PL136958B1 - Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain - Google Patents

Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain Download PDF

Info

Publication number
PL136958B1
PL136958B1 PL23932782A PL23932782A PL136958B1 PL 136958 B1 PL136958 B1 PL 136958B1 PL 23932782 A PL23932782 A PL 23932782A PL 23932782 A PL23932782 A PL 23932782A PL 136958 B1 PL136958 B1 PL 136958B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
water
methanol
polifungin
mycelium
antibiotic
Prior art date
Application number
PL23932782A
Other languages
English (en)
Other versions
PL239327A1 (en
Inventor
Marek Biedrzycki
Zuzanna Kowszykgindifer
Piotr Chmielnicki
Zofia Plociennik
Maria Horodecka
Halina Dahlig
Wieslaw Drzewinski
Jerzy Szymanski
Mieczyslaw Wawrzyniewicz
Witold Szmigielski
Original Assignee
Tarchominskie Zaklad Farma
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tarchominskie Zaklad Farma filed Critical Tarchominskie Zaklad Farma
Priority to PL23932782A priority Critical patent/PL136958B1/pl
Publication of PL239327A1 publication Critical patent/PL239327A1/xx
Publication of PL136958B1 publication Critical patent/PL136958B1/pl

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób izolacji po¬ lifunginy z grzybni uzyskanej po przesaczeniu brze¬ czki fermentacyjnej, wytworzonej przy uzyciu wy¬ sokowydajnego mutanta nr R 851/26/77, otrzyma¬ nego sposobem wg opisu patentowego nr 87 664, szczepu Streptomyces noursei var. polifungini ATCC 21581, na pozywce, w której jako jedyne zródlo wegla stosowano olej sojowy wg opisu patentowe¬ go nr 93 436.Sposób izolowania polifunginy z brzeczek ma¬ cierzystego szczepu Streptomyces noursei var. po¬ lifungini ATCC 21581, wg opisu patentowego nr 71259, dotyczyl wyodrebniania tego antybiotyku z brzeczek uzyskanych na podlozu zawierajacym ja¬ ko zródlo wegla glukoze i skrobie ziemniaczana.Sposób ten okazal sie nieprzydatny w przypadku izolowania polifunginy z brzeczek uzyskanych przy uzyciu tego szczepu i tluszczów roslinnych oraz zwierzecych jako jedynego zródla wegla wg opisu patentowego nr 81 600, a tym bardziej przy uzyciu nowego, róznego od szczepu macierzystego, mutanta R 851/26/77 tego szczepi*.Znany sposób izolowania polifunginy polegal na przemywaniu odsaczonej grzybni woda, a nastepnie acetonem i ekstrahowaniu zawartego w niej an¬ tybiotyku metanolem i w koncowym etapie na o- czyszczaniu surowego osadu antybiotyku przez od- mywanie go rozpuszczalnikami organicznymi lub ich roztworami wodnymi.Przemywanie grzybni acetonem przed ekstrakcja 19 15 20 nie usuwa jednak w dostatecznym stopniu zanie¬ czyszczen, które przechodza nastepnie do ekstraktów metanolowych. Opisana metoda ekstrakcji samym metanolem byla niekorzystna, gdyz ponadto wy¬ magala jeszcze stosowania duzych objetosci roz¬ puszczalnika, co prowadzilo do zmniejszonego ste¬ zenia antybiotyku w ekstraktach, przy czym eks¬ trakty te zawieraly oprócz antybiotyku zanieczysz¬ czenia z grzybni nie usuniete acetonem.Opracowano nowy sposób izolacji polifunginy stanowiacy istote niniejszego wynalazku, który to sposób pozwala na otrzymywanie antybiotyku o wlasciwej czystosci i z dobra wydajnoscia.Sposobem wg wynalazku wydzielona z brzeczki fermentacyjnej grzybnie, przemyta