PL238781B1 - Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych - Google Patents
Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych Download PDFInfo
- Publication number
- PL238781B1 PL238781B1 PL421356A PL42135617A PL238781B1 PL 238781 B1 PL238781 B1 PL 238781B1 PL 421356 A PL421356 A PL 421356A PL 42135617 A PL42135617 A PL 42135617A PL 238781 B1 PL238781 B1 PL 238781B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- tank
- meal
- liquid fraction
- directed
- polymer
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/10—Animal feeding-stuffs obtained by microbiological or biochemical processes
- A23K10/12—Animal feeding-stuffs obtained by microbiological or biochemical processes by fermentation of natural products, e.g. of vegetable material, animal waste material or biomass
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23J—PROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
- A23J1/00—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites
- A23J1/14—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds
- A23J1/148—Obtaining protein compositions for foodstuffs; Bulk opening of eggs and separation of yolks from whites from leguminous or other vegetable seeds; from press-cake or oil-bearing seeds by treatment involving enzymes or microorganisms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/10—Animal feeding-stuffs obtained by microbiological or biochemical processes
- A23K10/14—Pretreatment of feeding-stuffs with enzymes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/10—Animal feeding-stuffs obtained by microbiological or biochemical processes
- A23K10/16—Addition of microorganisms or extracts thereof, e.g. single-cell proteins, to feeding-stuff compositions
- A23K10/18—Addition of microorganisms or extracts thereof, e.g. single-cell proteins, to feeding-stuff compositions of live microorganisms
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/30—Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms
- A23K10/37—Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms from waste material
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K20/00—Accessory food factors for animal feeding-stuffs
- A23K20/10—Organic substances
- A23K20/142—Amino acids; Derivatives thereof
- A23K20/147—Polymeric derivatives, e.g. peptides or proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K20/00—Accessory food factors for animal feeding-stuffs
- A23K20/10—Organic substances
- A23K20/189—Enzymes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K40/00—Shaping or working-up of animal feeding-stuffs
- A23K40/25—Shaping or working-up of animal feeding-stuffs by extrusion
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K50/00—Feeding-stuffs specially adapted for particular animals
- A23K50/70—Feeding-stuffs specially adapted for particular animals for birds
- A23K50/75—Feeding-stuffs specially adapted for particular animals for birds for poultry
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
- C12M29/18—External loop; Means for reintroduction of fermented biomass or liquid percolate
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M43/00—Combinations of bioreactors or fermenters with other apparatus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M45/00—Means for pre-treatment of biological substances
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M47/00—Means for after-treatment of the produced biomass or of the fermentation or metabolic products, e.g. storage of biomass
- C12M47/10—Separation or concentration of fermentation products
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M47/00—Means for after-treatment of the produced biomass or of the fermentation or metabolic products, e.g. storage of biomass
- C12M47/12—Purification
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P1/00—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
- C12P1/04—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using bacteria
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A23—FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
- A23K—FODDER
- A23K10/00—Animal feeding-stuffs
- A23K10/30—Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/07—Bacillus
- C12R2001/125—Bacillus subtilis ; Hay bacillus; Grass bacillus
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P60/00—Technologies relating to agriculture, livestock or agroalimentary industries
- Y02P60/80—Food processing, e.g. use of renewable energies or variable speed drives in handling, conveying or stacking
- Y02P60/87—Re-use of by-products of food processing for fodder production
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Polymers & Plastics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Physiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Botany (AREA)
- Birds (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Virology (AREA)
- Fodder In General (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Processing Of Solid Wastes (AREA)
- Fertilizers (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju.
Obecnie jedną z najbardziej dostępnej śruty jest śruta rzepakowa. Aż 24% mąki z nasion oleistych, stosowanych w paszy pochodzi z nasion rzepaku w porównaniu do 59% z soi i 12% ze słonecznika. Wadą śruty rzepakowej jest to, że w porównaniu do śruty sojowej, zawiera ona większy odsetek polisacharydów ścian komórkowych, które w większości nie są trawione przez endogenne enzymy zwierząt monogastrycznych. Z kolei śruta rzepakowa jest lepsza od śruty sojowej w odniesieniu do zawartości niektórych aminokwasów. Na przykład śruta rzepakowa zawiera więcej metioniny i cysteiny. Nasiona roślin oleistych zawierają około 40% oleju. Po ekstrakcji śruta, poza trudno przyswajalnymi lub nietrawionymi węglowodanami, może zawierać od 38% do 43% białka. Często jednak śruta może zawierać związki antyżywieniowe lub toksyczne. Na przykład rzepak mógłby być znaczącym źródłem białka zastępując w dużej mierze soję, gdyby nie zawartość toksycznych glukozynolanów i innych składników antyżywieniowych, które mogą powodować powiększenie tarczycy, uszkodzenie wątroby, a nawet śmierć zwierząt. Z biegiem lat, zawartość glukozynolanów w odmianach rzepaku stopniowo spadała i obecnie jest o rząd wielkości mniejsza. Dlatego też pasza dla brojlerów i kur niosek, może teraz zawierać do 20% śruty rzepakowej bez wywoływania jakichkolwiek negatywnych skutków ubocznych. Tworzenie nowych odmian jest jednak wieloletnim procesem bardzo kosztochłonnym. Znane są biotransformacje biomasy w celu uzyskania wartości dodanej, które są stosowane w tradycyjnych potrawach czy napojach fermentowanych. Znany jest szczep Bacillus subtilis var natto używany do wytwarzania produktów fermentowanej soi - natto. W produkcji natto istotną rolę odgrywają proteazy wydzielane przez Bacillus subtilis (natto): mające optimum aktywności przy pH=8,5 i pH=10,3-10,8, które hydrolizując białka soi, przyczyniają się do powstawania charakterystycznego smaku natto. B. subtilis var natto wytwarza enzym subtylizynę, która degraduje alergen występujący w niefermentowanych, ale także i w fermentowanych produktach sojowych, takich jak np. natto. Mimo, że od wielu lat Bacillus subtilis var natto stosuje się do produkcji cennej żywności dla ludzi, proces ten nie został wykorzystany do produkcji paszy dla zwierząt o podwyższonej wartości odżywczej. W szczególności nie były izolowane szczepy Bacillus subtilis var natto i testowane do biotransformacji różnych produktów mogących zostać wykorzystane w paszach dla zwierząt.
