PL238038B1 - Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda - Google Patents
Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda Download PDFInfo
- Publication number
- PL238038B1 PL238038B1 PL418706A PL41870616A PL238038B1 PL 238038 B1 PL238038 B1 PL 238038B1 PL 418706 A PL418706 A PL 418706A PL 41870616 A PL41870616 A PL 41870616A PL 238038 B1 PL238038 B1 PL 238038B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- carrageenan
- kappa
- carrageenans
- iota
- solution
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
Przedmiotem zgłoszenia jest sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda, przydatny w przemyśle spożywczym, kosmetycznym, farmaceutycznym. Typ karagenu (kappa, jota lub lambda) oznacza się na podstawie linii kalibracyjnych. Linie te otrzymuje się w oparciu o krzywe spektrofotometrycznego miareczkowania wzorcowych roztworów karagenu kappa, jota oraz lambda o różnych stężeniach (C) mianowanym roztworem Błękitu Toluidynowego (BT). Odczytując wartości objętości titranta potrzebne do osiągnięcia zadanej wartości absorbancji (VBT) buduje się zależności C=f(VBT), które dla różnych typów karagenu różnią się nachyleniem względem osi. Oznaczenie typu karagenu polega na zmiareczkowaniu roztworu badanego karagenu o określonym stężeniu mianowanym roztworem BT do osiągnięcia zadanej wartości absorbancji i odniesieniu objętości barwnika w punkcie końcowym do zestawu krzywych wzorcowych.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda, przydatny w przemyśle spożywczym, kosmetycznym, farmaceutycznym.
Karagen to ogólna nazwa grupy związków o charakterze naturalnych polisacharydów i strukturze liniowej. Występuje w odmianach kappa (k), jota (i), lambda (λ), mi (μ) oraz ni (v), różniących się stosunkiem ilościowym grup siarczanowych i cząsteczek galaktozy. Największe zastosowanie praktyczne znajdują trzy pierwsze spośród wymienionych typów. Odmiany kappa- i jota- posiadają właściwości żelujące (κ-karagen tworzy żele silne, stałe, a i-karagen daje żele miękkie), natomiast λ-karagen nie ulega żelowaniu, lecz ma zdolność zagęszczania roztworów poprzez zwiększanie ich lepkości. Z tego względu karageny są używane w przemyśle jako stabilizatory, zagęstniki i środki żelujące. Karageny stosuje się w przemysłach: spożywczym jako dodatek (E407 oraz E466) [1] do wędlin, konserw mięsnych, sosów, produktów o obniżonej zawartości tłuszczu, deserów mlecznych, niektórych napojów, dżemów, galaretek, kosmetycznym jako dodatek do past do zębów, szamponów, kremów, farmaceutycznym [2] do produkcji opatrunków, tabletek, preparatów farmaceutycznych o przedłużonym uwalnianiu.
Źródłem karagenów są wodorosty. Niektóre z nich produkują karagen określonego typu, np. i-karagen jest pozyskiwany z Eucheuma cottoni lub Eucheuma spinosum, κ-karagen otrzymuje się z różnych gatunków należących do rodzajów Gigartina i Chondrus, a λ-karagen ze sporofitycznych grup wodorostów. Z kolei wodorosty gametofityczne wytwarzają hybrydowy typ jota- i kappa- o różnych proporcjach składników. Karageny stosowane w przemyśle najczęściej mają postać półrafinowaną lub rafinowaną.
Analizę karagenów można przeprowadzić różnymi technikami [3, 4]. Metoda FTIR umożliwia rozróżnienie wszystkich typów karagenu przy użyciu minimalnej ilości próbki. Oznaczenie jest względnie proste, ale wymaga umiejętnej interpretacji wyników, m.in. w celu eliminacji pływu matrycy. Metodę 1H-NMR oraz 13C-NMR stosuje się do oznaczania stosunku karagenów kappa i jota w mieszaninie karagenów [5, 6]. Technika ta nie pozwala na oznaczenie karagenu lambda.
P r z y k ł a d 1 [5]
Mieszaninę karagenów analizowano metodą 13C-NMR w temperaturze ok. 80°C. Otrzymane widmo było sumą widm karagenów kappa i jota, natomiast nie posiadało sygnałów pochodzących od karagenu lambda. Metoda umożliwia zatem określenie w mieszaninie stosunku ilościowego karagenów kappa i jota, lecz nie daje możliwości identyfikacji karagenu lambda.
Analizę uzupełniono o badanie metodą spektroskopii IR. W uzyskanym widmie pasmo przy 1250 cm-1 odpowiadające sumie grup siarczanowych było znacznie bardziej intensywne dla karagenu lambda niż dla kappa i jota. Dodatkowo pasma przy 845, 830, 820 i 805 cm-1 umożliwiły rozróżnienie poszczególnych grup siarczanowych. Jako sygnał analityczny przyjęto st osunek absorbancji przy 845/1250 cm-1, który jest wrażliwy na dodatek karagenu lambda do mieszaniny karagenów kappa i jota.
