PL210774B1 - Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych - Google Patents

Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych

Info

Publication number
PL210774B1
PL210774B1 PL379979A PL37997906A PL210774B1 PL 210774 B1 PL210774 B1 PL 210774B1 PL 379979 A PL379979 A PL 379979A PL 37997906 A PL37997906 A PL 37997906A PL 210774 B1 PL210774 B1 PL 210774B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
acid
butyl
amphotericin
formula
hindered
Prior art date
Application number
PL379979A
Other languages
English (en)
Other versions
PL379979A1 (pl
Inventor
Edward Borowski
Jolanta Grzybowska
Maria Bontemps-Gracz
Magdalena Ślisz
Teresa Zieniawa
Original Assignee
Politechnika Gdanska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Gdanska filed Critical Politechnika Gdanska
Priority to PL379979A priority Critical patent/PL210774B1/pl
Publication of PL379979A1 publication Critical patent/PL379979A1/pl
Publication of PL210774B1 publication Critical patent/PL210774B1/pl

Links

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku są zawadzone przestrzennie, amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne antybiotyku przeciwgrzybowego amfoterycyny B z grupy makrolidów polienowych, wraz z ich solami i kompleksami będącymi formami rozpuszczalnymi w wodzie, sposób ich otrzymywania oraz zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych, szczególnie szczepów grzybów z opornością wielolekową, MDR.
Aktualny stan techniki uniemożliwia spełnienie wymogów stawianych przez medycynę niezbędnych dla bezpiecznych i efektywnych chemoterapeutyków przeciwgrzybowych, przede wszystkim stosowanych w leczeniu grzybowych infekcji narządów wewnętrznych i fungemii. Wśród tych wymogów niska toksyczność, szerokie spektrum przeciwgrzybowe, aktywność względem szczepów z opornością wielolekową, MDR, oraz działanie fungicydne są cechami niezbędnymi, które muszą być równocześnie spełnione (J. Bolard, Biochim. Biophys. Acta, 864, 257-304, 1986; E. Borowski, Folia Pharmaceutica Universitatis Carolinae, XXIII Suppl., 12-19, 1998; D. Sanglard, J. Bille, ASM Press, Washington D.C., 25, 349-383, 2002). Korzystną cechą jest również dostępność leku dla chorych ograniczana często przez jego wysoką cenę. Żaden ze stosowanych obecnie leków przeciwgrzybowych nie spełnia tych warunków. Allilaminy, jak terbinafina, działają na patogenne drożdżaki jedynie fungistatycznie oraz nie są aktywne względem szczepów z opornością wielolekową. Leki z grupy tzw. azoli, jak mykonazol, flukonazol czy worikonazol, w stężeniach nietoksycznych działają fungistatycznie i są nieaktywne lub o ma ł ej aktywnoś ci wzglę dem szczepów wielolekoopornych. 5-Fluorocytozyna ma wąskie spektrum przeciwgrzybowe i szybko indukuje powstanie oporności specyficznej. Kaspofungina jest trudno dostępna ze względu na wysoką cenę i ma wąskie spektrum przeciwgrzybowe działając jedynie na grzyby zawierające beta-glukan w ścianie komórkowej.
Jedynym znanym dotąd związkiem przeciwgrzybowym wykazującym największą ilość wymaganych pozytywnych cech jest antybiotyk amfoterycyna B z grupy makrolidów polienowych. Związek ten wykazuje wysoką aktywność przeciwgrzybową, szerokie spektrum działania, działa fungicydnie i jest aktywny względem szczepów z opornością wielolekową (D. Sanglard i in., Antimicrob. Agents Chemother. 40, 2300-2305, 1996; J. Szlinder-Richert i in.. Acta Biochim. Polon. 47, 133-144, 2000). Wadą tego związku ograniczającą w istotnym stopniu zastosowanie praktyczne jest bardzo wąski margines stężeń działających letalnie zarówno względem komórek grzybowych, jak i zwierzęcych, przejawiający się wysoką toksycznością z takimi efektami u pacjentów jak: aktywność hemolityczna, nefrotoksyczność i kardiotoksyczność. Pomimo tej wady amfoterycyna B dzięki wspomnianym zaletom jest uważana za tzw. złoty standard wśród fungicydów i lek ratujący życie. Od ponad 40 lat jest stosowana w klinice w postaci infuzyjnego buforowanego kompleksu z deoksycholanem sodu znanego pod nazwą Fungizon. Znane są także i stosowane w lecznictwie inne preparaty amfoterycyny B w postaci form leku, takie jak Abelcet, Aphocil czy Ambisome. Są to kompleksy antybiotyku z lipidami oraz preparaty liposomalne. Leki te są nieco bardziej selektywne niż natywny antybiotyk, jednakże ich toksyczność jest nadal duża. Ponadto dostępność tych preparatów dla pacjentów jest ograniczona ze względu na wysoką cenę.
Znane są także półsyntetyczne pochodne amfoterycyny B. Związki te posiadają zróżnicowany charakter jonowy.
Znane pochodne o charakterze anionowym - pochodne N-acylowe - mają niską aktywność przeciwgrzybową i są toksyczne (C.P. Schaffner, E. Borowski, Antibiot. Chemother., 11, 724, 1961; H. Lechevalier i in., Antibiot. Chemother, 11, 640-647, 1961). Nieznana jest ich aktywność względem szczepów z opornością wielolekową.
