,3r,6s)-3-amino-6-(1-aminoethyl)oxan-2-yl]oxy-2-hydroxycyclohexyl]oxy-5-methyl-4-(methylamino)oxane-3,5-diol;(2r,3r,4r,5r)-2-[(1s,2s,3r,4s,6r)-4,6-diamino-3-[(2r,3r,6s)-3-amino-6-(aminomethyl)oxan-2-yl]o Chemical compound OS(O)(=O)=O.O1C[C@@](O)(C)[C@H](NC)[C@@H](O)[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@@H](CC[C@@H](CN)O2)N)[C@@H](N)C[C@H]1N.O1C[C@@](O)(C)[C@H](NC)[C@@H](O)[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@@H](CC[C@H](O2)C(C)N)N)[C@@H](N)C[C@H]1N.O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N RDEIXVOBVLKYNT-VQBXQJRRSA-N 0.000 claims description 3
- 108010078777 Colistin Proteins 0.000 claims description 3
- PGBHMTALBVVCIT-VCIWKGPPSA-N framycetin Chemical compound N[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](CN)O[C@@H]1O[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](N)C[C@@H](N)[C@@H]2O)O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CN)O2)N)O[C@@H]1CO PGBHMTALBVVCIT-VCIWKGPPSA-N 0.000 claims description 3
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 claims description 3
- 239000002184 metal Substances 0.000 claims description 3
- JORAUNFTUVJTNG-BSTBCYLQSA-N n-[(2s)-4-amino-1-[[(2s,3r)-1-[[(2s)-4-amino-1-oxo-1-[[(3s,6s,9s,12s,15r,18s,21s)-6,9,18-tris(2-aminoethyl)-3-[(1r)-1-hydroxyethyl]-12,15-bis(2-methylpropyl)-2,5,8,11,14,17,20-heptaoxo-1,4,7,10,13,16,19-heptazacyclotricos-21-yl]amino]butan-2-yl]amino]-3-h Chemical compound CC(C)CCCCC(=O)N[C@@H](CCN)C(=O)N[C@H]([C@@H](C)O)CN[C@@H](CCN)C(=O)N[C@H]1CCNC(=O)[C@H]([C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CCN)NC(=O)[C@H](CCN)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CCN)NC1=O.CCC(C)CCCCC(=O)N[C@@H](CCN)C(=O)N[C@H]([C@@H](C)O)CN[C@@H](CCN)C(=O)N[C@H]1CCNC(=O)[C@H]([C@@H](C)O)NC(=O)[C@H](CCN)NC(=O)[C@H](CCN)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CCN)NC1=O JORAUNFTUVJTNG-BSTBCYLQSA-N 0.000 claims description 3
- 229940053050 neomycin sulfate Drugs 0.000 claims description 3
- XDJYMJULXQKGMM-UHFFFAOYSA-N polymyxin E1 Natural products CCC(C)CCCCC(=O)NC(CCN)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)NC(CCN)C(=O)NC1CCNC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C(CCN)NC(=O)C(CCN)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CCN)NC1=O XDJYMJULXQKGMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- KNIWPHSUTGNZST-UHFFFAOYSA-N polymyxin E2 Natural products CC(C)CCCCC(=O)NC(CCN)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)NC(CCN)C(=O)NC1CCNC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C(CCN)NC(=O)C(CCN)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CCN)NC1=O KNIWPHSUTGNZST-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 2
- 208000028990 Skin injury Diseases 0.000 claims description 2
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 claims description 2
- 229960001127 colistin sulfate Drugs 0.000 claims description 2
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 claims description 2
- 238000003825 pressing Methods 0.000 claims description 2
- 239000002671 adjuvant Substances 0.000 claims 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 60
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 34
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 33
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 26
- 230000008569 process Effects 0.000 description 12
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 10
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 9
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 7
- -1 difunctional oxirans Chemical class 0.000 description 7
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 7
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 6
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 5
- 210000001136 chorion Anatomy 0.000 description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 5
- 210000005059 placental tissue Anatomy 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 4
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 4
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 210000004381 amniotic fluid Anatomy 0.000 description 3
- 150000001718 carbodiimides Chemical class 0.000 description 3
- 238000006297 dehydration reaction Methods 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 230000028327 secretion Effects 0.000 description 3
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 3
- 238000004804 winding Methods 0.000 description 3
- 230000029663 wound healing Effects 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 2
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 2
- ZNZYKNKBJPZETN-WELNAUFTSA-N Dialdehyde 11678 Chemical compound N1C2=CC=CC=C2C2=C1[C@H](C[C@H](/C(=C/O)C(=O)OC)[C@@H](C=C)C=O)NCC2 ZNZYKNKBJPZETN-WELNAUFTSA-N 0.000 description 2
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010072170 Skin wound Diseases 0.000 description 2
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 239000012790 adhesive layer Substances 0.000 description 2
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 2
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 2
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 2
- 150000002118 epoxides Chemical class 0.000 description 2
- 210000002219 extraembryonic membrane Anatomy 0.000 description 2
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 2
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 2
- 239000000017 hydrogel Substances 0.000 description 2
- 238000005304 joining Methods 0.000 description 2
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 2
- 239000003495 polar organic solvent Substances 0.000 description 2
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 2
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 2
- 230000037380 skin damage Effects 0.000 description 2
- 235000019333 sodium laurylsulphate Nutrition 0.000 description 2
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- 208000035143 Bacterial infection Diseases 0.000 description 1
- 208000032544 Cicatrix Diseases 0.000 description 1
- 241000938605 Crocodylia Species 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 1
- 206010020751 Hypersensitivity Diseases 0.000 description 1
- 208000005230 Leg Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 1
- 208000004210 Pressure Ulcer Diseases 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 208000007536 Thrombosis Diseases 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000443 aerosol Substances 0.000 description 1
