PL190961B1 - Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej - Google Patents

Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej

Info

Publication number
PL190961B1
PL190961B1 PL328592A PL32859298A PL190961B1 PL 190961 B1 PL190961 B1 PL 190961B1 PL 328592 A PL328592 A PL 328592A PL 32859298 A PL32859298 A PL 32859298A PL 190961 B1 PL190961 B1 PL 190961B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
weight
parts
glucose
chitosan
cellulose
Prior art date
Application number
PL328592A
Other languages
English (en)
Other versions
PL328592A1 (en
Inventor
Henryk Struszczyk
Danuta Ciechańska
Krystyna Guzińska
Krystyna Wrześniewska-Tosik
Alojzy Urbanowski
Magdalena Kucharska
Maria Wiśniewska-Wrona
Original Assignee
Inst Wlokien Chem
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Wlokien Chem filed Critical Inst Wlokien Chem
Priority to PL328592A priority Critical patent/PL190961B1/pl
Publication of PL328592A1 publication Critical patent/PL328592A1/xx
Publication of PL190961B1 publication Critical patent/PL190961B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej na drodze hodowli bakterii octo­ wych na podłożu płynnym opartym na glukozie i jej pochodnych, znamienny tym , że podłoże płyn­ ne zawierające 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowe­ go, 0,01-10 części wagowych peptonu, 0,05 - 5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytrynowego, 0,4 - 40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochod­ nych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, zaszczepia się bakteriami octowymi z rodzaju Acetobacter, korzystnie szczepem bakterii Aceto- bacter xylinum i wstępnie inkubuje w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie mieszania z prędko­ ścią 10 - 250 obrotów/minutę w temperaturze 20 - 30°C w czasie 10 - 50 godzin, a następnie tak otrzymane inokulum dodaje się w ilości 5 - 20% objętościowych do podłoża hodowlanego zawiera­ jącego 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub, oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochodnych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowe­ go, 0,05-5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytryno­ wego, 0,4-40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,01 - 10 części wagowych peptonu i/lub siarczanu magnezowego, przy czym proces biosyntezy modyfikowanej celulozy bakteryjnej prowa­ dzi się w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie napowietrzania i mieszania podłoża z prędko­ ścią 10 - 250 obrotów/minutę, w temperaturze 15 - 40°C w czasie 1 - 30 dni, przy pH = 3 - 8.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej.
Z patentu polskiego PL 171 952 znany jest sposób wytwarzania celulozy bakteryjnej w postaci błon na drodze hodowli powierzchniowej szczepu bakterii Acetobacter xylinum P23. Szczep ten inkubowano na materiale celulozowym umieszczonym na powierzchni podłoża stałego o składzie: 20 części wagowych agaru, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 20 części wagowych glukozy, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 2 części wagowe fosforanu dwusodowego i 10 części wagowych etanolu lub szczep inkubowano na podłożu płynnym o składzie: 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 20 części wagowych glukozy, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 2 części wagowe fosforanu dwusodowego i 10 części wagowych etanolu, a następnie dodawano go do podłoża produkcyjnego o składzie: 20 - 30 części wagowych glukozy, 2 - 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 2 - 3 części wagowych peptonu, 1 - 1,5 części wagowych kwasu cytrynowego i 2 - 3 części wagowych fosforanu dwusodowego. Hodowlę prowadzono metodą powierzchniową w temperaturze 28 - 30°C w czasie 4 - 5 dni i otrzymywano błony celulozowe o zawartości 90 - 97% a-celulozy z wydajnością 2 - 3 g/l podłoża.
