PL212617B1 - Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin - Google Patents

Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin

Info

Publication number
PL212617B1
PL212617B1 PL387977A PL38797709A PL212617B1 PL 212617 B1 PL212617 B1 PL 212617B1 PL 387977 A PL387977 A PL 387977A PL 38797709 A PL38797709 A PL 38797709A PL 212617 B1 PL212617 B1 PL 212617B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
larvae
plant protection
multiplication
research purposes
nematodes
Prior art date
Application number
PL387977A
Other languages
English (en)
Other versions
PL387977A1 (pl
Inventor
Joanna Matuska-Lyzwa
Original Assignee
Szkola Glowna Gospod Wiejsk Ak
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Szkola Glowna Gospod Wiejsk Ak filed Critical Szkola Glowna Gospod Wiejsk Ak
Priority to PL387977A priority Critical patent/PL212617B1/pl
Publication of PL387977A1 publication Critical patent/PL387977A1/pl
Publication of PL212617B1 publication Critical patent/PL212617B1/pl

Links

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin.
Dotychczasowy sposób namnażania nicieni w warunkach laboratoryjnych polegał na przenoszeniu martwych larw owadów z widocznymi objawami porażenia przez nicienie entomopatogeniczne na szkiełka zegarkowe wyłożone wilgotną bibułą filtracyjną, które umieszczane były w szalkach Petri'ego, z niewielką zawartością wody. Na szkiełkach zegarkowych panowały warunki beztlenowe. Panujące warunki beztlenowe pomiędzy ciałem owada, a wilgotną bibułą filtracyjną prowadziły do zamierania larw nicieni i rozwoju mikroorganizmów niesprzyjających dla rozwoju nicieni. Bibuła po pewnym czasie wysychała i utrudnione były warunki migracji nicieni z organizmu owada do środowiska zewnętrznego.
Z publikacji “Large scale production, storage and transport of the insect-parasitic nematodes Neoaplectana spp. and Heterorhsabditis spp.” (Bedding R.A.. Annals od Applied Biology. 1984. 104, str. 117-120). publikacji Mass Production of the Entomogenous Nematode Heterorhabditis heliothidis (Nematoda: Heterorhabditidae) on Artificial Media (Wouts W.M. J. Nematol. 1981. 13(4). str. 467-469) oraz z opisu patentowego JP 63072612 znane jest stosowanie porowatego podłoża w hodowli nicieni, po wcześniejszym porażeniu larwami owadów. Jako porowate podłoże stosuje się gąbki poliuretanowe. Obie z cytowanych wyżej publikacji dotyczą hodowli nicieni na skalę przemysłową, w autoklawach. W opisie wynalazku JP nicienie są hodowane na gąbce poliuretanowej, w roztworze wodnym z dodatkiem glikolu etylenowego, który to roztwór ma na celu zapobieganie wysychaniu nicieni w celu poprawy ich przeżywalności. Żadna z tych metod nie odnosi się jednak do warunków badawczych, w których hodowlę nicieni rozpoczyna na się na szklanym sterylnym podłożu wyłożonym bibułą, sprzyjającym powstaniu warunków beztlenowych.
Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin, przy użyciu martwych larw owadów uprzednio porażonych larwami nicieni, z wykorzystaniem elastycznego, porowatego podłoża, w temperaturze 18-25°C, według wynalazku charakteryzuje się tym, że martwe larwy porażonych owadów umieszcza się na sterylnym elastycznym porowatym podłożu na szalkach Petri'ego z wodnym roztworem formaliny o stężeniu nieprzekraczającym 0,015%. sięgającym do wysokości 1/3 - 1/2 elastycznego porowatego podłoża, przy czym pomiędzy larwą owada a wiekiem płytki Petri'ego pozostawia się wolną przestrzeń. Jako porowaty elastyczny materiał korzystnie stosuje się sterylną gąbkę poliuretanową.
W sposobie według wynalazku zastosowano specyficzny układ, w którym połączono sterylne szklane podłoże, elastyczne podłoże porowate oraz niewielką ilość roztworu wodnego formaliny. Szklane sterylne podłoże zapewnia brak rozwoju drobnoustrojów, podłoże porowate zapewnia przewietrzalność i brak warunków beztlenowych, istotnych dla rozwoju niekorzystnych obcych organizmów, a wodny roztwór formaliny poprawia przeżywalność młodych larw nicieni. Obecność porowatego podłoża oraz przestrzeń pomiędzy grzbietem owada a wieczkiem szalki, znacząco zwiększa powierzchnię powietrzną, która jest niezwykle istotna w jednym z najważniejszych etapów hodowli nicieni, jakim jest migracja młodych larw do środowiska zewnętrznego. Dzięki stosowaniu sposobu według wynalazku istnieje tylko minimalne ryzyko zakażenia środowiska mikroorganizmami, a ciągła wilgotność środowiska zapewnia bezpieczną migrację nicieni do środowiska zewnętrznego. Ponadto, zastosowanie słabego roztworu formaliny pozwala na bezpośrednie przelewanie larw wraz z w/w roztworem do pojemników do przechowywania nicieni i przetrzymywanie w określonej temperaturze, przez długi czas. w bardzo dobrej kondycji tych zwierząt.
Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin jest bliżej opisany w przykładzie wykonania.
P r z y k ł a d
Larwy owadów Galleria mellonella uznane za martwe, zarażone uprzednio przez nicienie Heterorhabditis megidis lub Steinernema feltiae umieszcza się na sterylnych wilgotnych poliuretanowych gąbkach i przenosi się do szalki Petri'ego. Do szalki Petri‘ego nalewa się 0.015% wodny roztwór formaliny o temperaturze 18-25°C do wysokości połowy wysokości gąbki. Rozmiar gąbki uprzednio dostosowuje się do rozmiaru larwy owada lub grupy larw owadów zarażonych przez nicienie. Pomiędzy wiekiem płytki Petri‘ego a larwą owada zostawia się wolną przestrzeń. W miarę namnażania larwy nicieni opuszczają ciało żywiciela i migrują do środowiska zewnętrznego. Wyizolowane larwy nicieni służą do dalszych badań patogenicznych szkodliwych owadów oraz do produkcji bioinsektycydów.

