PL238039B1 - Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie - Google Patents
Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie Download PDFInfo
- Publication number
- PL238039B1 PL238039B1 PL418707A PL41870716A PL238039B1 PL 238039 B1 PL238039 B1 PL 238039B1 PL 418707 A PL418707 A PL 418707A PL 41870716 A PL41870716 A PL 41870716A PL 238039 B1 PL238039 B1 PL 238039B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- mixture
- kappa
- carrageenan
- iota
- carrageenans
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób ilościowego oznaczenia zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie karagenów, przydatny do analizy surowców w przemyśle spożywczym, kosmetycznym, farmaceutycznym. Skład mieszaniny karagenów kappa i jota oznacza się na podstawie linii kalibracyjnych. Linie te otrzymuje się w oparciu o krzywe spektrofotometrycznego miareczkowania wzorcowych roztworów mieszanin karagenów kappa i jota o różnych stosunkach masowych składników i o określonym całkowitym stężeniu, przy czym titrantem jest mianowany roztwór Błękitu Toluidynowego (BT). Odczytując wartości objętości titranta potrzebne do osiągnięcia zadanej wartości absorbancji buduje się zależność zawartości jednego ze składników mieszaniny od objętości BT w punkcie końcowym. Oznaczenie składu mieszaniny karagenów polega na zmiareczkowaniu roztworu badanej mieszaniny o określonym stężeniu mianowanym roztworem BT do osiągnięcia zadanej wartości absorbancji i odniesieniu objętości barwnika w punkcie końcowym do odpowiedniej krzywej wzorcowej.
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób ilościowego oznaczenia zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie karagenów, przydatny do analizy surowców w przemyśle spożywczym, kosmetycznym, farmaceutycznym.
Karagen to ogólna nazwa grupy związków o charakterze naturalnych polisacharydów i strukturze liniowej. Występuje w odmianach kappa (k), jota (i), lambda (λ), mi (μ) oraz ni (v), różniących się stosunkiem ilościowym grup siarczanowych i cząsteczek galaktozy. Największe zastosowanie praktyczne znajdują trzy pierwsze spośród wymienionych typów. Odmiany kappa- i jota- posiadają właściwości żelujące (κ-karagen tworzy żele silne, stałe, a i-karagen daje żele miękkie), natomiast λ-karagen nie ulega żelowaniu, lecz ma zdolność zagęszczania roztworów poprzez zwiększanie ich lepkości. Z tego względu karageny są używane w przemyśle jako stabilizatory, zagęstniki i środki żelujące. Karageny stosuje się w przemysłach: spożywczym jako dodatek (E407 oraz E466) [1] do wędlin, konserw mięsnych, sosów, produktów o obniżonej zawartości tłuszczu, deserów mlecznych, niektórych napojów, dżemów, galaretek, kosmetycznym jako dodatek do past do zębów, szamponów, kremów, farmaceutycznym [2] do produkcji opatrunków, tabletek, preparatów farmaceutycznych o przedłużonym uwalnianiu.
Źródłem karagenów są wodorosty. Niektóre z nich produkują karagen określonego typu, np. i-karagen jest pozyskiwany z Eucheuma cottoni lub Eucheuma spinosum, κ-karagen otrzymuje się z różnych gatunków należących do rodzajów Gigartina i Chondrus, a λ-karagen ze sporofitycznych grup wodorostów. Z kolei wodorosty gametofityczne wytwarzają hybrydowy typ jota- i kappa- o różnych proporcjach składników. Karageny stosowane w przemyśle najczęściej mają postać półrafinowaną lub rafinowaną. Analizę karagenów można przeprowadzić różnymi technikami [3, 4]. Metoda FTIR umożliwia rozróżnienie wszystkich typów karagenu przy użyciu minimalnej ilości próbki. Oznaczenie jest względnie proste, ale wymaga umiejętnej interpretacji wyników, m.in. w celu eliminacji pływu matrycy. Metodę 1H-NMR oraz 13C-NMR stosuje się do oznaczania stosunku karagenów kappa i jota w mieszaninie karagenów [5, 6]. Technika ta nie pozwala na oznaczenie karagenu lambda.