Znany jest także z polskiego patentu PL 185 337 (zgł. P. 317139) sposób wytwarzania celulozy bakteryjnej w postaci błon, przeznaczonej zwłaszcza na materiały opatrunkowe i biomateriały, polegający na tym, że szczep bakterii Acetobacter xylinum przenoszono na podłoże o składzie: 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 20 części wagowych glukozy, 2 części wagowych fosforanu dwusodowego, 10 części wagowych etanolu, 1000 części wagowych wody destylowanej o pH = 5,8 - 6 w ilości 1 eza na 25 - 50 ml podłoża i inkubowano w temperaturze 30°C w czasie 40 - 48 godzin. Próbkę uzyskaną po inkubacji intensywnie mieszano i otrzymanym w ten sposób inokulum szczepiono podłoże hodowlane o składzie: 30 części wagowych sacharozy, 3 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 2 części wagowe etanolu, 3 części wagowe fosforanu potasowego jednozasadowego, 5 części wagowych siarczanu amonowego, 0,5 części wagowych siarczanu magnezowego siedmiowodnego i 1000 części wagowych wody destylowanej, używając 5 - 10% wagowych inokulum w stosunku do masy podłoża. Po inkubacji w czasie 20 - 24 godz. podłoże rozlewano do kuwet i prowadzono hodowlę w temperaturze 30°C w czasie 70 - 72 godz. w warunkach stacjonarnych.
Z opisu europejskiego zgłoszenia patentowego nr 0200409 znany jest sposób wytwarzania celulozy bakteryjnej przez szczepy Acetobacter, Pseudomonas i inne metodą stacjonarną w temperaturze 20 - 40°C w czasie od 1-30 dni, przy pH = 3 - 9, przy zastosowaniu jako źródła węgla w podłożu glukozy, sacharozy, maltozy czy skrobi. Otrzymana w ten sposób celuloza bakteryjna charakteryzowała się wysokim modułem sprężystości i posiadała praktyczne zastosowanie w elektronice.
Znane są również z publikacji międzynarodowego zgłoszenia patentowego nr WO 86/02095, patentu japońskiego nr A-120 159/85 i patentu brytyjskiego nr 2,131,701 sposoby wytwarzania celulozy bakteryjnej w drodze hodowli statycznej i dynamicznej bakterii Acetobacter xylinum w temperaturze 20 - 28°C w czasie od kilku godzin do kilkunastu dni na podłożu hodowlanym zawierającym fruktozę, glukozę, sorbitol lub mannitol jako źródło węgla. Otrzymana celuloza bakteryjna charakteryzowała się właściwościami umożliwiającymi zastosowanie tego polimeru jako opatrunku medycznego lub sztucznej skóry.
Z opisu patentu amerykańskiego nr 5,144,021 znany jest sposób produkcji celulozy bakteryjnej w formie włóknistej w drodze hodowli dynamicznej bakterii Acetobacter xylinum prowadzonej w fermentorze w temperaturze 30°C przy pH = 4,5 - 5,5, przy zastosowaniu jako źródła węgla w podłożu glukozy lub fruktozy, bądź mono- i disacharydów pochodzących z hydrolizatów drewna, hydrolizatów skrobiowych lub melasy. Zastosowanie w tym procesie wyizolowanych bakterii wykazujących zredukowaną zdolność do produkcji kwasu glukonowego i keto-glukonowego pozwalało na zwiększenie wydajności procesu biosyntezy do 0,1 g/l podłoża/godz..
Znany jest z monografii „Cellulosics: Chemical, Biochemical and Materiał Aspects” wydawnictwo Ellis Horwood, 1993 rok, str. 35 - 40, sposób syntezy celulozy bakteryjnej metodą statyczną na podłożu hodowlanym zawierającym jako źródło węgla N-acetyloglukozoaminę. Celuloza bakteryjna z wbudowanymi w łańcuch monomerami N-acetyloglukozoaminy charakteryzowała się właściwościami zbliżonymi do chityny oraz zwiększoną podatnością na działanie enzymów chitynolitycznych m.in. lizozymu i chitynazy.
PL 190 961 B1
Znane metody wytwarzania celulozy bakteryjnej nie pozwalają na otrzymywanie polimeru o kontrolowanej, założonej charakterystyce cząsteczkowej, nadcząsteczkowej i morfologicznej oraz kontrolowanym wbudowaniu merów N-acetyloglukozoaminy w jego łańcuchy.
Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej według wynalazku polega na tym, że podłoże płynne zawierające 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 0,01 - 10 części wagowych peptonu, 0,05 - 5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytrynowego, 0,4 - 40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochodnych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, zaszczepia się bakteriami octowymi z rodzaju Acetobacter, korzystnie Acetobacter xylinum i wstępnie inkubuje w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie mieszania z prędkością 10 - 250 obrotów/minutę, w temperaturze 20 - 30°C w czasie 10-50 godzin. Tak otrzymane inokulum dodaje się w ilości 5 - 20% objętościowych do podłoża hodowlanego zawierającego 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochodnych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 0,05 - 5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytrynowego, 0,4 - 40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,01 - 10 części wagowych peptonu i/lub siarczanu magnezowego. Proces biosyntezy modyfikowanej celulozy bakteryjnej prowadzi się w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie napowietrzania i mieszania podłoża z prędkością 10 - 250 obrotów/minutę, w temperaturze 15 - 40°C w czasie 1 - 30 dni, przy pH = 3 - 8.
W podłożu korzystnie stosuje się chitozan w postaci mikrokrystalicznej o średnim ciężarze cząsteczkowym 20 - 500 kDa i stopniu deacetylacji wynoszącym 70 - 95%.
Zaletą sposobu według wynalazku jest możliwość wytworzenia celulozy bakteryjnej o założonej modyfikacji jej struktury, zarówno cząsteczkowej, nadcząsteczkowej, morfologicznej jak i chemicznej. Zaletą sposobu według wynalazku jest również kontrolowany przebieg biosyntezy celulozy bakteryjnej, pozwalający na wytwarzanie polimeru o założonym średnim ciężarze cząsteczkowym, stopniu polidyspersji, stopniu krystaliczności i porowatości. Kontrolowany przebieg biosyntezy zapewniają warunki jej prowadzenia oraz skład podłoża hodowlanego, a przede wszystkim ilość i rodzaj poliaminosacharydów oraz ich struktura chemiczna i fizyko-chemiczna.
Celuloza bakteryjna otrzymywana sposobem według wynalazku ma wprowadzone do łańcucha mery glukozaminy powstałej w wyniku degradacji stosowanych w podłożu poliaminosacharydów, oligoaminosacharydów czy ich pochodnych, w tym soli, takich jak: octan, mleczan, chlorowodorek czy cytrynian, a także sulfochitozan czy karboksymetylochitozan. W stosowanym podłożu zachodzi kontrolowany proces degradacji poliaminosacharydów i ich pochodnych uzależniony od czasu, temperatury, odczynu środowiska jak i obecności enzymów. Ilość wbudowanych merów glukozaminy uzależniona jest od warunków biosyntezy oraz rodzaju i ilości poliaminosacharydów, oligoaminosacharydów i ich pochodnych. Odpowiedni dobór modyfikatora poli- lub oligoaminosacharydowego pozwala na biosyntezę produktu charakteryzującego się szeregiem cennych właściwości, takich jak: bioaktywność, biodegradowalność, biozgodność czy adhezyjność. Pod względem wymienionych właściwości bakteryjna celuloza otrzymywana sposobem według wynalazku przewyższa celulozy bakteryjne wytwarzane znanymi metodami.
Sposób według wynalazku umożliwia prowadzenie biosyntezy celulozy w sposób statyczny lub dynamiczny. W metodzie statycznej otrzymuje się celulozę bakteryjną o zawartości a-celulozy powyżej 92 % z wydajnością 3,0 g/1 podłoża, podczas gdy w metodzie dynamicznej celulozę bakteryjną zawierającą a-celulozę powyżej 88 % z wydajnością 1,2 g/l podłoża.
Modyfikowana celuloza bakteryjna otrzymana sposobem według wynalazku ze względu na swe właściwości, takie jak: wysoka adhezyjność, moduł Younga, zawartość a-celulozy, higroskopijność oraz biozgodność czy biodegradowalność znajduje zastosowanie w przemyśle radio-technicznym, papiernictwie, medycynie czy kosmetyce.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej poniższe przykłady.