Znany jest ze zgłoszenia P.406135 sposób wytwarzania biosurfaktantów, substancji z grupy lipopeptydów, przeznaczonych do produkcji środków chemii gospodarczej i kosmetyków. Charakteryzuje się tym, że fermentacje przeprowadza się metodą wgłębną w środowisku pH 7, w temperaturze 27°C, które zapewnia pseudo homogeniczność układu, przy odpowiednim natlenieniu hodowli, przez 48 godzin, w obecności mikroorganizmów z gatunku Bacillus hodowanych na podłożu składającym się ze śruty poekstrakcyjnej zmieszanej z makuchami rzepakowymi w stosunku 1:1,25 w ilości od 19,5 do 35,5% wagowych, następnie powstałą mieszankę uzupełnia się wodą w ilości od 60 do 70% wagowych i przeprowadza inokulację płynną kulturą bakterii Bacillus, rosnącej na podłożu mineralnym M9 z nocnej kultury, absorbancja OD600 = 1χ10-8. Substancje po fermentacji oczyszcza się za pomocą odwrotnej osmozy i/lub dalej oczyszcza się przez ekstrakcje rozpuszczalnikiem organicznym eterem metylowo-tert-butylowym (MTBE).
Celem wynalazku było opracowanie metody biotransformacji śruty i kaskadowej, sekwencyjnej jej rafinacji prowadzącej do wydzielenia produktu lub produktów o wysokiej wartości dodanej i otrzymanie w efekcie końcowym pozostałej biomasy o podwyższonej wartości odżywczej w porównaniu do materiału początkowego śruty poekstrakcyjnej.
Istotę wynalazku stanowi sposób do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju, metodą biotransformacji przy zastosowaniu do fermentacji w fazie stałej lub ciekłej mikroorganizmów, charakteryzujący się tym, że śrutę z nasion roślin oleistych, dodatki stymulujące biosyntezę produktów, poddaje uwodnieniu wodą ze zbiornika wody do zawartości wody od 20% do 85% i zaszczepia się mikroorganizmami, które stanowi Bacillus subtilis natto przy czym śrutę z nasion roślin oleistych poddaje się obróbce wstępnej w zbiorniku przygotowania składników śruty, polegającej na jej jałowieniu. A następnie dozuje się do bioreaktora, w którym poddaje inkubacji od 6 godz. do 48 godz. w temp. od 20 do 50°C, a po przeprowadzonej fermentacji mieszaninę kieruje się do separatora gdzie oddzielana jest frakcja stała od frakcji płynnej, która to frakcja stała jest następnie suszona w temperaturze nie przekraczającej temperatury denaturacji enzymów, a potem, jako gotowy produkt w postaci biośruty, dozowana jest do zbiornika komponentu mieszanki paszowo uzupełniającej MPU. Z kolei
PL 238 781 B1 frakcję płynną kieruje się do wirówki, w której odwirowuje się komórki mikroorganizmów oraz zanieczyszczenia stałe o wielkościach średnicy większych niż 0,1 μm i kieruje ponownie do bioreaktora. A oczyszczoną frakcję płynną kieruje się albo zgodnie z opcją pierwszą do absorbera, w którym na węglu aktywnym przeprowadza się sorpcję wytworzonych przez mikroorganizmy biosurfaktantów, których desorpcja przeprowadzana jest poprzez poddawanie ekstrakcji CO2 w warunkach nadkrytycznych, węgla aktywnego z zaadsorbowanymi biosurfaktantami, w reaktorze ciśnieniowym, który uprzednio poddaje się suszeniu w osuszaczu, lub zgodnie z opcją drugą poddaje się ekstrakcji, w reaktorze pod ciśnieniem atmosferycznym albo z wirówki oczyszczoną frakcję płynną kieruje się zgodnie z opcją trzecią do precypitacji w reaktorze, lub zgodnie z opcją czwartą zagęszcza się w odwadniaczu, a uzyskana frakcja stała zawierająca wydzielone surowe surfaktanty kierowana jest do zbiornika surowych surfaktantów, a roztwór wodny kieruje się do zbiornika wody. Natomiast frakcję płynną po wydzieleniu surfaktantów, która zawiera polimery zagęszcza się w zagęszczaczu, przy czym oddzieloną wodę odprowadza się ponownie do zbiornika wody, a następnie z zagęszczonej frakcji płynnej w separatorze polimerów w obecności etanolu wydzielany jest polimer w postaci surowego polimeru, który kierowany jest do zbiornika surowego polimeru, a płynna frakcja dozowana jest do urządzenia do odzysku etanolu, którego wydzielony etanol kierowany jest ponownie do separatora polimerów, a pozostała płynna frakcja oczyszczona z etanolu, zawierająca bioprodukty, kierowana jest do bioreaktora. Z kolei surowe surfaktanty oraz surowe polimery poddaje się dalszej rafinacji i/lub frakcjonowaniu znanymi metodami i kierowane są do zbiornika oczyszczonej surfaktyny lub zbiorników oczyszczonego polimeru w urządzeniu do frakcjonowania polimerów i/lub surfaktantów.
