PL201022B3 - Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych - Google Patents
Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnychInfo
- Publication number
- PL201022B3 PL201022B3 PL348548A PL34854801A PL201022B3 PL 201022 B3 PL201022 B3 PL 201022B3 PL 348548 A PL348548 A PL 348548A PL 34854801 A PL34854801 A PL 34854801A PL 201022 B3 PL201022 B3 PL 201022B3
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- minutes
- threads
- bath
- antibiotic
- temperature
- Prior art date
Links
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwoś ciach antybakteryjnych, polegający na tym, że poliestrowe nici chirurgiczne w postaci przędzy jedwabnej o wytrzymałości liniowej 32,28 cN/tex, masie liniowej 4,95 tex, wydłużeniu 5,14% i liczbie skrętów 400 ± 40 skr/m bądź plecionki o wytrzymałości w węźle prostym 2,73 daN, grubości 0,410 mm, wydłużeniu 6,2%, napawa się roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie, o stężeniu 4 - 5%, w temperaturze 45 - 55°C w czasie 20 - 30 minut przy module kąpieli 1:10 - 1:25, po czym nici, uprzednio odżęte od nadmiaru roztworu nadtlenku i ogrzane w temperaturze 93 - 97°C w czasie 15 - 20 minut, poddaje się szczepieniu w wodnej kąpieli szczepiącej zawierającej kwas akrylowy lub metakrylowy, w ilości 25 - 80 g/dm3 kąpieli oraz difenyl i/lub dyspergator bądź mieszaninę naftalenu i dyspergatora, w ilości 3,5 - 5,0 g/dm3 kąpieli przy module kąpieli od 1:35 do 1:50 w temperaturze 93 - 97°C w czasie 30 - 60 minut w atmosferze azotu, stosując jako dyspergator mieszaninę soli skondensowanych wielordzeniowych sulfokwasów aromatycznych, zaszczepione nici płucze się następnie w czasie 15 - 20 minut w odmineralizowanej wodzie o temperaturze około 97°C, suszy i napawa się wodnym roztworem antybiotyku o stężeniu 12 - 20% w temperaturze 37 - 41°C w czasie 60 - 90 minut przy module kąpieli napawającej 1:10 - 1:20, płucze w odmineralizowanej wodzie w czasie kilku minut, suszy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut i poddaje sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy, wedł ug patentu nr PL 199715 B1, znamienny tym, że w procesie napawania antybiotykiem stosuje się wodny roztwór antybiotyku z grupy linkozamidów o nazwie Dalacin, wodny roztwór antybiotyku z grupy aminoglikozydów jak Biodacyna, Neomycyna, Gentamycyna, wodny roztwór antybiotyku z grupy glikopeptydów o nazwie Wankomycyna.
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych, stanowiący uzupełnienie sposobu według patentu głównego nr PL 199715 B1.
Przedmiotem wynalazku według patentu głównego nr PL 199715 B1 jest znany sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych, polegający na tym, że poliestrowe nici chirurgiczne w postaci przędzy jedwabnej o wytrzymałości liniowej 32,28 cN/tex, masie liniowej 4,95 tex, wydłużeniu 5,14% i liczbie skrętów 400 ± 40 skr/m bądź plecionki o wytrzymałości w węźle prostym 2,73 daN, grubości 0,410 mm, wydłużeniu 6,2°%, napawa się roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie, o stężeniu 4 - 5%, w temperaturze 45 - 55°C w czasie 20 - 30 minut przy stosunku masy nici do masy kąpieli czyli module kąpieli 1:10 - 1:25, po czym nici, uprzednio odżęte od nadmiaru roztworu nadtlenku i ogrzane w temperaturze 93 - 97°C w czasie 15 - 20 minut, poddaje się szczepieniu w wodnej kąpieli szczepiącej zawierającej kwas akrylowy lub metakrylowy w ilości 25 - 80 g/dm3 kąpieli oraz difenyl i/lub dyspergator bądź mieszaninę naftalenu i dyspergatora w ilości 3,5 - 5,0 g/dm3 kąpieli, przy module kąpieli 1:35 - 1:50 w temperaturze 93 - 97°C w czasie 30 - 60 minut w atmosferze azotu, przy czym jako dyspergator stosuje się mieszaninę soli skondensowanych wielordzeniowych sulfokwasów aromatycznych. Zaszczepione nici płucze się następnie w czasie 15 - 20 minut w odmineralizowanej wodzie o temperaturze około 97°C, suszy i napawa się wodnym roztworem antybiotyku o stężeniu 12 - 20% w temperaturze 37 - 41°C w czasie 60 - 90 minut przy module kąpieli napawającej 1:10 - 1:20, płucze w odmineralizowanej wodzie w czasie kilku minut, suszy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut i poddaje sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Celem wynalazku według patentu dodatkowego jest zwiększenie aktywności biologicznej poliestrowych nici chirurgicznych, dzięki czemu okazują się skuteczne w zwalczaniu miejscowych zakażeń wywołanych zarówno bakteriami beztlenowymi jak i tlenowymi oraz niektórymi pierwotniakami.