P r z y k ł a d I. Podłoże płynne zawierające 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagową kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu, 10 części wagowych mikrokrystalicznego chitozanu w postaci zawiesiny o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 480 kD i stopniu deacetylacji równym 85,6% i 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0, zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi na podłożu płynnym o składzie: 30 części wagowych ekstraktu
PL 190 961 B1 drożdżowego, 3 części wagowych węglanu wapnia, 30 części wagowych etanolu i 1000 części wagowych wody destylowanej i mieszano z prędkością 120 obr/min. w czasie 48 godz. w temperaturze 30°C. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu, 10 części wagowych mikrokrystalicznego chitozanu w postaci zawiesiny o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 480 kD i stopniu deacetylacji równym 85,6% oraz 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy prowadzono metodą statyczną w czasie 144 godz. w temperaturze 30°C. Błonki celulozowe po oddzieleniu od podłoża hodowlanego przemywano wodą destylowaną a następnie sterylizowano w l % wodnym roztworze wodorotlenku sodowego w temperaturze 121°C w czasie 15 min. Błonki po sterylizacji przemywano wodą destylowaną, a następnie zalewano 1% wodnym roztworem kwasu octowego i ponownie wodą destylowaną do odczynu obojętnego, odprasowywano wodę i suszono w temperaturze 110°C.
Otrzymano 3,0 części wagowe celulozy o zawartości 95,5% a-celulozy, średnim stopniu polimeryzacji DP = 1020, indeksie krystaliczności IKr = 78,5 %, wskaźniku wtórnego pęcznienia WRV = 121,6%, energii wiązań wodorowych Eh = 15,7 - 29,6 kJ/mol, wytrzymałości mechanicznej 36,9 MPa oraz wydłużeniu 6,8 %.
Dla porównania podłoże płynne zawierające: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagową kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu i 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0, zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi na podłożu płynnym o składzie: 30 części ekstraktu drożdżowego, 3 części wagowe węglanu wapnia, 30 części wagowych etanolu i 1000 części wody destylowanej i mieszano na wytrząsarce w czasie 48 godz. w temperaturze 30°C. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10 % obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu i 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy prowadzono metodą statyczną w czasie 144 godz. w temperaturze 30°C. Błonki celulozowe po oddzieleniu od podłoża hodowlanego przemywano wodą destylowaną a następnie sterylizowano w 1% wodnym roztworze wodorotlenku sodowego w temperaturze 121°C w czasie 15 min.
Błonki po sterylizacji przemywano wodą destylowaną, a następnie zalewano 1% wodnym roztworem kwasu octowego i ponownie wodą destylowaną do odczynu obojętnego, odprasowywano wodę i suszono w temperaturze 110°C.
Otrzymano 2,8 części wagowych celulozy o zawartości 94,9% a-celulozy, średnim stopniu polimeryzacji DP = 1180, indeksie krystaliczności IKr = 71,1%, wskaźniku wtórnego pęcznienia WRV = 124,0%, energii wiązań wodorowych Eh = 17,1 - 30,2 kJ/mol, wytrzymałości 62,9 MPa.
P r z y k ł a d II. Podłoże płynne składające się z: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowych fosforanu dwusodowego, 1 część wagowej kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu, 1 części wagowej sulfochitozanu zawierającego 10,5 % wag. siarki i 1000 części wody destylowanej, o pH = 6,0, zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% objętościowych dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu, 1 część wagowa sulfochitozanu zawierającego 10.5 % wag. siarki i 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy oraz jej oczyszczanie prowadzono jak w przykładzie I.
Otrzymano 2,8 części wagowych celulozy o zawartości 92,1% a-celulozy, DP =1197, IKr = 78,3%, WRV = 180,2%, Eh = 15,7 - 26,9 kJ/mol, wytrzymałości mechanicznej 26,3 MPa.
P r z y k ł a d III. Podłoże płynne zawierające: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagową kwasu cytrynowego, 10 części wagowych etanolu i 1000 części wagowych wody destylowanej zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 5 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 10 części
PL 190 961 B1 wagowych etanolu, 5 części wagowych mikrokrystalicznego chitozanu w postaci zawiesiny o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 67 kD i stopniu deacetylacji równym 71,3% oraz 1000 części wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy oraz jej oczyszczanie prowadzono jak w przykładzie I.
Otrzymano 2,0 części wagowe celulozy o zawartości 97,3% a-celulozy, DP=668, IKr = 77,8 %, WRV = 138,3 %, Eh =18,5 - 28,7 kJ/mol i wytrzymałości mechanicznej wynoszącej 3,78MPa.
