PL231961B1 - Sposób wytwarzania suszonych rozpyłowo produktów krwi drobiowej - Google Patents

Description

Opis wynalazku

Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania suszonych rozpyłowo produktów krwi drobiowej tj. Dziedziny biotechnologii.

Zgodnie z najlepszą wiedzą zgłaszającego, na świecie nikt nie wytwarza suszonych rozpyłowo produktów z krwi drobiowej. Wynika to przede wszystkim z problemów pozyskania i zabezpieczenia odpowiedniej jakości krwi drobiowej po wynaczynieniu, tak aby zachować w pełnej aktywności frakcje białkowe plazmy krwi drobiowej, usunąć zanieczyszczenia spadające do krwi z tuszek drobiowych, a przede wszystkim uzyskać charakterystykę higieniczną krwi drobiowej pozyskiwanej w ubojni pozwalającą na jej transport do zakładu przetwórczego bez ryzyka namnożenia patogenów. Proces frakcjonowania i suszenia rozpyłowego może być standardowy, to znaczy taki jak stosowany powszechni przy wytwarzaniu produktów z krwi dużych zwierząt ubojowych: bydła i świń.

W wynalazku podlegającym zgłoszeniu patentowemu, ptaki ubijane na linii głuszenia prądem elektrycznym przechodzą przez sekcję usuwania wody z piór za pomocą dysz zdmuchujących sprężonym powietrzem wodę z barków, szyi i głów ogłuszonych ptaków. Ptaki ubijane na linii z głuszeniem gazem obojętnym (dwutlenek węgla) nie wymagają stosowania dmuchaw do usuwania nadmiaru wody. Krew ubijanych ptaków po wynaczynieniu spływa do rynny wykrwawiania gdzie dodawane jest do niej w formie natrysku roztwór antykoagulantu (roztwór soli sodowych słabych kwasów o stężeniu 10%) w ilości 4% masy wynaczynionej krwi. Do wynaczynionej krwi dodawana jest równocześnie od 0,1% do 10,0% mieszaniny monoglicerydów lotnych kwasów tłuszczowych o długości łańcucha węglowodorowego od C-3 do C-12 (propionowego, masłowego, kaprynowego, kaprylowego i laurynowego) i glicerolu w celu inhibicji rozwoju mikroflory. Działanie antykoagulantu polega na przesunięcie pH zbieranej krwi w górę, znacznie powyżej pH 7. Tradycyjnie stosowane do utrwalania materiałów paszowych krótkołańcuchowe kwasy organiczne są efektywne w inhibicji rozwoju bakterii jedynie w pH poniżej 4,5. W pH powyżej 7, stopień dysocjacji kwasów organicznych gwałtownie zwiększa się a ich aktywność anty bakteryjna zmniejsza się od kilkuset do wielu tysięcy razy. Monoglicerydy lotnych kwasów tłuszczowych C3-C12 nie hydrolizują i w związku z tym zachowują taką samą aktywność przeciwbakteryjną w pH 4,5 jak i w pH powyżej 7. Krew z rynny wykrwawiania oczyszczana jest na zespole sit z zanieczyszczeń mechanicznych spadających z okrywy piórowej, wychładzana w zespole wymienników ciepła do temperatury pomiędzy +3°C a 10°C i w takiej temperaturze poddawana rozdzielaniu na plazmę krwi drobiowej oraz krwinki czerwone (hemoglobinę) za pomocą wirówek szybkoobrotowych. Krwinki czerwone krwi drobiowej poddawane są procesowi suszenia rozpyłowego bez dodatkowych zabiegów. Plazma krwi drobiowej poddawana jest procesowi ultrafiltracji/nanofiltracji/dializy a następnie suszona rozpyłowo.