P r z y k ł a d 1 [5]
Mieszaninę karagenów analizowano metodą 13C-NMR w temperaturze ok. 80°C. Otrzymane widmo było sumą widm karagenów kappa i jota, natomiast nie posiadało sygnałów pochodzących od karagenu lambda. Metoda umożliwia zatem określenie w mieszaninie stosunku ilościowego karagenów kappa i jota, lecz nie daje możliwości identyfikacji karagenu lambda. Analizę uzupełniono o badanie metodą spektroskopii IR. W uzyskanym widmie pasmo przy 1250 cm-1 odpowiadające sumie grup siarczanowych było znacznie bardziej intensywne dla karagenu lambda niż dla kappa i jota. Dodatkowo pasma przy 845, 830, 820 i 805 cm-1 umożliwiły rozróżnienie poszczególnych grup siarczanowych. Jako sygnał analityczny przyjęto stosunek absorbancji przy 845/1250 cm-1, który jest wrażliwy na dodatek karagenu lambda do mieszaniny karagenów kappa i jota.
Ważnymi narzędziami stosowanymi do charakterystyki surowców są też metody chromatograficzne (HPLC i HPAEC), umożliwiające półilościową oraz ilościową analizę karagenów po depolimeryzacji. Inną ważną techniką jest dwuwymiarowa elektroforeza, która pozwala na oznaczanie półilościowe bez depolimeryzacji. Z kolei u podstaw metod spektrofotometrycznych leży dysocjacja makrocząsteczek, skutkiem czego jest pojawienie się w roztworze polianionów posiadających zdolność tworzenia trwałych par jonowych z barwnikami kationowymi. [7-10]. Wszystkie typy karagenu rozpuszczają się w wodzie i ulegają reakcji kompleksowania, stąd klasyczne metody spektrofotometryczne umożliwiają jedynie oznaczenia ilościowe sumy karagenów. Zaletą tych metod są natomiast małe wymagania sprzętowe. Najbardziej znana wśród metod spektrofotometrycznych jest ta z użyciem Błękitu Metylenowego [8], popularna ze względu na swoją czułość i łatwość wykonania. Do analizy polimerów anionowych można wykorzystać technikę miareczkowania spektrofotometrycznego, stosując jako titrant barwnik kationowy [9].
P r z y k ł a d 2 [8]
Do ilościowego oznaczania hydrokoloidów, w tym karagenów, alginianu oraz karboksymetylocelulozy w roztworach wodnych zastosowano Błękit Metylenowy. Podstawą metody jest przesunięcie maksimum widma absorpcji barwnika z 610 i 664 nm do 559 nm na skutek tworzenia się rozpuszczalnych kompleksów barwnik - polianion, przy czym absorbancja kompleksu przy 559 nm jest proporcjonalna do stężenia hydrokoloidu. Zaletą procedury jest rozpuszczalność kompleksów, wynikająca z zastosowania małych stężeń barwnika i polianionu.
PL 238 039 B1
P r z y k ł a d 3 [71
Do spektrofotometrycznego oznaczania stężeń polimerów anionowych w roztworach wodnych zastosowano wodny roztwór barwnika - Błękitu Metylenowego. Porcję analitu o znanej objętości miareczkuje się roztworem barwnika, rejestrując w sposób ciągły absorbancję mieszaniny roztworów przy długości fali z zakresu od 660 do 670 nm. Miareczkowanie prowadzi się do momentu osiągnięcia zadanej wartości absorbancji. Stężenie polimeru (C) odczytuje się z krzywej kalibracyjnej w postaci C=f(VBM) (gdzie Vbm - objętość barwnika w punkcie równoważnikowym), wykreślonej dla tej samej zadanej wartości absorbancji.