Liczniejszą grupę stanowią pochodne o charakterze kationowym. Na uwagę zasługuje kationowa pochodna H-alkilowa, ester metylowy H-metylo-N-D-fruktopyranozyloamfoterycyny B, który charakteryzuje się zarówno bardzo niską toksycznością, jak i wysoką aktywnością względem drobnoustrojów grzybowych z opornością wielolekową (J.Grzybowska i in., J. Antibiot., 50, 709-711, 1997; J. Szlinder-Richert i in., Acta Biochim. Polon., 47, 133-144, 2000). Jednakże związek ten nie znalazł zastosowania w praktyce z uwagi na to, że jego synteza jest bardzo skomplikowana i zachodzi ze znikomą wydajnością. Wady te uniemożliwiają wytwarzanie związku w skali technicznej. Żadna z pozostałych pochodnych kationowych amfoterycyny B nie spełnia niezbędnych warunków niskiej toksyczności z równoczesną aktywnoś cią względem szczepów grzybowych z opornością wielolekową. Wśród nich ester metylowy amfoterycyny B o nieco zwiększonej selektywności działania względem komórek grzybowych i zwierzęcych jest związkiem o nadal dużej toksyczności i jest szczególnie toksyczny
PL 210 774 B1 dla centralnego układu nerwowego, charakteryzując się dużą cerebrotoksycznością (W. G. Ellis i in., J. Infectious Diseases, 146, 125-137, 1982). Nieznane jest także działanie tego związku na wielolekooporne szczepy grzybowe. Liczna grupa estrów prostych pochodnych N-aminoacylowych, w tym peptydowych, amfoterycyny B również zasługuje na ocenę negatywną (J. J. Wright, opis patentowy USA, Nr 4,272,525 z 9.06.1981; J.J.K. Wright i in., J.Antibiot., 35, 911-914, 1982). Wyselekcjonowany z tej grupy związek optymalny, jakim jest ester metylowy N-D-ornityloamfoterycyny B, jest silnie cerebrotoksyczny (T. Massa i in. Fundam. Appl. Toxicol., 5, 737-753, 1985) oraz nieznane jest jego działanie na wielolekooporne szczepy grzybowe. Znana jest również inna pod względem właściwości i zastosowania grupa kationowych pochodnych amfoterycyny B, jak amidy zasadowe oraz pochodne N-alkilowe i N-aminoacylowe estrów i amidów tego antybiotyku. Związki te wprowadzono do stanu techniki jako nowe wektory dla internalizacji oligodeoksynukleotydów w strategii antysensowej (J. Bolard i in., polski zgłoszeniowy opis patentowy Nr P-343365, publ. 13.08.2001, Nr 17/2001).
Mało znane są amfoteryczne pochodne amfoterycyny B takie jak pochodne N-alkilowe, w tym N-glikozylowe (L. Falkowski i in., J. Antibiot., 28, 244, 1975; L. Falkowski i in., polski opis patentowy Nr 100966, z dnia 8.11.1979). Są one jednak toksyczne i nieznana jest ich aktywność względem szczepów wielolekoopornych.
Nie są znane żadne inne pochodne amfoterycyny B, które posiadałyby równocześnie niezbędne cechy, jakimi są niska toksyczność i aktywność względem wielolekoopornych szczepów grzybowych.
Istotę wynalazku stanowią związki będące zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne oraz ich sole i kompleksy będące formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub zwią zku kompleksotwórczego.
W korzystnym wariancie związki według wynalazku zawierają reszty aminoacylowe aminokwasów: 2-fenyloglicyny, O-t-butylotyrozyny, O-t-butylo-D-tyrozyny, β-fenylo-D-fenyloalaniny, O-t-butyloseryny, O-t-butylotreoniny, O-t-butylo-D-treoniny, kwasu cis-2-aminocykloheksanokarboksylowego, kwasu trans-4-(aminometylo)cykloheksanokarboksylowego, kwasu 4-piperydynokarboksylowego, β-estru /-butylowego kwasu asparaginowego, γ-estm /-butylowego kwasu glutaminowego, β-estru benzylowego kwasu asparaginowego, γ-estru benzylowego kwasu glutaminowego, kwasu 1-piperydynopropionowego, kwasu 1-piperydynomasłowego, kwasu 1-piperydynooctowego, kwasu 1-piperazynopropionowego, kwasu 4-pirydynopropionowego.
Sposób otrzymywania związków, będących zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze ogólnym 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, oraz ich soli i kompleksów będących formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub związku kompleksotwórczego, według wynalazku charakteryzuje się tym, że acyluje się amfoterycynę B w rozpuszczalnikach organicznych lub ich mieszaninie aminokwasami o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, z aktywowaną grupą karboksylową, korzystnie w postaci estrów aktywnych aminokwasów takich jak na przykład: 2-fenyloglicyny, O-/-butylotyrozyny, O-/-butylo-D-tyrozyny, β-fenylo-D-fenyloalaniny, O-t-butyloseryny, O-/-butylotreoniny, O-/-butylo-D-treoniny, kwasu cis-2-aminocykloheksanokarboksylowego, kwasu trans-4-(aminometylo)cykloheksanokarboksylowego, kwasu 4-piperydynokarboksylowego, β-estru
PL 210 774 B1 /-butylowego kwasu asparaginowego, γ-estru /-butylowego kwasu glutaminowego, β-estru benzylowego kwasu asparaginowego, γ-estru benzylowego kwasu glutaminowego, kwasu 1-piperydynopropionowego, kwasu 1-piperydynomasłowego, kwasu 1-piperydynooctowego, kwasu 1-piperazynopropionowego, kwasu 4-pirydynopropionowego. W przypadku, gdy acyluje się amfoterycynę B aminokwasami zawierającymi grupy aminowe pierwszo- lub drugorzędowe stosuje się osłonę 9-fluorenylometoksykarbonylową, którą po acylacji usuwa się, korzystnie przy pomocy 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu. Po zakończeniu procesu acylacji wydziela się surowy produkt, korzystnie przez wytrącenie eterem etylowym oraz ewentualnie oczyszcza się surowy produkt, korzystnie metodą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym. Rozpuszczalne w wodzie formy uzyskanego produktu otrzymuje się na drodze utworzenia jego soli z kwasami bądź zasadami, korzystnie z N-metylo-D-glukaminą i wydzielenia produktu przez wytrącenie mieszającym się z wodą rozpuszczalnikiem organicznym, korzystnie acetonem, bądź na drodze utworzenia rozpuszczalnego kompleksu ze związkiem kompleksotwórczym, korzystnie z deoksycholanem sodu w wodnym roztworze buforu fosforanowego i liofilizacji powstałego roztworu.