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 description 1
- 150000001299 aldehydes Chemical class 0.000 description 1
- 229920000615 alginic acid Polymers 0.000 description 1
- 235000010443 alginic acid Nutrition 0.000 description 1
- 208000030961 allergic reaction Diseases 0.000 description 1
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 1
- 208000022362 bacterial infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 210000002469 basement membrane Anatomy 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 229920001222 biopolymer Polymers 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 229960003346 colistin Drugs 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 210000003785 decidua Anatomy 0.000 description 1
- 230000018044 dehydration Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000003792 electrolyte Substances 0.000 description 1
- 238000010894 electron beam technology Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 239000000416 hydrocolloid Substances 0.000 description 1
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 239000011229 interlayer Substances 0.000 description 1
- 150000002576 ketones Chemical class 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 210000000214 mouth Anatomy 0.000 description 1
- 210000003097 mucus Anatomy 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229920002113 octoxynol Polymers 0.000 description 1
- 239000002674 ointment Substances 0.000 description 1
- 230000032696 parturition Effects 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 238000000053 physical method Methods 0.000 description 1
- 230000003169 placental effect Effects 0.000 description 1
- 210000005152 placental membrane Anatomy 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 230000006798 recombination Effects 0.000 description 1
- 238000005215 recombination Methods 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 1
- 230000037387 scars Effects 0.000 description 1
- 238000007790 scraping Methods 0.000 description 1
- 229910052709 silver Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000004332 silver Substances 0.000 description 1
- 210000004927 skin cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 1
- 230000000699 topical effect Effects 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- 239000008215 water for injection Substances 0.000 description 1
- 238000009736 wetting Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób wytwarzania opatrunku kompozytowego zawierającego błonę owodniową pozyskaną z łożyska odzwierzęcego zespoloną z warstwą podkładu polimerowego, który polega na tym, że formuje się nieusieciowany, wysuszony podkład polimerowy o grubości od 0,01 do 1 mm, wytworzony z co najmniej jednego biozgodnego polimeru, rozpuszczalnego w wodzie i zdolnego do sieciowania radiacyjnego, korzystnie poli(alkoholu winylowego) i/lub poli(tlenku etylenu) i/lub poli(winylopirolidonu), który jednostronnie zwilża się równomiernie wodą w ilości od 50 do 200 mg/cm2. Na zwilżoną stronę podkładu nakłada się w temperaturze od 10 do 35°C odkomórczoną błonę owodniową i obie warstwy dociska się do siebie oraz poddaje je działaniu promieniowania jonizującego, korzystnie pochodzącego z akceleratora liniowego lub bomby kobaltowej w dawce od 10 do 40 kGy, po czym usuwa się z opatrunku wilgoć przez liofilizację, zamrażając go w temperaturze od -50 do -195°C, a następnie obniżając ciśnienie do wartości w zakresie od 500 do 20 mTor bez kontroli temperatury, przy czym używa się błony owodniowej w postaci elastycznego arkusza o kształcie i wymiarach dopasowanym do podkładu polimerowego lub w postaci sproszkowanej, równomiernie rozsypanej na podkładzie polimerowym, w ilości 0,05 do 0,5 g na 100 cm2 podkładu polimerowego.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową, przeznaczonego do stosowania w medycynie regeneracyjnej, estetycznej i kosmetologii, w tym na rany przewlekłe i oparzeniowe.
W medycynie, w przypadku leczenia chorych z niewielkimi uszkodzeniami skóry, podstawową interwencją medyczną jest użycie opatrunku. Zastosowanie optymalnego opatrunku jest kluczowe w procesie gojenia się ran skóry. Do tradycyjnych opatrunków stosowanych w medycynie zalicza się plastry, bandaże i gazy. Rolą tych środków jest zabezpieczenie rany przed zabrudzeniem i urazami mechanicznymi.
Specjalistycznym opatrunkom, jak wskazano m.in. w publikacji T. D. Turner, pt.: „The Development of Wound Management Products”, Wounds, 1989, vol 1, No 3, str. 155-171, stawiane są znacznie większe wymagania, a ich rola nie ogranicza się wyłącznie do mechanicznego zabezpieczenia rany. Dodatkową rolą takich opatrunków może być m.in. wspomaganie procesu gojenia i minimalizowanie powikłań. Zapewniać mogą one odpowiednią wilgotność rany dzięki wchłanianiu wydzieliny i jednocześnie pozwalać na utrzymanie optymalnej temperatury rany sprzyjającej fizjologicznemu gojeniu. Właściwości jakie powinien wykazywać nowoczesny opatrunek zostały przedstawione np. w publikacji J. Dissemond i in. pt.: „Modern wound care - practical aspects of non-interventional topical treatment of patients with chronic wounds”, J Dtsch Dermatol Ges., 2014, 12, str. 541-554, a mianowicie powinien być wykonany z materiałów nietoksycznych, zapewniać wilgotne środowisko rany oraz optymalną temperaturę, przyspieszać naskórkowanie, angiogenezę tj. proces powstawania sieci naczyń włosowatych i regenerację tkanki łącznej, umożliwiać przenikanie gazów, tworzyć sterylne środowisko i stanowić barierę dla infekcji. Ponadto nowoczesny opatrunek nie powinien ulegać adhezji do rany, powinien wspierać migrację leukocytów i stymulować wydzielanie enzymów. Dodatkowo opatrunek powinien umożliwiać łatwe jego przycięcie do pożądanego kształtu oraz łatwe formowanie.
Wiele z wad, które posiadają tradycyjne opatrunki np. wrastanie w ranę niezaimpregnowanych włókien, wysychanie rany ze względu na zbyt dużą przepuszczalność gazów czy też przeciwnie, niedostateczne wchłanianie wydzieliny z ran wysiękowych, może być wyeliminowanych dzięki zastosowaniu materiałów wykazujących optymalne dla opatrunków właściwości. Do opatrunków o właściwościach zbliżonych do optymalnych można zaliczyć coraz szerzej obecnie stosowane opatrunki w postaci pianek, hydrokoloidów, impregnowanych gaz i opatrunków pokrytych metalicznym srebrem, oparte o m.in. alginiany, skrobię i hydrożele polimerowe.