Istotą rozwiązania według wynalazku jest oznaczenie ilości karagenu kappa lub jota w mieszaninie karagenów typu kappa i jota na podstawie wyników spektrofotometrycznego miareczkowania wodnego roztworu mieszaniny Błękitem Toluidynowym (BT). Podstawę oznaczenia stanowi miareczkowanie wzorcowych próbek mieszaniny karagenów typu kappa i jota o różnych proporcjach składników i określonym całkowitym stężeniu mianowanym roztworem BT korzystnie 1 mM, z jednoczesnym pomiarem absorbancji układu przy długości fali 640 nm. Punktem końcowym miareczkowania jest objętość barwnika, przy której osiągnięto absorbancję równą 0,5. Na podstawie uzyskanych wyników otrzymuje się zależność zawartości jednego ze składników w mieszaninie karagenów od objętości BT w punkcie końcowym (fig. 1 i 2). Zawartość wybranego składnika w próbce badanej, będącej mieszaniną karagenów kappa i jota, oznacza się na podstawie miareczkowania wodnego roztworu badanej próbki o określonym stężeniu (optymalnie 20-30 mg/L) roztworem BT do osiągnięcia absorbancji równej 0,5. Objętość BT w punkcie końcowym pozwala odczytać z rys. 1 lub 2 zawartość wybranego składnika w mieszaninie karagenów.
Korzystne skutki wynalazku to prostota wykonania analizy, nieskomplikowana aparatura, możliwość automatyzacji.
Objaśnienie figur rysunku fig. 1. przedstawia krzywe wzorcowe do oznaczania zawartości karagenu kappa w mieszaninie karagenów kappa i jota, wyznaczone na podstawie wzorcowych mieszanin o całkowitym stężeniu 20 oraz 30 mg/L, fig. 2. przedstawia krzywe wzorcowe do oznaczania zawartości karagenu jota w mieszaninie karagenów kappa i jota, wyznaczone na podstawie wzorcowych mieszanin o całkowitym stężeniu 20 oraz 30 mg/L.
Przykład realizacji wynalazku
Krzywe wzorcowe wykonano używając oczyszczonych karagenów /K-karagen, CAS 11114-20-8,i-karagen, CAS 9062-07-1/, z których przygotowano dwie serie roztworów wodnych o całkowitym stężeniu składników 20 oraz 30 mg/L. Każda seria obejmowała po kilka roztworów różniących się stosunkiem masowym karagenów kappa i jota.
Jako próbki badane wykorzystano mieszaniny karagenów handlowych kappa i jota w proporcjach 1:1 i 3:1, z których przygotowano roztwory wodne o całkowitym stężeniu 20 lub 30 mg/L.
Roztwór barwnika o stężeniu 1 mM otrzymano przez rozpuszczenie naważki Błękitu Toluidynowego O, C.I. 52040 (Panreac Quimica Sau) w wodzie destylowanej.
Wykonanie krzywych wzorcowych:
Do kuwety pomiarowej o pojemności 30 cm3 wprowadzano 20 cm3 wzorcowego roztworu mieszaniny karagenów. Kuwetę umieszczano w przystawce Ti spektrofotometru Spekol. Za pomocą titratora Radelkis OP-930/1 do kuwety dozowano barwnik BT porcjami o objętości 8 gL z interwałem 30 s. Odczytu absorbancji dokonywano przy długości fali 640 nm. Z uzyskanych krzywych miareczkowania odczytano objętości titranta odpowiadające absorbancji 0,5 (V, ml) i na tej podstawie wyznaczono krzywe wzorcowe, które można opisać równaniami:
dla stęż. mieszaniny 20 mg/L : zaw. i-karagenu = 399,41 · V - 94,427 [%] zaw. κ-karagenu = -399,41 · V + 194,43 [%] dla stęż. mieszaniny 30 mg/L : zaw. i-karagenu = 469,33 · V - 140,73 [%] zaw. κ-karagenu = -469,33 · V + 240,73 [%]
Wykonanie oznaczenia:
Próbki badane zmiareczkowano analogicznie jak roztwory wzorcowe. Z krzywych miareczkowania odczytano objętości titranta odpowiadające absorbancji 0,5, a następnie na podstawie krzywych wzorcowych wyznaczono składy mieszanin (Tabela 1).
Claims (3)
1. Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie karagenów kappa i jota, znamienny tym, że wodny roztwór mieszaniny karagenów o stężeniu z zakresu 20-30 mg/L miareczkuje się wodnym roztworem barwnika - Błękitu Toluidynowego o stężeniu 1 mM, z ciągłą rejestracją absorbancji mieszaniny przy długości fali 640 nm i na podstawie objętości barwnika w punkcie końcowym (V) odczytuje się zawartość jednego ze składników z krzywej wzorcowej.