Claims (2)

1. Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin, przy użyciu martwych larw owadów uprzednio porażonych larwami nicieni, z wykorzystaniem elastycznego, porowatego podłoża, w temperaturze 18-25°C, znamienny tym, że martwe larwy porażonych owadów umieszcza się na sterylnym elastycznym porowatym podłożu na szalkach Petri'ego z wodnym roztworem formaliny o stężeniu nieprzekraczającym 0.015% sięgającym do wysokości 1/3 - 1/2 elastycznego porowatego podłoża, przy czym pomiędzy larwą owada a wiekiem płytki Petri'ego pozostawia się wolną przestrzeń.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako elastyczny porowaty materiał stosuje się sterylną gąbkę poliuretanową.
PL387977A 2009-05-07 2009-05-07 Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin PL212617B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL387977A PL212617B1 (pl) 2009-05-07 2009-05-07 Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL387977A PL212617B1 (pl) 2009-05-07 2009-05-07 Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL387977A1 PL387977A1 (pl) 2010-11-08
PL212617B1 true PL212617B1 (pl) 2012-10-31

Family

ID=43503162

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL387977A PL212617B1 (pl) 2009-05-07 2009-05-07 Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL212617B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL387977A1 (pl) 2010-11-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Powell et al. Models of Caenorhabditis elegans infection by bacterial and fungal pathogens
Khurad et al. Vertical transmission of nucleopolyhedrovirus in the silkworm, Bombyx mori L
Stocker et al. Getting started: an overview on raising and handling Drosophila
CN102640730B (zh) 昆虫病原线虫的活体繁殖方法
CN105284747A (zh) 一种朱红毛斑蛾的室内饲养方法及装置
CN111134056B (zh) 一种海水青鳉受精卵孵化方法
CN104365557B (zh) 一种孟氏隐唇瓢虫人工饲养、保种和繁殖生产方法
CN105831019B (zh) 一种快速获得小卷蛾斯氏线虫整齐龄期感染期幼虫的方法
Gätschenberger et al. Honey bee drones maintain humoral immune competence throughout all life stages in the absence of vitellogenin production
Borges et al. Prey availability in time and space is a driving force in life history evolution of predatory insects
Ito et al. Establishment of an isogenic strain of the desiccation-sensitive tardigrade Isohypsibius myrops (Parachela, Eutardigrada) and its life history traits
CN111304145A (zh) 一种提高罗氏沼虾胚胎离体培养孵化率的方法
CN107182950B (zh) 一种寄生蜂寄生率测定装置和测定方法
Tabassum et al. In vitro mass rearing of different species of entomopathogenic nematodes in monoxenic solid culture
CN107581159A (zh) 一种花布灯蛾天敌悬茧蜂的人工繁殖方法
Kingsley-Smith et al. Growth and development of the veliger larvae and juveniles of Polinices pulchellus (Gastropoda: Naticidae)
PL212617B1 (pl) Sposób namnażania entomopatogenicznych nicieni dla potrzeb badawczych w ochronie roślin
CN105532583B (zh) 一种昆虫病原线虫的活体繁殖方法
Sutcliffe et al. Laboratory maintenance and care of Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae) and other Triatominae
Ow et al. A method for obtaining large populations of synchronized Caenorhabditis elegans dauer larvae
Ferreira et al. Potential of entomopathogenic nematodes (Rhabditida) for control of pink pineapple mealybug adult females, Dysmicoccus brevipes (Hemiptera: Pseudococcidae), under laboratory conditions.
Momen Intra-and interspecific predation by Neoseiulus barkeri and Typhlodromus negevi (Acari: Phytoseiidae) on different life stages: predation rates and effects on reproduction and juvenile development
CN114916504B (zh) 斯氏线虫的培养方法、斯氏线虫蛹胶囊制剂及其制备方法
Brown et al. Do microbiota in the soil affect embryonic development and immunocompetence in hatchling reptiles?
CN106035238A (zh) 一种线虫培养装置及供试昆虫病原线虫的简易繁殖方法

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130507