Ważnymi narzędziami stosowanymi do charakterystyki surowców są też metody chromatograficzne (HPLC i HPAEC), umożliwiające półilościową oraz ilościową analizę karagenów po depolimeryzacji. Inną ważną techniką jest dwuwymiarowa elektroforeza, która pozwala na oznaczanie półilościowe bez depolimeryzacji. Z kolei u podstaw metod spektrofotometrycznych leży dysocjacja makrocząsteczek, skutkiem czego jest pojawienie się w roztworze polianionów posiadających zdolność tworzenia trwałych par jonowych z barwnikami kationowymi [7-10]. Z uwagi na to, że wszystkie typy karagenu rozpuszczają się w wodzie i ulegają reakcji kompleksowania, klasyczne metody spektrofotometryczne umożliwiają jedynie oznaczenia ilościowe sumy karagenów. Zaletą tych metod są natomiast małe wymagania sprzętowe. Najbardziej znana wśród metod spektrofotometrycznych jest ta z użyciem Błękitu Metylenowego [8], popularna ze względu na swoją czułość i łatwość wykonania. Do analizy polimerów anionowych można wykorzystać technikę miareczkowania spektrofotometrycznego, stosując jako titrant barwnik kationowy [9].
P r z y k ł a d 2 [8]
Do ilościowego oznaczania hydrokoloidów, w tym karagenów, alginianu oraz karboksymetylocelulozy w roztworach wodnych zastosowano Błękit Metylenowy. Podstawą metody jest przesunięcie maksimum widma absorpcji barwnika z 610 i 664 mn do 559 nm na skutek tworzenia się rozpuszczal
PL 238 038 Β1 nych kompleksów barwnik-polianion, przy czym absorbancja kompleksu przy 559 nm jest proporcjonalna do stężenia hydrokoloidu. Zaletą procedury jest rozpuszczalność kompleksów, wynikająca z zastosowania małych stężeń barwnika i polianionu.
Przykład 3 [71
Do spektrofotometrycznego oznaczania stężeń polimerów anionowych w roztworach wodnych zastosowano wodny roztwór barwnika - Błękitu Metylenowego. Porcję analitu o znanej objętości miareczkuje się roztworem barwnika, rejestrując w sposób ciągły absorbancję mieszaniny roztworów przy długości fali z zakresu od 660 do 670 nm. Miareczkowanie prowadzi się do momentu osiągnięcia zadanej wartości absorbancji. Stężenie polimeru (C) odczytuje się z krzywej kalibracyjnej w postaci C=f(VBM) (gdzie Vbm - objętość barwnika w punkcie równoważnikowym), wykreślonej dla tej samej zadanej wartości absorbancji.
Istotą rozwiązania według wynalazku jest oznaczenie typu karagenu na podstawie wyników spektrofotometrycznego miareczkowania wodnego roztworu karagenu Błękitem Toluidynowym (BT). W przypadku karagenów różnych typów, tj. różniących się ilością i rozmieszczeniem grup siarczanowych, kompleksowa nie polimeru z barwnikiem zachodzi w odmienny sposób, co determinuje postać krzywej wzorcowej.
Podstawę oznaczenia stanowi miareczkowanie próbek wzorcowych karagenów typu kappa, jota oraz lambda o różnych stężeniach mianowanym roztworem BT (optymalnie c=1 mM), z jednoczesnym pomiarem absorbancji układu przy długości fali z zakresu 640±20 nm. Punktem końcowym miareczkowania jest objętość barwnika, przy której osiągnięto zadaną wartość absorbancji (A). Następnie, na podstawie krzywych miareczkowania (fig. 1), wykreśla się zależność stężenia roztworu karagenu od objętości BT w punkcie końcowym (fig. 2). Typ karagenu odczytuje się z rys. 2, na podstawie miareczkowania wodnego roztworu badanej próbki karagenu o określonym stężeniu (optymalnie 10-40 mg/L) roztworem BT do osiągnięcia zadanej wartości absorbancji. W celu identyfikacji karagenu jota zadana wartość absorbancji powinna być większa od jedności (optymalnie 1,5-2). Aby rozróżnić karageny typu kappa i lambda zadana wartość absorbancji nie powinna przekraczać 1 (optymalnie 0,5-0,7). Stężenie miareczkowanej próbki oraz objętość BT w punkcie końcowym pozwalają rozpoznać typ karagenu.
Korzystnymi skutkami rozwiązania według wynalazku, jest prostota i szybkość wykonania, oraz brak potrzeby stosowania skomplikowanej aparatury analitycznej.