Korzystnie, gdy śrutą z nasion roślin oleistych jest śruta rzepakowa.
Korzystnie, gdy proces fermentacji prowadzony jest w warunkach napowietrzania w ilości 0,01 do 10 objętości powietrza na jedną objętość bioreaktora na 1 min.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny występuje w postaci granulowanej.
Korzystnie, gdy desorpcja surfaktantów jest uzyskana przez odpłukanie rozpuszczalnikami takimi jak woda, etanol lub ich mieszanina.
Korzystnie, gdy stosuje się kwaśną precypitację.
Korzystnie, gdy węgiel aktywny jest suszony do uzyskania wilgotności równej maksymalnej wilgotności śruty.
Korzystnie, gdy wysuszony węgiel aktywny poddawany jest ekstrakcji CO2 w warunkach nadkrytycznych z zastosowaniem kosolwentów takich jak etanol lub metanol lub nimi samymi bez użycia CO2.
Korzystnie, gdy frakcja płynna po wydzieleniu surfaktantów zawierająca polimery w pierwszym etapie jest zagęszczana poprzez filtrowanie, korzystnie filtr membranowy.
Korzystnie, gdy polimery są otrzymywane przez wytrącanie etanolem w stosunku wagowym od 50 do 90% korzystnie w temperaturze od -15 do +20°C.
Kolejną istotą wynalazku jest układ do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju, charakteryzujący się tym, że ma zbiornik mikroelementów, zbiornik śruty, zbiornik dodatków, zbiornik wody, które połączone są przewodami z bioreaktorem, który z kolei połączony jest z wirówką poprzez wytłaczarkę oraz przewód odprowadzania bakterii, natomiast wytłaczarka połączona jest z suszarką i zbiornikiem komponentów MPU. Natomiast wirówka połączona jest poprzez absorber i przewody wyposażone w zawór z ekstraktorem ciśnieniowym, lub ekstraktorem pod ciśnieniem atmosferycznym, natomiast ekstraktor ciśnieniowy połączony jest przewodem wyposażonym w zawór poprzez osuszacz oraz wirówka połączona jest z reaktorem i odwadniaczem poprzez przewody wyposażone w zawory, a każdy z nich z kolei połączony jest ze zbiornikiem surowej surfaktyny, ponadto ekstraktor ciśnieniowy, ekstraktor pod ciśnieniem atmosferycznym i reaktor połączone są z separatorem polimerów poprzez zagęszczacz, który połączony jest ze zbiornikiem wody, z kolei separator polimerów połączony jest ze zbiornikiem surowego polimeru oraz urządzeniem do odzysku etanolu, który przewodami podłączony jest do separatora polimerów i bioreaktora, natomiast odwadniacz połączony jest ze zbiornikiem wody.
Korzystnie, gdy zbiornik surowej surfaktyny połączony jest ze zbiornikami oczyszczonej surfaktyny poprzez urządzenie do frakcjonowania, i/lub zbiornik surowych polimerów połączony jest ze zbiornikami oczyszczonych polimerów poprzez urządzenie do frakcjonowania.
Zaletą rozwiązania według wynalazku jest uzyskanie wysokiej jakości produktów nowych jak polimery, biosurfaktanty, biomasa stosowana jako komponent MPU konkurujące z istniejącymi na rynku niższymi kosztami wytwarzania, ceną i unikalnością rynkową i wytwarzane metodami przyjaznymi dla środowiska. W porównaniu do produktów istniejących na rynku nie zawierają one nawet
PL 238 781 B1 śladowych ilości substancji szkodliwych takich jak pozostałości po ekstrakcji cieczowej przez różnego rodzaju rozpuszczalniki. W wyniku zastosowania rafinacji na sorbentach węglowych produkty te cechują się bardzo wysoką czystością umożliwiającą ich zastosowanie w wielu preparatach spożywczych czy farmaceutycznych a także kosmetycznych. Zastosowanie dedykowanych sorbentów pozwala na obniżenie energochłonności procesu.
Ponadto w przetworzonej śrucie przez mikroorganizmy zostają wytworzone i wprowadzane do pasz krótkie kwasy organiczne o krótkich łańcuchach np. masłowy czy mlekowy, które obniżają zbyt wysokie pH, co spowoduje zwiększenie funkcji prebiotycznych przez pozostałe w śrucie fruktany i surfaktanty. Mikroorganizmy poprzez wydzielane metabolity istotnie zwiększają ilość form chelatowanych, lepiej przyswajalnych dla minerałów. Dużym atutem jest ich aktywność przeciwdrobnoustrojowa metabolitów wydzielanych do śruty np. biosurfaktantów czy bakteriocyn, chroniąc zwierzęta przed zatruciami spowodowanymi przez Salmonella i Enterobacteriaceae. Stosując pasze z dodatkami mikroorganizmów zaobserwowano u kur zwiększenie wzrostu masy ciała w krótszym czasie niż przy stosowaniu tradycyjnych pasz, zmniejszenie spożycia paszy, lepszą kondycję zdrowotną i mniejszą emisję wydzielanych przez nie gazów. W początkowym etapie rozwoju kurcząt wzrost masy ciała wynosił do 8% więcej w porównaniu z żywieniem stosowania biomasy.