Istotą wynalazku jest również zastosowanie związków będących zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze ogólnym 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, oraz ich soli i kompleksów będących formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub związku kompleksotwórczego, do wytwarzania leku przeznaczonego do zwalczania drobnoustrojów grzybowych, korzystnie z opornością wielolekową.
Zaletą związków według wynalazku, jakimi są dotychczas nieznane zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, jest to, że spełniają one najważniejsze wymogi stawiane związkom przeciwgrzybowym. Charakteryzują się one bowiem bardzo niską toksycznością dla komórek ludzkich i są aktywne względem szczepów grzybowych z opornością wielolekową. Ponadto, tworzą one z kwasami i zasadami rozpuszczalne w wodzie sole, a także rozpuszczalne w wodzie kompleksy z deoksycholanem sodu lub innymi związkami kompleksotwórczymi. Zaletą związków według wynalazku jest również prosta i wydajna metoda ich otrzymywania.
Pełen dowód struktury związków według wynalazku został przykładowo opisany dla N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B, i tak identyczność elektronowego widma absorpcyjnego N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B z widmem wyjściowego antybiotyku, to jest amfoterycyny B dowodzi, że opracowany sposób nie prowadzi do degradacji labilnego chemicznie chromoforu heptaenowego, a wysoka wartość ekstynkcji /E 1%1cm = 1130 przy 382 nm/świadczy o wysokim stopniu czystości otrzymanego produktu. W widmie absorpcyjnym w podczerwieni N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B obserwuje się pasma odpowiadające symetrycznym i asymetrycznym drganiom grupy karboksylowej przy ν = 1560 cm-1 i 1695 cm-1, obecne także w analogicznym widmie amfoterycyny B, co świadczy o tym, że grupa karboksylową pozostała niezmieniona podczas reakcji. Natomiast w widmie N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B obserwuje się pojawienie pasma o liczbie falowej 1640 cm-1, odpowiadającego drganiom walencyjnym grupy karbonylowej w amidzie Il-gorzędowym, co jest bezpośrednim dowodem na obecność wiązania amidowego w otrzymanym produkcie.
Strukturę chemiczną N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B potwierdzono także metodą protonowego magnetycznego rezonansu jądrowego, w skrócie 1H NMR, poprzez zidentyfikowanie układów spinowych charakterystycznych dla ugrupowania 1-piperydynopropionylowego w widmie 1H NMR pochodnej na podstawie widm Cosy i Roesy. Diagnostyczne sygnały korelacyjne obserwowane w tych widmach pozwoliły zidentyfikować protony podstawnika 1-piperydynopropionylowego w pochodnej N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B, a także potwierdzić, że pozostała część cząsteczki pochodnej odpowiadająca macierzystemu antybiotykowi, to jest amfoterycynie B, nie została zmieniona podczas reakcji i była w zgodzie z danymi literaturowymi (P. Sowiński i in., Magnetic Resonance in Chemistry, 30, 275-279, 1992).
Przeprowadzono także hydrolizę kwasową N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B w 6 N kwasie solnym przez 12 godzin i w hydrolizacie potwierdzono obecność kwasu 1-piperydynopropionowego metodą chromatografii cienkowarstwowej wobec wzorca tego aminokwasu. Natomiast
PL 210 774 B1 w wyniku hydrolizy kwasowej N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B, przeprowadzonej w łagodnych warunkach przy pomocy 3% wodnoalkoholowego roztworu chlorowodoru przez 15 minut, otrzymano po zobojętnieniu N-(1-piperydynopropionylo)mykozaminę, której budowę chemiczną potwierdzono metodą spektroskopii NMR i spektrometrii masowej. Stanowi to bezpośredni dowód świadczący o tym, ż e reszta kwasu 1-piperydynopropionowego tworzy wiązanie amidowe z grupą aminową aminocukru, to jest mykozaminy obecnej w cząsteczce amfoterycyny B.
Masę cząsteczkową N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B potwierdzono w oparciu o widmo masowe tego związku wykonane techniką desorpcji polem.
Pozostałe zawadzone przestrzennie amfoteryczne pochodne N-aminoacyIowe amfoterycyny B charakteryzowano w podobny sposób do opisanego wyżej.
Przedstawione fakty dowodzą, że sposób otrzymywania pochodnych amfoterycyny B według wynalazku prowadzi do uzyskania żądanych produktów.
Sposobem według wynalazku otrzymuje się również analogiczne pochodne innych antybiotyków z grupy makrolidów polienowych jak: mykoheptyna, kandydyna, kandydynina, kandydoina, wacydyna, gedamycyna, kandycydyna, leworyna, trychomycyna, perimycyna, nystatyna oraz polifungina.
Dla pochodnych amfoterycyny B według wynalazku oznaczono aktywność przeciwgrzybową w stosunku do szczepów wrażliwych i szczepów z opornością wielolekową oraz toksyczność in vitro względem ludzkich erytrocytów i komórek białaczkowych.
Zawadzone przestrzennie amfoteryczne pochodne N-aminoacylowych amfoterycyny B według wynalazku, sposób ich otrzymywania oraz ich właściwości biologiczne ilustrują podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I.