Fig. 1 przedstawia przykładowe krzywe miareczkowania wodnych roztworów i-karagenu o różnych stężeniach roztworem Błękitu Toluidynowego.
Fig. 2 przedstawia krzywe do rozróżniania typu karagenu, wyznaczone na podstawie wyników miareczkowania (rys. 1) dla określonej wartości absorbancji oraz sposób wyznaczania typu karagenu.
Fig. 3 przedstawia wyniki oznaczenia typu karagenu. Linie oznaczają krzywe wzorcowe dla poszczególnych typów karagenu, a punkty ilustrują wyniki oznaczenia (O - κ-karagen, · - i-karagen, ·- λ-karagen).
Wynalazek przedstawiono bliżej w przykładzie realizacji.
Krzywe wzorcowe wykonano używając oczyszczonych karagenów, z których przygotowano po kilka roztworów wodnych o stężeniach z zakresu 6-40 mg/L. Jako próbki badane wykorzystano karageny (κ-karagen, CAS 11114-20-8, i-karagen, CAS 9062-07-1, λ-karagen, CAS 9064-57-7), z których przygotowano roztwory wodne o stężeniach 12, 20 i 30 mg/L. Roztwór barwnika o stężeniu 1 mM otrzymano przez rozpuszczenie naważki Błękitu Toluidynowego O, C.l. 52040 (Panreac Ouimica Sau) w wodzie destylowanej.
Wykonanie krzywych wzorcowych:
Do kuwety pomiarowej o pojemności 30 cm3 wprowadzano 20 cm3 wzorcowego roztworu karagenu. Kuwetę umieszczono w przystawce Ti spektrofotometru Spekol. Za pomocą titratora Radelkis OP-930/1 do kuwety dozowano barwnik BT porcjami o objętości 8 pL z interwałem 30 s. Odczytu absorbancji dokonywano przy długości fali 640 nm. Z uzyskanych krzywych miareczkowania odczytano objętości titranta odpowiadające absorbancji 0,5 oraz 1,5 i na tej podstawie wykreślono krzywe wzorcowe pokazane na fig. 3.
Wykonanie oznaczenia: Z badanych próbek karagenu przygotowano roztwory o stężeniach 12, 20 i 30 mg/L. Próbki zmiareczkowano analogicznie jak roztwory wzorcowe. Z krzywych miareczkowania odczytano objętości titranta odpowiadające absorbancji 0,5 oraz 1,5 i na tej podstawie oznaczono typ karagenu w badanych próbkach. Wyniki ilustruje fig. 3.
PL 238 038 B1
[1] Z. Sikorski (red.), Chemiczne i funkcjonalne właściwości składników żywności, WNT, Warszawa 1996, s. 161.
[2] S. Kohlmunzer, Farmakognozja: podręcznik dla studentów farmacji, wyd. V unowocześnione, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2003, s. 669.
[3] M. A. Roberts, B. Quemener, Measurement of carrageenans in food: challenges, progress, and trends in analysis, Trends in Food Science & Technology 1999, 10, 169-181.
[4] L. Pereira, A. T. Critchley, A. M. Amado, P. J. A. Ribeiro-Claro, A comparative analysis of phycocolloids produced by underutilized versus industrially utilized carrageenophytes (Gigartinales, Rhodophyta), J. Appl. Phycol. 2009, 21,599-605.
[5] T. Turquois, S. Acquistapace, F. Arce Vera, D. H. Welti, Composition of carrageenan blends inferred from 13C-NMR and infrared spectroscopic analysis, Carhohydrare Polymer 1996, 31,269-278.
[6] F. van de Velde, S.H. Knutsen, A.I. Usov, H.S. Rollemay, A.S. Cerezo, 1H and 13C high resolution NMR spectroscopy of carrageenans: application in research and industry, Trends in Food Science & Technology 2002, 13, 73-92.
[7] D. Ziółkowska, A. Shyichuk, D. Żygowska, Sposób ilościowego oznaczania polimerów anionowych w roztworach wodnych, zgł. pat. P.408914.
[8] H.S. Soedjak, Colorimetric Determination of Carrageenans and Other Anionic Hydrocolloids with Methylene Blue, Anal.Chem. 1994, 66, 4514-4518.
[9] D. Ziółkowska, A. Shyichuk, D. Żygowska, Sposób ilościowego oznaczania polimerów aniono- wych w roztworach wodnych, zgł. pat. P.410721.
[10] D. Ziółkowska, A. Shyichuk, Sposób ilościowego oznaczania polimerów anionowych w roztworach wodnych o podwyższonej wartości siły jonowej, zgł. pat. P.412374.
Claims (5)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób rozróżniania karagenów, znamienny tym, że wodny roztwór karagenu o stężeniu (Ckar) z zakresu 10-40 mg/L miareczkuje się wodnym roztworem barwnika - Błękitu Toluidynowego o stężeniu 1 mM z ciągłą rejestracją absorbancji mieszaniny przy długości fali z zakresu od 640±20 nm i na podstawie objętości barwnika w punkcie końcowym (Vpk) odczytuje się typ karagenu z krzywej wzorcowej.
