PL220615B1 - Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu - Google Patents

Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu

Info

Publication number
PL220615B1
PL220615B1 PL400079A PL40007912A PL220615B1 PL 220615 B1 PL220615 B1 PL 220615B1 PL 400079 A PL400079 A PL 400079A PL 40007912 A PL40007912 A PL 40007912A PL 220615 B1 PL220615 B1 PL 220615B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
propan
group
benzimidazolylsulfanyl
lipases
acetate
Prior art date
Application number
PL400079A
Other languages
English (en)
Other versions
PL400079A1 (pl
Inventor
Zbigniew Ochal
Krzysztof Buch
Original Assignee
Politechnika Warszawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Warszawska filed Critical Politechnika Warszawska
Priority to PL400079A priority Critical patent/PL220615B1/pl
Publication of PL400079A1 publication Critical patent/PL400079A1/pl
Publication of PL220615B1 publication Critical patent/PL220615B1/pl

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/52Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania enancjomerów (R) i (S) pochodnych 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu. Uzyskiwane estry można łatwo i szybko zhydrolizować do optycznie czynnych alkoholi.
Pochodne benzimidazolu mają bardzo szerokie zastosowanie, zarówno jako farmaceutyki, jak i biocydy. Stosowane są w leczeniu chorób wirusowych, pasożytniczych i nowotworowych. Wykazują również aktywność przeciwbakteryjną (Zygmunt Kazimierczuk, Jacqueline A Upcroft, Peter Upcroft, Agata Gorska i inni Acta Biochemical Polonica, 49, 1/2002, 185-196) i przeciwmalaryczną (Camacho i inni, J. Bioorg. Med. Chem. 2011, 19, 2023). Są skuteczne w leczeniu wirusowego zapalenia wątroby typu C oraz cukrzycy, a ostatnio odkryto też pochodne o aktywności przeciwko wirusowi HIV. Pochodne benzoimidazolu to duża grupa biocydów, przede wszystkim o działaniu fungicydowym. Pochodne benzimidazolu zawierające w pozycji 5 ugrupowania halogenometylosulfonylowe np. grupę trifluorometylosulfonylową, difluorometylosulfonylową lub chlorometylosulfonylową wykazują też wysoką aktywność herbicydową w zwalczaniu pospolitych chwastów szerokolistnych w uprawach zbóż.
Wśród aktywnych biologicznie pochodnych benzimidazolu zawierających asymetryczny atom węgla najczęściej tylko jeden enancjomer jest odpowiedzialny za działanie biologiczne, podczas gdy drugi jest niepotrzebnym balastem obciążającym organizm lub środowisko. Zatem stosowane praktycznie środki winny zawierać tylko właściwy enancjomer. Dotychczas nie są znane w literaturze optycznie czynne pochodne (S)-1-(-2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, a zatem nie są znane też metody ich otrzymywania.
Sposób otrzymywania enancjomerów (R) i (S) pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o wzorach ogólnych 1 i 2,
w których:
1
R1 oznacza atom wodoru, grupę metylową lub etylową, 2
R2 oznacza grupę metylową lub etylową, 3
R3 oznacza atom wodoru lub grupę halogenometylosulfonylową o wzorze 3,
SO2CH3-nXn
Wzór 3 w której X = Cl, F a n = 1, 2, 3,
R4 oznacza atom wodoru, grupę acylową, benzoilową lub karboksyetylokarbonylową, według wynalazku polega na tym, że racemiczne pochodne 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o wzorze 4,
w którym R4 stanowi atom wodoru, a pozostałe podstawniki mają znaczenie jak we wzorach 1 i 2, poddaje się enzymatycznej transestryfikacji estrami kwasów karboksylowych wobec lipaz, a gdy
R4 oznacza grupę acylową, benzoilową lub karboksyetylokarbonylową, poddaje się enzymatycznej hydrolizie wobec lipaz.
PL 220 615 B1
Zarówno proces transestryfikacji, jak i hydrolizy, prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym, korzystnie wybranym z grupy zawierającej: toluen, eter tert-butylowo-metylowy, eter diizopropylowy, dioksan, THF. W przypadku hydrolizy prowadzonej w rozpuszczalnikach niemieszających się z wodą stosuje się wysycanie ich wodą, natomiast dioksan i THF stosuje się z dodatkiem 0,01% wag. wody.
Jako czynnik acylujący w reakcji transestryfikacji korzystnie stosuje się octany nienasyconych alkoholi alifatycznych i cyklicznych, najkorzystniej octan winylu, octan izopropenylu, octan
2-metylocykloheksenolu, a także estry alkoholi zawierających grupę benzoilową, najkorzystniej benzoesan metylu, etylu, winylu i izopropenylu. Stosuje się również bezwodniki kwasów dikarboksylowych, najkorzystniej bezwodnik kwasu bursztynowego. Czynnik acylujący w reakcji transestryfikacji stosuje się w ilości równomolowej lub w nadmiarze od 1,1 do 4 w stosunku do alkoholu.
Jako stereospecyficzną lipazę można stosować dowolną lipazę (EC.3.1.1.3), w formie natywnej lub immobilizowanej, w ilościach od 1% do 15% wagowych w stosunku do alkoholu. Korzystnie stosuje się handlowe lipazy z: Candida antarctica, Aspergillus Niger, Pseudomonas fluorescens, Burkholderia cepacia, Mucor miecei. Proces prowadzi się w temperaturze 20-45°C, korzystnie 30-35°C, w czasie od 10 minut do 40 godzin, w zależności od stosowanego czynnika acylującego i enzymu. Proces transestryfikacji oraz hydrolizy prowadzi się do stopnia przemiany równego 50%.