Cel ten zgodnie z wynalazkiem osiągnięto stosując w procesie napawania roztworem antybiotyku wodny roztwór antybiotyku z grupy linkozamidów o nazwie Dalacin, wodny roztwór antybiotyku z grupy aminoglikozydów takiego, jak Biodacyna, Neomycyna, Gentamycyna, wodny roztwór antybiotyku z grupy glikopeptydów o nazwie Wankomycyna.
Nici chirurgiczne wytworzone sposobem według wynalazku, zawierające Dalacin wykazują dużą aktywność biologiczną w stosunku do beztlenowych ziarenkowców, pałeczek i ziarenkowców Gram ujemnych, laseczek Gram dodatnich, gronkowców - w tym niektórych szczepów metycylinoopornych, paciorkowców i niektórych pierwotniaków, zawierające Biodacynę, Neomycynę, Gentamycynę działają bakteriobójczo wobec bakterii tlenowych, zwłaszcza pałeczek Gram ujemnych, zaś zawierające Wankomycynę wykazują dużą aktywność wobec gronkowców - w tym wobec szczepów opornych na metycylinę, paciorkowców - w tym wobec szczepów opornych na działanie penicyliny, beztlenowych ziarenkowców. Ze względu na synergizm Wankomycyny w skojarzeniu z antybiotykami z grupy aminoglikozydów, zastosowanie nici zawierających Wankomycynę potęguje zdolność tych antybiotyków do wewnątrzkomórkowego zabijania mikroorganizmów chorobotwórczych.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci plecionki (zawierające 8-3-24 = 576 pojedynczych włókienek), o wytrzymałości w węźle prostym 2,73 daN, wydłużeniu 6,2%, grubości 0,410 mm i masie 0,132 g/1m, w stanie rozluźnionym napawano 5% roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie w temperaturze 45°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:10, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 95°C w czasie 15 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dmr3: 75 g kwasu akrylowego, 4,0 g mieszaniny soli skondensowanych wielordzeniowych sulfokwasów aromatycznych o nazwie handlowej dyspergator NNO i 4,0 g difenylu (DF), w temperaturze 95°C w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:35, w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano gorącą, odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C w czasie 5 minut i zważono.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 38,82% wagowych, wytrzymałość w węźle prostym 2,55 daN, wydłużenie 16,10%.
Zaszczepione nici napawano następnie 15% wodnym roztworem Dalacinu, w temperaturze 37°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:15, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 4 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Przyrost masy nici był równy 8,25%. Na koniec nici poddano sterylizacji promiePL 201 022 B3 niowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Dalacinu w warunkach jak wyżej. Uzyskano przyrost masy nici równy 0,45%. Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 8,25% wagowych Dalacinu, poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne w stosunku do bakterii Staphylococcus aureus, stosując metodę krążkowo-dyfuzyjną. Strefy zahamowania wzrostu bakterii przy użyciu nici z antybiotykiem in vitro, mierzone zarówno metodą krążkowo-dyfuzyjną jak i bezpośrednią, dla Staphylococcus aureus, były równe: po 1-szym dniu - 36 mm, po 5-tym dniu 37 mm.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu stosowanych bakterii jak wytworzone nici w 1-szym dniu badań.
W badaniach in vivo, po zszyciu wytworzonymi nićmi chirurgicznymi zawierającymi 8,25% Dalacinu, tkanki podskórnej szczura, przetrzymaniu ich w niej 1 tydzień i wyjęciu ze szczura, strefa zahamowania wzrostu bakterii Staphylococcus aureus, mierzona metodą krążkowo-dyfuzyjną, była równa 23 mm, co wskazuje na dobre uwalnianie leku z włókien do organizmu zwierzęcia.
Zastosowanie wytworzonych nici chirurgicznych w środowisku tkankowym doświadczalnego szczura zainfekowanym gronkowcem złocistym sprawia, że rana goi się bez wysięków i bez stanów zapalnych. W przeciwieństwie do nici zawierających Dalacin, nici chirurgiczne nie zawierające Dalacinu nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, która wykazuje przy tym stan zapalny z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d II
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci plecionki o właściwościach jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, napawano 4,5% roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie w temperaturze 48°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:12, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 95°C w czasie 15 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 60 g kwasu metakrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,0 g DF, w temperaturze 93°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:40, w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano gorącą, odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 minut i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 40,25% wagowych, wytrzymałość w węźle prostym 2,55 daN, wydłużenie 13,16%.