Układ według wynalazku pozwala na wydzielanie wielu bioproduktów takich jak: biośruty jako składniki mieszanki paszowej uzupełniającej - MPU, z możliwością dowolnego jej komponowania poprzez wprowadzanie dodatków stymulujących biosyntezę produktu, pozyskanie surfaktyny i polimerów i uwidoczniony na rysunku, który przedstawia układ w tym lewanu z wykorzystaniem energooszczędnych, ekologicznych, bezodpadowych, metod. Elastyczność układu przejawia się w tym, że można stosować opcjonalnie różne procesy wydzielania surfaktyny.
Przedmiot wynalazku objaśniony jest w przykładzie wykonania uwidoczniony na rysunku, na którym Fig. 1 przedstawia układ do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju do pozyskania gotowych produktów w postaci biośruty, surowej surfaktyny i surowego polimeru, a Fig. 2 - układ do pozyskania gotowych produktów w postaci biośruty, oczyszczonej surfaktyny i oczyszczonego polimeru.
P r z y k ł a d 1
Sposób do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju polega na tym, że śrutę poekstrakcyjną II poddaje się jałowieniu w zbiorniku śruty 1B a następnie miesza się w stosunku wagowym 50:50 z 24 godz. hodowlą Bacillus subtilis I w podłożu dodatków stymulujących syntezę produktu III o składzie - 50 g/L sacharozy, 15 g/L soli sodowej kwasu glutaminowego, 5 g/L MgSO4, 5 mg/L CuSO4, 3 mg/L Fe2(SO4)3, 15 mg/L MnSO4, 3 g/L KH2PO4, 5 g/L NH4NO3, ekstrakt drożdżowy 1 g/L. Tak powstałą mieszankę poddaje się uwodnieniu a następnie fermentacji typu SSF w bioreaktorze 2, w temperaturze 37°C, w warunkach zapewniających napowietrzanie w ilości 0,1 objętości powietrza na jedną objętość bioreaktora na 1 min, z utrzymaniem stałej wilgotności podłoża przez dodatek wody ze zbiornika wody 1D i/lub frakcji płynnej bioproduktu z urządzenia do odzysku etanolu 17.
Po zakończeniu fermentacji oddziela się frakcję stałą V od frakcji płynnej VI w separatorze 3, korzystnie przez wyciskanie na prasie. Frakcja stała V jest suszona w temperaturze nie przekraczającej denaturyzacji enzymów w osuszaczu biośruty 4 i jako gotowy komponent mieszanki paszowej uzupełniającej (MPU) kierowana jest do zbiornika komponentów MPU 5. W ten sposób otrzymana frakcja stała V stanowi probiotyczny i prebiotyczny dodatek paszowy, który może być modyfikowany znanymi metodami jak: sterylizacja, ekstrakcja, granulacja, mieszanie z innymi dodatkami, w celu optymalizacji pod kątem żywieniowym dla określonej grupy zwierząt. Komponent MPU ma właściwości enzymatyczne oraz ma zdolność do rozkładu mykotoksyn poprzez obecność w nim mikroorganizmów. Ma również właściwości chelatujące minerały przez co zwiększa ich przyswajalność, poprzez wydzielane przez mikroorganizmy metabolity.
Następnie odwirowuje się frakcję płynną VI w celu usunięcia komórek mikroorganizmów VII oraz innych zanieczyszczeń stałych o wielkościach średnicy większych niż 0,1 μm, którą kieruje się do bioreaktora 2. Oczyszczoną frakcję płynną VIA zawierającą biosurfaktanty kieruje się do absorbera 7, kolumny wypełnionej węglem aktywnym, przez którą jest przepuszczany. Węgiel aktywny preferowany jest w postaci granulowanej i charakteryzuje się możliwie jak najbardziej rozwiniętą powierzchnią mezoporów, czyli porów o szerokości 2-50 nm. Charakter chemiczny powierzchni sorbentu, nie powinien być zasadowy, a powierzchnia porów powinna być słabo utleniona.
Kolejnym etapem procesu jest desorpcja. W tym celu węgiel aktywny po procesie adsorpcji oddziela się od roztworu, suszy w temperaturze nie wyższej niż 80°C, w osuszaczu 8 i umieszcza
PL 238 781 B1 w ekstraktorze ciśnieniowym 9, w którym przeprowadza się ekstrakcję za pomocą płynów w stanie nadkrytycznym. Jako ekstrahent zastosowano ditlenek węgla w stanie nadkrytycznym. Ekstrakcję prowadzi się w temperaturze 50°C w czasie prowadzenia procesu wynoszącym 1 godz., stosując 100 cm3 ciekłego ditlenku węgla na 15 g węgla aktywnego z zaadsorbowaną surfaktyną w ilości ok. 80 mg/g. Surowa surfaktyna IX kierowana jest do zbiornika surowych surfaktantów 13 jako gotowy produkt.
Płynna frakcja po usunięciu surowej surfaktyny X zawierająca inne bioprodukty w tym polimery jest poddawana dalszemu frakcjonowaniu w celu oddzielenia z niej polimerów od frakcji płynnej. W pierwszym etapie frakcja płynna po usunięciu surowych surfaktyny X jest kierowana do zagęszczacza 14, w którym zagęszczana jest 4-krotnie, korzystnie na membranach filtracyjnych typu cross-flow, co pozwala zmniejszyć ilość etanolu niezbędnego do wytrącenia polimerów, a frakcja płynna stanowiąca roztwór wodny IVD odprowadzana jest do zbiornika wody 1D. Polimery wytrącane są w separatorze polimerów 15 etanolem XI w stosunku wagowym w zakresie od 50 do 90% korzystnie w temperaturze od -15 do +20°C.