Stopień przemiany alkoholu w ester lub estru w alkohol można śledzić znanymi metodami, np. na drodze chromatografii gazowej lub cieczowej. Nadmiary enancjomeryczne określa się metodą HPLC, stosując kolumnę z chiralnym wypełnieniem. Skręcalności właściwe [a]D określa się przy pomocy mikropolarymetru, przygotowując roztwory substancji w chlorku metylenu o stężeniu 2 g/100 ml. Racemiczne alkohole pochodne 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu otrzymuje się znanymi metodami np. w reakcji pochodnych 2-benzimidazolilotiolu z chloroacetonem, a następnie redukcji utworzonego ketonu tetrahydroboranem sodowym. Racemiczne estry, pochodne 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu otrzymuje się również znanymi sposobami, np. w procesie chemicznej estryfikacji racemicznych alkoholi kwasami, chlorkami lub bezwodnikami kwasowymi.
Lipazy mogą działać w zasadniczo bezwodnych środowiskach organicznych, katalizując estryfikację lub hydrolizę przede wszystkim tylko jednego optycznego izomeru z racemicznej mieszaniny. Zestryfikowany izomer optyczny można oddzielać łatwo od izomeru niezestryfikowanego, np. na kolumnie żelowej lub przez rozdestylowanie, otrzymując poszczególne izomery optyczne. Oddzielony izomer zestryfikowany można dalej stosować jako taki lub poddawać hydrolizie, wytwarzając odpowiadający mu izomer optyczny alkoholu.
W procesie według wynalazku prowadzonym w łagodnych warunkach uzyskuje się produkty o wysokim stopniu czystości i z wysokimi nadmiarami enancjomerycznymi.
Stosowane enzymy po zakończonym procesie przemywa się rozpuszczalnikiem i po wysuszeniu zawraca się do następnej reakcji.
Przedstawiony sposób według wynalazku umożliwia uzyskanie poszczególnych enancjomerów pochodnych 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu, które wykazują aktywność fungicydową i herbicydową i są blokami budulcowymi w otrzymywaniu innych substancji biologicznie aktywnych.
Sposób według wynalazku ilustrują przykłady wykonania.
P r z y k ł a d 1
200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 20 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 248 mg (2,88 mmol) octanu winylu w 6 mL eteru tert-butylowo-metylowego (TBME) wytrząsano w temp. 30°C przez 35 minut stosując termostatowaną wytrząsarkę nastawioną na 300 obrotów na minutę. Stopień konwersji kontrolowany metodą chromatografii gazowej wynosił 49,5%. Odsączono enzym i oddestylowano rozpuszczalnik. Produkt rozdzielono stosując kolumnową chromatografię żelową z wypełnieniem silikażel 60, a eluentem był roztwór heksan octan etylu w proporcji 3:1. Uzyskano 110 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 98,4% i skręcalności właściwej [a]D = + 28,8. Drugim produktem był alkohol f2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-ol- 80 mg o nadmiarze enancjomerycznym ee = 96,2 i skręcalności właściwej [a]D = - 26,2. Obydwa produkty były substancjami oleistymi o lekko żółtym zabarwieniu.
P r z y k ł a d 2
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu, 10 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 248 mg (2,88 mmol) octanu winylu w 5 mL toluenu. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 90 minut. Stopień konwersji wynosił 49,2%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 112 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu,
PL 220 615 B1 o nadmiarze enancjomerycznym ee = 99,1% i skręcalności właściwej [a]D = + 29 oraz 82 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 96,6 i [a]D = - 26,0.
P r z y k ł a d 3
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 10 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 288 mg (2,88 mmol) octanu izopropenylu w 5 ml eteru diizopropylowego (DIPE). Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 115 minut. Stopień konwersji wynosił 48,8%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 105 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 99,5% i skręcalności właściwej [a]D = + 29,6 oraz 88 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 95,2 i [a]D = - 25,3.
P r z y k ł a d 4
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu, 10 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 296 mg (1,92 mmol) octan 2-metylocykloheksenylu w 6 mL toluenu. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 135 minut. Stopień konwersji wynosił 49,0%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 105 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 98,6% i skręcalności właściwej [a]D = + 28,2 oraz 85 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 96,0 i [a]D= - 25,8.
P r z y k ł a d 5