Zaszczepione nici napawano następnie 15% wodnym roztworem Dalacinu, w temperaturze 39°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:15, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 4 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Przyrost masy nici był równy 7,24%. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici, ale nie szczepione kwasem metakrylowym, napawano roztworem Dalacinu w warunkach jak wyżej. Uzyskano przyrost masy nici równy 0,45%. Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 7,45% wagowych Dalacinu, poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne w stosunku do bakterii Staphylococcus aureus, stosując metodę krążkowo-dyfuzyjną. Strefy zahamowania wzrostu bakterii przy użyciu wytworzonej nici in vitro, mierzone zarówno metodą krążkowo-dyfuzyjną jak i bezpośrednią dla Staphylococcus aureus były po 1-szym oraz po 5-tym dniu bardzo zbliżone do wartości stref zahamowania wzrostu tych bakterii uzyskanych dla nici wytworzonych w przykładzie I.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu stosowanych bakterii jak nici według wynalazku w 1-szym dniu badań.
W badaniach in vivo, po zszyciu wytworzonymi nićmi chirurgicznymi zawierającymi 7,45% Dalacinu, tkanki podskórnej szczura, przetrzymaniu ich w niej 1 tydzień i wyjęciu ze szczura, strefy zahamowania wzrostu wymienionych wyżej bakterii, mierzone metodą krążkowo-dyfuzyjną, były również podobne jak w przykładzie I.
W środowisku tkankowym doświadczalnego szczura zainfekowanym gronkowcem złocistym wytworzone nici chirurgiczne zawierające Dalacin sprawiają, że rana goi się bez wysięków i bez stanów zapalnych. Natomiast nici chirurgiczne nie zawierające Dalacinu nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, która wykazuje stany zapalne z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d III
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci przędzy jedwabnej z liczbą skrętów 400 ± 40 skr/m, o masie liniowej 4,95 tex, sile zrywającej 32,28 cN/tex oraz wydłużeniu ε = 5,14%, napawano 4,5% roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie, o temperaturze 50°C w czasie 25 minut przy module kąpieli 1:15, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 95°C w czasie 15 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 70 g kwasu akrylowego, 3,5 g NNO i 3,5 g DF w temperaturze 93°C w czasie 45 minut, przy module kąpieli 1:40
PL 201 022 B3 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 min, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min. i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 36,01% wagowych.
Zaszczepione nici napawano następnie 12,5% roztworem Dalacinu, w temperaturze 40°C w czasie 70 minut, przy module kąpieli 1:10, po czym wypłukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 7,94% wagowych. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Dalacinu w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,47% przyrost masy nici.
Otrzymane nici chirurgiczne charakteryzowały się następującymi właściwościami: masą liniową 5,61 tex, wytrzymałością liniową 31,77 cN/tex, wydłużeniem ε = 7,83%. Zawierały 7,94% wagowych Dalacinu. Nici te poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie I. Wyniki badań były bardzo zbliżone do wyników badań z nićmi wytworzonymi w przykładzie I.
P r z y k ł a d IV
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci plecionki jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, inicjowano jak w przykładzie I. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 80 g kwasu akrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 5,0 g DF, w temperaturze 93°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:35, w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano gorącą, odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120 C przez 5 min. i zważono.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 3,25% wagowych, średnią wytrzymałość w węźle prostym 3,30 daN, wydłużenie 16,0%.
Zaszczepione nici napawano następnie 12,5% wodnym roztworem Biodacyny, w temperaturze 39°C w czasie 65 minut, przy module kąpieli 1:15, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 4 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Przyrost masy nici był równy 7,94%. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Biodacyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano przyrost masy nici równy 0,45%. Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 7,94% wagowych Biodacyny, poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne w stosunku do bakterii Staphylococcus awreus, Escherichia coli i Pseudomonas aeruginosa stosując metodę krążkowo-dyfuzyjną. Strefy zahamowania wzrostu bakterii przy użyciu wytworzonej nici in vitro, mierzone zarówno metodą krążkowo-dyfuzyjną jak i bezpośrednią, dla Staphylococcus awreus, były równe: po 1-szym dniu - 27 mm, po 5-tym dniu - 27 mm.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu stosowanych bakterii jak wytworzone nici w 1-szym dniu badań.
