PL166417B1 - Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL - Google Patents

Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL

Info

Publication number
PL166417B1
PL166417B1 PL30094090A PL30094090A PL166417B1 PL 166417 B1 PL166417 B1 PL 166417B1 PL 30094090 A PL30094090 A PL 30094090A PL 30094090 A PL30094090 A PL 30094090A PL 166417 B1 PL166417 B1 PL 166417B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
strain
thuringiensis
mutant
tenebrionis
thuringiensis subsp
Prior art date
Application number
PL30094090A
Other languages
English (en)
Inventor
Hanne Gurtler
Annette S Petersen
Original Assignee
Novo Nordisk As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Novo Nordisk As filed Critical Novo Nordisk As
Publication of PL166417B1 publication Critical patent/PL166417B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

1. Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytworzenia znacznie wiekszych ilosci ( d -endotoksyn niz szczep wyjsciowy, zna- mienny tym, ze szczep wyjsciowy lub mutanta szczepu wyjsciowego hoduje sie w podlozu plynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia sie na podlozu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzajacych zarodniki i/lub wytwarzajacych zarodniki sporadycznie, wybiera sie przez- roczyste kolonie i hoduje sie je w podlozu, które nie uplynnia sie po podgrzaniu, a nastepnie szczepy niewytwarzajace zarodników oddziela sie przez poddawanie kolonii dzialaniu podwyz- szonej temperatury. PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis, zdolnych do wytwarzania znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy.
Handlowe preparaty Bacillus thuringiensis są szeroko stosowane do biologicznego zwalczania szkodników. Zaletą tego insektycydu jest wysoka selektywność w stosunku do wąskiego zakresu owadów i podatność na rozkład biologiczny.
Handlowe preparaty Bacillus thuringiensis mogą być stosowane do czasu zbiorów bez niekorzystnych efektów.
Bacillus thuringiensis jest aerobową, sporującą bakterią w kształcie walca, wytwarzającą w czasie sporulacji jedną lub więcej inkluzji zwanych ciałami parasporalnymi. Te kryształy składają się z białek o wysokiej masie cząsteczkowej, zwanych δ-endotoksynami. δ-endotoksyny są składnikiem dostępnych w handlu preparatów Bacillus thuringiensis.
Zidentyfikowano wiele szczepów B. thuringiensis, aktywnych w różnych grupach owadzich gospodarzy. Dzielą się one na różne podgatunki w oparciu o ich antygeny rzęskowe. Szczególnie interesujące są Bacillus thuringiensis subspecies kurstaki i subspecies aizawai, stosowane do zwalczania szkodliwych motyli, Bacillus thuringiensis subsoecies israelensis stosowany do zwalczania szkodliwych muchówek, i Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis stosowany do zwalczania chrząszczy.
O pierwszej izolacji bakterii Bacillus thuringiensis toksycznej dla chrząszczy doniesiono w 1983 roku (A. Krieg i inni, Z and Ent., 96, 500-508, opublikowany europejski opis patentowy EP 0 149 162 A2).
Wyizolowana bakteria, oznaczona Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis, została złożona w Niemieckiej Kolekcji Mikroorganizmów pod numerem DSM 2803. Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis wyizolowano w 1982 roku z martwej poczwarki wołka zbożowego, Tenebrio molitor (Tenebrionidae /Wołkowate/, Coleoptera). Szczep wytwarza w każdej komórce jeden kryształ parasporalny, który jest płaski, w kształcie płytki i ma długość krawędzi od około 0,8 pm do 1,5 pm. Należy on do serotypu H8a, 8b i fenotypu C laseczki Bacillus thuringiensis (Krieg i inni, System Appl. Microbiol., 9, 138-141, 1987, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki 4766203, 1988).
Szczep ten jest toksyczny dla kilku larw chrząszczy zjadających liście (Chrysomelidare, Stonkowate), ale nieskuteczny przeciw gąsiennicom motyli, komarom (Diptera) i innym owadom.
Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis jest skuteczny w zwalczaniu larw stonki ziemniaczanej. Po pobraniu kryształu i sporów Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis lub izolowanych kryształów, larwy i niektóre przeobrażone formy dorosłe stonki ziemniaczanej (Leptinotarsa decemlineata) przestają jeść. Stadia larwalne L1-L3 giną w ciągu 1-3 dni (Schnetter i inni, „Fundamenta! and Applied Aspects of invertebrate patholohy“, ed. R. A. Samson i inni, Proceedings of the 4th Int. Colloquium of Invertebrate Pathology, str. 555, 1986).
Ostatnio wykazano, że Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis oprócz toksycznych dla chrząszczy kryształów wytwarza także inne ciała parasporalne, które są wrzecionowate, kuliste lub płytkowate (A. M. Huger i A. Krieg, J. Appl. Ent., 108,490-497,1989). Aktywność tego drugiego kryształu nie jest obecnie znana.
Do zwalczania szkodliwych chrząszczy stosuje się cztery dostępne w handlu preparaty Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis. Są to NOVODOR firmy Novo Nordisk A/S, TRIDENT firmy Sandoz, DiTerra firmy Abbott Laboratories Ins., i Foil firmy Ecogen.
O wyizolowaniu innych, szkodliwych dla chrząszczy, szczepów Bacillus thuringiensis doniesiono w 1986 roku (Hernnszadt i inni, Bio/Technology, t. 4,305-308,1986, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki 4 764 372,1988). Szczep ten oznaczony „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, M7, został zdeponowany w Northern Regional Research Laboratory, USA pod numerem NRRL-B-15939. Handlowy produkt, oparty na „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, został opracowany przez firmę Mycogen Corp.