Znaną alternatywą dla tradycyjnych opatrunków jest także wykorzystanie w konstrukcji opatrunków błon płodowych, dzięki którym opatrunek może spełnić wiele z wcześniej wymienionych wymagań stawianych nowoczesnym materiałom opatrunkowym. Owodnia jest jedną z błon płodowych otaczających zarodek ptaków, gadów oraz ssaków, w tym człowieka. Jest to cienka, półprzepuszczalna tkanka, stanowiąca wewnętrzną warstwę pęcherza płodowego. Z kolei pęcherz płodowy jest to worek zbudowany z pozałożyskowych błon płodowych (owodnia, kosmówka, doczesna) otaczający płód i wypełniony płynem owodniowym (wodami płodowymi). Owodnia oddziela wody płodowe od pozostałych błon płodowych, zapewnia odpowiednie środowisko i chroni zarodek przed mechanicznym uszkodzeniem. Właściwości błony owodniowej decydują o funkcji, którą jest ochrona organizmu przed zakażeniami bakteryjnymi, redukcja utraty białek, płynów i elektrolitów.
Znane są metody przygotowania błony owodniowej, pozwalające na jej wykorzystanie w opatrunkach. Łożysko odzwierzęce będące odrzutem biologicznym można pozyskać np. od loch podczas porodu. Następnie płucze się je w roztworze soli fizjologicznej lub w wodzie do wstrzyknięć tj. sterylnej wodzie o bardzo wysokiej czystości i parametrach zgodnych z regulacjami podanymi w Pharmacopeia XI. W kolejnym etapie mechanicznie oddziela się błonę owodniową od warstwy kosmówkowej, płucze w wodzie i usuwa nadmiar krwi i śluzu oraz poddaje odkomórczaniu (pozbyciu się komórek). Odkomórczanie błony owodniowej jak opisano m.in. w publikacji He i in., pt. „Comparison of decellularization methods for human corneal lenticule”, Acta Ophthalmologica Volume 90, Issue s. 249 September 2012, można przeprowadzić z wykorzystaniem metody chemicznej, fizycznej oraz metody mieszanej. Chemiczna metoda usuwania komórek może zostać przeprowadzona z zastosowaniem detergentów na przykład: z wykorzystaniem wodnego roztworu Triton-X o stężeniu 3% albo wodnego roztworu SDS (laurylosiarczan sodu) o stężeniu 0,1%. W metodzie enzymatycznej można wykorzystać gotowe odczynniki np. Tryple 1x stężony albo 2,4 U/ml Dispaza. W metodzie fizycznej stosowane jest zamrażanie ciekłym azotem w niskiej temperaturze np. -196°C. Procedura mieszana odkomórczania obejmuje dwa etapy: w pierwszym etapie przeprowadza się procedurę enzymatycznego usuwania komórek, a następnie należy przeprowadzić procedurę chemiczną. Przygotowaną owodnię pakuje się próżniowo i przechowuje w niskiej temperaturze, zwykle -80°C do momentu jej użycia.
Błona owodniowa jest bogata w składniki odżywcze i posiada niską immunogenność, przez co dość często wykorzystywana jest jako opatrunek w leczeniu uszkodzeń skóry. W przypadku zastosowania jako opatrunek, owodnia zmniejsza ból związany z oparzeniami i przyśpiesza gojenie ran. Przygotowując opatrunek z błony owodniowej jak opisano w publikacji J.T. Tyszkiewicz i in. pt.: „Amnion allografts prepared in the Central Tissue Bank in Warsaw”, Ann Transplant. 1999;4(3-4):85-90 należy zwrócić uwagę, aby nabłonkowa strona owodni znajdowała się bezpośrednio na siatce lub innym nośniku. Strona nabłonkowa owodni jest to wewnętrzna strona owodni, która składa się z pojedynczej warstwy komórek nabłonkowych, równomiernie rozmieszczonych na błonie podstawnej. Po nałożeniu na ranę, strona nabłonkowa powinna być skierowana na zewnątrz rany, ponieważ sprzyja to migracji, adhezji i proliferacji komórek pacjenta, stymulując tym samym naskórkowanie.
W literaturze patentowej opisane są sposoby wytwarzania opatrunków, w których skład wchodzi błona owodniowa lub inna błona płodowa. Do otrzymywania opatrunków stosuje się owodnię w wielu postaciach m.in. płatów, kawałków, liofilizatów, a nawet w formie roztworu z zawieszoną substancją czynną. Błona owodniowa może być sieciowana i stosowana w takiej formie jako opatrunek lub może być umieszczona na warstwie podkładu.
W opatrunkach najczęściej stosuje się błonę owodniową w postaci pojedynczej, usztywnionej warstwy lub laminatu złożonego z kilku warstw błony owodniowej, niejednokrotnie z innymi błonami płodowymi. Opatrunki tego typu mogą być produkowane zarówno z użyciem kleju jak i bez jego udziału.
Znane są rozwiązania obejmujące otrzymywanie usztywnionych warstw owodni poprzez sieciowanie włókien kolagenowych.
W opisie patentowym US9855301 B1 ujawniono laminat wytworzony z tkanek pochodzenia ludzkiego, zawierający korzystnie dwie sklejone błony owodniowe, które przed użyciem myje się, zanurza się na około 15 minut w 0,1% roztworze aldehydu glutarowego w celu usieciowania błon i traktuje kompozycją alkoholową, korzystnie zawierającą etanol, w celu odmycia resztek nieprzereagowanego aldehydu glutarowego. Laminat w stanie mokrym pakuje się i sterylizuje za pomocą promieniowania jonizującego. Opatrunek w takiej formie stosowany jest do regeneracji lub zastępowania uszkodzonych tkanek, a umieszczony na lub wokół rany przyspiesza gojenie, zapobiega tworzeniu się skrzepów i powstawaniu blizn.
Znany jest z opisu patentowego US9585983 B1 opatrunek na rany wykonany z błony owodniowej ludzkiej oraz sposób obróbki błon owodniowych w celu utworzenia tego opatrunku. Błony owodniowe zanurza się na około 15 minut w 0,05 - 3% roztworze aldehydu glutarowego w celu usieciowania błon i traktuje kompozycją zawierającą od 90% do 99% wagowych etanolu, po czym przepłukuje sterylnym roztworem soli fizjologicznej. Opatrunek pakuje się, a następnie sterylizuje promieniowaniem gamma lub napromieniowuje wiązką elektronów. Stosuje się go zwłaszcza na rany powstałe w wyniku rozdarcia skóry, na rany cukrzycowe, odleżyny, owrzodzenia żylne nóg, rany powstające przy lub wokół tkanki nerwowej, na uszkodzenia jamy ustnej oraz uszkodzenia powierzchni oka.