W badaniach in vivo, po zszyciu wytworzonymi nićmi chirurgicznymi zawierającymi 7,94% Biodacyny, tkanki podskórnej szczura, przetrzymaniu ich w niej 1 tydzień i wyjęciu ze szczura, strefy zahamowania wzrostu wymienionych wyżej bakterii, mierzone metodą krążkowo-dyfuzyjną, były równe 6,0 mm, co wskazuje na dobre uwalnianie leku z włókien do organizmu zwierzęcia.
W środowisku tkankowym doświadczalnego szczura zainfekowanym gronkowcem złocistym wytworzone nici sprawiają, że rana goi się bez wysięków i bez stanów zapalnych.
W przeciwieństwie do wytworzonych nici zawierających Biodacynę, nici nie zawierające antybiotyku nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, która wykazuje przy tym stany zapalne z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d V
Nici chirurgiczne jak w przykładzie IV, w stanie rozluźnionym, inicjowano, odżęto i ogrzewano jak w przykładzie I, z tym że proces inicjowania prowadzono przy module kąpieli 1:10. Nici te poddano szczepieniu w kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 75 g kwasu akrylowego, 3,5 g dyspergatora NNO i 4,5 g DF, w temperaturze 93°C w czasie 30 minut, przy module kąpieli 1:40 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 min, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min. i zważono.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 40,01% wagowych, wytrzymałość w węźle 2,71 daN i wydłużenie ε = 13,67%.
Zaszczepione nici napawano następnie 15% wodnym roztworem Biodacyny w warunkach jak w przykładzie I.
PL 201 022 B3
Uzyskano przyrost masy nici równy 8,22% wagowych. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem metakrylowym, napawano roztworem Biodacyny w warunkach jak w przykładzie I, w wyniku czego uzyskano przyrost masy nici równy 0,61% wagowych.
Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 9,22% wagowych Biodacyny, poddano testom in vitro i in vivo jak w przykładzie I. Strefy zahamowania wzrostu bakterii przy zastosowaniu wytworzonej nici z Biodacyną, in vitro, mierzone metodą krążkowo-dyfuzyjną, były podobne do stref zahamowania wzrostu tych bakterii uzyskanych przy użyciu nici wytworzonych w przykładzie IV.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu bakterii jak nici wytworzone wg wynalazku, po 1-szym dniu badań.
Badania in vivo przeprowadzono zszywając wytworzonymi nićmi tkanki podskórne szczurów samców rasy Wistar. Nici przetrzymywano w tkankach zwierząt 7 dni. Po wyjęciu ich z tkanek zwierząt strefy zahamowania wzrostu stosowanych do badań bakterii wynosiły po 6,0 mm. Ponadto u szczurów, których rany operacyjne w celach doświadczalnych specjalnie zakażono Staphylococcus aureus, a następnie wszyto w tkanki podskórne tych szczurów wytworzone nici chirurgiczne zawierające Biodacynę, nie stwierdzono odczynów zapalnych ani treści wysiękowych.
P r z y k ł a d VI
Nici jak w przykładzie III, w stanie rozluźnionym, inicjowano, odżęto i ogrzewano jak w przykładzie III, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 55°C w czasie 20 minut. Nici te poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 80 g kwasu akrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,0 g DF, w temperaturze 95°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:40 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 95°C w czasie 20 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 minut i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 37,80% wagowych. Zaszczepione nici napawano następnie 17% wodnym roztworem Biodacyny w temperaturze 39°C w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:10, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3,5 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 75 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 9,89% wagowych. Następnie nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Biodacyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,60% przyrost masy nici.
Otrzymane nici chirurgiczne wykazywały masę liniową 5,62 tex, wytrzymałość liniową 31,77 cN/tex, wydłużenie ε = 7,83%. Zawierały one 9,89% wagowych Biodacyny. Nici te poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie I. Wyniki badań były bardzo zbllżone do wyników badań z nićmi wytworzonymi w przykładzie IV.
P r z y k ł a d VII
Nici jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, inicjowano, odżęto i ogrzewano jak w przykładzie III, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 52°C w czasie 20 minut. Nici te poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 80 g kwasu akrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,0 g DF, w temperaturze 95°C w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:50 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 20 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 minut i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 36,95% wagowych. Zaszczepione nici napawano następnie 17% wodnym roztworem Neomycyny w temperaturze 39°C w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:12, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3,5 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 70 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 9,91% wagowych. Następnie nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Neomycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,60% przyrost masy nici.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 3,95% wagowych, średnią wytrzymałość w węźle prostym 3,30 daN, wydłużenie 16,0%. Zawierały one 9,91% wagowych Neomycyny.