Porównawcze badania Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, DSM 2803 i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, NRRL N-15939, obejmując charakterystykę fenotypową komórek wegetatywnych, charakterystykę toksycznych ciał parasporalnych i analizę zawartego plazmidowego DNA wykazały, że „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ jest identyczny z wcześniej
166 417 wyizolowanym szczepem DSM 2803, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis (Krieg i inni, J. Appl. Ent., 104,417-424,1987). Co więcej, sekwencja nukleotydowa genu, przewidywana sekwencja aminokwasowa aktywnej przeciw chrząszczom δ-endotoksyny Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ są identyczne.
W takich samych warunkach hodowli „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ wytwarza także wspomniany wyżej drugi typ kryształów. (A. M. Huger i A. Krieg, J. Appl. Ent., 108,490-497, 1989).
Według H. de Berjac i E. Frachon (Enthomophaga, 35(2), 233-240,1990), szczep „san diego“ jest podobny do „tenebrionis“ i nie może być uważany za odrębny podgatunek.
Użyteczność szczepów Bacillus thuringiensis do zwalczania szkodliwych chrząszczy zależy od wydajności i ekonomiki wytwarzania toksyn aktywnych przeciw chrząszczom i od siły działania wytworzonego produktu. Ta z kolei zależy od ilości δ-endotoksyny, która może być wytworzona przez fermentację szczepów Bacillus thuringiensis aktywnych przeciw chrząszczom.
B. thuringiensis stosuje się od wielu lat do produkcji insektycydów, i chociaż korzystnie byłoby otrzymać mutanta B. thuringiensis wytwarzającego większą ilość δ-endotoksyny, jak dotąd nie otrzymano takiego mutanta. Mutant wytwarzający większą ilość ó-endotoksyny zapewniałby większą wydajność i zwiększyłby ekonomikę produkcji toksyn B. thuringiensis, co pozwoliłoby na wytwarzanie preparatów B. thuringiensis o większej sile działania przy tych samych kosztach. To z kolei byłoby korzystne dla użytkownika, bo umożliwiałoby zmniejszanie objętości składowanych pestycydów, stosowanych na danym obszarze. Ponadto użytkownik stosowałby mniej pojemników, co miałoby wpływ na środowisko.
Dotychczas nie opisano wytwarzania δ-endotoksyny Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis przez mutację.
Jednym z problemów związanych z zastosowaniem B. thuringiensis subsp. tenebrionis do zwalczania larw chrząszczy jest stosunkowo mała skuteczność preparatów, co wymaga podawania stosunkowo dużych dawek preparatu na traktowane obszary, takich jak 5 do 10 litrów/ha w porównaniu do 1 do 2 litrów/ha innych preparatów B. thuringiensis i innych insektycydów.
Istnieje więc zapotrzebowanie na produkty o zwiększonej sile działania. Jedną z dróg rozwiązania problemu jest wytwarzanie stężonych preparatów. Jednakże powiększa to koszty produkcji w stosunku do oszczędności uzyskanych na przechowywaniu i transporcie.
Znacznie lepszym rozwiązaniem jest wyselekcjonowanie wariantu lub mutanta szczepu B. thuringiensis, zdolnego do wytwarzenia większej ilości δ-endotoksyny na komórkę.
Przedmiotem wynalazku jest sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu B. thuringiensis zdolnych do wytwarzania znacząco większych ilości toksyny niż szczep wyjściowy.
Wynalazek obejmuje sposób selekcji wariantu lub mutanta szczepu B. thuringiensis, wytwarzającego większe ilości toksyny, należącego do podgatunku tenebrionis. Taki wariant lub mutant stosuje się do sporządzania pestycydów zawierających jako substancję aktywną δ-endotoksyny wytwarzane przez mutanta lub wariant szczepu B. thuringiensis, wyselekcjonowanych sposobem według wynalazku, służących do zwalczania szkodników przez podawanie takiego środka szkodnikobójczego na obszarach występowania szkodników, podatnych na działanie δ-endotoksyn.
Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytwarzania znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy według wynalazku charakteryzuje się tym, że szczep wyjściowy lub mutanta szczepu wyjściowego hoduje się w podłożu płynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia się na podłożu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzających zarodników i/lub wytwarzających zarodniki sporadycznie, wybiera się przezroczyste kolonie i hoduje się je w podłożu, które nie upłynnia się po podgrzaniu, a następnie szczepy niewytwarzające zarodników oddziela się przez poddawanie kolonii działaniu podwyższonej temperatury.
W celu szczegółowego opisania wynalazku, mutant szczepu B. thuringiensis subsp. tenebrionis wytwarzający wysokie ilości ó-endotoksyny zdeponowano dla celów postępowania patentowego w
166 417
Deutsche Sammulung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Mascheroderweg 16, D-3300, Braunschweig, RFN w dacie wskazaną niżej. DSM, będąca depozytariuszem międzynarodowym na mocy Traktatu Budapesztańskiego, zapewnia ciągłość depozytu w zgodzie z regułą 9 tego traktatu.
Data depozytu: 10 sierpnia 1989
Znak deponenta: NB 176-1
Oznaczenie DSM: DSM 5480
Mutant DSM 5480 otrzymano przez mutację Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep DSM 5526, który zdeponowano na mocy Traktatu Budapesztańskiego, jak wykazano niżej:
Data depozytu: 14 września 1989
Znak deponenta: NB 125
Oznaczenie DSM: DSM 5526
Przedmiotem wynalazku jak wspomniano poprzednio, jest sposób selekcji wariantu lub mutanta spontanicznego szczepu Bacillus thuringiensis, wytwarzającego duże ilości aktywnej δ-endotoksyny w porównaniu do szczepu wyjściowego.