298 mg N-(9-fluorenylometoksykarbonylo)-O-t-butylotreoniny rozpuszcza się w 7 ml N,N-dimetyloformamidu, dodaje 86,3 mg N-hydroksysukcynoimidu oraz 154,5 mg dicykloheksylokarbodiimidu i pozostawia do przereagowania mieszają c przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Powstał y osad W,W'-dicykloheksylomocznika odsącza się, przemywa W,W-dimetyloformamidem i przesącz dodaje się do roztworu 346 mg amfoterycyny B w 3 ml W,W'-dimetyloformamidu z dodatkiem 0,054 ml trietyloaminy, chłodząc mieszaninę reakcyjną w łaźni lodowej i mieszając. Całość miesza się przez 24 godziny w temperaturze pokojowej, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Następnie uzyskany osad rozpuszcza się w 6 ml mieszaniny chloroformu, metanolu i wody sporządzonej w stosunku objętościowym 30:8:1 i nanosi się na kolumnę o średnicy 3 cm, wypełnioną 150 g żelu krzemionkowego Silica gel 60 (0,063-0,200 mm) firmy Merck zawieszonego w mieszaninie rozpuszczalników chloroform - metanol - woda w stosunku objętościowym 30:8:1. Kolumnę przemywa się tą mieszaniną rozpuszczalników i zbiera frakcje o objętości 5 ml. Frakcje zawierające czysty związek łączy się i odparowuje do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie wyższej niż 40°C. Suchą pozostałość rozpuszcza się w 3 ml M,M'-dimetyloformamidu i eterem etylowym wytrąca osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 111 mg osadu, który następnie rozpuszcza się w 4 ml M,M'-dimetyloformamidu i 0,4 ml metanolu i schładza się do temperatury 0°C. Do uzyskanego roztworu dodaje się 0,021 ml 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu (DBN) i całość miesza się w temperaturze pokojowej przez 1,5 godziny, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 90 mg M-(O-t-butylotreonylo)amfoterycyny B. E1%1cm = 1220 przy 382 nm; IC50 = 0,25 μg/ml, EH50 >250 )ag/ml oznaczone według przykładu VIII.
Otrzymany związek przeprowadza się ewentualnie w formę rozpuszczalną w wodzie.
P r z y k ł a d II
344,7 mg M-(9-fluorenylometoksykarbonylo)-O-t-butylotyrozyny rozpuszcza się w 10 ml M,M-dimetyloformamidu, dodaje 86,3 mg M-hydroksysukcynoimidu oraz 154,5 mg dicykloheksylokarbodiimidu i pozostawia do przereagowania mieszając przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Powstały osad odsącza się, przemywa M,M-dimetyloformamidem i przesącz dodaje się do roztworu 346 mg amfoterycyny B w 3 ml M,M-dimetyloformamidu z dodatkiem 0,054 ml trietyloaminy, chłodząc mieszaninę reakcyjną w łaźni lodowej i mieszając. Całość miesza się przez 24 godziny w temperaturze pokojowej, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Następnie osad rozpuszcza się w 6 ml mieszaniny chloroformu, metanolu i wody sporządzonej w stosunku objętościowym 30:8:1 i nanosi się na kolumnę o średnicy 3 cm, wypełnioną 150 g żelu krzemionkowego Silica gel 60 (0,063-0,200 mm) firmy Merck zawieszonego w mieszaninie rozpuszczalników chloroform -metanol - woda w stosunku
PL 210 774 B1 objętościowym 30:8:1. Kolumnę przemywa się tą mieszaniną rozpuszczalników i zbiera frakcje o objętości 5 ml. Frakcje zawierające czysty związek łączy się i odparowuje do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie wyższej niż 40°C. Suchą pozostałość rozpuszcza się w 3 ml N,N-dimetyloformamidu i eterem etylowym wytrąca osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 188 mg osadu, który następnie rozpuszcza się w 4 ml N,N-dimetyloformamidu i 0,4 ml metanolu i schładza się do temperatury 0°C. Do uzyskanego roztworu dodaje się 0,034 ml 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu (DBN) i całość miesza się w temperaturze pokojowej przez 1,5 godziny, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 155 mg N-(0-f-butylotyrozylo)amfoterycyny B. E1%1cm = 900 przy 382 nm ; IC50 = 0,15 μg/ml, EH50 >250 μg/ml oznaczone według przykładu VIII.
Otrzymany związek przeprowadza się ewentualnie w formę rozpuszczalną w wodzie.
P r z y k ł a d III
309 mg β-estru f-butylowego kwasu W-(9-fluorenylometoksykarbonylo)-asparaginowego rozpuszcza się w 8 ml N,N-dimetyloacetamidu, dodaje 86,3 mg N-hydroksysukcynoimidu oraz 154,5 mg dicykloheksylokarbodiimidu i pozostawia do przereagowania mieszając przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Powstały osad odsącza się, przemywa N,N-dimetyloacetamidem i przesącz dodaje się do roztworu 346 mg amfoterycyny B w 3 ml N,N-dimetyloacetamidu z dodatkiem 0,054 ml trietyloaminy, chłodząc mieszaninę reakcyjną w łaźni lodowej i mieszając. Całość miesza się przez 24 godziny w temperaturze pokojowej, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Następnie osad rozpuszcza się w 6 ml mieszaniny chloroformu, metanolu i wody sporządzonej w stosunku objętościowym 30:8:1 i nanosi się na kolumnę o średnicy 3 cm, wypełnioną 150 g żelu krzemionkowego Silica gel 60 (0,063-0,200 mm) firmy Merck zawieszonego w mieszaninie rozpuszczalników chloroform - metanol woda w stosunku objętościowym 30:8:1. Kolumnę przemywa się tą mieszaniną rozpuszczalników i zbiera frakcje o objętości 5 ml. Frakcje zawierające czysty związek łączy się i odparowuje do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie wyższej niż 40°C. Suchą pozostałość rozpuszcza się w 4 ml N,N -dimetyloacetamidu i eterem etylowym wytrąca osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 206 mg osadu, który następnie rozpuszcza się w 4 ml N,N-dimetyloformamidu i 0,4 ml metanolu i schładza się do temperatury 0°C. Do uzyskanego roztworu dodaje się 0,035 ml 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu (DBN) i całość miesza się w temperaturze pokojowej przez 1,5 godziny, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 170 mg N-0 e-f-butyloaspartylo)amfoterycyny B. E1%1cm = 1150 przy 382 nm; IC50 = 0,15 μg/ml , EH50 >250 μg/ml oznaczone według przykładu VIII.