2. Sposób wg zastrz. 1, znamienny tym, że punktem końcowym miareczkowania jest moment osiągnięcia absorbancji roztworu równej 0,5.
3. Sposób wg zastrz. 1, znamienny tym, że krzywą wzorcową w postaci: zaw. składnika mieszaniny = f(V) wyznacza się dla wzorcowych mieszanin karagenów o różnych proporcjach masowych składników i o tym samym całkowitym stężeniu, co próbka badana, na podstawie ich miareczkowania w warunkach analogicznych jak dla próbki badanej.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL418707A PL238039B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL418707A PL238039B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL418707A1 PL418707A1 (pl) | 2018-03-26 |
| PL238039B1 true PL238039B1 (pl) | 2021-06-28 |
Family
ID=61661146
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL418707A PL238039B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób oznaczania zawartości karagenu kappa lub jota w mieszaninie |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL238039B1 (pl) |
-
2016
- 2016-09-15 PL PL418707A patent/PL238039B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL418707A1 (pl) | 2018-03-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Janaki et al. | Physico-chemical analysis of gum kondagogu (Cochlospermum gossypium): a potential food additive | |
| Sun et al. | Physicochemical properties and antioxidant activity of pectin from hawthorn wine pomace: A comparison of different extraction methods | |
| Paradossi et al. | A physico-chemical study on the polysaccharide ulvan from hot water extraction of the macroalga Ulva | |
| Keshani-Dokht et al. | Extraction, chemical composition, rheological behavior, antioxidant activity and functional properties of Cordia myxa mucilage | |
| Salehi et al. | Opuntia ficus indica fruit gum: Extraction, characterization, antioxidant activity and functional properties | |
| Pereira et al. | Identification of selected seaweed polysaccharides (phycocolloids) by vibrational spectroscopy (FTIR-ATR and FT-Raman) | |
| Mercê et al. | Complexes of arabinogalactan of Pereskia aculeata and Co2+, Cu2+, Mn2+, and Ni2+ | |
| Gómez-Ordóñez et al. | FTIR-ATR spectroscopy as a tool for polysaccharide identification in edible brown and red seaweeds | |
| Mirghani et al. | Determination of antioxidant activity of gum arabic: An exudation from two different locations | |
| Kamnev et al. | Comparative spectroscopic characterization of different pectins and their sources | |
| Herrera-Ramirez et al. | Optimizing the extraction of anthocyanins from purple passion fruit peel using response surface methodology | |
| Burini | Development of a quantitative method for the analysis of total L-ascorbic acid in foods by high-performance liquid chromatography | |
| Buchweitz et al. | Bathochromic and stabilising effects of sugar beet pectin and an isolated pectic fraction on anthocyanins exhibiting pyrogallol and catechol moieties | |
| Pulgarı́n et al. | Simultaneous determination of atenolol, propranolol, dipyridamole and amiloride by means of non-linear variable-angle synchronous fluorescence spectrometry | |
| Kaur et al. | The review on spectrophotometric determination of synthetic food dyes and lakes | |
| Carvalho et al. | Flow nephelometric analysis of protein–tannin interactions | |
| Jiao et al. | Characterization of the interaction between methylene blue and glycosaminoglycans | |
| Salleh et al. | The influence of anthocyanins in pectin-whey protein complexation using a natural pigmented blackcurrant pectin | |
| de Souza et al. | Evaluation of oxalic acid extraction and quantification methods in the different purslane (Portulaca oleracea L.) matrices and spinach (Spinacea oleracea) | |
| Ceylan et al. | Extraction and characterization of pectin from fresh globe artichoke and canned artichoke waste. | |
| Wei et al. | Mechanism of Polygonatum sibiricum polysaccharide inhibiting oxidation and modifying physicochemical of chicken myofibrillar protein under oxidation system | |
| Rożnowski et al. | Effect of enriching potato and corn starch with iron ions on selected functional properties | |
| Zou et al. | Preparation and in vitro antioxidant activity of lacquer polysaccharides with low molecular weights and their sulfated derivatives | |
| PL238038B1 (pl) | Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda | |
| Petrea et al. | Some aspects of the characterization of vegetable gums: Prunus persica (plum) and Prunus domestica (cherry) |