- 2. Sposób wg zastrz. 1, znamienny tym, że punktem końcowym miareczkowania jest moment osiągnięcia zadanej wartości absorbancji roztworu.
- 3. Sposób wg zastrz. 1, znamienny tym, że krzywe wzorcowe w postaci Ckar=f(VPK) wyznacza się oddzielnie dla różnych typów karagenu i dla tej samej wartości absorbancji, jaką przyjęto za punkt końcowy miareczkowania roztworów badanych.
- 4. Sposób wg zastrz. 2, znamienny tym, że przy odróżnianiu karagenu typu jota od kappa i lambda zadana wartość absorbancji jest >1, korzystnie 1,5-2.
- 5. Sposób wg zastrz. 2, znamienny tym, że przy rozróżnianiu karagenów typu kappa i lambda zadana wartość absorbancji jest <1, korzystnie 0,5-0,7.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL418706A PL238038B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL418706A PL238038B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL418706A1 PL418706A1 (pl) | 2018-03-26 |
| PL238038B1 true PL238038B1 (pl) | 2021-06-28 |
Family
ID=61661139
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL418706A PL238038B1 (pl) | 2016-09-15 | 2016-09-15 | Sposób rozróżniania karagenów typu kappa, iota i lambda |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL238038B1 (pl) |
-
2016
- 2016-09-15 PL PL418706A patent/PL238038B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL418706A1 (pl) | 2018-03-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sun et al. | Physicochemical properties and antioxidant activity of pectin from hawthorn wine pomace: A comparison of different extraction methods | |
| Salehi et al. | Opuntia ficus indica fruit gum: Extraction, characterization, antioxidant activity and functional properties | |
| Cui et al. | The effect of degree of esterification of pectin on the interaction between pectin and wheat gluten protein | |
| Wang et al. | Study on the mechanism of non-covalent interaction between rose anthocyanin extracts and whey protein isolate under different pH conditions | |
| Chen et al. | Physicochemical properties and gluten structures of hard wheat flour doughs as affected by salt | |
| Ma et al. | Wheat flour superheated steam treatment induced changes in molecular rearrangement and polymerization behavior of gluten | |
| Narayanan et al. | Fabrication of butterfly pea flower anthocyanin-incorporated colorimetric indicator film based on gelatin/pectin for monitoring fish freshness | |
| Pereira et al. | Identification of selected seaweed polysaccharides (phycocolloids) by vibrational spectroscopy (FTIR-ATR and FT-Raman) | |
| Černá et al. | Use of FT-IR spectroscopy as a tool for the analysis of polysaccharide food additives | |
| Gómez-Ordóñez et al. | FTIR-ATR spectroscopy as a tool for polysaccharide identification in edible brown and red seaweeds | |
| Gorji et al. | Complexation of sodium caseinate with gum tragacanth: effect of various species and rheology of coacervates | |
| Gannasin et al. | Physicochemical properties of tamarillo (Solanum betaceum Cav.) hydrocolloid fractions | |
| Fernandes et al. | Grape pectic polysaccharides stabilization of anthocyanins red colour: Mechanistic insights | |
| Zhang et al. | Aggregative and structural properties of wheat gluten induced by pectin | |
| Lee et al. | Extraction optimization and physicochemical properties of pectin from watermelon (Citrullus lanatus) rind: comparison of hydrochloric and citric acid extraction | |
| Carvalho et al. | Flow nephelometric analysis of protein–tannin interactions | |
| Dyrby et al. | Towards on-line monitoring of the composition of commercial carrageenan powders | |
| Harbertson et al. | Glucose, fructose and sucrose increase the solubility of protein–tannin complexes and at high concentration, glucose and sucrose interfere with bisulphite bleaching of wine pigments | |
| Wang et al. | Effects of epigallocatechin-3-gallate on the structural hierarchy of the gluten network in dough | |
| Zhang et al. | Effect of konjac glucomannan on aggregation patterns and structure of wheat gluten with different strengths | |
| Tojo et al. | Chemical composition of carrageenan blends determined by IR spectroscopy combined with a PLS multivariate calibration method | |
| Cropotova et al. | A novel fluorescence microscopy approach to estimate quality loss of stored fruit fillings as a result of browning | |
| Salleh et al. | The influence of anthocyanins in pectin-whey protein complexation using a natural pigmented blackcurrant pectin | |
| Pironti et al. | FTIR and NDIR spectroscopies as valuable alternatives to IRMS spectrometry for the δ13C analysis of food | |
| Rafiquzzaman et al. | Ultrasonic-assisted extraction of Carrageenan |