Otrzymany związek przeprowadza się ewentualnie w formę rozpuszczalną w wodzie.
P r z y k ł a d IV
284,5 mg kwasu N-(9-fluorenylometoksykarbonylo)-frans-4-(aminometylo)cykloheksanokarboksylowego rozpuszcza się w 7 ml N,N-dimetyloformamidu, dodaje 86,3 mg N-hydroksysukcynoimidu oraz 154,5 mg dicykloheksylokarbodiimidu i pozostawia do przereagowania mieszając przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Powstały osad odsącza się, przemywa N,N-dimetyIoformamidem i przesącz dodaje się do roztworu 346 mg amfoterycyny B w 3 ml N,N-dimetyloformamidu z dodatkiem 0,054 ml trietyloaminy, chłodząc mieszaninę reakcyjną w łaźni lodowej i mieszając. Całość miesza się przez 24 godziny w temperaturze pokojowej, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Następnie osad rozpuszcza się w 6 ml mieszaniny chloroformu, metanolu i wody sporządzonej w stosunku objętościowym 30:8:1 i nanosi się na kolumnę o średnicy 3 cm, wypełnioną 150 g żelu krzemionkowego Silica gel 60 (0,063-0,200 mm) firmy Merck zawieszonego w mieszaninie rozpuszczalników chloroform - metanol - woda w stosunku objętościowym 30:8:1. Kolumnę przemywa się tą mieszaniną rozpuszczalników i zbiera frakcje o objętości 5 ml. Frakcje zawierające czysty związek łączy się i odparowuje do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie wyższej niż 40°C. Suchą pozostałość rozpuszcza się w 4 ml N,N-dimetyloformamidu i eterem etylowym wytrąca osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 160 mg osadu, który następnie rozpuszcza się w 3 ml N,N-dimetyloformamidu i 0,3 ml metanolu i schładza się do temperatury 0°C. Do uzyskanego roztworu dodaje się 0,032 ml 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu (DBN) i całość miesza się w temperaturze pokojowej przez 1,5 godziny, a następnie eterem etylowym
PL 210 774 B1 wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze 1% próżniowym. Otrzymuje się 130 mg N-[trans-4-(aminometylo)cykloheksanoilo]amfoterycyny B. E1%1cm = 920 przy 382 nm; IC50 = 0,25 μg/ml, EH50 = 150 μg/ml oznaczone według przykładu VIII. Otrzymany związek przeprowadza się ewentualnie w formę rozpuszczalną w wodzie.
P r z y k ł a d V
157 mg kwasu 1-piperydynopropionowego rozpuszcza się w 8 ml N,N-dimetyloformamidu, dodaje 116 mg N-hydroksysukcynoimidu oraz 212 mg dicykloheksylokarbodiimidu i pozostawia do przereagowania mieszając przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Powstały osad odsącza się, przemywa N,N-dimetyloformamidem i przesącz dodaje się do roztworu 460 mg amfoterycyny B w 6 ml N,N-dimetyloformamidu z dodatkiem 0,08 ml trietyloaminy, chłodząc mieszaninę reakcyjną w łaźni lodowej i mieszając. Całość miesza się przez 48 godzin w temperaturze pokojowej, a następnie eterem etylowym wytrąca się osad, który odwirowuje się, przemywa wielokrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Następnie osad rozpuszcza się w 10 ml mieszaniny chloroformu, metanolu i wody sporządzonej w stosunku objętościowym 10:6:1 i nanosi się na kolumnę o średnicy 3 cm, wypełnioną 200 g żelu krzemionkowego Silica gel 60 (0,063-0,200 mm) firmy Merck zawieszonego w mieszaninie rozpuszczalników chloroform - metanol - woda w stosunku objętościowym 10:6:1. Kolumnę przemywa się tą mieszaniną rozpuszczalników i zbiera frakcje o objętości 5 ml. Frakcje zawierające czysty związek łączy się i odparowuje do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze nie wyższej niż 40°C. Suchą pozostałość rozpuszcza się w 5 ml N,N-dimetyloformamidu i eterem etylowym wytrąca osad, który odwirowuje się, przemywa kilkakrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 450 mg N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B. E1%1cm = 1130 przy 382 nm; IC50 = 0,135 μg/ml, EH50 >200 μg/ml oznaczone według przykładu VIII.
Otrzymany związek przeprowadza się ewentualnie w formę rozpuszczalną w wodzie.
P r z y k ł a d VI
106 mg N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B, otrzymanej sposobem przedstawionym w przykładzie V, zawiesza się w 2 ml wody i do zawiesiny dodaje się mieszając 19,5 mg N-metylo-D-glukaminy rozpuszczonej w 1 ml wody. Do otrzymanego klarownego roztworu dodaje się nadmiar acetonu aż do wytrącenia osadu. Osad odwirowuje się, przemywa dwukrotnie acetonem, następnie dwukrotnie eterem etylowym i suszy w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 120 mg soli N-metylo-D-glukaminowej N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B. E1%1cm = 1000 przy 382 nm; IC50 = 0,14 μg/ml, EH50 >200 μg/ml oznaczone według metodą z przykładu VIII.