W tym kontekście, określenie „duża ilość“ korzystnie oznacza ilość co najmniej dwa razy większą lub jeszcze większą.
Mutanty, poddawane selekcjonowaniu sposobem według wynalazku, uzyksuje się przez traktowanie szczepu wyjściowego mutagenem. Jako mutagen stosuje się każdy odpowiedni chemiczny mutagen, taki jak N-metylo-N'-nitro-N-nitrozoguanidyna lub ester etylowy kwasu metanosulfonowego, albo szczep wyjściowy poddaje się działaniu pormieniowania elektromagnetycznego, takiego jak promieniowanie y, X, lub UV.
Korzystnie, wyselekcjonowane kolonie hoduje się w normalnej pożywce hodowlanej i poddaje się końcowej selekcji w celu znalezienia mutanta wytwarzającego większą ilość δ-endotoksyny.
Odpowiednią pożywkę modyfikuje się pożywką do sporulacji zawierającą fosforan (pożywka NSMP) tak jak opisał Johnson i współpracownicy „Spores VI“, ed. P. Gerhardt i wsp., str. 248-254, 1975.
Według wynalazku jako odpowiednią pożywkę stosuje się pożywkę NSMP wzbogaconą MgCl' oraz Gelrite firmy Kelco. W innej postaci wynalazku, w celu wytworzenia mutanta wytwarzającego δ-endotoksyny, szczep wyjściowy hoduje się w pożywce płynnej i selekcjonuje się spontaniczne mutanty po dodaniu kultur bulionowych do podłoża agarowego, odpowiedniego do selekcji mutantów niesporujących lub sporadycznie wytwarzających zarodniki.
Inny sposób szukania mutanta wytwarzającego dużo δ-endotoksyny obejmuje stosowanie bezpośrednio dużej ilości mutantów, przy użyciu odwirowania lub innych sposobów izolowania odpowiednich dla dużych ilości.
Korzystnie, jako szczep wyjściowy stosuje się szczep wybrany z grupy obejmującej B. thuringiensis subsp. kurstaki, B. thuringiensis subsp. aizawai, B. thuringiensis subsp. israelensis i B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
Korzystnie, wybiera się mutanta lub wariant Bacillus thuringiensis zdolnego do wytwarzania dużych, w porównaniu ze szczepem wyjściowym ilości owadobójczych δ-endotoksyn, zwłaszcza dwa razy większej ilości lub więcej, owadobójczych δ-endotoksyn, w porównaniu ze szczepem wyjściowym. Szczególnie korzystnie wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis należący do patotypu C. B. thuringiensis.
Szczególnie korzystnie, wybierając wspomniane wyżej mutanty lub warianty, wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis wykazującego działanie przeciwko tym samym szkodnikom co δ-endotoksyny wytwarzane przez wyjściowy B. thuringiensis, takim jak łuskoskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. kurstaki i/lub subsp. aizawai), dwuskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. israelensis) lub chrząszcze (mutanty B. thuringiensis subsp. tenebrionis).
Korzystnie także, wybiera się B. thuringiensis należący do podgatunku tenebrionis, wytwarzający δ-endotoksyny działającą przeciwko chrząszczom, a zwłaszcza mutanta lub B. thuringiensis tenebrionis zdolnego do wytwarzania δ-endotoksyny w ilości ponad 3-krotnie większej w porównaniu ze szczepem DSM 2803.
Szczególnie korzystnie, wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, zdolnego do wytwarzania parasporalnych kryształów o średniej długości krawędzi co najmniej
166 417 dwukrotnie większej niż średnia długość krawędzi kryształu parasporalnego wytwarzanego przez szczep wyjściowy, zwłaszcza zdolnego do wytwarzania kryształu parasporalnego o średniej długości krawędzi wynoszącej 2pm lub więcej.
Według wynalazku, korzystnie wybiera się również mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą niż częstotliwość sporulacji szczepu wyjściowego bądź szczepu DSM 2803.
W szczególnej postaci wynalazku wybiera się zdeponowanego mutanta szczepu B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 5480. Ten wybrany mutant wykazuje więcej niż dwukrotny wzrost wytwarzania δ-endotoksyny w porównaniu ze szczepem wyjściowym (DSM 5526). Mikroskopia kontrastowo-fazowa, skaningowa i prześwietleniowa mikroskopia elektronowa tego mutanta wykazała, że wysoka produktywność wynika ze zmian regulacji wytwarzania δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji, co powoduje wytwarzanie kryształów białka ponad pięć razy więszych, niż kryształy wytwarzane przez znane, aktywne przeciw chrząszczom szczepy Bacillus thuringiensis. Dzięki zastosowaniu sposobu według wynalazku usunięto bliską korelację pomiędzy wytwarzaniem kryształów i sporulacją. Mutant wyselekcjonowany sposobem według wynalazku wytwarza duże ilości δ-endotoksyny przed sporulacją.
Mutanty lub warianty spontaniczne szczepów B. thuringiensis, wyselekcjonowane sposobem według wynalazku, są zdolne do wytwarzania produktów szkodnikobójczych, zwłaszcza owadobójczych, wchodzących w skład środków szkodnikobójczych.
Sposób wytwarzania tych produktów polega na tym, że mutanta B. thuringiensis hoduje się w odpowiedniej pożywce zawierającej źródło węgla, azotu i inne składniki, znane fachowcom, w ciągu odpowiedniego okresu czasu, po którym odzyskuje się δ-endotoksyny.