woda, traktuje sie roztworem dwóch rozpuszczalników organicz¬ nych, w tym jednego mieszajacego sie z woda, jak metanol lub tetrahydrofuran i drugiego nie mie¬ szajacego sie z woda, jak chlorowcopochodne alka- nów i alkenów, np. chlorek metylenu, czterochloro- etylen, weglowodory alifatyczne i aromatyczne, np. eter naftowy, toluen, estry, np, octan butylu, keto¬ ny, np. keton metyloizobutylowy, alkohole, np. bu¬ tanol. Najkorzystniejszym okazal sie- roztwór meta¬ nolu i czterochloroetylenu w stosunku 1:1 obj/obj, który usuwa wiekszosc zanieczyszczen, w tym rów¬ niez kwasy tluszczowe wytworzone obok polifunginy w procesie biosyntezy.Z tak przygotowanej grzybni ekstrahuje sie po- lifungine metanolowowodnym roztworem CaCl2 w 136 958i takiej ilosci aby 1—10 moli CaCl2 przypadalo na 1 mol antybiotyku, zawierajacym 2—30% wody.Wobec znacznie lepszej rozpuszczalnosci kompleksu wapniowego polifunginy niz samej polifunginy uzy¬ skuje sie wysokie stezenie antybiotyku w ekstrak¬ tach, 3—4 razy wyzsze niz przy stosowaniu meta¬ nolu bez CaCl2. Ponadto stwarza to mozliwosc uzy¬ skiwania tych stezen w srodowisku uwodnionego metanolu.Zmniejszenie zawartosci wody w roztworze me¬ tanolowym oraz zwiekszenie ilosci CaCl2 od wyzej podanych, prowadzi wprawdzie do zwiekszenia szybkosci ekstrakcji lecz pogarsza jej selektywnosc, poniewaz równolegle z ekstrakcja polifunginy ek¬ strahowane sa sole wapniowe kwasów tluszczowych.Sole te sa nierozpuszczalne przy zawartosci wody 20 do 30% w metanolowym roztworze, kompleksu polifunginy z CaCl2. Zawartosc te uzyskuje sie przez odparowanie metanolu z ekstraktów lub przez dodanie wody, co wiaze sie z oznaczaniem zawar¬ tosci wody w kazdym z ekstraktów. Przy tej za¬ wartosci wody w ekstraktach wytracaja sie sole wapniowe kwasów tluszczowych.Kompleks wapniowy polifunginy rozklada sie do czystej polifunginy pod wplywem wody, gdy za¬ wartosc jej w, roztworze metanolowowodnym prze¬ kracza 30%. Stad koniecznosc zachowania zawar¬ tosci wody 20—30% na etapie wytracania soli wa¬ pniowych kwasów tluszczowych. W tym zakresie zawartosci wody kompleks wapniowy polifunginy jest dobrze rozpuszczany w roztworze metanolowo- wodnym, natomiast sole wapniowe kwasów tlusz¬ czowych wytracaja sie w postaci osadu.Zwiekszajac zawartosc wody w roztworze krys- talizacyjnym do ponad 30% kompleks wapniowy polifunginy rozklada sie do wolnej polifunginy, któ¬ ra ulega wytraceniu. Sole wapniowe sa komplekso- wane w formie latwo rozpuszczalnych zwiazków w lugach pókfystalizacyjnych w zakresie wartosci pH 4-^7. W wyniku tego sposobu postepowania uzy¬ skuje sie preparaty polifunginy o sladowej zawar¬ tosci wapnia i wysokiej aktywnosci biologicznej.Sposobem wg wynalazku krystalizacje polifunginy z przesaczu uzyskanego po odsaczeniu wytraconych soli kwasów tluszczowych, prowadzi sie w srodo¬ wisku pH 4^—7, uzyskanym przez dodanie kwasów kompleksujacych wapn, takich jak kwas cytryno¬ wy, winowy, wersehowy oraz ich buforów. Z uzy¬ skanego w ten sposób roztworu o stezeniu anty¬ biotyku okolo 150 tys. j/ml, krystalizuje sie póli- fungine dodajac do niego wode lub oddestylowujac metanol tak, aby zawartosc wody w mieszaninie krystalizacyjnej wynosila korzystnie objetosciowo 6$_l_gO,/o, ewentualnie szczepiac