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu, 20 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 304 mg (1,92 mmol) benzoesanu etylu w 5 mL eteru tert-butylowo-metylowego. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 4 godz. 25 minut. Stopień konwersji wynosił 48,6%. Postępując dalej jak w przykładzie 1 otrzymano 135 mg estru - benzoesanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 94,4% i skręcalności właściwej [a]D= + 38,4 oraz 85 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 94,6 i [a]D = - 25,0.
P r z y k ł a d 6
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 20 mg immobilizowanej lipazy Novozym 435 oraz 96,1 mg (0,96 mmol) bezwodnika bursztynowego w 5 mL dioxanu. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 55 minut. Stopień konwersji wynosił 49%. Postępując dalej jak w przykładzie 1 otrzymano 122 mg estru - bursztynianu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 95,0% i skręcalności właściwej [a]D = + 126 oraz 82 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 96 i [a]D = - 25,8.
P r z y k ł a d 7
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 15 mg lipazy Amano PS oraz 248 mg (2,88 mmol) octanu winylu w 5 mL TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 110 minut. Stopień konwersji wynosił 49,5%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 105 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 94,5% i skręcalności właściwej [a]D = + 28 oraz 86 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 87,6 i [a]D = - 24,5.
P r z y k ł a d 8
Do reakcji użyto 200 mg (0,96 mmol) racemicznego 1-(2-benzimidazolilotio)propan-2-olu, 10 mg lipazy Chirazym L-9, c.f., C2 oraz 248 mg (2,88 mmol) octanu izopropenylu w 5 mL TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 95 minut. Stopień konwersji wynosił 49,3%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 100 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 95,8% i skręcalności właściwej [a]D = + 29 oraz 80 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 89,4 i [a]D = - 25,5.
P r z y k ł a d 9
Do reakcji użyto 200 mg (0,9 mmol) racemicznego 1-[2-(1-metylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu, 10 mg lipazy Novozym 435 oraz 233 mg (2,70 mmol) octanu winylu w 5 mL TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 155 minut. Stopień konwersji wynosił 49,2%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 95 mg estru octanu (2S)-1-[2-(1-metylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu o skręcalności właściwej [a]D = + 37 oraz 87 mg (2R)-1-[2-(1-metylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu o [a]D = - 45,2.
P r z y k ł a d 10
Do reakcji użyto 200 mg (0,62 mmol) racemicznego 1-[2-(5-chlorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu, 10 mg lipazy Novozym 435 oraz 214 mg (2,48 mmol) octanu izopropenylu
PL 220 615 B1 w 5 mL TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 225 minut. Stopień konwersji wynosił 48,5%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 96 mg estru octanu (2 S)-1-[2-(5-chlorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu, o skręcalności właściwej [a]D = + 36 oraz 85 mg (2R)-1-[2-(5-chlorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu o [a]D = - 42.
P r z y k ł a d 11
Do reakcji użyto 200 mg (0,62 mmol) racemicznego 1-[2-(5-difluorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu, 10 mg lipazy Novozym 435 oraz 214 mg (2,48 mmol) octanu izopropenylu w 5 mL TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 240 minut. Stopień konwersji wynosił 49%. Postępując jak w przykładzie 1 otrzymano 100 mg estru octanu (2S)-1-[2-(5-difluorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu, o skręcalności właściwej [a]D = + 37 oraz 80 mg (2R)-1-[2-(5-difluorometylosulfonylobenzimidazolilosulfanylo)]propan-2-olu o [a]D = - 44.
P r z y k ł a d 12
Reakcję enzymatycznej hydrolizy prowadzono umieszczając w kolbie o poj. 20 mL 200 mg (0,8 mmol) racemicznego estru - octanu 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 15 mg lipazy Novozym 435 oraz 5mL wysyconego wodą TBME. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 55 godzin. Stopień konwersji wynosił 49,2%. Odsączono enzym i oddestylowano rozpuszczaln ik. Produkt rozdzielono stosując kolumnową chromatografię żelową z wypełnieniem silikażel 60, a eluentem był roztwór heksan - octan etylu w proporcji 3:1. Otrzymano 100 mg estru octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 92,8% i skręcalności właściwej [a]D = + 28 oraz 82 mg (2R)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o ee = 95,4 i [a]D = - 26.
P r z y k ł a d 13
Do reakcji użyto 200 mg (0,8 mmol) racemicznego estru - octanu 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, 10 mg lipazy Novozym 435 oraz 5 mL wysyconego wodą eteru diizopropylowego. Substraty wytrząsano w temp. 30°C przez 45,5 godziny. Stopień konwersji wynosił 48,8. Postępując dalej jak w przykładzie 8 otrzymano 110 mg octanu (2S)-1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu, o nadmiarze enancjomerycznym ee = 96,6 i [a]D = - 26,5.