Produkcja żywca i przetwórstwo mięsa drobiowego należą do najdynamiczniej rozwijających się kierunków produkcji zwierzęcej w Polsce. Ten niezwykle dynamiczny rozwój branży drobiarskiej wysunął Polskę na pozycję lidera w Unii Europejskiej. Według szacunków Instytutu Ekonomiki Rolnictwa i Gospodarki Żywnościowej - Państwowego Instytutu Badawczego, w 2015 roku w Polsce wyprodukowano 2920 tys. ton drobiu rzeźnego, tj. o 9,4% więcej niż w 2014 r. i o 23,1% więcej w porównaniu z 2013 rokiem (Rynek drobiu 2015). Zgodnie z opublikowanym przez Komisję Europejską w grudniu 2014 r. raportem „Prospects for agricultural markets and income in the EU 2014-2024” w okresie najbliższych dziesięciu lat przewidywany jest dalszy wzrost produkcji i konsumpcji drobiu w Unii Europejskiej.

Biorąc powyższe pod uwagę, a zwłaszcza prognozy rozwoju przemysłu drobiarskiego w naszym kraju i w UE, zasadnym jest wykorzystanie w żywieniu drobiu produktu ubocznego jakim jest krew ptaków pozyskiwana w trakcie uboju. Warto dodać, że krew stanowi nawet do ok. 10% masy ciała ptaka. Zatem w następstwie wykrwawienia, przy obecnej liczbie ubijanych kurcząt brojlerów w naszym kraju, można uzyskać ok. 70-80 tys. ton krwi. Ilość ta, przy uwzględnieniu uboju jeszcze innych gatunków drobiu, zwłaszcza indyków i kur towarowych, stanowi znaczną bazę surowcową. Jako suszona rozpyłowo plazma (Spray Dried Plasma - SDP) może ona stanowić nie tylko źródło wysoko wartościowego białka, ale przede wszystkim substancji biologicznie aktywnych (gammaglobuliny, albuminy, transferryny, interleukiny i inne), do tego czasu nie wykorzystywanych w żywieniu zwierząt. Należy podkreślić, że w żywieniu zwierząt jest wykorzystywana suszona rozpyłowo plazma krwi świńskiej i bydlęcej. Pragnę jednak podkreślić, że hemoglobina i plazma krwi drobiowej ma wartość żywieniową analogiczną do produktów z krwi wyżej wymienionych gatunków zwierząt.

PL 231 961 B1

Suszona rozpyłowo plazma jest składnikiem krwi zwierzęcej pobieranej i przetwarzanej w taki sposób, aby zachować funkcjonalne właściwości białka. SDP stanowi niejednorodną mieszaninę składników funkcjonalnych, zawierającą immunoglobuliny, albuminy, fibrynogen, lipidy, czynniki wzrostu, biologicznie czynne peptydy (defensyny, transferyny), enzymy i inne związki aktywne biologicznie w jelicie zwierząt skarmianych paszą z jej dodatkiem.

Z chwilą wprowadzenia w 2006 r. zakazu stosowania w żywieniu zwierząt antybiotykowych stymulatorów wzrostu, podjęto kroki mające na celu znalezienie nowych rozwiązań, które można by stosować w profilaktyce zaburzeń przewodu pokarmowego oraz dla poprawy parametrów produkcyjnych zwierząt (10). Jednym z dobrych rozwiązań okazało się stosowanie dodatków paszowych w postaci suszonej rozpyłowo plazmy krwi. Bowiem plazma zwierzęca suszona rozpyłowo jest bogatym w białko suplementem diety stosowanym u różnych gatunków zwierząt (2, 7, 28). Głównymi komponentami SDP są: fibrynogen, immunoglobuliny i albuminy. Ponadto plazma zawiera wiele aktywnych biologicznie białek, np. insulinopodobne czynniki wzrostu I, II (IGF-I, IGF-II), czy transformujący czynnik wzrostu β (TGF-β), odpowiedzialnych za stymulację rozwoju jelit, syntezę białek oraz regenerację ściany jelit (7, 14, 28). Skład aminokwasowy białek SDP jest dobrze zbilansowany i nie różni się znacząco między plazmą pochodzącą od świń (SDPP - spray dried porcine plasma), a plazmą pochodzenia bydlęcego (SDBP - spray dried bovine plasma), czy plazmą z krwi drobiu (SDCP - spray dried chicken plasma).