P r z y k ł a d VII mg N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B, otrzymanej sposobem przedstawionym w przykładzie V, i 41 mg deoksycholanu sodu rozpuszcza się mieszając w 5 ml roztworu wodnego buforu, zawierającego 25,2 mg Na2HPO4 · 12 H2O oraz 1,2 mg NaH2PO4 · 2 H2O, a następnie roztwór zamraża się w łaźni z suchym lodem i acetonem i poddaje się liofilizacji celem uzyskania suchego osadu. Otrzymuje się 124,4 mg buforowanego kompleksu N-(1-piperydynopropionylo)amfoterycyny B z deoksycholanem sodu. E1%1cm = 460 przy 382 nm ; IC50 = 0,30 μg/ml, EH50 >200 μg/ml oznaczone metodą z przykładu VIII.
P r z y k ł a d VIII
Aktywność przeciwgrzybową oznaczono wobec standardowego szczepu Candida albicans ATCC 10261, a za jej miarę przyjęto stężenie badanego preparatu hamujące w 50% wzrost drobnoustroju w płynnej pożywce Sabouraud'a, oznaczony spektrofotometrycznie przy długości fali 660 nm po 24 godzinach inkubacji w 30°C /IC50/.
Aktywność hemolityczną in vitro oznaczono wobec erytrocytów ludzkich, a za jej miarę przyjęto stężenie badanego preparatu powodujące 50% hemolizę erytrocytów ludzkich w roztworze soli fizjologicznej po 30 minutach inkubacji w 37°C mierzone spektrofotometrycznie przy długości fali 550 nm /EH50/. Przykłady tych właściwości związków według wynalazku ilustruje tabela 1.
T a b e l a 1
Związek Reszta aminokwasu (R) IC50 μg/ml EH50 μg/ml
1 2 3 4
amfoteryczna B (-) 0.10 1.8
1 2-fenyloglicyny 0.10 >250
PL 210 774 B1 cd. tabeli 1
1 2 3 4
2 O-t-butylotyrozyny 0.15 >250
3 O-f-butylo-D-tyrozyny 0.18 >200
4 β-fenylo-D-fenyloalaniny 0.90 >250
5 O-f-butyloseryny 0.20 >250
6 O-f-butylotreoniny 0.25 >250
7 O-f-butylo-D-treoniny 0.15 80
8 kwasu c/s-2-aminocykloheksanokarboksylowego 0.30 180
9 Kwasu frans-4-(aminometylo)cykloheksanokarboksylowego 0.25 150
10 kwasu 4-piperydynokarboksylowego 0.15 35
11 β-estru f-butylowego kwasu asparaginowego 0.15 >250
12 γ-estru t-butylowego kwasu glutaminowego 0.08 >250
13 β-estru benzylowego kwasu asparaginowego 0.40 >250
14 γ-estru benzylowego kwasu glutaminowego 0.60 100
15 kwasu 1-piperydynopropionowego 0.135 >200
P r z y k ł a d IX
Aktywność permeabilizacyjną in vitro związków według wynalazku względem erytrocytów ludzkich oznaczono mierząc wypływ jonów potasu z erytrocytów, a za jej miarę przyjęto stężenie badanego preparatu powodujące 50% utratę jonów potasu w roztworze soli fizjologicznej po 30 min inkubacji w temperaturze 37°C wyznaczone z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej (EK50). Przykł ady aktywności permeabilizacyjnej związków według wynalazku ilustruje tabela 2.
T a b e l a 2
Związek Reszta aminokwasu (R) EK50 μg/ml
amfoterycyna B (-) 1,07
1 O-f-butylotyrozyny 125,00
2 O-f-butylo-D-tyrozyny 78,85
3 O-f-butyloseryny 22,66
4 O-f-butylotreoniny 31,60
5 O-t-butylo-D-treoniny 34,25
6 β-estru f-butylowego kwasu asparaginowego 74,00
7 γ-estru t-butylowego kwasu glutaminowego 69,33
8 kwasu 1-piperydynopropionowego 107,83
P r z y k ł a d X
Aktywność związków według wynalazku in vitro w stosunku do szczepu Candida albicans Gu 5 o opornoś ci wielolekowej (MDR), w porównaniu z aktywnością względem Candida albicans Gu 4, z którego szczep oporny Gu 5 się wywodzi i porównawczo względem standardowego szczepu Candida albicans ATTC 10261 przeprowadzono w podobnych, do opisanych w przykładzie VIII, warunkach, lecz z zastosowaniem innej pożywki tj. Antibiotic Medium 3 (AM3) uzupełnionej 2% glukozą, zalecanej dla szczepów o oporności wielolekowej. Za miarę aktywności przeciwgrzybowej przyjęto dwie wartości: MIC - minimalne stężenie badanego związku powodujące całkowite zahamowanie wzrostu drobnoustroju i IC50 - stężenie badanego zwitku powodujące 50% zahamowanie wzrostu drobnoustroju. Przykłady aktywności związków według wynalazku ilustruje tabela 3.