P r z y k ł a d IV. Podłoże płynne jak w przykładzie III zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 5 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 10 części wagowych etanolu, 5 części wagowych chitozanu w postaci stałej o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 34,5 kD i stopniu deacetylacji równym 89,1% oraz 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy oraz jej oczyszczanie prowadzono jak w przykładzie I.
Otrzymano 2,3 części wagowych celulozy o zawartości 84,1% a-celulozy, DP=518, IKr = 74,6%, WRV = 141,9 %, Eh = 5,4 - 29,5 kJ/mol i wytrzymałości mechanicznej wynoszącej 3,69MPa.
P r z y k ł a d V. Podłoże płynne jak w przykładzie III zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 5 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 10 części wagowych etanolu, 5 części wagowych chitozanu w postaci stałej o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 250 kD i stopniu deacetylacji równym 87,8% oraz 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy oraz jej oczyszczanie prowadzono jak w przykładzie I.
Otrzymano 1,8 części wagowych celulozy o zawartości 83,6% a-celulozy, DP=702, IKr = 78,1%, WRV = 161,9 %, Eh = 5,0 - 21,6 kJ/mol i wytrzymałości mechanicznej wynoszącej 10,6MPa.
P r z y k ł a d VI. Podłoże płynne o składzie jak w przykładzie III zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie: 5 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 10 części wagowych etanolu, 5 części wagowych mikrokrystalicznego chitozanu w postaci błony o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 42 kD oraz 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy oraz jej oczyszczanie prowadzono jak w przykładzie I.
Otrzymano 2,0 części wagowe celulozy o zawartości 88,3% a-celulozy, DP=695, IKr = 77,7 %, WRV = 168,2 %, Eh = 18,5 - 24,6 kJ/mol i wytrzymałości mechanicznej wynoszącej 23,lMPa.
P r z y k ł a d VII. Podłoże płynne zawierające: 20 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowych fosforanu dwusodowego, 1 część wagową kwasu cytrynowego, 20 części wagowych etanolu i 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0 zaszczepiono bakteriami Acetobacter xylinum przechowywanymi i mieszanymi jak w przykładzie I. Otrzymane w ten sposób inokulum w ilości 10% obj. dodawano do podłoża hodowlanego o składzie 10 części wagowych glukozy, 5 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 5 części wagowych peptonu, 3 części wagowe fosforanu dwusodowego, 1 część wagowa kwasu cytrynowego, 10 części wagowych etanolu, 10 części wagowych mikrokrystalicznego chitozanu w postaci zawiesiny o średnim ciężarze cząsteczkowym Mv = 67 kD i stopniu deacetylacji równym 71,3%, oraz 1000 części wagowych wody destylowanej, o pH = 6,0. Biosyntezę celulozy prowadzono metodą dynamiczną z napowietrzaniem w czasie 120 godz. w temperaturze 30°C przy prędkości mieszania 120 obrotów/min. Otrzymaną masę celulozową po oddzieleniu od podłoża hodowlanego przemywano wodą destylowaną, a następnie sterylizowano w 1 % wodnym roztworze wodorotlenku sodowego w temperaturze 121°C w czasie 15 min. Masę celulozową po sterylizacji przemywano wodą destylowaną, a następnie odprasowywano wodę i suszono w temperaturze 110°C.
Otrzymano 1,3 części wagowych celulozy o zawartości 89,1% a-celulozy, DP = 639, WRV = 200%, Eh= 5,9 - 36,0 kJ/mol.