Zestawienie dostępnych wyników badań wskazuje, że SDP moduluje aktywność układu immunologicznego, tym samym zabezpiecza organizm zwierzęcia przed skutkami nadmiernej lub zbyt słabej odpowiedzi immunologicznej (2, 14, 25). Aktywność biologiczna SDP wobec patogenów jelitowych wynika po części z zawartych w plazmie immunoglobulin klasy IgG. Osocze do produkcji SDP pochodzi od bardzo dużej liczby zwierząt z ferm o zróżnicowanym statusie immunologicznym. W efekcie SDP zawiera szeroki wachlarz przeciwciał przeciwko patogenom występującym w środowisku chowu zwierząt, jak E. coli, rotawirusy, cirkowirusy i inne (1,27).

Prowadzono także badania nad wpływem SDP świń i bydła na efekty produkcyjne i zdrowotność drobiu. Wykazano, że żywienie kurcząt brojlerów paszą z dodatkiem 1% SDP bydła przez pierwsze 14 dni odchowu, a następnie z 0,5% i 0,25% dodatkiem tej plazmy w okresie odpowiednio od 15 do 28 dnia i od 29 do 42 dnia chowu, poprawia przyrosty masy ciała i kształt tuszki, zwiększa wydajność mięśnia piersiowego nawet o 5% (3). Campbell i wsp. (6) wykazali także, że u indyków, żywionych paszą z dodatkiem 1% SDP bydła w pierwszym tygodniu, 0,5% w okresie od 2 do 4 tyg. i 0,25% od 5 do 8 tyg. i zakażonych Pasteurella multocida, przebieg choroby był łagodniejszy a przeżywalność większa. Niewątpliwie jest to spowodowane właściwościami immunomodulacyjnymi SDP (7). Wykazano, że indyki żywione paszą z dodatkiem SDP uzyskują o 6,3% wyższą końcową masę ciała przy mniejszym o 3,7% zużyciu paszy na kilogram przyrostu oraz, że o 15% zmniejsza się ilość konfiskat rzeźnych (5).

Biorąc powyższe pod uwagę należy stwierdzić, że dodatek SDP świń lub bydła do paszy dla kurcząt brojlerów i indyków rzeźnych poprawia dzienne przyrosty masy ciała i wykorzystanie paszy, łagodzi przebieg chorób przez co pozwala zmniejszyć ilość stosowanych antybiotyków. Warto także dodać, że SDP świń i bydła bardzo efektywnie poprawia przyrosty masy ciała u kurcząt brojlerów, nawet jeżeli tylko w pierwszych 10 dniach odchowu stosuje się 1 do 2% jej dodatek do skarmianejpaszy.

Należy zdecydowanie podkreślić, że produkcja i wykorzystanie w żywieniu zwierząt suszonej rozpyłowo plazmy krwi drobiowej ma charakter innowacyjny, gdyż jak wynika z analizy baz literaturowych nigdy wcześniej nie podejmowano takiej produkcji. Zarówno na rynku krajowym, jak i światowym istnieje zapotrzebowanie na nowe produkty, a takim bez wątpienia jest suszona rozpyłowo plazma krwi drobiowej. Wyprodukowanie takiej plazmy i wykorzystanie przez to w żywieniu zwierząt krwi ubijanych ptaków, która aktualnie jest zbierana na koszt ubojni i przeznaczana do produkcji nieprzydatnej w żywieniu zwierząt mączki z krwi, wpłynie pozytywnie na ochronę środowiska i przyniesie korzyści ekonomiczne chowu drobiu i innych zwierząt.

Plazma krwi drobiowej i wieprzowej charakteryzuje się podobnym potencjałem hamowania rozwoju patogenów, aktywnością regulatorową białek i strawnością. Ponadto, jak zaznaczyłem na wstępie, Polska jest liderem w produkcji drobiu w UE i produkcja tego gatunku zwierząt dynamicznie rośnie, odwrotnie niż wieprzowiny. Biorąc pod uwagę specyfikę rozwoju i funkcjonowania systemu immunologicznego u zwierząt oraz właściwości plazmy krwi drobiowej mogę stwierdzić, że suszona rozpyłowo plazma krwi drobiowej przyniesie większe korzyści ekonomiczne w chowie zwierząt, zwłaszcza

PL 231 961 B1 drobiu, niż stosowanie plazmy wieprzowej i bydlęcej. W świetle powyższego potencjał rynkowy suszonej rozpyłowo krwi drobiowej jest nawet większy niż plazmy krwi wieprzowej.