Claims (10)

1. Sposób otrzymywania enancjomerów (R) i (S) pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o wzorach ogólnych 1 i 2, w których: R1 oznacza atom wodoru, grupę metylową lub etylową, R2 oznacza grupę metylową 3 lub etylową, R3 oznacza atom wodoru lub grupę halogenometylosulfonylową o wzorze 3,
SO2CH3-nXn
Wzór 3 w której X = Cl, F a n = 1, 2, 3, R4 oznacza atom wodoru, grupę acylową, benzoilową lub karboksyetylokarbonylową, znamienny tym, że racemiczne pochodne 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu o wzorze 4,
PL 220 615 B1 w którym R1, R2, R3 mają wyżej podane znaczenie, a R4 stanowi atom wodoru, poddaje się enzymatycznej transestryfikacji estrami kwasów karboksylowych wobec lipaz, zaś gdy R4 oznacza grupę acylową, benzoilową lub karboksyetylokarbonylową, poddaje się enzymatycznej hydrolizie wobec lipaz.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces transestryfikacji albo hydrolizy prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym, wybranym z grupy zawierającej: toluen, eter tert-butylowo-metylowy, eter diizopropylowy, dioksan, THF.
3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że proces hydrolizy prowadzi się w rozpuszczalniku organicznym wysyconym wodą. W przypadku dioksanu i THF dodaje się 0,01% wag. wody.
4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako czynnik acylujący w reakcji transestryfikacji stosuje się octany nienasyconych alkoholi alifatycznych i cyklicznych, estry alkoholi zawierających grupę benzoilową, bezwodniki kwasów dikarboksylowych.
5. Sposób według zastrz. 1 albo 4, znamienny tym, że czynnik acylujący jest wybrany z grupy zawierającej: octan winylu, octan izopropenylu, octan 2-metylocykloheksenolu, benzoesan metylu, benzoesan etylu, benzoesan winylu benzoesan izopropenylu, bezwodnik kwasu bursztynowego.
6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że czynnik acylujący w reakcji transestryfikacji stosuje się w ilości równomolowej lub w nadmiarze od 1,1 do 4-krotnym w stosunku do alkoholu.
7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako stereospecyficzną lipazę stosuje się dowolną lipazę (EC.3.1,1.3), w formie natywnej lub immobilizowanej.
8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że lipazy stosuje się w ilości od 1% do 15% wagowych w stosunku do alkoholu.
9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się lipazy z: Candida antarctica, Aspergillus Niger, Pseudomonas fluorescens, Burkholderia cepacia, Mucor miecei.
10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces prowadzi się w temperaturze
20-45°C, do stopnia przemiany równego 50%.
PL400079A 2012-07-20 2012-07-20 Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu PL220615B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL400079A PL220615B1 (pl) 2012-07-20 2012-07-20 Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL400079A PL220615B1 (pl) 2012-07-20 2012-07-20 Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL400079A1 PL400079A1 (pl) 2014-02-03
PL220615B1 true PL220615B1 (pl) 2015-11-30