δ-endotoksynę wytworzoną w podany wyżej sposób stosuje się w środkach pestycydowych jako składnik aktywny, samą lub w połączeniu z innymi produktami czynnymi biologicznie, a także z dopuszczalnymi w rolnictwie rozcieńczalnikami lub nośnikami. Środki takie mają postać kompozycji i preparatów pestycydowych, które zawierają δ-endotoksyny wytwarzane przez B. thuringiensis wyselekcjonowane sposobem według wynalazku, w mieszaninie z dopuszczalnymi w rolnictwie rozpuszczalnikami lub nośnikami.
Mogą to być kompozycje i preparaty pestycydowe zawierające δ-endotoksyny wytwarzane przez B. thuringiensis, których skład pestycydowy w formie ciekłej ma moc przynajmniej 15 OOOBTTU/g odpowiadające przynajmniej 3% wagowych szkodliwego dla chrząszczy białka krystalicznego lub których skład pestycydowy w formie suchej ma moc przynajmniej 50 OOOBTTU/g, odpowiadającą przynajmniej 10%o wagowych szkodliwego dla chrząszczy białka krystalicznego.
Kompozycje pestycydowe wytworzone z DSM 5480 mają przynajmniej dwa razy większą moc, niż kompozycja pestycydowa wytworzona z DSM 2803 lub z innych, aktywnych przeciw chrząszczom szczepów Btt.
Kompozycje takie stosuje się w postaciach znanych fachowcom, na przykład w postaci zawiesiny, emulsji wodnych, pyłów, pyłów dyspergujących, koncentratów emulgujących lub granulek. Ponadto stosuje się je w postaci odpowiedniej do bezpośredniego użycia, lub jako koncentrat pierwotnej kompozycji, który wymaga rozpuszczenia w odpowiedniej ilości wody lub w innym rozpuszczalniku przed podaniem.
Stężenie owadobójczo aktywnej δ-endotoksyny B. thuringiensis w takich kompozycjach szkodnikobójczych, stosowanej osobno lub w połączeniu z innym pestycydem, i podawanej na rośliny, korzystnie wynosi od około 0,5 do około 25% wagowych szczególnie od 1 do 15% wagowych.
Te kompozycje pestycydowe stosuje się do zwalczania szkodników, nanosząc je na obszary zaatakowane przez te szkodniki. W szczególnym przypadku, kompozycje te stosuje się do zwalczania szkodników takich jak motyle, muchówki i chrząszcze, szczególnie chrząszcze, takie jak stonka ziemniaczana.
Szkodniki zwalcza się, stosując ciekłą kompozycję pestycydową w dawce 2,8 litra/ha, lub 0,56 kg/ha suchej kompozycji pestycydo wej.
166 417
Ί
Aktywny preparat B. thuringiensis lub kompozycję zawierającą ten preparat podaje się bezpośrednio na rośliny, na przykład przez rozpylanie cieczy lub pyłów w czasie, kiedy szkodniki zaczynają pojawiać się na roślinach. Korzystnie rozpyla się ciecz. Ogólnie ważne jest skuteczne niszczenie szkodników we wczesnych stadiach rozwoju larwalnego, ponieważ w tym okresie rośliny są narażone na największe uszkodzenia.
Przykładl. Wyizolowano mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis wytwarzającego dwa razy więcej δ-endotoksyny. Mikroskopia kontrastowo-fazowa, skaningowa i prześwietleniowa mikroskopia elektronowa tego mutanta wykazała, że wysoka produktywność wynika ze zmian regulacji wytwarzania δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji, co powoduje wytwarzanie kryształów białka ponad pięć razy większych niż kryształy wytwarzane przez znane, aktywne przeciw chrząszczom szczepy B. thuringiensis. Bliską korelację pomiędzy wytwarzaniem kryształów, sporulację usunięto w wyniku czego, mutant wytwarza duże ilości δ-endotoksyny przed sporulacją. Wytwarzanie wysokowydajnego mutanta.
Zarodniki szczepu DSM 5526 B. thuringiensis subsp. tenebrionis napromieniowano promieniowaniem y dawką 7 kGy. Napromieniowane zarodniki wysiano na płytki agarowe z podłożem NSMP (zmodyfikowana pożywka do sporulacji zawierająca fosforan, jak opisał Johnson i wsp. w „Spores VI“, ed. P. Gerhardt, wsp., str. 248-254,1975), które jest odpowiednie do selekcji bakterii niesporujących lub sporujących sporadycznie.
Płytki agarowe z NSMP inkubowano w temperaturze 30°C w ciągu 2-3 dni. Półprzezroczyste kolonie przesiano na podłoże NSMP gelrite (NSMP wzbogacone MgCU (0,57 g/l) i Gerlite, Kelco (20 g/l)).
Płytki agarowe z NSMP gerlite inkubowano w temperaturze 90°C w ciągu 1 godziny, a następnie w ciągu 1-2 dni w temperaturze 30°C.
Selekcjonowano mutanty dobrze rosnące na płytkach NSMP gerlite. W ten sposób odrzucono wszystkie niesporujące kolonie, które nie rosną po ogrzaniu.
Wyselekcconowane mutanty hodowano na wytrząsarce w butelkach zawierających pożywkę dostępną w handlu. Ilość wytworzonej δ-endotoksyny określono metodą immunologiczną opisaną poniżej.
Selekcjonowano tylko mutanty wytwarzające ilości δ-endotoksyny znacząco większe niż szczep wyjściowy.
Cechy morfologiczne wyselekcjonowanych mutantów na podłożu stałym i płynnym określono przy pomocy mikroskopii kontrastowo-fazowej (X 2500) i skaningowej i prześwietleniowej mikroskopii elektronowej. Liczono liczbę zarodników i kryształów i określono wielkość kryształów białkowych.