Wytrącony osad surowego polimeru oddzielany jest od frakcji płynnej przez 24 godz. sedymentację a jego frakcja stała po separacji polimeru XII kierowana jest do zbiornika surowych polimerów 16. Z kolei frakcja płynna po separacji polimeru XIII z etanolem i pozostałymi bioproduktami przepływa przez urządzenie do odzysku etanolu 17, w którym wydziela się etanol XIV i skierowany jest ponownie do separatora polimerów 15, a frakcja płynna bioproduktu po odparowaniu etanolu XV podawana jest do bioreaktora 2.
Surowe surfaktanty i surowe polimery podlegają dalszej rafinacji i frakcjonowaniu znanymi metodami. W tym celu produkty ze zbiornika surowego surfaktantu 13 lub ze zbiornika surowych polimerów 16 poddaje się frakcjonowaniu na urządzeniach do frakcjonowania 18 korzystnie metodami chromatograficznymi i kieruje oczyszczone surfaktyny do zbiorników S-1, S-2, S-3, a oczyszczone polimery do zbiorników P-1, P-2, P-3.
P r z y k ł a d 2
Do uzyskania śruty rzepakowej o podwyższonej wartości odżywczej oraz surfaktantów i polimerów zastosowano proces jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że wysuszony węgiel w osuszaczu 8 po sorpcji surfaktantów poddawany jest ekstrakcji CO2 w warunkach nadkrytycznych z zastosowaniem kosolwentów takich jak etanol lub metanol lub nimi samymi bez CO2.
P r z y k ł a d 3
Do uzyskania śruty rzepakowej o podwyższonej wartości odżywczej oraz surfaktantów i polimerów zastosowano proces jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że w reaktorze pod ciśnieniem atmosferycznym 10 prowadzi się desorpcję rozpuszczalnikami, korzystnie etanolem bezwodnym.
P r z y k ł a d 4
Do uzyskania śruty rzepakowej o podwyższonej wartości odżywczej oraz surfaktantów i polimerów zastosowano proces jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że do wydzielenia surfaktantów stosuje się metodę precypitacji i płynna frakcja biosurfaktantów VIA kierowana jest do reaktora 11 bezpośrednio z wirówki 6. Precypitację przeprowadzono przy użyciu dodatku dodatek HCI do uzyskania pH 4.
P r z y k ł a d 5
Do uzyskania śruty rzepakowej o podwyższonej wartości odżywczej oraz surfaktantów zastosowano proces jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że płynna frakcja biosurfaktantów VIA kierowana jest do odwadniacza 12, w którym wydzielanie surfaktantów prowadzi się w temperaturze 50°C, i kieruje się do zbiornika surowych surfaktantów 13, a roztwór wodny IVD kieruje się do zbiornika wody 4.
P r z y k ł a d 6
Układ do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju polega na tym, że ma na wejściu zbiornik mikroelementów 1A, zbiornik śruty 1B, zbiornik dodatków 1C, zbiornik wody 1D, które połączone są przewodami z bioreaktorem 2, który z kolei połączony jest z wirówką 6 poprzez wytłaczarkę 3 oraz przewód VII. Natomiast wytłaczarka 3 połączona jest z suszarką 4 i zbiornikiem komponentów MPU 5, z kolei wirówka 6 połączona jest poprzez absorber 7 i przewody wyposażone w zawór z ekstraktorem ciśnieniowym 9, lub ekstraktorem pod ciśnieniem atmosferycznym 10, natomiast ekstraktor ciśnieniowy 9 połączony jest przewodem wyposażonym w zawór poprzez osuszacz 8, oraz wirówka 6 połączona jest z reaktorem 11 i odwadniaczem 12 poprzez przewody wyposażone w zawory, a każdy z nich z kolei połączony jest ze zbiornikiem surowej surfaktyny 13, ponadto ekstraktor ciśnieniowy 9, ekstraktor pod ciśnieniem atmosferycznym 10, reaktor 11 połączone są z separatorem polimerów 15 poprzez zagęszczacz 14, który połączony jest ze zbiornikiem wody 1D, z kolei
PL 238 781 B1 separator polimerów 15 połączony jest ze zbiornikiem surowego polimeru 16 oraz urządzeniem do odzysku etanolu 17, który przewodami podłączony jest do separatora polimerów 15 i bioreaktora 2, natomiast odwadniacz 12 połączony jest ze zbiornikiem wody 1D.
P r z y k ł a d 7
Układ do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju wykonany jak w przykładzie szóstym z tą różnicą, że zbiornik surowych surfaktantów 13 połączony jest ze zbiornikami oczyszczonej surfaktyny (S-1, S-2, S-3) poprzez urządzenie do frakcjonowania 18 oraz zbiornik surowych polimerów 16 połączony jest ze zbiornikami oczyszczonych polimerów (P-1, P-2, P-3) poprzez urządzenie do frakcjonowania 18.