Family

ID=50023064

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL400079A PL220615B1 (pl) 2012-07-20 2012-07-20 Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL220615B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL400079A1 (pl) 2014-02-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2007143561A (ja) アシラートの用途
Singh et al. Lipase catalyzed kinetic resolution for the production of (S)-3-[5-(4-fluoro-phenyl)-5-hydroxy-pentanoyl]-4-phenyl-oxazolidin-2-one: An intermediate for the synthesis of ezetimibe
Wang et al. Kinetic resolution of rac-alkyl alcohols via lipase-catalyzed enantioselective acylation using succinic anhydride as acylating agent
PL220615B1 (pl) Sposób otrzymywania optycznie czynnych pochodnych 1-(2-benzimidazolilosulfanylo)propan-2-olu
Cheedrala et al. Lipase mediated kinetic resolution of benzimidazolyl ethanols
Kamal et al. Chemoenzymatic synthesis of (5S)-and (5R)-hydroxymethyl-3, 5-dimethyl-4-(methoxymethoxy)-5H-thiophen-2-one: a precursor of thiolactomycin and determination of its absolute configuration
Petukhova et al. Enantioselective bioreduction of 5-hexen-2-one in directional synthesis of insect pheromones
JP2726114B2 (ja) 光学活性3―クロロ―1,2―プロパンジオールおよびそのエステルの製造法
TWI595093B (zh) 從β-內酯酵素製造肉毒鹼之方法
Hapău et al. Heterocycles 30: Lipase catalyzed kinetic resolution of racemic 1-(2-aryl-4-methyl-thiazol-5-yl) ethanols
Jacobsen et al. Lipase catalysed kinetic resolution of stiripentol
Hugentobler et al. Enantioselective bacterial hydrolysis of amido esters and diamides derived from (±)-trans-cyclopropane-1, 2-dicarboxylic acid
Salunkhe et al. Novel route for the resolution of both enantiomers of dropropizine by using oxime esters and supported lipases of Pseudomonas cepacia
Casati et al. Enzymatic synthesis of both enantiomeric forms of 3-allyloxy-propane-1, 2-diol
JP2690953B2 (ja) 光学活性1,3−ブタンジオールおよびその誘導体の製造法
JP3803587B2 (ja) 鏡像異性的に純粋な1,3−ジオキソラン−4−オン誘導体若しくは1,3−オキサチオラン−5−オン−誘導体の酵素的製造方法
Varga et al. Heterocycles 35. CaL-B mediated synthesis of enantiomerically pure (R)-and (S)-ethyl 3-(2-arylthiazol-4-yl)-3-hydroxypropanoates
JP2014521325A5 (pl)
Olejniczak et al. Enantioselective hydrolysis of δ-acetoxy-γ-lactones
JP2736075B2 (ja) 光学活性1,3−ブタンジオール−1−ベンジルエーテルおよびその誘導体の製造法
Venkataramana et al. Whole Cells Mediated Biocatalytic Reduction of Alpha-Keto Esters: Preparation of Optically Enriched Alkyl 2-hydroxypropanoates.
WO2009142184A1 (ja) 酵素を用いたビシクロ[3.1.0]ヘキサン誘導体の製造方法
EP2069516B1 (en) Specific hydrolysis of the n-unprotected (r) -ester of (3 ) -amin0-3-arylpr0pi0nic acid esters
KR100846674B1 (ko) 효소적 방법에 의한 광학활성 트랜스 알코올 화합물 및 그의 에스테르 화합물 제조방법
JP3010382B2 (ja) (r)−2−プロポキシベンゼン誘導体の製造法