Znany jest także ze zgłoszenia patentowego CA2826359 A1 usieciowany przeszczep tkankowy o dobrej przyczepności do tkanki biologicznej, stosowany na rany oraz sposób jego wytwarzania. Przeszczep występuje w postaci laminatu i może zawierać dwie warstwy owodni, z których co najmniej jedna jest usieciowana, dwie lub więcej warstw kosmówki lub co najmniej jedną warstwę owodni i jedną kosmówki, z których jedna jest usieciowana. W innym wykonaniu owodnia i kosmówka są usieciowane. Środek sieciujący zawiera cukier, dialdehyd, epoksyd, hydrazyd lub karbodiimid. Pomiędzy owodnią, a kosmówką mogą znajdować się ponadto inne warstwy. Przeszczep tkankowy jest wytworzony następująco: w pierwszej kolejności czyści się łożysko, oddziela warstwy tkanki kosmówki z owodni, usuwa komórki nabłonka i traktuje środkiem sieciującym. Następnie suszy się rozciągniętą błonę na powierzchni szklanej w urządzeniu suszącym. Prowadzi się proces suszenia w temperaturze od 35 do 50°C przez okres od 30 minut do kilku dni. Podczas odwadniania urządzenie suszące może wytłaczać strukturę na błonie. W końcowym etapie przeszczep docina się, pakuje i poddaje sterylizacji.
Najczęściej wykorzystywanym środkiem sieciującym błonę owodniową jest aldehyd glutarowy, jednak stosowane są również inne środki sieciujące takie jak np. karbodiimidy, dwufunkcyjne oksirany, oraz cukry. Ogólny schemat otrzymywania usieciowanej błony owodniowej opisany np. w zgłoszeniu WO2013095830A1 przedstawić można w następujący sposób: wcześniej odkomórczoną błonę owo dniową opcjonalnie odwodnia się w bezwodnym alkoholu etylowym i liofilizuje. Następnie błonę owodniową umieszcza się w naczyniu o dużej powierzchni zawierającym roztwór środka sieciującego w zakresie stężeń od 0,005 M do 5 M i moczy przez okres od 2 sekund do 60 minut, w temperaturze od 20°C do 50°C, mieszając roztwór. Środek sieciujący zawiera cukier, dialdehyd, epoksyd, hydrazyd lub karbodiimid. Po usieciowaniu owodnia może być złożona z innymi warstwami, aby uzyskać laminat, a następnie wysuszona.
W zgłoszeniach patentowych WO201382412 A1 i US20030187515 A1 przedstawiono sposób wytwarzania opatrunku składającego się z jednej lub kilku warstw zawierających elementy łożyska, które po złożeniu ze sobą są odwadniane i liofilizowane lub suszone pod ciśnieniem w celu zwiększenia trwałości błony i ułatwienia manipulacji nią.
Wynalazek ujawniony w zgłoszeniu WO201382412 A1 dotyczy usieciowanego przeszczepu tkankowego wytworzonego przez chemiczne odwadnianie i suszenie sublimacyjne tkanki łożyska. Przeszczep ma wiele zastosowań medycznych, w tym gojenie ran. Tkanki łożyska najpierw czyści się mechanicznie, aby usunąć zakrzepy krwi i inne zanieczyszczenia. Korzystnie, przed etapem odwadniania elementy łożyska moczy się w roztworze antybiotyku i/lub detergentu. Odwadnianie chemiczne polega na kontaktowaniu tkanki łożyska z polarnym rozpuszczalnikiem organicznym, przez taki czas, aby w znacznym stopniu lub całkowicie usunąć resztkową wodę obecną w tkance łożyska. Polarny rozpuszczalnik organiczny stanowi najczęściej alkohol, keton, eter, aldehyd lub dowolna kombinacja tych związków. Następnie tkankę łożyskową liofilizuje się w temperaturze od -50°C do -80°C.
Z kolei w zgłoszeniu patentowym US20030187515 A1 opisano sposób wytwarzania membrany z łożyska, zawierającej suchą i odkomórczoną błonę owodniową, korzystnie ludzką, do stosowania u ludzi, ale też zwierzęcą dla zastosowań w weterynarii. Membrana może być przechowywana w temperaturze pokojowej i stosowana do celów medycznych, w szczególności w chirurgii oka. Można stosować ją jako pojedynczą warstwę opatrunku na rany lub oparzenia, w celu wspomagania procesu gojenia. Można połączyć kilka błon owodniowych w laminat pod ciśnieniem, można też wytworzyć strukturę trójwymiarową i wypełnić ją komórkami np. macierzystymi. Sposób wytwarzania membrany polega na oddzieleniu błony owodniowej od błony kosmówkowej, usunięciu żywych komórek z błony owodniowej poprzez skrobanie po obu jej stronach, przemycie w wodzie lub 0,9%, roztworze soli fizjologicznej i następnie jej wysuszeniu. Suszenie prowadzi się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze od 45°C do 50°C przez około 60 minut.
Znane są również rozwiązania dotyczące kompozycji do leczenia ran oraz regeneracji tkanek, które zawierają owodnię w innych postaciach np. proszku, zawiesiny, roztworu, maści, aerozolu, gąbki, siatki, czy też pianki. Formulacja taka często umieszczana jest na szkielecie wykonanym np. z hydrożelu zawierającego biopolimer. Rozwiązania te są ujawnione m.in. w zgłoszeniach CA2963273 A1,
WO2015134936 A1, US20140342015 A1, WO201440026 A2.
Znane rozwiązania opatrunków zawierających błonę owodniową, zwykle wymagają jej obróbki związanej z użyciem substancji chemicznych, która to obróbka może prowadzić do zmiany charakteru chemicznego lub uszkodzenia struktury fizycznej błony owodniowej. Ponadto wytworzenie opatrunku jest procesem długotrwałym, wieloetapowym i często wymaga stosowania specjalistycznej aparatury i skomplikowanych procedur oraz drogich substratów.
Okazało się, że opatrunek zawierający błonę owodniową można wytworzyć dużo prostszym, jednoetapowym sposobem, bez konieczności stosowania wysoce specjalistycznej aparatury oraz dodatkowych substancji chemicznych, które mogą zmieniać właściwości błony owodniowej i w konsekwencji prowadzić do zmniejszenia jej korzystnego wpływu na ranę.