PL 210 774 B1
T a b e l a 3
Związek Reszta aminokwasu (R) ACTcCcni C' abicans Gu 4 C. albicans Gu 5
MIC μg/ml IC50 μg/ml MIC μg/ml IC50 μg/ml MIC μg/ml IC50 μg/ml
amfoterycyna B (-) 0.06 0.02 0.06 0.02 0.06 0.03
1 O-t-butylotyrozyny 0.50 0.26 0.50 0.30 1.00 0.34
2 O-t -butylo-D-tyrozyny 1.00 0.32 1.00 0.40 1.00 0.45
3 O-t-butyloseryny 0.40 0.21 0.40 0.21 0.40 0.19
4 O-t -butylotreoniny 0.50 0.26 0.50 0.22 0.50 0.23
5 O-t -butylo-D-treoniny 0.50 0.28 0.50 0.28 0.50 0.31
6 β-estru t-butylowego kwasu asparaginowego 0.40 0.24 0.40 0.19 0.50 0.23
7 γ-estru t-butylowego kwasu glutaminowego 0.25 0.13 0.25 0.12 0.25 0.11
8 kwasu 1-piperydynopropionowego 0.25 0.13 0.40 0.16 0.40 0.18
P r z y k ł a d Xl
Aktywność cytotoksyczną związków według wynalazku oznaczono dla linii ludzkiej białaczki promielocytarnej HL-60 po 72-godzinnej ciągłej ekspozycji na związek w pożywce RPMI-1640 z 10% płodowej surowicy wołowej. Za miarę aktywności cytotoksycznej przyjęto wartość stężenia powodującego 50% zahamowania wzrostu komórek w stosunku do komórek kontrolnych (IC50). Przykłady aktywności cytotoksycznej związków według wynalazku ilustruje tabela 4.
T a b e l a 4
Związek Reszta aminokwasu (R) Aktywność cytotoksyczna (IC50±SEM); białaczka HL-60
preparat [Rg/ml] w przeliczeniu na czysty związek
[gg/mi] [μΜ]
amfoterycyna B (-) 3,71 ± 0,14 2,97 ± 0,11 3,21 ± 0,12
1 O-t-butylotylozyny 55% wzrostu komórek przy stężeniu
321,7 253,2 200
IC50 wartość ekstrapolowana
-330-340 -260-266 -205-210
2 O-t-butylo-D-tyrozyny 65% wzrostu komórek przy stężeniu
304,3 253,2 200
IC50 wartość ekstrapolowana
-395-425 -330-355 -260-280
3 O-t-butylotreoniny 199,6 ± 17,9 162,3 ± 14,8 134,8 ± 12,1
4 O-t-butylo-D-treoniny 183,1 ± 12,5 163,5 ± 11,2 135,8 ± 9,3
5 γ-estru t-butylowego kwasu glutaminowego 183,2 ± 2,0 172,4 ± 1,9 139,9 ± 1,5
6 Kwasu 1-piperydynopropionowego 60% wzrostu komórek przy stężeniu
261,6 211,4 200
IC50 wartość ekstrapolowana
-330 -265 -250

Claims (4)

1. Związki będące zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne oraz ich sole i kompleksy będące formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub związku kompleksotwórczego.
2. Związki według zastrz. 1, znamienne tym, że zawierają korzystnie reszty aminoacylowe aminokwasów: 2-fenyloglicyny, O-/-butylotyrozyny, O-/-butylo-D-tyrozyny, β-fenylo-D-fenyloalaniny, O-butyloseryny, O-/-butylotreoniny, O-/-butylo-D-treoniny, kwasu cis-2-aminocykloheksanokarboksylowego, kwasu /rans-4-(ammometylo)cykloheksanokarboksylowego, kwasu 4-piperydynokarboksylowego, β-estru /-butylowego kwasu asparaginowego, γ-estru /-butylowego kwasu glutaminowego, β-estru benzylowego kwasu asparaginowego, γ-estru benzylowego kwasu glutaminowego, kwasu 1-piperydynopropionowego, kwasu 1-piperydynomasłowego, kwasu 1-piperydynooctowego, kwasu 1-piperazynopropionowego, kwasu 4-pirydynopropionowego.
3. Sposób otrzymywania związków, będących zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze ogólnym 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, oraz ich soli i kompleksów będących formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub związku kompleksotwórczego, znamienny tym, że acyluje się amfoterycynę B w rozpuszczalnikach organicznych lub ich mieszaninie aminokwasami o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, z aktywowaną grupą karboksylową, korzystnie w postaci estrów aktywnych aminokwasów takich jak na przykład: 2-fenyloglicyny, O-/-butylotyrozyny, O-/-butylo-D-tyrozyny, β-fenylo-D-fenyloalaniny, O-/-butyloseryny, O-/-butylotreoniny, O-/-butylo-D-treoniny, kwasu cis'-2-aminocykloheksanokarboksylowego, kwasu trans-4-(aminometylo)-cykloheksanokarboksylowego, kwasu 4-piperydynokarboksylowego, β-estru /-butylowego kwasu asparaginowego, γ-estru /-butylowego kwasu glutaminowego, γ-estru benzylowego kwasu asparaginowego, β-estru benzylowego kwasu glutaminowego, kwasu 1-piperydynopropionowego, kwasu 1-piperydynomasłowego, kwasu 1-piperydynooctowego, kwasu 1-piperazynopropionowego, kwasu 4-pirydynopropionowego, przy czym w przypadku, gdy acyluje się amfoterycynę B aminokwasami zawierającymi grupy aminowe pierwszo- lub drugorzędowe stosuje się osłonę 9-fluorenylometoksykarbonylową, którą po acylacji usuwa się, korzystnie przy pomocy 1,5-diazabicyklo[4.3.0]non-5-enu, a następnie wydziela się surowy produkt, korzystnie przez wytrącenie eterem etylowym oraz ewentualnie oczyszcza się produkt, korzystnie metodą chromatografii kolumnowej na żelu krzemionkowym, zaś rozpuszczalne w wodzie formy uzyskanego produktu otrzymuje się na drodze utworzenia jego soli z kwasami bądź zasadami, korzystnie z N-metylo-D-glukaminą i wydzielenia produktu przez wytrącenie mieszającym się z wodą rozpuszczalnikiem organicznym, korzystnie acetonem, bądź na drodze utworzenia rozpuszczalnego kompleksu ze związkiem kompleksotwórczym, korzystnie z deoksycholanem sodu w wodnym roztworze buforu fosforanowego i liofilizacji powstałego roztworu.