Wykaz oznaczeń
A - Zbiornik mikroelementów
1B - Zbiornik śruty
1C - Zbiornik dodatków
1D - Zbiornik wody
- Bioreaktor
- Separator do wydzielania frakcji płynnej
- Osuszacz biośruty
- Zbiornik komponentów MPU
- Wirówka
- Absorber
- Osuszacz
- Ekstraktor ciśnieniowy
- Ekstraktor pod ciśnieniem atmosferycznym
- Reaktor
- Odwadniacz
- Zbiornik surowych surfaktantów
- Zagęszczacz
- Separator polimerów
- Zbiornik surowych polimerów
- Urządzenie do odzysku etanolu
- Urządzenie do frakcjonowania polimerów
S-1
S-2 - Zbiornik oczyszczonej
S-3 surfaktyny
P-1
P-2 - Zbiornik oczyszczonego
P-3 polimeru
I - Mikroorganizmy
II - Śruta
III - Dodatki stymulujące biosyntezę produktu
IV - Woda
IVD - Woda po procesie zagęszczania frakcji płynnej polimerów
V - Frakcja stała biosurfaktantów
VI - Frakcja płynna biosurfaktantów
VIA - Frakcja płynna biosurfaktantów po oczyszczeniu z mikroorganizmów
VII - Komórki mikroorganizmów
VIII - Węgiel aktywny
IX - Surowa surfaktyna
X - Frakcja płynna po usunięciu surfaktantów
XI - Etanol
XII - Frakcja stała po separacji polimeru
XIII - Frakcja płynna po separacji polimeru
XIV - Etanol odzyskany
XV - Frakcja płynna bioproduktu po odparowaniu etanolu
Claims (12)
1. Sposób do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju, metodą biotransformacji przy zastosowaniu do fermentacji w fazie stałej lub ciekłej mikroorganizmów, znamienny tym, że śrutę z nasion roślin oleistych (II), dodatki stymulujące biosyntezę produktów (III) poddaje się uwodnieniu wodą (IV) ze zbiornika wody (1D) do zawartości wody od 20% do 85% i zaszczepia się mikroorganizmami (I), które stanowi Bacillus subtilis natto, przy czym śrutę z nasion roślin oleistych (II) poddaje się obróbce wstępnej w zbiorniku śruty (1B), polegającej na jej jałowieniu, a następnie dozuje się do bioreaktora (2), w którym poddaje inkubacji od 6 godz. do 48 godz. w temp. od 20 do 50°C, a po przeprowadzonej fermentacji mieszaninę kieruje się do separatora (3) gdzie oddzielana jest frakcja stała (V) od frakcji płynnej (VI), która to frakcja stała (V) jest następnie suszona w temperaturze nie przekraczającej temperatury denaturacji enzymów, a potem dozowana do zbiornika komponentu mieszanki paszowo uzupełniającej MPU (5), z kolei frakcję płynną kieruje się do wirówki (6), w której odwirowuje się komórki mikroorganizmów (VII) oraz zanieczyszczenia stałe o wielkościach średnicy większych niż 0,1 μm i kieruje ponownie do bioreaktora (2), a oczyszczoną frakcję płynną (VIA) kieruje się albo zgodnie z opcją pierwszą do absorbera (7), w którym na węglu aktywnym (VIII) przeprowadza się sorpcję wytworzonych przez mikroorganizmy biosurfaktantów, których desorpcja przeprowadzana jest poprzez poddawanie ekstrakcji CO2 w warunkach nadkrytycznych, węgla aktywnego z zaadsorbowanymi biosurfaktantami, w reaktorze ciśnieniowym (9), który uprzednio poddaje się suszeniu w osuszaczu (8), lub zgodnie z opcją drugą poddaje się ekstrakcji, w reaktorze pod ciśnieniem atmosferycznym (10), albo z wirówki (6) oczyszczoną frakcję płynną (VIA) kieruje się zgodnie z opcją trzecią do precypitacji w reaktorze (11), lub zgodnie z opcją czwartą zagęszcza się w odwadniaczu (12), a uzyskana frakcja stała zawierająca wydzielone surowe surfaktanty (IX) kierowana jest do zbiornika surowych surfaktantów (13), a roztwór wodny (IVD) kieruje się do zbiornika wody (4), natomiast frakcję płynną po wydzieleniu surfaktantów (X), która zawiera polimery, zagęszcza się w zagęszczaczu (14), przy czym oddzieloną wodę (IVD) odprowadza się ponownie do zbiornika wody (1D), a następnie z zagęszczonej frakcji płynnej w separatorze polimerów (15) w obecności etanolu (XI) wydzielany jest polimer w postaci surowego polimeru (XII), który kierowany jest do zbiornika surowego polimeru (16), a płynna frakcja (XIII) dozowana jest do urządzenia do odzysku etanolu (17), z którego wydzielony etanol (XIV) kierowany jest ponownie do separatora polimerów (15), a pozostała płynna frakcja oczyszczona z etanolu (XV), zawierająca bioprodukty, kierowana jest do bioreaktora (2), z kolei surowe surfaktanty (IX) oraz surowe polimery (XII) poddaje się dalszej rafinacji i/lub frakcjonowaniu znanymi metodami i kierowane są do zbiorników oczyszczonej surfaktyny (S-1, S-2, S-3) lub zbiorników oczyszczonego polimeru (P-1, P-2, P-3) w urządzeniu do frakcjonowania polimerów i/lub surfaktantów (18).
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że śrutą z nasion roślin oleistych jest śruta rzepakowa.
3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że proces fermentacji prowadzony jest w warunkach napowietrzania w ilości 0,01 do 10 objętości powietrza na jedną objętość bioreaktora na 1 min.
4. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 3, znamienny tym, że węgiel aktywny (VIII) występuje w postaci granulowanej.
5. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 4, znamienny tym, że desorpcja surfaktantów jest uzyskana przez odpłukanie rozpuszczalnikami takimi jak woda, etanol lub ich mieszanina.
6. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 5, znamienny tym, że stosuje się kwaśną precypitację.
7. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 6, znamienny tym, że węgiel aktywny (VIII) jest suszony do uzyskania wilgotności równej maksymalnej wilgotności śruty.
8. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 7, znamienny tym, że wysuszony węgiel aktywny (VIII) poddawany jest ekstrakcji CO2 w warunkach nadkrytycznych z zastosowaniem kosolwentów takich jak etanol lub metanol lub nimi samymi bez użycia CO2.