Istota sposobu wytwarzania opatrunku kompozytowego zawierającego błonę owodniową, pozyskaną z łożyska odzwierzęcego, zespoloną z warstwą podkładu polimerowego, który to opatrunek przed sterylizacją poddaje się ewentualnie perforacji, charakteryzuje się tym, że formuje się nieusieciowany, wysuszony podkład polimerowy o grubości od 0,01 do 1 mm, wytworzony z co najmniej jednego biozgodnego polimeru, rozpuszczalnego w wodzie i zdolnego do sieciowania radiacyjnego, który jednostronnie zwilża się równomiernie wodą w ilości od 50 do 200 mg/cm2, w celu rozpuszczenia wierzchniej warstwy podkładu i ułatwienia nietrwałego przyczepienia do niego błony owodniowej. Następnie, na zwilżoną stronę podkładu nakłada się w temperaturze od 10 do 35°C, odkomórczoną błonę owodniową w postaci arkusza lub sproszkowanej i obie warstwy dociska się do siebie, przy czym przed dociśnięciem ich usuwa się ewentualne pęcherzyki powietrza spomiędzy warstw podkładu polimerowego i owodni oraz poddaje je działaniu promieniowania jonizującego, korzystnie pochodzącego z akceleratora liniowego lub bomby kobaltowej w dawce od 10 do 40 kGy, powodującej usieciowane podkładu polimerowego i błony owodniowej, z utworzeniem węzłów międzysieciowych pomiędzy podkładem polimerowym, a błoną owodniową, które to węzły formują trwałe połączenia pomiędzy podkładem polimerowym, a błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku. Dzięki zwilżeniu wodą warstwy podkładu polimerowego przed nałożeniem na niego wcześniej przygotowanej błony owodniowej, zachodzi wnikanie rozpuszczonej częściowo warstwy polimeru w pory błony owodniowej i zwiększenie adhezji pomiędzy warstwami opatrunku, lecz bez łączenia ich w sposób trwały. Natomiast wskutek zastosowania promieniowania jonizującego, proces trwałego łączenia ze sobą warstw następuje dopiero po usieciowaniu radiacyjnym gotowego już opatrunku.
Następnie usuwa się z opatrunku wilgoć przez liofilizację, zamrażając go w temperaturze od -50 do -195°C, a następnie obniżając ciśnienie do wartości od 500 do 20 mTor bez kontroli temperatury.
W sposobie używa się błony owodniowej w postaci elastycznego arkusza o kształcie i wymiarach dopasowanym do podkładu polimerowego lub w postaci sproszkowanej, równomiernie rozsypanej na podkładzie polimerowym, w ilości 0,05 do 0,5 g na 100 cm2 podkładu polimerowego.
Korzystnie dla uformowania podkładu polimerowego, wodny roztwór polimeru o stężeniu od 1 do 20% wagowych wylewa się na podłoże o niskim stopniu adhezji, najlepiej szklane lub metalowe, w ilości od 0,01 do 0,5 cm3/cm2 i następnie suszy się wylaną warstwę w temperaturze od 15 do 45°C przez okres od 1 godziny do 5 dni.
Korzystnie jako polimer stosuje się poli(alkohol winylowy) i/lub poli(tlenek etylenu) i/lub poli(winylopirolidon). Są to polimery biozgodne w kontakcie z komórkami skóry i nie wykazują wobec nich działania toksycznego.
Korzystnie stosuje się błonę owodniową w postaci wilgotnego arkusza, mniejszego od arkusza podkładu polimerowego, przy czym krawędź arkusza błony owodniowej jest oddalona od krawędzi podkładu polimerowego o odległość od 0,2 do 0,5 cm. Alternatywnie stosuje się błonę owodniową w postaci suchego proszku, który jest rozsypany na powierzchni podkładu polimerowego w taki sposób, że krawędź powierzchni pokrytej błoną owodniową w postaci sproszkowanej jest oddalona od krawędzi podkładu polimerowego o odległość od 0,2 do 0,5 cm. Korzystnie używa się szablonu, ułatwiającego naniesienie sproszkowanej błony owodniowej na odpowiedniej powierzchni podkładu.
Korzystnie do podkładu polimerowego podczas jego wytwarzania lub do gotowego opatrunku bezpośrednio przed jego aplikacją dodaje się w ilości od 0,1 do 15% wagowych substancje czynne rozpuszczalne w wodzie lub występujące w postaciach umożliwiających ich rozpuszczenie w wodzie.
Korzystnie jako substancje czynne stosuje się środki wspomagające leczenie obrażeń skóry takie jak kolistyna lub siarczan neomycyny lub siarczan gentamycyny.
Korzystnie wytwarza się opatrunek w komorze laminarnej lub w atmosferze bezpyłowej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
Korzystnie przygotowaną wcześniej błonę owodniową przed użyciem jej do wytworzenia opatrunku, przechowuje się w temperaturze od -20°C do -150°C, co zapewnia jej przydatność do użycia przez okres od 3 miesięcy do 5 lat. Odpowiednio błonę przechowuje się przez okres do 3 miesięcy w temperaturze -20°C, przez okres do 3 lat w temperaturze -80°C, a przez okres do 5 lat w temperaturze -150°C.
Sposób według wynalazku wykorzystuje fakt, że podczas jednej operacji technologicznej obejmującej obróbkę radiacyjną opatrunku możliwa jest nie tylko sterylizacja i procesy sieciowania warstwy polimerowej oraz błony owodniowej, ale również immobilizacja błony owodniowej na podkładzie polimerowym, dzięki zachodzącemu pod wpływem promieniowania radiacyjnego zjawiska powstawania międzywarstwowych węzłów sieciowych. Sieciowanie między warstwą polimeru, a warstwą błony owodniowej zachodzi poprzez utworzenie węzłów sieci, wskutek rekombinacji utworzonych radiacyjnie rodników w kolagenie z błony owodniowej i w polimerze.
W znanych sposobach, immobilizacja błony owodniowej na podkładzie polimerowym wymagała przeprowadzenia kilkuetapowego procesu z użyciem dodatkowych środków technicznych, co przedłużało i komplikowało proces produkcji opatrunków, a ponadto prowadziło często do uszkodzenia błony owodniowej i osłabiało jej właściwości lecznicze.