ten roztwór kry¬ stalicznym preparatem antybiotyku. Proces krysta¬ lizacji prowadzi sie w temperaturze 0° do +5°C, osad odsacza, przemywa acetonem i suszy pod pró¬ znia w temperaturze pokojowej.Stosujac wyzej opisana metode wg wynalazku, oprócz korzystnego zwiekszenia wydajnosci proce¬ su, uzyskuje sie takze wysoka czystosc produktu.Przemywanie grzybni, zwlaszcza metanolowym roz¬ tworem czterochloroetylenu, najskuteczniej usuwa tluszcze, barwniki i kwasy tluszczowe ulatwiajac dalszy! przebieg procesu izolacji, zas stosowanie 958 4 metanolowego roztworu CaCl2, zamiast samego me¬ tanolu, daje wysokie stezenie antybiotyku w eks¬ traktach i w istotny sposób zmniejsza objetosc eks¬ traktów, w wyniku czego uzyskuje sie znaczne u- 1 proszczenie , procesu izolacji polifunginy w skali przemyslowej.Przyklad I. 250 g grzybni o aktywnosci 300 tys. j/g, otrzymanej w procesie saczenia brzeczki fermentacyjnej, przemywa sie woda, zawiesza w 0 500 ml roztworu czterochloroetylenu w metanolu (1:1 obj/obj), a.,nastepnie koryguje pH do 6,6—7,0 przy uzyciu 10% roztworu wodnego kwasu cytry¬ nowego lub trójetyloaminy i miesza sie intensyw¬ nie w ciagu 2 godzin, saczy, po czym przemywa 5 200 ml metanolu. Tak odmyta grzybnie ekstrahuje sie trzema porcjami po 400 ml metanolu zawiera¬ jacego odpowiednio 5,2 i 1 g CaCl2 • 6 H20, naste¬ pnie przemywa sie 200 ml metanolu; Ekstrakty i przemywki laczy sie, odparowuje pod próznia w 0 temperaturze +25°C do uzyskania roztworu o za¬ wartosci wody 25—30%. Wytracony w czasie odpa¬ rowania osad soli wapniowych kwasów tluszczo¬ wych odsacza sie, wartosc pH przesaczu koryguje 10% rozworem kwasu cytrynowego do pH 5,5, na- 5 stepnie dodaje sie 0,5 g krystalicznej polifunginy i calosc odparowuje w prózni w temperaturze +25°C do takiej objetosci, aby zawartosc wody wynosila 33—35% w stosunku do zawartosci meta¬ nolu, a nastepnie dodaje sie takie ilosci wody, aby 1 uzyskac trzykrotny nadmiar wody w stosunku do metanolu; pH koryguje sie do wartosci 6,8 przy uzyciu trójetyloaminy i prowadzi krystalizacje an¬ tybiotyku w ciagu 5 godzin w temperaturze +4°C.Osad saczy sie, zawiesza w acetonie w ilosci 1 g * osadu w 3 ml i po odsaczeniu przemywa 50 ml acetonu. Osad suszy sie pod próznia w temperatu¬ rze pokojowej do zawartosci wody nie wyzszej niz 5%. Otrzymuje sie 8,5 g osadu o mocy 7000 j/mg (oznaczenie mikrobiologiczne), co stanowi 74,6% 1 wydajnosci w przeliczeniu na zawartosc antybio¬ tyku w grzybni.Przyklad II. 250 g przemytej woda grzybni o aktywnosci 350 000 j/g zawiesza sie w 500 ml roztworu czterochloroetylenu w metanolu, korygu¬ je pH 10% roztworem wodnym kwasu cytrynowe¬ go lub trójetyloamina do 6,6—7,0 i miesza sie in¬ tensywnie w ciagu 2 godzin, a nastepnie saczy i przemywa grzybnie 150 ml metanolu. Tak odmy¬ ta grzybnie ekstrahuje sie 300 ml metanolu po uprzednim dodaniu do niego 10 g CaCl2 • 6 H20.Ekstrakcje powtarza sie jeszcze dwukrotnie uzywa¬ jac za kazdym razem 300 ml metanolu zawierajace¬ go odpowiednio 2 i Ig CaCl2 • 6 H20, a nastepnie przemywa sie wyekstrahowana grzybnie 300 ml me- 55 tanolu. Ekstrakty i przemywki laczy sie, uzupelnia woda do stezenia 25%, saczy od osadu soli wapnio¬ wych i koryguje pH kwasem wersenowym do 5,0, saczy ponownie i dodaje taka