4. Zastosowanie związków będących zawadzonymi przestrzennie amfoterycznymi N-aminoacylowymi pochodnymi antybiotyku przeciwgrzybowego z grupy makrolidów polienowych, amfoterycyny B, o wzorze ogólnym 1, gdzie R oznacza resztę aminokwasu o dowolnej konfiguracji z jedną lub więcej grupami aminowymi pierwszo-, drugo- lub trzeciorzędowymi umiejscowionymi w pozycji alfa, beta, gamma i dalszych w stosunku do grupy karboksylowej tego aminokwasu oraz z objętościowym
PL 210 774 B1 fragmentem stanowiącym zawadę przestrzenną takim jak łańcuch prosty lub rozgałęziony lub układ pierścieniowy karbo- lub heterocykliczny, nie podstawione bądź zawierające grupy funkcyjne, oraz ich soli i kompleksów będących formami rozpuszczalnymi w wodzie o wzorze 2, gdzie AMBZ oznacza wzór 1, zaś X oznacza jedną lub więcej cząsteczek zasady lub kwasu lub związku kompleksotwórczego, do wytwarzania leku przeznaczonego do zwalczania drobnoustrojów grzybowych, korzystnie z opornością wielolekową.
PL379979A 2006-06-19 2006-06-19 Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych PL210774B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL379979A PL210774B1 (pl) 2006-06-19 2006-06-19 Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL379979A PL210774B1 (pl) 2006-06-19 2006-06-19 Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL379979A1 PL379979A1 (pl) 2007-12-24
PL210774B1 true PL210774B1 (pl) 2012-02-29

Family

ID=43028027

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL379979A PL210774B1 (pl) 2006-06-19 2006-06-19 Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL210774B1 (pl)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2015519389A (ja) * 2012-06-15 2015-07-09 ブリート スポルカ アクシヤ 抗真菌性抗生物質アンフォテリシンbのn−置換第二世代誘導体ならびにそれらの調製および塗布方法
US9447136B2 (en) 2012-03-09 2016-09-20 Blirt S.A. Semisynthetic derivatives of Nystatin A1

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9447136B2 (en) 2012-03-09 2016-09-20 Blirt S.A. Semisynthetic derivatives of Nystatin A1
JP2015519389A (ja) * 2012-06-15 2015-07-09 ブリート スポルカ アクシヤ 抗真菌性抗生物質アンフォテリシンbのn−置換第二世代誘導体ならびにそれらの調製および塗布方法
US9745335B2 (en) 2012-06-15 2017-08-29 Blirt S.A. N-substituted second generation derivatives of antifungal antibiotic amphotericin B and methods of their preparation and application

Also Published As

Publication number Publication date
PL379979A1 (pl) 2007-12-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9745335B2 (en) N-substituted second generation derivatives of antifungal antibiotic amphotericin B and methods of their preparation and application
EP1002790B1 (en) Sphingosine analogues
NO329885B1 (no) Nye forbindelser, fremgangsmate for fremstilling derav, anvendelse av forbindelsene samt farmasoytisk preparat omfattende en slik forbindelse
RU2170234C2 (ru) Модифицированные углеводами цитостатические средства
HU210744B (en) Process to prepare novel ganglioside derivs. and pharmaceutical compns. contg. them
US20090186838A1 (en) Amphotericin Derivatives
JP7335288B2 (ja) アミノグリコシド誘導体および遺伝性疾患の治療におけるその使用
JP2018528211A5 (pl)
PL210774B1 (pl) Zawadzone przestrzennie amfoteryczne N-aminoacylowe pochodne amfoterycyny B, (54) sposób ich otrzymywania i zastosowanie do wytwarzania leku do zwalczania drobnoustrojów grzybowych
WO2008067039A9 (en) Colchicine neoglycosides and methods for their synthesis and use
Falconer et al. Design, synthesis and biological evaluation of novel lipoamino acid-based glycolipids for oral drug delivery
US9447136B2 (en) Semisynthetic derivatives of Nystatin A1
US8278436B2 (en) Glycosylated warfarin analogs and uses thereof
JP3094065B2 (ja) ポリエン・マクロライド誘導体
CZERWINSKI et al. New N-alkyl derivatives of amphotericin B synthesis and biological properties
US20180105546A1 (en) Methods for Chemical Synthesis of Biologically Active Compounds Using Supramolecular Protective Groups and Novel Compounds Obtainable Thereby
Gebhardt et al. Semisynthetic preparation of leucomycin derivatives: Introduction of aromatic side chains by reductive amination
EP3772355A1 (en) Bifunctional compound and its use in immunotherapy
HU208834B (en) Process for producing dilysoganglioside derivatives and pharmaceutical compositions comprising such active ingredient
WO2022253297A1 (zh) 一种阿尼芬净衍生物的制备方法
Srivastava et al. Novel hybrid natural products derived from solanesol as wound healing agents
Chinaglia Design, synthesis and biological evaluation of novel nucleoside and oligonucleotide conjugates of bio-medical interest.
JP4246358B2 (ja) ポリエンマクロライド系抗生物質の多量体
JP2022530141A (ja) シチジン誘導体およびシチジン誘導体の製造方法
Shen Studies on Glycopharmaceuticals, HDACI and No-donors

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130619