Natomiast w sposobie według wynalazku dla immobilizacji błony owodniowej i podkładu polimerowego nie są stosowane dodatkowe środki sieciujące, ani substancje adhezyjne. Wyklucza to potrzebę dodatkowych etapów operacji i ułatwia oraz przyspiesza proces otrzymywania opatrunku. Pozwala też na uniknięcie ewentualnej reakcji alergicznej u pacjenta.
Opatrunek po aplikacji na ranę można unieruchomić za pomocą bandaża. Można również przykleić go do handlowo dostępnego opatrunku foliowego, takiego jak np. Suprasorb F 10x12 cm, który z jednej strony posiada warstwę przylepną. Opatrunek według wynalazku nakleja się od strony podkładu polimerowego na handlowo dostępny opatrunek, pozostawiając odkryte jego brzegi z klejem, co umożliwia przyklejenie ich do skóry pacjenta.
Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową objaśniono poniżej w praktycznych przykładach realizacji wynalazku oraz na rysunku, na którym pokazano w sposób schematyczny przebieg procesu.
Przykład 1
Rozpuszczono 10 g poli(alkoholu winylowego) w 90 cm3 wody, uzyskując lepki roztwór o stężeniu 10% wagowych. Następnie wylano 30 cm3 roztworu na czyste, wytrawione podłoże szklane. Warstwę pozostawiono do wolnego schnięcia, przez okres 5 dni w temperaturze 25°C. Po tym czasie uzyskano suchą warstwę polimerową o grubości 0,13 mm. Warstwę polimerową zdjęto z podłoża, a następnie przycięto w kwadrat o boku 10 cm. Z jednej strony zwilżono warstwę polimerową wodą w ilości 50 mg/cm2.
Wcześniej przygotowaną, odkomórczoną oraz wilgotną błonę owodniową, przechowywaną do momentu przygotowania opatrunku w temperaturze -80°C, umieszczono na sterylnej powierzchni i przycięto w kwadrat o boku 9,6 cm.
Następnie nawinięto ją na wytrawiony szklany walec o takim obwodzie, że nawinięta na walec błona owodniową tworzy tylko jedną warstwę, bez kontaktu jej brzegów po nawinięciu i na nim przeniesiono błonę owodniową i rozwinięto na warstwę polimerową, w temperaturze 18°C, co pozwoliło na nałożenie błony owodniowej bez bąbli powietrza pomiędzy warstwami, bez specjalnego docisku.
Proces prowadzono w komorze laminarnej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
Przygotowany opatrunek poddano działaniu wiązki szybkich elektronów, generowaną przez akcelerator typu Elektronika 10/10, w dawce 35 kGy. Źródłem elektronów było działo elektronowe, a emitowane elektrony były przyspieszane przez falę elektromagnetyczną do energii 10 MeV. Szybkość przesuwania się taśmy wynosiła 0,365 m/min. Oddziaływanie promieniowania spowodowało usieciowanie warstwy polimerowej oraz wytworzenie się węzłów sieci pomiędzy warstwą polimerową i błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku.
Uzyskany opatrunek został poddany liofilizacji w celu przedłużenia okresu jego przydatności do użycia. Zamrażanie prowadzono przez 120 minut po ochłodzeniu do -50°C przy prędkości chłodzenia 1,16°C/min. Wstępny etap suszenia prowadzono przez 360 min przy obniżonym ciśnieniu w komorze do 200 mTor i w temperaturze -20°C. Po wstępnym suszeniu prowadzono trójfazowe suszenie właściwe. W pierwszej fazie ciśnienie utrzymywano na poziomie 200 mTor, a temperaturę podniesiono do 0°C w tempie 3°C/min i utrzymywano przez 360 min. W drugiej fazie utrzymywano ciśnienie na poziomie 200 mTor i temperaturę podwyższono do 20°C z szybkością 3°C/min i utrzymywano przez 360 min. W trzeciej, ostatniej fazie ciśnienie utrzymywano na poziomie 200 mTor i temperaturę podniesiono do 30°C i utrzymywano przez 2760 min.
Przykład 2
Rozpuszczono 10 g poli(tlenku etylenu) w 90 cm3 wody uzyskując lepki roztwór o stężeniu 10% wagowych. Następnie wylano 30 cm3 roztworu na czyste, wytrawione podłoże szklane. Warstwę pozostawiono do wolnego schnięcia przez 4 dni w temperaturze 30°C. Po tym czasie uzyskano suchą warstwę polimerową o grubości 0,09 cm. Warstwę polimerową zdjęto z podłoża, a następnie przycięto w kwadrat o boku 10 cm. Z jednej strony zwilżono warstwę polimerową wodą w ilości ok. 200 mg/cm2.
Wcześniej przygotowaną, odkomórczoną błonę owodniową w postaci suchego płata, przechowywaną do momentu przygotowania opatrunku w temperaturze -80°C, sproszkowano i w ilości 0,2 g rozsypano równomierną warstwą na powierzchni polimeru zwilżonej wcześniej wodą, w postaci kwadratu o boku 9,5 cm, używając szablonu.
Proces prowadzono w komorze laminarnej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
Przygotowany opatrunek poddano działaniu wiązki szybkich elektronów generowaną przez akcelerator typu Elektronika 10/10, w dawce 35 kGy. Źródłem elektronów było działo elektronowe, a emitowane elektrony były przyspieszane przez falę elektromagnetyczną do energii 10 MeV. Szybkość przesuwania się taśmy wynosiła 0,365 m/min.
Oddziaływanie promieniowania spowodowało usieciowanie warstwy polimerowej oraz wytworzenie się węzłów sieci pomiędzy warstwą polimerową i błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku.
W celu usunięcia wilgoci z opatrunku poddano liofilizacji jak w przykładzie 1.