Dodatkowo, obecne w plazmie krwi drobiowej wyprodukowanej w technologii jak w niniejszym zgłoszeniu monoglicerydy lotnych kwasów tłuszczowych (C3 - C12) i glicerol dodawane w celu stabilizowania surowca, znajdują się w dostatecznej koncentracji w suszonej rozpyłowo plazmie krwi drobiowej aby wywierać synergistyczny wpływ na żywione zwierzęta Monoglicerydy lotnych kwasów tłuszczowych mają działanie nie tylko przeciw patogenom ale również, podobnie jak plazma krwi, zmniejszają ilość cytokin prozapalnych wydzielanych w odpowiedzi na patogeny, ich toksyny lub inny wektor stresu. Monoglicerydy lotnych kwasów tłuszczowych poprawiają bilans energii i potencjał antyoksydacyjny w jelicie cienkim i całym organizmie (4, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 26, 29, 30).

Piśmiennictwo

1. Borg B. S., Campbell J. M., Polo J., Russell L. E., Rodriguez C., Ródenas J.: Evaluation of the chemical and biological characteristics of spray - dried plasma protein collected from various locations around the world. Proc. Am. Assoc. Swine Vet. 2002, Kansas City, USA, 97-100.

2. Bosi P., Casini L., Finamore A., Cremokolini C., Merialdi G., Trevisi P., Nobili F., Mengheri E.: Spray - dried plasma improves growth performance and reduces inflammatory status of weaned pigs challenged with enterotoxigenic Escherichia coli K88. J. Anim. Sci. 2004, 82, 1764-1772.

3. 3.Bregendahl, K., Ahn D. U., Trampel D. W., Campbell J. M.: Effects of dietary spraydried bovine plasma protein on broiler growth performance and breast-meat yield. J. Appl. Poult. Res. 2005,14:560-568.4. Campbell J. M., Quigley J. D. III., Russell L. E., Kidd M. T.: Effect of spray - dried bovine serum on intake, heath, and growth of broilers housed in different environments. J. Anim. Sci. 2003, 81, 2776-2782.

4. Bunger, K., S.J. Bultman. 2011. The microbiome and butyrate regulate energy metabolism and autophagy in the mammalian colon. Cell Metab. 13:517-526.

5. Campbell, J.M., Quigley J.D. Ill, Russell L.E.: Impact of spray-dried bovine serum and environment on turkey performance. Poult. Sci. 2004, 83:1683-1687.

6. Campbell, J.M., Quigley J.D. Ill, Russell L.E., Koehnk L.D.: Efficacy of spray-dried bovine serum on health and performance of Turkey challenged with Pasteurella multocida. J. Appl. Poult. Res. 2004, 13:388-393.

7. Campbell J.: Influence of dietary plasma proteins on supporting animal immunity systems. 19th Annual meeting. Florida Ruminant Nutrition Symposium. Florida 2008.

8. Cresci, G., Nagy, L. E., Ganapathy, V., 2013. Lactobacillus GG and tributirin supplementation reduce antibiotic-induced intestinal injury. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 37 (6) doi:10.1177/01486071134868.

9. Czerwiński, J., O. H0jberg, S. Smulikowska, R. M. Engberg, and A. Mieczkowska. 2012. Effects of sodium butyrate and salinomycin upon intestinal microbiota, mucosal morphology and performance of broiler chickens. Arch. Anim. Nutr.

10. Davis, R. E. 1930. The metabolism of tributyrin. J. Biol. Chem. 88:67-75.

11. Fusunyan, R. D., J. J. Quinn, M. Fujimoto, R. P. MacDermott, and I. R. Sanderson. 1999. Butyrate switches the pattem of chemokine secretion by intestinal epithelial cells through histone acetylation. Mol. Med. 5:631 -640.

12. Jerzsele, A., K. Szeker, R. Csizinsky, E. Gere, C. Jakab, J. J. Mallo, and P. Galfi. 2012. Efficacy of protected sodium butyrate, a protected blend of essential oils, their combination, and Bacillus amyloliquefaciens spore suspension against artificially induced necrotic enteritis in broilers. Poult. Sei. 91:837-843.