Nici te poddano testom in vitro na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie I. Strefy zahamowania wzrostu bakterii były równe:
- dla Staphylococcus aureus, po 1-szym dniu - 9,7 mm,
PL 201 022 B3
- dla Escherichia coli, po 1-szym dniu - 13,8 mm
- dla Pseudomonas aeruginosa, po 1-szym dniu - 15,5 mm.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu bakterii jak nici wytworzone wg wynalazku, po 1-szym dniu badań.
Wytworzonymi nićmi zszyto tkanki podskórne szczurów samców rasy Wistar. Nici te przetrzymywano w tkankach zwierząt 7 dni. Po wyjęciu ich z tkanek zwierząt strefy zahamowania wzrostu stosowanych do badań bakterii przedstawiały się następująco:
- dla Staphylococcus aureus - 6,0 mm,
- dla Escherichia coli - 13,5 mm
- dla Pseudomonas aeruginosa - 6,0 mm.
Ponadto u szczurów, których rany operacyjne w celach doświadczalnych specjalnie zakażono Staphylococcus aureus, a następnie wszyto w tkanki podskórne tych szczurów wytworzone nici chirurgiczne zawierające Neomycynę, nie stwierdzono odczynów zapalnych ani treści wysiękowych.
P r z y k ł a d VIII
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci plecionki, o charakterystyce jak w przykładzie IV, inicjowano jak w przykładzie II, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 55°C w czasie 20 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 50 g kwasu metakrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,5 g naftalenu, w temperaturze 95°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:35, w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano gorącą, odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 minut i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 38,22% wagowych, średnią wytrzymałość w węźle prostym 3,31 daN, wydłużenie 14,0%.
Zaszczepione nici napawano następnie 20,0% wodnym roztworem Neomycyny, w temperaturze 41°C w czasie 65 minut, przy module kąpieli 1:15, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 4 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Przyrost masy nici był równy 7,99%. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici, ale nie szczepione kwasem akrylowym napawano roztworem Neomycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano przyrost masy nici równy 0,60%.
Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 7,99% wagowych Neomycyny, poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne w stosunku do bakterii Staphylococcus aureus, Escherichia coli i Pseudomonas aeruginosa stosując metodę krążkowo-dyfuzyjną. Strefy zahamowania wzrostu bakterii przy użyciu wytworzonej nici zawierającej Neomycynę, in vitro, mierzone zarówno metodą krążkowo-dyfuzyjną jak i bezpośrednią, po 1-szym dniu, były równe:
- dla Staphylococcus ureus - 9,7 mm,
- dla Escherichia coli - 13,5 mm
- dla Pseudomonas aeruginosa - 7,0 mm.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu stosowanych bakterii jak nici według wynalazku w 1-szym dniu badań.
W badaniach in vivo, po zszyciu tkanki podskórnej szczura wytworzonymi nićmi chirurgicznymi zawierającymi 7,99% Neomycyny, przetrzymaniu ich w niej 1 tydzień i wyjęciu ze szczura, strefy zahamowania wzrostu wymienionych wyżej bakterii, mierzone metodą krążkowo-dyfuzyjną, dla Staphylococcus aureus, Escherichia coli oraz Pseudomonas aeruginosa były równe 6,0 mm, co wskazuje na dobre uwalnianie leku z włókien do organizmu zwierzęcia.
W środowisku tkankowym doświadczalnego szczura zainfekowanym gronkowcem złocistym wytworzone nici chirurgiczne zawierające Neomycynę sprawiają, że rana goi się bez wysięków i bez stanów zapalnych. W przeciwieństwie do nici zawierających Neomycynę, nici chirurgiczne nie zawierające antybiotyku nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, a rana wykazuje przy tym stany zapalne z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d IX
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego) w postaci przędzy jedwabnej o właściwościach jak w przykładzie III, napawano 4,0% roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie, o temperaturze 50°C w czasie 20 minut przy module kąpieli 1:15, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 95°C w czasie 15 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 70 g kwasu akrylowego, 3,5 g dyspergatora NNO i 3,5 g DF w temperaturze 93°C
PL 201 022 B3 w czasie 45 minut, przy module kąpieli 1:40 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 min, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min i zważono.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 35,02% wagowych. Zaszczepione nici napawano następnie 13,5% roztworem Neomycyny, w temperaturze 40°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:10, po czym wypłukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 7,04% wagowych. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym napawano roztworem Neomycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,61 % przyrost masy nici.
Wytworzone nici chirurgiczne charakteryzowały się następującymi właściwościami: masą liniową 5,61 tex, wytrzymałością liniową 31,77 cN/tex, wydłużeniem ε = 7,83%. Zawierały 7,04% wagowych Neomycyny. Nici te poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie VII. Wyniki badań były bardzo zbliżone do wyników badań z nićmi wytworzonymi w przykładzie VII.