Jeden z otrzymanych mutantów (DSM 5480) został wybrany ze względu na swoją zdolność do wytwarzania δ-endotoksyny.
Ilość δ-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480 jest porównywalna z DSM 2803 oryginalnie wyizolowanego Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep DSM 5526 stosowanego do wytwarzania NOVODOR, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep NB 178, wyizolowany z produktu Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis TRIDENT firmy Sandoz, Bacillus thuringiensis tenebrionis TRIDENT z roku 1989, szczep NB 198, firmy Sandoz Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis wyizolowany w 1990 roku z produktu TRIDENT, „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, szczep NRRL-B-15939 i szczep NB 197 wyizolowany w 1990 roku z produktu M-ONE „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ firmy Mycogen. Jak pokazano w tabeli 1 w przykładzie II, mutanty wyselekcjonowane sposobem według wynalazku wytwarzają 2-3,5 razy więcej δ-endotoksyny niż aktywny przeciw chrząszczom, dostępny obecnie szczep Bacillus thuringiensis.
Przykład II. W tym przykładzie porównano ilość δ-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis z ilością wytwarzaną przez Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis szczep DSM 2803 (oryginalnie wyizolowany Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis), DSM 5526 (szczep produkcyjny Novo-Nordisk), NB 178 i NB 198 (szczepy produkcyjne Sandoz), Bacillus thuringiensis subsp. san diego, szczep NRRL-B 15939 i NB 197
166 417 (szczepy produkcyjne Mycogen) w podłożu w temperaturze 30°C na skosach agarowych z kompozycji następujących składników, wyrażonych w gramach na litr wody destylowanej:
Pepton, Difco 5 g/iitr
Ekstrakt mięsny, Difco 3 g/litr Agar, Difco 10 g/iitr pH 7,0 ml zawiesiny komórek każdego szczepu przeniesiono do 100 ml pożywki produkcyjnej w 500 ml kolbie Erlenmeyera z przegrodzonym dnem. Pożywka produkcyjna zawierała następujące składniki: (wyrażone w gramach na litr wody):
mąka sojowa 50 g/litr hydrolizat skrobiowy 40 g/iitr KH2PO4 l,77g/lirr
K2HPO4 4,53g/itrr pH 7,0
Zaszczepione kolby inkubowano w temperaturze 30°C na wytrząsarce (250 obr/min). Po 96 godzinach inkubacji immunologicznie określono ilość wytworzonej δ-endotoksyny.
Ilość wytworzonej δ-endotoksyny określono metodą immunoelektroforezy rakietkowej (RIE) i testu immunofotometrycznego (PIA) przy użyciu przeciwciał powstałych przeciwko oczyszczonym kryształom białkowego Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis.
Odważono 400 mg bulionu z każdej hodowli i dodano 7 ml buforu fosforanu trójsodowego (0,125 M, pH 12). Zawiesinę wytrząsano w ciągu 1 godziny w celu rozpuszczenia kryształów białkowych δ-endotoksyny.
Próbki wirowano w ciągu 15 minut z szybkością 3.500 obrotów/minutę, supernatant testowano metodą RIA w obecności surowicy odpornościowej powstałej przeciwko oczyszczonym kryształom białkowym B. thuringiensis subsp. tenebrionis. Ilość δ-endotoksyny określano w stosunku do standardu o znanej zawartości kryształów białkowych.
Określano także stężenie kryształów białkowych metodą immunofotometryczną. Kryształy białkowe rozpuszczono w roztworze alkalicznym. Rozpuszczone białka wytrącono przeciwciałami. Szybkość reakcji określono turbidometrycznie. Ilość δ-endotoksyny określono w stosunku do wzorca o znanej zawartości kryształów białkowych.
Antygeny krystaliczne do produkcji przeciwciał stosowanych w tych testach otrzymano z kryształów wyizolowanych z B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
Poliklonalne przeciwciała powstały po nastrzykiwaniu podskórnym co dwa tygodnie królików dawką 0,25 mg antygenu krystalicznego.
Otrzymane wyniki pokazano w tabelach 1a i 1b. Wydajność δ-endotoksyny wyrażono w BTTU/g (jednostek na gram pożywki bulionowej, określoną metodą immunoforezy rakietkowej RIE, lub metodą immunofotometryczną, PIA). Wartość dla czystych kryształów białkowych B. thuringiensis subsp. tenebrionis wynosi 500 000 BTTU/g. Wartości w tabeli la stanowią wartości średnie z 6-7 niezależnych fermentacji, a w tabeli 1b z 3 niezależnych fermentacji.
Tabela 1a
Wytwarzanie δ-endotoksyny przez szczepy Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis na wytrząsarce
Szczep _ Ilość δ-endotoksyny (BTTU/g)
RIE PIA
DSM 2803 676 12931
NRRL-B 15939 747 1126
NB 178 986 1728
DSM 5526 1097 1860
DSM 5480 2382 4169
166 417
Tabela 1b
Wytwarzanie δ-endotoksyny przez szczepy Bacillus thuringiensis subsp. tenebnoms na wytrząsarce
Szczep Ilość δ-endataksyny, RIE (BTTU/g)
NB 197 1103
NB 198 1237
DSM 5480 2867
Z tabel la i 1b wynika, że szczep DSM 5480 wytwarza ponad trzy razy więcej δ-endotoksyny niż wyjściowy szczep B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 2803: „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, szczep NRRL-B 15939 i ponad dwa razy więcej niż szczepy stosowane obecnie do przemysłowej produkcji preparatów Bacillus thurmgiersis subsp. tenebrioms.