13. Jiaolong Li, Yongqing Hou, Dan Yi, Jun Zhang, Lei Wang, Hongyi Qiu, Binying Ding, and Joshua Gong: Effect of tributirin on intestinal energy status, antioxidative capacity and immune response to liposaccharide response in chicken. Asian Austr. J. Animal Sci., 2015, vol. 28, 12: 1784-93.

14. 7. Jiang R., Chang X., Stoll B., Fan M. Z., Arthington J., Weaver E., Campbell J., Burrin D. G. : Dietary plasma protein reduces small intestinal growth and lamina propria cell density in early weaned pigs. 2000, 130, 21-26.

PL 231 961 B1

15. Kotunia, A., J. Woliński, D. Laubitz, M. Jurkowska, V. Rome, P. Guilloteau, and R. Zabielski. 2004. Effect of sodium butyrate on the small intestine development in neonatal piglets fed by artificial sow. J. Physiol. Pharmacol. 55(Suppl 2):59-68.

16. Leeson, S., H. Namkung, M. Antongiovanni, and E. H. Lee. 2005. Effect of butyric acid on the performanceand carcass yield of broiler chickens. Poult. Sci. 84:1418-1422.

17. Lu, J. J., X. T. Zou, and Y. M. Wang. 2008. Effects of sodium butyrate on the growth performance, intestinal microflora and morphology of weanling pigs. J. Anim. Feed Sci. 17:568-578.

18. Mahdavi, R. and M.Torki. 2009. Study on usage period of dietary protected butyric acid on performance, carass characteristics, serum metabolite levels and humoral immune response of broiler chickens. J. Anim. Vet. Adv. 8:1702-1709.

19. Mallo, J. J., A. Balfagón, M. I. Gracia, P. Honrubia, and M. Puyalto. 2012. Evaluation of different protections of butyric acid aiming for release in the last part of the gastrointestinal tract of piglets. J. Anim. Sei. 90(Suppl4):227-229.

20. Namkung, H., H. Yu, J. Gong, and S. Leeson. 2011. Antimicrobial activity of butyrate glycerides toward Salmonella Typhimurium and Clostridium perfiingens. Poult. Sci. 90:2217-2222.

21. Nancey, S., J. Bienvenu, B. Coffin, F. Andre, L. Descos, and B. Flourie. 2002. Butyrate strongly inhibits in vitro stimulated release of cytokines in blood. Dig. Dis. Sci. 47: 921 -928.

22. Ogawa, FL, P. Rafiee, P. J. Fisher, N. A. Johnson, M. F. Otterson, and D. G. Binion. 2003. Butyrate modulates gene and protein expression in human intestinal endothelial cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 309:512-519.

23. Panda, A. K., S. V. Rama Rao, M. V. L. N. Raju, and G. Sunder Sunder. 2009. Effect of butyric acid on performance, gastrointestinal tract health and carcass characteristics in broiler chickens. Asian Australas. J. Anim. Sci. 22:1026-1031.

24. Parka., J. S., M. S. Woo, S. Y. Kim, W. K. Kim, and H. S. Kim. 2005. Repression of interferon-y-induced inducible nitric oxide synthase (iNOS) gene expression in microglia by sodium butyrate is mediated through specific inhibition of ERK signaling pathways. J. Neuroimmunol. 168:56-64.

25. 8. Perez-Bosque A., Miró L., Polo J., Russell L., Campbell J., Weaver E., Crenshaw J., Moretó M.: Dietary plasma proteins modulate the immune response of diffuse gut - associated lymphoid tissue in rats challenged with Staphylococcus aureus enterotoxin. B. J. Nutr. 2008, 138, 533-537.

26. Sauer, J., K. K. Richter, and B. L. Pool-Zobel. 2007. Physiological concentrations of butyrate favorably modulate genes of oxidative and metabolic stress in primary human colon cells. J. Nutr. Biochem. 18:736-745.