P r z y k ł a d X
Nici jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, inicjowano, odżęto i ogrzewano jak w przykładzie VI, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 52°C w czasie 20 minut. Nici te poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 75 g kwasu akrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,5 g DF, w temperaturze 95°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:50 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 20 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 minut i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 3,84% wagowych. Zaszczepione nici napawano następnie 18%m wodnym roztworem Gentamycyny w temperaturze 39°C w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:12, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3,5 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 9,05% wagowych. Następnie nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Gentamycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,59% przyrost masy nici.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 35,84% wagowych, średnią wytrzymałość w węźle prostym 2,48 daN, wydłużenie 14,80%. Zawierały one 9,05% wagowych Gentamycyny. Nici te poddano testom in vitro na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie I. Wyniki badań były równe:
- dla Staphylococcus aureus, po 1-szym dniu - 14,6 mm,
- dla Escherichia coli, po 1-szym dniu - 16,6 mm
- dla Pseudomonas aeruginosa, po 1-szym dniu - 13,2 mm.
Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu bakterii jak nici wytworzone wg wynalazku, po 1-szym dniu badań.
Wytworzonymi nićmi zszyto tkanki podskórne szczurów samców rasy Wistar. Nici te przetrzymywano w tkankach zwierząt 7 dni. Po wyjęciu ich z tkanek tych zwierząt strefy zahamowania wzrostu stosowanych do badań bakterii przedstawiały się następująco:
- dla Staphylococcus aureus - 6,0 mm,
- dla Escherichia coli - 16,6 mm
- dla Pseudomonas aeruginosa - 6,0 mm.
Ponadto u szczurów, których rany operacyjne w celach doświadczalnych specjalnie zakażono Staphylococcus aureus, a następnie wszyto w tkanki podskórne tych szczurów wytworzone nici chirurgiczne zawierające Gentamycynę, nie stwierdzono odczynów zapalnych ani treści wysiękowych. Natomiast nici chirurgiczne nie zawierające antybiotyku nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, przy czym rana wykazuje stan zapalny z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d XI
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci plecionki, o charakterystyce wytrzymałościowej jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, napawano 5,0% roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie w temperaturze 50°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:20, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 97°C w czasie 20 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dmF 35,0 g kwasu metakrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO 1 4,0 g DF, w temperaturze 95°C w czasie 30 minut przy module kąpieli 1:45, w atmosferze
PL 201 022 B3 azotu. Zaszczepione nici przepłukano gorącą, odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 15 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min i zważono.
Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 27,63% wagowych, wytrzymałość w węźle prostym 2,55 daN, wydłużenie 11,20%.
Zaszczepione nici napawano następnie 15% wodnym roztworem Gentamycyny, w temperaturze 41°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:20, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 4 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Przyrost masy nici był równy 8,05%. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy. Dla porównania takie same nici, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Gentamycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano przyrost masy nici równy 0,59%.
Wytworzone nici chirurgiczne, zawierające 8,05% wagowych Gentamycyny, poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne w stosunku do bakterii Staphylococcus aureus, Escherichia coli oraz Pseudomonas aeruginosa, stosując metodę bezpośrednią i krążkowo-dyfuzyjną. Strefy zahamowania wzrostu ww bakterii przy użyciu wytworzonej nici zawierającej antybiotyk, in vitro, mierzone zarówno metodą krążkowo-dyfuzyjną jak i bezpośrednią, były bardo podobne jak w przykładzie X. Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu stosowanych bakterii jak nici według wynalazku w 1-szym dniu badań.
W badaniach in vivo, po zszyciu tkanki podskórnej szczura wytworzonymi nićmi chirurgicznymi zawierającymi 8,05% Gentamycyny, przetrzymaniu ich w niej 1 tydzień i wyjęciu ze szczura, strefy zahamowania wzrostu ww bakterii, mierzone metodą krążkowo-dyfuzyjną, były również podobne do stref zahamowań wzrostu bakterii przy użyciu nici wytworzonych w przykładzie X.
W środowisku tkankowym doświadczalnego szczura zainfekowanym gronkowcem złocistym wytworzone nici chirurgiczne zawierające Gentamycynę sprawiają, że rana goi się bez wysięków i bez stanów zapalnych. Natomiast nici chirurgiczne niemodyfikowane nie sprzyjają szybkiemu gojeniu się rany, która wykazuje przy tym stany zapalne z wysiękiem ropnym.