Mikroskopia kontrartowo-fazowa i skaningowa o raz prześwietleniowa mikroskopia elektronowa mutanta DSM 5480 Bacillus thuringiersis subsp. tenebrianis wykazała, że wytwarzane przez niego kryształy białkowe są dużo większe niż odpowiednie kryształy białkowe wytwarzane przez Bacillus thuringiensis subsp. tenebrioms szczepy DSM 2803, DSM 5526, NB 178, NB 198 i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15939 i NB 197.
Pożywkę bulionową mutanta DSM 5480, Bacillus thuringiensis subsp. terebrianis poddano testowi na aktywność przeciw larwom stonki ziemniaczanej. Zwiększona ilość ó-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480 określona metodami immunologicznymi znalazła odbicie w aktywności biologicznej przeciw larwom stonki ziemniaczanej.
Przykład III. W tym przykładzie porównano sporulację i wytwarzanie kryształów parasporalnych przez B. thuringiensis subsp. tenebrioms, szczepy DSM 2803, DSM 5526, DSM 178, DSM 198, mutant DSM 5480 i „B. thuringiensis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15393 i NB 197 w podłożu stałym i płynnym.
Każdy szczep hodowano 2 dni w temperaturze 30°C na płytkach agarowych o następującym składzie wyrażonym w gramach na litr destylowanej wody:
Pepton, Difco 5 g/litr
Ekstrakt mięsny, Difco 3 g/litr Agar, Oifco 20 g/lili· pH 7,0
Każdy szczep hodowano także na pożywce płynnej. Wszystkie szczepy hodowano w ciągu 17 godzin w temperaturze 30°C na skosach agarowych. 5 ml zawiesiny komórek każdego szczepu przeniesiono do 500 ml kolb Erlenmeyera z przegrodzonym dnem, zawierających 100 ml pożywki.
Pożywka składała się z następujących składników w podanych niżej ilościach: (wyrażonych w gramach na litr wody):
Pożywka płynna Ekstrakt drożdżowy 5 g/ldi
Trypton 5 g/litr
Glukoza 1 g/litr
KH2PO4 0,8 g/llir pH 7,0
Zaszczepione kolby ^Lubowano w temperaturze 30°C na wytrząsarce (250 obrotów/minutę) w ciągu 96 godzin.
Morfologię szczepów na podłożu stałym i płynnym badano codziennie metodą mikroskopii kontrastowo-fazowej (X 2500). Liczbę przetrwalników i kryształów liczono oraz określano wielkość kryształów parasporalnych. Kilka wyselekcjonowanych próbek badano także metodą skaningowej i prześwietleniowej mikroskopii elektrono wej.
Wszystkie szczepy B. thurirgiersis subsp. tenebrioms, szczepy DSM 2803, DSM 5526, NB 178 i NB 198, „B. thuringiersis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15939 i NB 197 przetrwalnikują dobrze w obu pożywkach. Przed lizą komórek każda komórka zawierała przetwarzalnik i kryształ parasporalny. Kryształ miał długość od 0,4 do 0,9-1,1 ym, do czasu lizy komórki. Średnia długość wynosiła 0,6-0,7//m.
166 417
Mutant DSM5480 wytwarzał tylko niewiele przetrwalników (<106 przetrwalników/ml) w podłożu stałym i podłożu płynnym. Przed lizą komórek większość komórek zawierała długi kryształ białkowy, ale nie zawierała przetrwalników. Wielkość kryształów białkowych wynosiła od 0,4-0,7/um do 5,0 (Jm, średnia długość wynosiła 2,2-2,3//m.
Ultrastrukturalna analiza komórek z tych podłóż metodą prześwietleniowej mikroskopii elektronowej wykazała, że sporulacja mutanta rozpoczynała się, ale nie była całkowita do czasu lizy komórki. Sporulacja w różnych komórkach osiągała różne stadium. W komórkach, w których sporulacja osiągnęła zaledwie II etap (tworzenie przesłony presporalnej), kryształ białkowy wypełniał wnętrze komórki.
W pożywce produkcyjnej (Przykład II) mutant wytwarzał większą liczbę sporów (107-108 sporów/ml). W tym podłożu częstość sporulacji mutanta była 10-100 razy niższa niż w przypadku szczepu wyjściowego.
Tak więc mutant zachowuje zdolność do wytwarzania normalnych przetrwalników, jednakże zależy ona w dużej mierze od podłoża.
Wielkość kryształów białkowych wytwarzanych przez poszczególne szczepy pokazano w tabelach 2a i 2b.
Tabela 2a
Wielkość kryształów białkowych wytwarzanych przez aktywne przeciw chrząszczom dostępne obecnie szczepy B. thuringiensis
Szczep Długość kryształu białkowego (μη)
Minimum Maksimum S'rednia
DSM2803 0,4 0,9 0,7
NRRL-B 15939 0,4 0,9 0,7
NB 178 0,5 0,9 0,7
DSM5526 0,4 0,9 0,7
DSM5480 0,7 5,0 2,3
Tabela 2b
Wielkość kryształów białkowych wytworzonych przez aktywne przeciw chrząszczom dostępne obecnie szczepy B. thuringiensis
Długość kryształu białkowego (μη)
Minimum Maksimum S'rednia
NB 197 0,4 0,7 0,6
NB 198 0,4 1,1 0,7
DSM5480 0,4 4,2 2,0
Z tabel 2a i 2b wynika, że mutant 5480 wytwarza dużo większe kryształy białkowe niż wszystkie znane obecnie szczepy B. thuringiensis aktywne przeciw chrząszczom.
Z uzyskanych danych wynika, że w szczepie zmutowanym, zmieniła się regulacja produkcji δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji.