Przykład 3
Rozpuszczono 9,5 g poli(winylopirolidonu) w 90,5 cm3 wody uzyskując lepki roztwór o stężeniu 9,5% wagowych. Do roztworu dodano 0,5 grama kolistyny, leku powszechnie stosowanego w leczeniu obrażeń skóry. W innych wykonaniach opatrunku można zastosować siarczan neomycyny lub siarczan gentamycyny. Następnie wylano 30 cm3 roztworu na czyste, wytrawione podłoże szklane. Warstwę pozostawiona do wolnego schnięcia przez 4 dni w temp 30°C. Po tym czasie uzyskano suchą warstwę polimerową wzbogaconą w substancje czynną, o grubości 0,15 cm. Warstwę polimerową zdjęto z podłoża a następnie przycięto w kwadrat o boku 10 cm. Z jednej strony zwilżono warstwę polimerową wodą w ilości 85 mg/cm2.
Wcześniej przygotowaną, odkomórczoną oraz wilgotną błonę owodniową, przechowywaną do momentu przygotowania opatrunku w temperaturze -80°C, umieszczono na sterylnej powierzchni i przycięto w kwadrat o boku 9,8 cm.
Następnie nawinięto ją na wytrawiony szklany walec o takim obwodzie, że nawinięta na walec błona owodniowa tworzy tylko jedną warstwę, bez kontaktu jej brzegów po nawinięciu i na nim przeniesiono błonę owodniową i rozwinięto na warstwę polimerową, w temperaturze 18°C, co pozwoliło na nałożenie błony owodniowej bez bąbli powietrza pomiędzy warstwami, bez specjalnego docisku.
W dodatkowych doświadczeniach prowadzono proces nakładania błony owodniowej na warstwę polimerową w temperaturze 10°C i w temperaturze 35°C, uzyskując analogiczne wyniki.
Proces prowadzono w komorze laminarnej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
Przygotowany opatrunek poddano działaniu wiązki szybkich elektronów, generowaną przez akcelerator typu Elektronika 10/10, w dawce 35 kGy. Źródłem elektronów było działo elektronowe, a emitowane elektrony były przyspieszane przez falę elektromagnetyczną do energii 10 MeV. Szybkość przesuwania się taśmy wynosiła 0,365 m/min. Oddziaływanie promieniowania spowodowało usieciowanie warstwy polimerowej oraz wytworzenie się węzłów sieci pomiędzy warstwą polimerową i błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku.
W celu usunięcia wilgoci z opatrunku poddano liofilizacji jak w przykładzie 1.
Przykład 4
Rozpuszczono 5 g poli(winylopirolidonu) oraz 5 g poli(tlenku etylenu) w 90 cm3 wody, uzyskując lepki roztwór o stężeniu 10% wagowych. Następnie wylano 30 cm3 roztworu na czyste, odtłuszczone za pomocą wapna podłoże metalowe. Warstwę pozostawiono do wolnego schnięcia, przez okres 5 dni w temperaturze 25°C. Po tym czasie uzyskano suchą warstwę polimerową o średniej grubości 0,11 mm. Warstwę polimerową zdjęto z podłoża, a następnie przycięto w kwadrat o boku 10 cm. Z jednej strony zwilżono warstwę polimerową wodą w ilości 60 mg/cm2.
Wcześniej przygotowaną, odkomórczoną oraz wilgotną błonę owodniową, przechowywaną do momentu przygotowania opatrunku w temperaturze -80°C, umieszczono na sterylnej powierzchni i przycięto w kwadrat o boku 9,6 cm.
Następnie nawinięto ją na wytrawiony szklany walec o takim obwodzie, że nawinięta na walec błona owodniowa tworzy tylko jedną warstwę, bez kontaktu jej brzegów po nawinięciu i na nim przeniesiono błonę owodniową i rozwinięto na warstwę polimerową w temperaturze 18°C, co pozwoliło na nałożenie błony owodniowej bez bąbli powietrza pomiędzy warstwami, bez specjalnego docisku.
Proces prowadzono w komorze laminarnej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
Następnie opatrunek przyklejono stroną podkładu polimerowego do warstwy przylepnej handlowo dostępnego foliowego opatrunku Suprasorb F o rozmiarach 10x12 cm pozostawiając po obu stronach przylepne brzegi, w celu ułatwienia aplikacji opatrunku na ranę i jego unieruchomienia. Przygotowany opatrunek przed procesem sieciowania sperforowano za pomocą wałka z igłami o długości igieł 0,5 mm.
Gotowy opatrunek poddano działaniu wiązki szybkich elektronów, generowaną przez akcelerator typu Elektronika 10/10, w dawce 35 kGy.
Źródłem elektronów było działo elektronowe, a emitowane elektrony były przyspieszane przez falę elektromagnetyczną do energii 10 MeV. Szybkość przesuwania się taśmy wynosiła 0,365 m/min. Oddziaływanie promieniowania spowodowało usieciowanie warstwy polimerowej oraz wytworzenie się węzłów sieci pomiędzy warstwą polimerową i błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku.
W celu usunięcia wilgoci z opatrunku poddano liofilizacji jak w przykładzie 1.
Claims (12)
1. Sposób wytwarzania opatrunku kompozytowego zawierającego błonę owodniową, pozyskaną z łożyska odzwierzęcego, zespoloną z warstwą podkładu polimerowego, który to opatrunek przed sterylizacją poddaje się ewentualnie perforacji, znamienny tym, że formuje się nieusieciowany, wysuszony podkład polimerowy o grubości od 0,01 do 1 mm, wytworzony z co najmniej jednego biozgodnego polimeru, rozpuszczalnego w wodzie i zdolnego do sieciowania radiacyjnego, który jednostronnie zwilża się równomiernie wodą w ilości od 50 do 200 mg/cm2, po czym na zwilżoną stronę podkładu nakłada się w temperaturze od 10 do 35°C odkomórczoną błonę owodniową i obie warstwy dociska się do siebie, przy czym przed dociśnięciem ich usuwa się ewentualne pęcherzyki powietrza spomiędzy warstw podkładu polimerowego i owodni oraz poddaje je działaniu promieniowania jonizującego, korzystnie pochodzącego z akceleratora liniowego lub bomby kobaltowej w dawce od 10 do 40 kGy, powodującej usieciowane podkładu polimerowego i błony owodniowej, z utworzeniem węzłów międzysieciowych pomiędzy podkładem polimerowym, a błoną owodniową, które to węzły formują trwałe połączenia pomiędzy podkładem polimerowym, a błoną owodniową, a także sterylizację opatrunku, po czym usuwa się z opatrunku wilgoć przez liofilizację, zamrażając go w temperaturze od -50 do -195°C, a następnie obniżając ciśnienie do wartości w zakresie od 500 do 20 mTor bez kontroli temperatury, przy czym używa się błony owodniowej w postaci elastycznego arkusza o kształcie i wymiarach dopasowanym do podkładu polimerowego lub w postaci sproszkowanej, równomiernie rozsypanej na podkładzie polimerowym, w ilości 0,05 do 0,5 g na 100 cm2 podkładu polimerowego.
2. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że wodny roztwór polimeru o stężeniu 1 do 20% wagowych wylewa się na podłoże o niskim stopniu adhezji, korzystnie szklane lub metalowe w ilości 0,01 - 0,5 cm3/cm2 i następnie suszy się wylaną warstwę w temperaturze od 15 do 45°C przez okres od 1 godziny do 5 dni.
3. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że jako polimer stosuje się poli(alkohol winylowy) i/lub poli(tlenek etylenu) i/lub poli(winylopirolidon).
4. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że stosuje się błonę owodniową w postaci wilgotnego arkusza mniejszego od arkusza podkładu polimerowego, przy czym krawędź arkusza błony owodniowej jest oddalona od krawędzi podkładu polimerowego o odległość od 0,2 do 0,5 cm.
5. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że stosuje się błonę owodniową w postaci suchego proszku, rozsypanego na powierzchni podkładu polimerowego, w taki sposób, że krawędź powierzchni pokrytej błoną owodniową w postaci sproszkowanej jest oddalona od krawędzi podkładu polimerowego o odległość od 0,2 do 0,5 cm.
6. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że do podkładu polimerowego podczas jego wytwarzania lub do gotowego opatrunku bezpośrednio przed jego aplikacją dodaje się w ilości od 0,1 do 15% wagowych substancje czynne rozpuszczalne w wodzie lub występujące w postaciach umożliwiających ich rozpuszczenie w wodzie.
7. Sposób, według zastrzeżenia 5, znamienny tym, że jako substancje czynne stosuje środki wspomagające leczenie obrażeń skóry takie jak kolistyna lub siarczan neomycyny lub siarczan gentamycyny.
8. Sposób, według zastrzeżenia 1, znamienny tym, że wytwarza się opatrunek w komorze laminarnej z zastosowaniem filtrowanych rozpuszczalników i roztworów.
9. Korzystnie przygotowaną wcześniej błonę owodniową przed użyciem jej do wytworzenia opatrunku, przechowuje się w temperaturze od -20°C do -150°C, co zapewnia jej przydatność do użycia przez okres od 3 miesięcy do 5 lat.
10. Sposób, według zastrzeżenia 9, znamienny tym, że przygotowaną wcześniej błonę owodniową, przed użyciem jej do wytworzenia opatrunku, przechowuje się przez okres do 3 miesięcy w temperaturze -20°C.
11. Sposób, według zastrzeżenia 9, znamienny tym, że przygotowaną wcześniej błonę owodniową, przed użyciem jej do wytworzenia opatrunku, przechowuje się przez okres do 3 lat w temperaturze -80°C.
PL 243162 Β1
12. Sposób, według zastrzeżenia 9, znamienny tym, że przygotowaną wcześniej błonę owodniową, przed użyciem jej do wytworzenia opatrunku, przechowuje się przez okres do 5 lat w temperaturze -150°C.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL434516A PL243162B1 (pl) | 2020-06-30 | 2020-06-30 | Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL434516A PL243162B1 (pl) | 2020-06-30 | 2020-06-30 | Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL434516A1 PL434516A1 (pl) | 2022-01-03 |
| PL243162B1 true PL243162B1 (pl) | 2023-07-10 |
Family
ID=80001167
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL434516A PL243162B1 (pl) | 2020-06-30 | 2020-06-30 | Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL243162B1 (pl) |
-
2020
- 2020-06-30 PL PL434516A patent/PL243162B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL434516A1 (pl) | 2022-01-03 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP1259269B1 (en) | Agent for the treatment of wounds | |
| Chopra et al. | Strategies and therapies for wound healing: a review | |
| CA1234653A (en) | Biomaterial | |
| CA2717619C (en) | Graft materials and methods for staged delivery of bioactive components | |
| JPS6122586B2 (pl) | ||
| JPH08260310A (ja) | 微生物多糖製品及びその製造方法 | |
| IE54829B1 (en) | Liquid loaded microbially-produced cellulose pad for medical use | |
| JP2022523780A (ja) | 抗菌ドレッシング、ドレッシング構成要素、及び方法 | |
| KR100748348B1 (ko) | 방사선 조사기술을 이용한 상처 치료용 수화겔의 제조방법 | |
| JP4273450B2 (ja) | 組織再生用基材、移植用材料及びそれらの製法 | |
| EP0682534A1 (en) | Pharmaceutical compositions comprising a spongy material consisting of ester derivatives of hyaluronic acid combined with other pharmacologically active substances | |
| CN102198288A (zh) | 一种水溶型止血材料及其制备方法 | |
| JP4486304B2 (ja) | 慢性創傷の治療用の微生物セルロース性創傷被覆材 | |
| CN100540065C (zh) | 辐照交联多孔网状脱细胞羊膜水凝胶敷料的制作方法 | |
| RU2198685C1 (ru) | Медицинский полимерный гелевый материал и лечебные средства на его основе | |
| KR20010086864A (ko) | 방사선 이용 수화겔 드레싱 제조방법 | |
| KR20060134346A (ko) | 키토산계 미세다공성 폼 드레싱재 및 그 제조 방법 | |
| PL243162B1 (pl) | Sposób wytwarzania opatrunku zawierającego błonę owodniową | |
| KR100459494B1 (ko) | 상처 치료용 수화겔의 제조방법 | |
| RU2270646C2 (ru) | Перевязочное средство | |
| JPH05192363A (ja) | 創傷被覆材 | |
| TW202327657A (zh) | 三維網狀水性凝膠及其製造方法 | |
| KR100372560B1 (ko) | 숯 충진 수화겔 드레싱 및 방사선을 이용한 그의 제조방법 | |
| CN119386278B (zh) | 一种性能增强型生物羊膜及其制备方法 | |
| RU2547386C1 (ru) | Технология регенеративной биопластики дефектов покровных тканей |