Claims (2)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej na drodze hodowli bakterii octowych na podłożu płynnym opartym na glukozie i jej pochodnych, znamienny tym, że podłoże płynne zawierające 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 0,01 - 10 części wagowych peptonu, 0,05-5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytrynowego, 0,4-40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochodnych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, zaszczepia się bakteriami octowymi z rodzaju Acetobacter, korzystnie szczepem bakterii Acetobacter xylinum i wstępnie inkubuje w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie mieszania z prędkością 10 - 250 obrotów/minutę w temperaturze 20 - 30°C w czasie 10 - 50 godzin, a następnie tak otrzymane inokulum dodaje się w ilości 5 - 20% objętościowych do podłoża hodowlanego zawierającego 0,1 - 30 części wagowych poliaminosacharydów i/lub, oligoaminosacharydów, jak chitozan i/lub ich pochodnych, jak sulfochitozan czy karboksymetylochitozan, o stopniu polimeryzacji nie niższym niż 2, 0,4 - 40 części wagowych glukozy, 0,1 - 10 części wagowych ekstraktu drożdżowego, 0,05-5 części wagowych fosforanu dwusodowego, 0,02 - 2 części wagowych kwasu cytrynowego, 0,4 - 40 części wagowych etanolu oraz ewentualnie 0,01 - 10 części wagowych peptonu i/lub siarczanu magnezowego, przy czym proces biosyntezy modyfikowanej celulozy bakteryjnej prowadzi się w warunkach stacjonarnych bądź w trakcie napowietrzania i mieszania podłoża z prędkością 10 - 250 obrotów/minutę, w temperaturze 15 - 40°C w czasie 1 - 30 dni, przy pH = 3 - 8.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym. że w podłożu stosuje się chitozan w postaci mikrokrystalicznej o średnim ciężarze cząsteczkowym 20000 - 500000 i stopniu deacetylacji wynoszącym 70 - 95%.
PL328592A 1998-09-14 1998-09-14 Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej PL190961B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL328592A PL190961B1 (pl) 1998-09-14 1998-09-14 Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL328592A PL190961B1 (pl) 1998-09-14 1998-09-14 Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL328592A1 PL328592A1 (en) 2000-03-27
PL190961B1 true PL190961B1 (pl) 2006-02-28

Family

ID=20072831

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL328592A PL190961B1 (pl) 1998-09-14 1998-09-14 Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL190961B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL328592A1 (en) 2000-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
El-Naggar et al. Bacterial nanocellulose production using Cantaloupe juice, statistical optimization and characterization
Phisalaphong et al. Biosynthesis and characterization of bacteria cellulose–chitosan film
Heinze et al. Production and characteristics of cellulose from different sources
Klemm et al. Cellulose: fascinating biopolymer and sustainable raw material
Ha et al. Bacterial cellulose production from a single sugar α-linked glucuronic acid-based oligosaccharide
Rai et al. Biomedical engineering aspects of nanocellulose: A review
Campano et al. In situ production of bacterial cellulose to economically improve recycled paper properties
JP5732390B2 (ja) 酵母ピキア・パストリスの発酵によるキチン、その誘導体及びグルコース、マンノース及び/又はガラクトースを含有するポリマーの共生産のための方法
Foresti et al. Bacterial nanocellulose: Synthesis, properties and applications
Jamsheera et al. Production of Bacterial Cellulose from Acetobacter Species and Its Applications-A Review.
CN104911230B (zh) 原位发酵制备细菌纤维素的方法
Choi et al. Properties of bacterial cellulose produced in a pilot-scale spherical type bubble column bioreactor
CN104262662B (zh) 一种提高细菌纤维素膜塑性和柔韧性的方法
Pandit et al. Alginates production, characterization and modification
Mona et al. Microbial cellulose: production and application
CN108708216B (zh) 一种纸张表面施胶增强添加剂及其制备方法
FI80722C (fi) Gelbildande plysackarid, dess framstaellning ch anvaendning.
Ashjaran Properties and Applications of Bacterial Cellulose as a Biological Non-woven Fabric.
PL190961B1 (pl) Sposób wytwarzania modyfikowanej celulozy bakteryjnej
CN107674892A (zh) 一种高抗形变能力细菌纤维素的制备方法
Trovatti Bacterial cellulose
Chen Degradation studies on plant cellulose and bacterial cellulose by FT-IR and ESEM
JPS63199201A (ja) 改質された微生物産生セルロ−ス
Ghosh et al. 2. Nanocellulose: extraction and fabrication methodologies
Agustin et al. Incorporation of pectin during biosynthesis of bacterial cellulose by Gluconacetobacter xylinus InaCC B404: Possibility for producing green food packaging