Mutant wydaje się wytwarzać krystaliczne białko zanim rozwinie spory, dając w ten sposób komórkom dłuższy czas na wytwarzanie ó-endotoksyny i w rezultacie komórki produkują dużo więcej krystalicznego białka zanim nastąpi liza, niż w szczepie wyjściowym.
W zależności od dostępnych składników odżywczych i rozmiarów kryształów białkowych w komórkach do czasu sporulacji, przed lizą komórek rozwijają się normalne spory.
Przykład IV. W tym przykładzie zastosowano bardzo wydajnego mutanta Btt DSM5480 do wytwarzania produktu o dużej mocy działania do zwalczania larw stonki zmieniaczanej.
Szczep DSM5480 fermentowano w produkcyjnym podłożu fermentacyjnym opisanym w przykładzie II, z napowietrzaniem i wstrząsaniem w produkcyjnym tanku fermentacyjnym. Po 96 godzinach pożywkę odzyskano przez odwirowanie na wirówce o działaniu ciągłym.
Stężony krem, który zawierał aktywne białko krystaliczne, stabilizowano przez dodanie środków konserwujących i doprowadzono pH do 5,0.
Jedną część stężonego kremu suszono rozpyłowo, a następnie zastosowano do wytwarzania zwilżalnego proszku. Resztę stężonego kremu zastosowano bezpośrednio do wytwarzania dwóch wodnych płynnych koncentratów.
166 417 11
Zwilżalny proszek miał skład podany w tabeli 3 (skład dwóch preparatów PC podano w tabeli 4).
Tabela 3
Skład zwilzalnego proszku NOYODOR
Składnik % wagowy
wysuszony rozpyłowo,
stężony krem B tt 40
detergenty 9
środek zapobiegający zlepianiu 1
obojętny wypełniacz 50
Tabela 4
Skład preparatu PC NOYODOR
Składnik NOVODOR FC1 % wagagy NOVODORFC2 ^wagowy
stężony krem B tt 80,00 55,00
konserwanty 4,00 4,00
środki przeciw zamarzaniu 9,10 19,00
detergenty 2,50 2,50
regulator pH 2,85 2,85
woda 1,55 16,55
100,00 100,00
Dla wartości 500 000 BTT U/g czystego krystalicznego białka zawartość aktywnego białka krystalicznego wynosiła:
% krystalicznego białka Btt
NOVODORWP — 70,8KBITU/g 14,18
NOVODOR FC1 — 24,7 KBTTU/g 4,94
NOVODOR FC2 — 14,2 KBTTU/g 2,84
Detergenty wybrano z dużej grupy pomocniczych środków rozpraszających i środków zwilżających zwykle stosowanych do produkcji rolniczych pestycydów. Jako środek zapobiegający zlepianiu zastosowano krzemionkę hydrofitową, a jako obojętny wypełniacz zastosowano zwykle stosowane obojętne wypełniacze takie jak bentonity, sole nieorganiczne lub materiały ilaste.
Konserwanty do FC wybrano z grupy konserwantów do żywności i kosmetyków. Jako regulator pH zastosowano kwas nieorganiczny.
PrzykładV. Prowadzono próby polowe w celu udowodnienia działania biologicznego wysoko wydajnego mutanta Btt DSM 5480 w stosunku do głównego docelowego szkodnika larwy stonki ziemniaczanej. Porównano dwa handlowe produkty Trident i M-one. Obiektem uprawnym były ziemniaki.
Obiekt uprawny opryskano 3 razy: 20 lipca, 27 lipca i 3 sierpnia (druga generacja larw). Zastosowano produkty i dawki, jak w tabeli 5.
Tabela 5
Moc działania % krystalicznego
Objętość produktu/ha KBTTU/g białka w w preparacie
NOVODOR FC2 2,8 litra 14,2 2,84
4,2 litra 14,2 2,84
7,0 litra 14,2 2,84
8,4 litra 14,2 2,84
TRIDENT 11,2 litra 5,5 1,10
M-one 5,6 litra 8,9 1,78
Średni procent zwalczenia larw CPS w porównaniu ze zwalczeniem larw nie poddanych działaniu preparatu przedstawiono w tabeli 6. Napór stonki ziemniaczanej na terenie nie traktowanym preparatami był bardzo duży: 370 larw na 20 roślin w dniu 1 sierpnia i 904 larwy na 20 roślin w dniu 8 sierpnia.
166 417
Tabela 6 % zwalczania sierpnia 8 sierpnia
NOVODOR FC2 2,8 litra 9n 99
NOVODOR FC2 4,2 litra 95 100
NOVODOR FC2 7,0 litra 98 99
NOVODOR FC2 8,4 litra 100 100
TRIDENT 11,2 litra 94 98
M-one 5,6 litra 98 98
Wyniki te jasno dowodzą, że produkty otrzymane z wysoko wydajnego mutanta DSM 5480 są skuteczne do zwalczania larw stonki ziemniaczanej na polach. Krystaliczne białko wyprodukowane przez wysokowydajny szczep jest całkowicie aktywne i w ilości 4,2 litra FC NOVODORu daje równie dobre rezultaty jak Trident w objętości 11,2 litra i jak M-one w objętości 5,6 litra.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 1,00 zł.