PL 238 781 B1
9. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 8, znamienny tym, że frakcja płynna po wydzieleniu surfaktantów zawierająca polimery w pierwszym etapie jest zagęszczana poprzez filtrowanie, korzystnie filtr membranowy.
10. Sposób według dowolnego z poprzednich zastrz. od 1 do 9, znamienny tym, że polimery są otrzymywane przez wytrącanie etanolem w stosunku wagowym od 50 do 90% korzystnie w temperaturze od -15 do +20°C.
11. Układ do przetwarzania śruty, z nasion roślin oleistych po ekstrakcji oleju, znamienny tym, że ma zbiornik mikroelementów (1A), zbiornik śruty (1B), zbiornik dodatków (1C), zbiornik wody (1D), które połączone są przewodami z bioreaktorem (2), który z kolei połączony jest z wirówką (6) poprzez wytłaczarkę (3) oraz przewód (VII), natomiast wytłaczarka (3) połączona jest z suszarką (4) i zbiornikiem komponentów MPU (5), z kolei wirówka (6) połączona jest poprzez absorber (7) i przewody wyposażone w zawór z ekstraktorem ciśnieniowym (9), lub ekstraktorem pod ciśnieniem atmosferycznym (10), natomiast ekstraktor ciśnieniowy (9) połączony jest przewodem wyposażonym w zawór poprzez osuszacz (8), oraz wirówka (6) połączona jest z reaktorem (11) i odwadniaczem (12) poprzez przewody wyposażone w zawory, a każdy z nich z kolei połączony jest ze zbiornikiem surowej surfaktyny (13), ponadto ekstraktor ciśnieniowy (9), ekstraktor pod ciśnieniem atmosferycznym (10), reaktor (11) połączone są z separatorem polimerów (15) poprzez zagęszczacz (14), który połączony jest ze zbiornikiem wody (1D), z kolei separator polimerów (15) połączony jest ze zbiornikiem surowego polimeru (16) oraz urządzeniem do odzysku etanolu (17), który przewodami podłączony jest do separatora polimerów (15) i bioreaktora (2), natomiast odwadniacz (12) połączony jest ze zbiornikiem wody (1D).
12. Układ według zastrz. 11, znamienny tym, że zbiornik surowej surfaktyny (13) połączony jest ze zbiornikami oczyszczonej surfaktyny (S-1, S-2, S-3) poprzez urządzenie do frakcjonowania (18), i/lub zbiornik surowych polimerów połączony jest ze zbiornikami oczyszczonych polimerów (P-1, P-2, P-3) poprzez urządzenie do frakcjonowania (18).
Priority Applications (7)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL421356A PL238781B1 (pl) | 2017-04-21 | 2017-04-21 | Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych |
CA3060594A CA3060594A1 (en) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | The method and system of processing meal from oilseeds |
EP18728227.2A EP3612033A1 (en) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | The method and system of processing meal from oilseeds |
US16/606,982 US11717006B2 (en) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | Method and system of processing meal from oilseeds |
PCT/IB2018/052768 WO2018193421A1 (en) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | The method and system of processing meal from oilseeds |
CN201880042043.2A CN110785087A (zh) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | 对来自油籽的粗粉进行加工的方法及系统 |
JP2020508092A JP7201664B2 (ja) | 2017-04-21 | 2018-04-20 | 油料種子由来のミールを処理する方法およびシステム |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL421356A PL238781B1 (pl) | 2017-04-21 | 2017-04-21 | Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL421356A1 PL421356A1 (pl) | 2018-10-22 |
PL238781B1 true PL238781B1 (pl) | 2021-10-04 |
Family
ID=63854955
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL421356A PL238781B1 (pl) | 2017-04-21 | 2017-04-21 | Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US11717006B2 (pl) |
EP (1) | EP3612033A1 (pl) |
JP (1) | JP7201664B2 (pl) |
CN (1) | CN110785087A (pl) |
CA (1) | CA3060594A1 (pl) |
PL (1) | PL238781B1 (pl) |
WO (1) | WO2018193421A1 (pl) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN116515628B (zh) * | 2023-07-03 | 2023-09-19 | 鹤岗萃元科技产业发展有限公司 | 一种全酶法合成甘油二酯的制备装置 |
CN117106627B (zh) * | 2023-07-05 | 2024-01-30 | 中国水产科学研究院珠江水产研究所 | 一种枯草芽孢杆菌及其选育方法和应用 |
Family Cites Families (20)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3094460A (en) | 1959-01-20 | 1963-06-18 | Upjohn Co | Decoyinine |
US3966982A (en) | 1973-06-18 | 1976-06-29 | Dravo Corporation | Process and apparatus for treating oleaginous seed material |
GB1485502A (en) | 1974-06-05 | 1977-09-14 | Aarhus Oliefabrik As | Process for removal of water-soluble carbohydrates in the production of plant protein products |
DE3540179A1 (de) | 1985-11-13 | 1987-05-21 | Krupp Gmbh | Verfahren zur herstellung eiweisshaltiger futtermittel aus rapsmehl |
US5316782A (en) * | 1992-10-21 | 1994-05-31 | Brown-Forman Beverage Company | Product and process of making a product flavored using a by-product of alcohol production |
US6740508B2 (en) * | 1999-02-11 | 2004-05-25 | Renessen Llc | Fermentation-based products from corn and method |
EP1320595B1 (en) * | 2000-09-29 | 2009-09-02 | Showa Denko K.K. | Production process of surfactin |