P r z y k ł a d XII
Nici chirurgiczne z poli(tereftalanu etylenowego), w postaci przędzy jedwabnej, o właściwościach jak w przykładzie III, inicjowano jak w przykładzie VI, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 55°C w czasie 20 minut, po czym nici odżęto i ogrzewano w gorącym powietrzu o temperaturze 95°C w czasie 10 minut. Po inicjowaniu nici poddano działaniu kąpieli szczepiącej, zawierającej w 1 dm3: 70 g kwasu akrylowego, 5,0 g dyspergatora NNO i 4,5 g DF, w temperaturze 95°C w czasie 45 minut, przy module kąpieli 1:40 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 95°C w czasie 15 min, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min. i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 34,02% wagowych.
Zaszczepione nici napawano następnie 20,0% roztworem Neomycyny, w temperaturze 40°C w czasie 60 minut, przy module kąpieli 1:10, po czym wypłukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 8,57% wagowych. Na koniec nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Gentamycyny w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,61% przyrost masy nici.
Otrzymane nici chirurgiczne charakteryzowały się następującymi właściwościami: masą liniową 5,61 tex, wytrzymałością liniową 31,76 cN/tex, wydłużeniem ε = 7,83% i zawierały 8,57% wagowych Gentamycyny. Nici te poddano testom in vitro i in vivo na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie X. Wyniki badań były bardzo zbliżone do wyników badań z nićmi z przykładu X.
P r z y k ł a d XIII
Nici jak w przykładzie I, w stanie rozluźnionym, inicjowano, odżęto i ogrzewano jak w przykładzie II, z tym że proces napawania w toluenowym roztworze nadtlenku benzoilu przeprowadzono w temperaturze 52°C w czasie 20 minut. Nici te poddano działaniu kąpieli szczepiącej zawierającej w 1 dm3: 75 g kwasu akrylowego, 4,0 g dyspergatora NNO i 4,5 g DF w temperaturze 95°C w czasie 45 minut, przy module kąpieli 1:50 w atmosferze azotu. Zaszczepione nici przepłukano odmineralizowaną wodą o temperaturze 97°C w czasie 20 minut, wysuszono, ogrzewano w temperaturze 120°C przez 5 min. i zważono. Zaszczepione nici wykazywały przyrost masy równy 35,65% wagowych. Zaszczepione nici napawano następnie 18% wodnym roztworem Wankomycyny w temperaturze 39°C
PL 201 022 B3 w czasie 60 minut przy module kąpieli 1:12, po czym płukano je kilkakrotnie w odmineralizowanej wodzie o temperaturze pokojowej w czasie 3,5 minut i wysuszono do stałej masy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut. Uzyskano przyrost masy nici równy 8,05% wagowych. Następnie nici poddano sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy.
Dla porównania takie same nici chirurgiczne, ale nie szczepione kwasem akrylowym, napawano roztworem Gentamycy w warunkach jak wyżej. Uzyskano 0,51 % przyrost masy nici.
Wytworzone one nici wykazywały przyrost masy równy 35,65% wagowych, średnią wytrzymałość w węźle prostym 2,60 daN, wydłużenie 14,80%. Zawierały 8,05% wagowych Wankomycyny. Nici te poddano testom in vitro na właściwości antybakteryjne jak w przykładzie I. Strefy zahamowania wzrostu bakterii Staphylococcus aureus przy użyciu wytworzonych nici były równe: po 1-szym dniu 23,0 mm, po 5-tym dniu - 20 mm. Wzorzec leku wykazywał identyczne strefy zahamowania wzrostu bakterii jak nici wytworzone wg wynalazku, po 1-szym dniu badań.