27. 9. Shen H. G., Schalk S., Elalbur P. G., Campbell J. M., Russell L. E., Opriessnig T.: Commercially produced spray dried porcine plasma contains high levels of porcine circovirus type 2 (PCV2) DNA but not transmit PCV2 when fed to naive pigs. J. Anim. Sci. 2011,89, 1930-1938.

28. 10. Torrallardona D. : Spray dried plasma as an alternative to antibiotics in weaning pigs. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 2010,23,131-148.

29. Yi, D., Y. Hou, L. Wang, B. Ding, Z. Yang, J. Li, M. Long, Y. Liu, and G. Wu. 2014. Dietary N-acetylcysteine supplementation alleviates liver injury in lipopolysaccharidechallenged piglets. Br. J. Nutr. 111:46-54.

30. Zhang, W. H., Y. Jiang, Q. F. Zhu, F. Gao, S. F. Dai, J. Chen, and G. H. Zhou. 2011. Sodium butyrate maintains growth performance by regulating the immune response in broiler chickens. Br. Poult. Sci. 52:292-301.

W wyniku stosowania suszonej rozpyłowo plazmy produkowanej według technologii jak w niniejszym zgłoszeniu w żywieniu zwierząt spodziewane są następujące korzyści:

1. Zmniejszenie presji na interwencyjne stosowanie antybiotyków w produkcji zwierzęcej.

2. Ograniczenie ostrości odpowiedzi immunologicznej na stresy ze środowiska lub wywołanej koniecznymi szczepieniami i zmniejszenie strat produkcyjnych powodowane upadkami, zmniejszonymi przyrostami i gorszą konwersją karmy w wyniku nadmiernej aktywacji kaskady cytokinowej w odpowiedzi na stres.

PL 231 961 B1

3. Poprawienie uzysku mięsa z tuszy w wyniku mniejszych strat energii na aktywację tkanki immunologicznej i niekorzystnego wpływu cytokin prozapalnych na przyrosty tkanki mięśniowej.

P r z y k ł a d 1

W celu realizacji wynalazku z ptaków głuszonych prądem elektrycznym należy usunąć nadmiar wody z głowy, szyi i barków aby nie ściekała do koryta wykrwawiania. Według wynalazku nadmiar wody należy zdmuchnąć dyszami ze sprężonym powietrzem. W procesie pozyskiwania krwi drobiowej należy przyrządzić roztwór cytrynianu sodu o stężeniu 10% jako antykoagulantu i dodać do tego roztworu 10% mieszaniny monoglicerydów C3-C12 i glicerolu. Tak sporządzony roztwór antykoagulantu i monoglicerydów jest dodawany w formie natrysku na koryto zbierające wynaczynioną krew ubijanych ptaków w ilości 4% masy wynaczynionej krwi. Krew z dodatkiem antykoagulantu (0,4%) i monoglicerydów (0,4%) po usunięciu zanieczyszczeń na sitach, wychładzana jest na wymiennikach ciepła do temperatury 5°C. Tak uzyskana krew higieniczna jest przechowywana i transportowana w zbiornikach izotermicznych do zakładu przetwórczego, gdzie na wirówkach rozdzielana jest na krwinki czerwone i plazmę krwi. Krwinki czerwone kierowane są do suszenia rozpyłowego a plazma krwi drobiowej zawierająca antykoagulant i monoglicerydy podlega zagęszczaniu i usunięciu nadmiaru soli w zestawie membran do ultrafiltracji, nanofiltracji i dializy. Plazma zagęszczona do ponad 25% suchej masy kierowana jest do suszenia rozpyłowego w wyniku którego uzyskuje się suszoną rozpyłowo plazmę krwi drobiowej zawierającą około 72% białka ogólnego i około 9% tłuszczu ogólnego.