Claims (15)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytworzenia znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy, znamienny tym, że szczep wyjściowy lub mutanta szczepu wyjściowego hoduje się w podłożu płynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia się na podłożu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzających zarodniki i/lub wytwarzających zarodniki sporadycznie, wybiera się przezroczyste kolonie i hoduje się je w podłożu, które nie upłynnia się po podgrzaniu, a następnie szczepy niewytwarzające zarodników oddziela się przez poddawanie kolonii działaniu podwyższonej temperatury.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wyselekcjonowane kolonie hoduje się w normalnym podłożu produkcyjnym i przeprowadza się końcową selekcję szczepu zdolnego do zwiększonej produkcji δ-endotoksyny.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako podłoże stosuje się zmodyfikowane podłoże odżywcze do sporulacji, zawierające fosforan.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako podłoże stosuje się podłoże z dodatkiem MgCl2 i Gelrite, Kelco.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako szczep wyjściowy stosuje się szczep wybrany z grupy obejmującej B. thuringiensis subsp. kurstaki, B. thuringiensis subsp. aizawai, B. thuringiensis subsp. israelensis i B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant Bacillus thuringiensis zdolnego do wytwarzania dużych w porównaniu ze szczepem wyjściowym ilości owadobójczych β-endotoksyn.
  7. 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis zdolnego do wytwarzania dwa razy większej ilości, lub więcej, owadobójczych δ-endotoksyn w porównaniu ze szczepem wyjściowym.
  8. 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis należący do patotypu C B. thuringiensis.
  9. 9. Sposób według zastrz. 6 albo 7, albo 8, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis wykazującego działanie przeciwko tym samym szkodnikom co δ-endotoksyny wytwarzane przez wyjściowy B. thuringiensis, takim jak łuskoskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. kurstaki i/lub subsp. aizawai), dwuskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. israelensis) lub chrząszcze (mutanty B. thuringiensis subsp. tenebrionis).
  10. 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że wybiera się B. thuringiensis należący do podgatunku tenebrionis wytwarzający δ-endotoksynę działającą przeciwko chrząszczom.
  11. 11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis tenebrionis zdolnego do wytwarzania δ-endotoksyny w ilości ponad 3-krotnie większej w porównaniu ze szczepem DSM2803.
  12. 12. Sposób według zastrz. 10 albo 11, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis zdolnego do wytwarzania parasporalnych kryształów o średniej długości krawędzi co najmniej dwukrotnie większej niż średnia długość krawędzi kryształu parasporalnego o średniej długości krawędzi wynoszącej 2 gm lub więcej.
  13. 14. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą, niż częstotliwość sporulacji szczepu wyjściowego.
  14. 15. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że wybiera się mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą niż częstość sporulacji szczepu DSM 2803.
  15. 16. Sposób według zastrz. 12, znamienny tym, że wybiera się zdeponowanego mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 5480.
    * * *
    166 417
PL30094090A 1989-11-17 1990-11-16 Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL PL166417B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK580589A DK580589D0 (da) 1989-11-17 1989-11-17 Mutant

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL166417B1 true PL166417B1 (pl) 1995-05-31

Family

ID=8145376

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL30094090A PL166417B1 (pl) 1989-11-17 1990-11-16 Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL
PL28780690A PL166479B1 (pl) 1989-11-17 1990-11-16 Srodek owadobójczy PL PL PL PL PL PL
PL30093990A PL166433B1 (pl) 1989-11-17 1990-11-16 Sposób wytwarzania owadobójczego produktu wytwarzanego przez B. thuringlensis PL PL PL PL PL PL

Family Applications After (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL28780690A PL166479B1 (pl) 1989-11-17 1990-11-16 Srodek owadobójczy PL PL PL PL PL PL
PL30093990A PL166433B1 (pl) 1989-11-17 1990-11-16 Sposób wytwarzania owadobójczego produktu wytwarzanego przez B. thuringlensis PL PL PL PL PL PL

Country Status (2)

Country Link
DK (1) DK580589D0 (pl)
PL (3) PL166417B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL166479B1 (pl) 1995-05-31
DK580589D0 (da) 1989-11-17
PL166433B1 (pl) 1995-05-31
PL287806A1 (en) 1991-12-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0585215B1 (en) Mutants or variants of bacillus thuringiensis producing high yields of delta endotoxin
US4797279A (en) Insecticidal hybrid bacteria from b.t. kurstaki and b.t. tenebrionis
EP0602064B1 (en) Novel microorganism and insecticide
EP0178151B1 (en) Preparation of strains of bacillus thuringiensis having an improved activity against certain lepidopterous pests and novel strain produced thereby
US5208017A (en) Biologically active Bacillus thuringiensis isolates
JP2571842B2 (ja) 新規なバチルス・スリンギエンシス菌株、それらの分離方法および関連する組成物
EP0202739A1 (en) Novel micro-organism and its use for controlling pests
US5279962A (en) Mutants or variants of Bacillus thuringiensis producing high yields of delta endotoxin
JP3017799B2 (ja) バシラススリンギエンシス(Bacillus Thuringiensis)の新株、その製造法及び、昆虫の制御ならびに昆虫の攻撃からの植物の保護におけるその利用
JPH0515364A (ja) 新規なバシラス菌株及び害虫防除剤
PL166417B1 (pl) Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL
EP0309145A1 (en) Bacteriophage-resistant strain of Bacillus Thuringiensis Var. San Diego
HRP920198A2 (en) Mutants or variants of bacillus thuringiensis producing high yields of delta toxin
CZ562990A3 (cs) Mutant mikroorganismu Bacillus thuringiensis deponovaný jako subsp. tenebrionis DSM 5480, způsob jeho přípravy a pesticidní prostředek, který ho obsahuje
Jayaraman et al. Active against Lepidopteran Agricultural Pests, by the Use of Continuous Culture Studies
IL86242A (en) Transconjugant bacillus thuringiensis strains, insecticidal compositions containing them and method for their use