Claims (1)
- Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych, polegający na tym, że poliestrowe nici chirurgiczne w postaci przędzy jedwabnej o wytrzymałości liniowej 32,28 cN/tex, masie liniowej 4,95 tex, wydłużeniu 5,14% i liczbie skrętów 400 ± 40 skr/m bądź plecionki o wytrzymałości w węźle prostym 2,73 daN, grubości 0,410 mm, wydłużeniu 6,2%, napawa się roztworem nadtlenku benzoilu w toluenie, o stężeniu 4 - 5%, w temperaturze 45 - 55°C w czasie 20 - 30 minut przy module kąpieli 1:10 - 1:25, po czym nici, uprzednio odżęte od nadmiaru roztworu nadtlenku i ogrzane w temperaturze 93 - 97 °C w czasie 15 - 20 minut, poddaje się szczepieniu w wodnej kąpieli szczepiącej zawierającej kwas akrylowy lub metakrylowy, w ilości 25 - 80 g/dm3 kąpieli oraz difenyl i/lub dyspergator bądź mieszaninę naftalenu i dyspergatora, w ilości 3,5 - 5,0 g/dm3 kąpieli przy module kąpieli od 1:35 do 1:50 w temperaturze 93 - 97°C w czasie 30 - 60 minut w atmosferze azotu, stosując jako dyspergator mieszaninę soli skondensowanych wielordzeniowych sulfokwasów aromatycznych, zaszczepione nici płucze się następnie w czasie 15 - 20 minut w odmineralizowanej wodzie o temperaturze około 97°C, suszy i napawa się wodnym roztworem antybiotyku o stężeniu 12 - 20% w temperaturze 37 - 41°C w czasie 60 - 90 minut przy module kąpieli napawającej 1:10 - 1:20, płucze w odmineralizowanej wodzie w czasie kilku minut, suszy w temperaturze 40°C w czasie 60 minut i poddaje sterylizacji promieniowaniem γ dawką 25 kGy, według patentu nr PL 199715 B1, znamienny tym, że w procesie napawania antybiotykiem stosuje się wodny roztwór antybiotyku z grupy linkozamidów o nazwie Dalacin, wodny roztwór antybiotyku z grupy aminoglikozydów jak Biodacyna, Neomycyna, Gentamycyna, wodny roztwór antybiotyku z grupy glikopeptydów o nazwie Wankomycyna.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL348548A PL201022B3 (pl) | 2001-07-06 | 2001-07-06 | Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL348548A PL201022B3 (pl) | 2001-07-06 | 2001-07-06 | Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL348548A3 PL348548A3 (en) | 2003-01-13 |
| PL201022B3 true PL201022B3 (pl) | 2009-02-27 |
Family
ID=20079108
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL348548A PL201022B3 (pl) | 2001-07-06 | 2001-07-06 | Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL201022B3 (pl) |
-
2001
- 2001-07-06 PL PL348548A patent/PL201022B3/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL348548A3 (en) | 2003-01-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Gallo et al. | Efficacy of silver coated surgical sutures on bacterial contamination, cellular response and wound healing | |
| Bucknall | Factors influencing wound complications: a clinical and experimental study | |
| Goëau-Brissonnière et al. | Treatment of vascular graft infection by in situ replacement with a rifampin-bonded gelatin-sealed Dacron graft | |
| Hu et al. | Development of braided drug-loaded nanofiber sutures | |
| Herrmann | Changes in tensile strength and knot security of surgical sutures in vivo | |
| US7513093B2 (en) | Method of preparing a packaged antimicrobial medical device | |
| JP2007525601A (ja) | ポリヒドロキシアルカノエート医療用織物および医療用繊維 | |
| JP2013500804A (ja) | Ｈｐｐｅ材料をベースとする外科用修復製品 | |
| Wang et al. | Black tantalic oxide submicro-particles coating on PEEK fibers woven into fabrics as artificial ligaments with photothermal antibacterial effect and osteogenic activity for promoting ligament-bone healing | |
| Benvenisty et al. | Control of prosthetic bacterial infection: evaluation of an easily incorporated, tightly bound, silver antibiotic PTFE graft | |
| RU2292224C1 (ru) | Способ изготовления сетчатого протеза с антимикробными свойствами для герниопластики | |
| La Rosa et al. | Antimicrobial activity of antibacterial sutures in oral surgery: a scoping review | |
| CN112358595A (zh) | 具有抗菌和形状记忆功能的手术缝合线及其制备方法 | |
| Pethile et al. | Effect of changing coating process parameters in the preparation of antimicrobial-coated silk sutures: An in vitro study | |
| CN108697821A (zh) | 具有嵌铜离子和铜离子释放涂层的生物相容性制品 | |
| Zhang et al. | An antibacterial and healing-promoting collagen fibril constructed by the simultaneous strategy of fibril reconstitution and ε-polylysine anchoring for infected wound repair | |
| Giacometti et al. | Efficacy of polycationic peptides in preventing vascular graft infection due to Staphylococcus epidermidis | |
| PL201022B3 (pl) | Sposób wytwarzania poliestrowych nici chirurgicznych o właściwościach antybakteryjnych | |
| Zhukovskii | Problems and prospects for development and production of surgical suture materials | |
| ES2348645T3 (es) | Material de sutura antimicrobiano biocompatible. | |
| Britt et al. | Comparative reaction of Mersilene and silk sutures implanted within the heart | |
| Mankodi | Studies on different type of sutures using aloe vera gel coating | |
| Shanmugasundaram et al. | Drug release and antimicrobial studies on polylactic acid suture | |
| CN110801539A (zh) | 一种纳米银/聚多巴胺/聚丙烯复合补片材料的制备方法 | |
| KR20180067477A (ko) | 4-헥실레조르시놀 처리 단계를 포함하는 실크 봉합사 제조 방법 |