P r z y k ł a d 2

W celu realizacji wynalazku z ptaków głuszonych prądem elektrycznym należy usunąć nadmiar wody z głowy, szyi i barków aby nie ściekała do koryta wykrwawiania. Według wynalazku nadmiar wody należy zdmuchnąć dyszami ze sprężonym powietrzem. W procesie pozyskiwania krwi drobiowej należy przyrządzić roztwór cytrynianu sodu o stężeniu 10% jako antykoagulantu i dodać do tego roztworu 2,5% mieszaniny monoglicerydów C3-12 i glicerolu. Tak sporządzony roztwór antykoagulantu i monoglicerydów jest dodawany w formie natrysku na koryto zbierające wynaczynioną krew ubijanych ptaków w ilości 4% masy wynaczynionej krwi. Krew z dodatkiem antykoagulantu (0,4%) i monoglicerydów (0,1%) po usunięciu zanieczyszczeń na sitach, wychładzana jest na wymiennikach ciepła do temperatury 5°C. Tak uzyskana krew higieniczna jest przechowywana i transportowana w zbiornikach izotermicznych do zakładu przetwórczego, gdzie na wirówkach rozdzielana jest na krwinki czerwone i plazmę krwi. Krwinki czerwone kierowane są do suszenia rozpyłowego a plazma krwi drobiowej zawierająca antykoagulant i monoglicerydy podlega zagęszczaniu i ewentualnemu usunięciu nadmiaru soli w zestawie membran do ultrafiltracji, nanofiltracji i dializy. Plazma zagęszczona do ponad 25% suchej masy kierowana jest do suszenia rozpyłowego w wyniku którego uzyskuje się suszoną rozpyłowo plazmę krwi drobiowej zawierającą około 77% białka ogólnego i około 4% tłuszczu ogólnego.

P r z y k ł a d 3

W celu realizacji wynalazku z ptaków głuszonych prądem elektrycznym należy usunąć nadmiar wody z głowy, szyi i barków aby nie ściekała do koryta wykrwawiania. Według wynalazku nadmiar wody należy zdmuchnąć dyszami ze sprężonym powietrzem. Wprocesie pozyskiwania krwi drobiowej należy przyrządzić roztwór cytrynianu sodu o stężeniu 10% jako antykoagulantu który należy dodać w formie natrysku na koryto zbierające krew i ilości 4%. Mieszanina monoglicerydów C3-C12 i glicerolu jest dodawana w formie niezależnego natrysku na koryto zbierające wynaczynioną krew ubijanych ptaków w ilości 10% masy wynaczynionej krwi. Krew z dodatkiem antykoagulantu i monoglicerydów po usunięciu zanieczyszczeń na sitach, wychładzana jest na wymiennikach ciepła do temperatury 5°C. Tak uzyskana krew higieniczna jest przechowywana i transportowana w zbiornikach izotermicznych do zakładu przetwórczego, gdzie na wirówkach rozdzielana jest na krwinki czerwone i plazmę krwi. Krwinki czerwone kierowane są do suszenia rozpyłowego a plazma krwi drobiowej zawierająca antykoagulant i monoglicerydy podlega zagęszczaniu i ewentualnemu usunięciu nadmiaru soli w zestawie membran do ultrafiltracji, nanofiltracji i dializy. Plazma zagęszczona do ponad 25% suchej masy kierowana jest do suszenia rozpyłowego w wyniku którego uzyskuje się suszoną rozpyłowo plazmę krwi drobiowej zawierającą około 27% białka ogólnego i około 62% tłuszczu ogólnego.

Claims (3)

1. Zastrzeżenia patentowy

   1. Sposób (I) wytwarzania suszonych rozpyłowo produktów z krwi drobiowej znamienny tym że do pozyskiwaniu krwi drobiowej higienicznej przeznaczonej do wytwarzania produktów z krwi drobiowej stosuje się dodatek monoglicerydów lotnych kwasów tłuszczowych o długości łańcucha węglowego od C3 do C12 i glicerolu, w ilości od 0,1% do 10% masy wynaczynionej krwi.
2. 2. Sposób (II) wytwarzania suszonych rozpyłowo produktów z krwi drobiowej znamienny tym, że ptaki głuszone prądem elektrycznym przechodzą przez sekcję dysz zdmuchujących wodę z barków, szyi i głów ogłuszonych ptaków;
3. 3. Sposób (III) wytwarzania suszonych rozpyłowo produktów z krwi drobiowej znamienny tym, że plazma krwi drobiowej higienicznej podlega ultrafiltracji/nanofiltracji/dializie celem uregulowania poziomu elektrolitów do potrzeb żywienia drobiu.