ITBO20020047A1 (it) * | 2002-01-30 | 2003-07-30 | Mario Menegatto | Metodo ed impianto per la trasformazione di granaglie |
WO2006119386A2 (en) * | 2005-05-02 | 2006-11-09 | Broin And Associates, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
US20060251761A1 (en) * | 2005-05-03 | 2006-11-09 | Robert Jansen | Grain wet milling process for producing dextrose |
CN101831472B (zh) * | 2010-06-09 | 2012-05-23 | 福建省农业科学院农业工程技术研究所 | 以豆渣为原料固体发酵制备食用菌可溶性多糖的方法 |
US20160100619A1 (en) * | 2011-02-22 | 2016-04-14 | Agrigenetics, Inc. | Canola meals and methods of producing canola meal |
DE102012100466A1 (de) | 2011-04-21 | 2012-10-25 | Hochschule Fulda | Anlage und Verfahren zur Herstellung eines proteinreichen fettarmen pflanzlichen Produktes aus einem Presskuchen und Verwendung eines proteinreichen fettarmen pflanzlichen Produktes |
CN102719505A (zh) * | 2012-05-14 | 2012-10-10 | 梁金钟 | 微生物发酵制取植物蛋白小肽的方法 |
CN102675274A (zh) * | 2012-06-07 | 2012-09-19 | 南京泽朗医药科技有限公司 | 一种栀子素丁的制备方法 |
US20140024064A1 (en) * | 2012-07-23 | 2014-01-23 | Butamax(Tm) Advanced Biofuels Llc | Processes and systems for the production of fermentative alcohols |
RU2538147C1 (ru) * | 2013-09-23 | 2015-01-10 | Александр Иванович ГЕРМАН | Способ переработки подсолнечного или рапсового шрота (варианты) |
US20170114371A1 (en) * | 2014-07-10 | 2017-04-27 | Novozymes A/S | Process For Producing Ethanol From Starch Using A GH5 Xylanase |
WO2016022779A1 (en) * | 2014-08-06 | 2016-02-11 | Envera, Llc | Bacterial spore compositions for industrial uses |
US10513715B2 (en) * | 2015-09-24 | 2019-12-24 | Iogen Corporation | Wet oxidation of biomass |
-
2017
- 2017-04-21 PL PL421356A patent/PL238781B1/pl unknown
-
2018
- 2018-04-20 CN CN201880042043.2A patent/CN110785087A/zh active Pending
- 2018-04-20 JP JP2020508092A patent/JP7201664B2/ja active Active
- 2018-04-20 WO PCT/IB2018/052768 patent/WO2018193421A1/en active Application Filing
- 2018-04-20 US US16/606,982 patent/US11717006B2/en active Active
- 2018-04-20 EP EP18728227.2A patent/EP3612033A1/en active Pending
- 2018-04-20 CA CA3060594A patent/CA3060594A1/en active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
PL421356A1 (pl) | 2018-10-22 |
CN110785087A (zh) | 2020-02-11 |
JP2020517309A (ja) | 2020-06-18 |
US11717006B2 (en) | 2023-08-08 |
CA3060594A1 (en) | 2018-10-25 |
WO2018193421A1 (en) | 2018-10-25 |
EP3612033A1 (en) | 2020-02-26 |
US20200187524A1 (en) | 2020-06-18 |
JP7201664B2 (ja) | 2023-01-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Junior et al. | Microalgae for biotechnological applications: Cultivation, harvesting and biomass processing | |
CA3030467C (en) | Method for isolating lipids from lipid-containing cells | |
Zanotto et al. | New sustainable alternatives to reduce the production costs for surfactin 50 years after the discovery | |
CA3030471C (en) | Method of separating lipids from a lysed lipids containing biomass | |
US11976253B2 (en) | Method of isolating lipids from a lysed lipids containing biomass by emulsion inversion | |
Arauzo et al. | Effect of protein during hydrothermal carbonization of brewer’s spent grain | |
KR102405390B1 (ko) | 용해된 지질을 함유하는 바이오매스로부터 지질을 분리하는 방법 | |
JP2013523155A (ja) | 減少する極性の溶媒を用いることによる油性原料からの油およびタンパク質性材料の順次溶媒抽出 | |
US20190300818A1 (en) | Method for isolating lipids from lipid-containing cells | |
EP3997102A1 (en) | Process for isolating a high purity protein preparation from plant material and products thereof | |
Lee et al. | Separation and biosynthesis of value-added compounds from food-processing wastewater: Towards sustainable wastewater resource recovery | |
Núñez et al. | Separation and purification techniques for the recovery of added-value biocompounds from waste activated sludge. A review | |
Türker et al. | Waste (water) to feed protein: Effluent characteristics, protein recovery, and single-cell protein production from food industry waste streams | |
PL238781B1 (pl) | Sposób i układ do przetwarzania śruty z nasion roślin oleistych | |
US20230240329A1 (en) | System and method for producing byproducts from spent grains | |
Rojo et al. | Potential of Microalgae for Protein Production | |
RU2791226C1 (ru) | Способ получения кормового концентрата | |
KR102564068B1 (ko) | 해조류에서 복합조성물을 추출하는 방법 | |
Dos Santos et al. | Downstream recovery of microalgal bioproducts with highlights on biorefineries | |
Núñez Díaz et al. | Separation and purification techniques for the recovery of added-value biocompounds from waste activated sludge. A review | |
Kadimpati et al. | Microalgae as an efficient feedstock biomass for biofuel production | |
EA045800B1 (ru) | Способ получения белкового продукта из биомассы метанокисляющих бактерий и белковый продукт, полученный указанным способом | |
CN117677285A (zh) | 由海藻生产聚羟基链烷酸酯的方法 | |
Phong | Extractive disruption process integration using ultrasonication and aqueous two-phase system for protein recovery from microalgae/Phong Win Nee | |
Gouws et al. | Extraction of Precursors for Polyurethane Foam Production |