ilosc wody do prze¬ saczu, aby uzyskac trzykrotny nadmiar wódy w 60 stosunku do metanolu. Krystalizacje prowadzi sie 5 godzin w temperaturze +5°C. Osad saczy sie, za¬ wiesza w acetonie w ilosci 1 g osadu w 3 ml, a po odsaczeniu przemywa sie 50 nil acetonu. Osad suszy sie pod próznia w temperaturze pokojowej do za- w wartosci wody riie wyzszej niz 5%. Otrzymuje siey 136 958 5 6 8,9 g osadu o mocy 6900 j/mg (oznaczenie mikro¬ biologiczne), co stanowi 70,2% wydajnosci w prze¬ liczeniu na zawartosc antybiotyku w grzybni.Przyklad III. 250 g grzybni o aktywnosci 280 000 j/g zawiesza sie po uprzednim przemyciu woda, w 500 ml roztworu toluenu w tetrahydrofu- ranie (1,5 : 1 obj/obj) i miesza sie przez godzine w pH wartosci 4,0—4,2 uzyskanym po zakwaszeniu kwasem cytrynowym. Grzybnie saczy sie i przemy¬ wa 100 ml tetrahydrofuranu. Tak odmyta grzyb¬ nie ekstrahuje sie czterema porcjami po 300 ml metanolu zawierajacego odpowiednio 3, 2, 1 g CaCh* • 6 H20 i dodaje do kazdego ekstraktu wode do zawartosci 30D/o, po czym saczy sie osad wytraco¬ nych soli wapniowych kwasów tluszczowych. Po¬ laczone ekstrakty zakwasza sie kwasem winowym do wartosci pH 4,5 i odparowuje do uzyskania czte¬ rokrotnego nadmiaru wody w stosunku do metano¬ lu, a nastepnie koryguje pH trójetanoloamina do pH 6,5. Krystalizacje antybiotyku prowadzi sie 5 godzin w temperaturze 0°C. Osad saczy sie i za¬ wiesza w acetonie w ilosci 1 g osadu w 3 ml, a nastepnie przemywa 50 ml acetonu. Osad suszy sie pod próznia bez ogrzewania do wartosci wody nie wyzszej niz 5%. Otrzymuje sie 6 g osadu o mocy 7 300 j/mg (oznaczenie mikrobiologiczne), co stano¬ wi 62,2% wydajnosci w przeliczeniu na zawartosc antybiotyku w grzybni.Przyklad IV. 250 g przemytej woda grzybni o aktywnosci 350 000 j/g zawiesza sie w 500 ml te- trahydrofuranu, koryguje wartosc pH 10% roztwo¬ rem wodnym kwasu cytrynowego lub trójetyloami- na do 6,6—7,5 i miesza intensywnie w ciagu 2 go¬ dzin, a nastepnie saczy i przemywa grzybnie 150 ml metanolu. Tak odmyta grzybnie ekstrahuje sie 300 ml metanolu, po uprzednim dodaniu do niego 10 g CaCh-6 H20v Ekstrakcje powtarza sie jeszcze dwukrotnie uzywajac do ekstrakcji po 300 ml me¬ tanolu zawierajacego po 5 g CaCl2 • 6 H20. Ekstrak¬ ty laczy sie, dodaje wode do zawartosci 25%, od¬ sacza wytracony osad soli wapniowych kwasów tluszczowych. Ekstrakty zakwasza sie 5% wodnym buforem cytrynowym o pH 4,0 do wartosci pH 5,0, po czym dodaje sie taka ilosc wody, aby uzyskac jej dwukrotny nadmiar w stosunku do metanolu i prowadzi krystalizacje w czasie 5 godzin w tem¬ peraturze +4°C. Nastepnie osad saczy sie, zawie¬ sza go w acetonie w proporcji 1 g mokrego osadu w 3 ml acetonu, a po odsaczeniu przemywa 50 ml acetonu. Osad suszy sie pod próznia w temperatu¬ rze pokojowej. Otrzymuje sie 7,8 g polifunginy o aktywnosci 7200 j/mg (oznaczenie mikrobiologiczne) co stanowi 65% wydajnosci w przeliczeniu na za¬ wartosc antybiotyku w grzybni.Zastrzezenie patentowe Sposób izolacji polifunginy z hodowli wysokowy- dajnego mutanta R 851/26/77 szczepu Streptomyces noursei var. polifungini ATCC 21581 na pozywce, w której jedynym zródlem wegla jest olej sojowy, polegajacy na przemyciu grzybni kolejno woda i rozpuszczalnikiem organicznym i ekstrakcji, zna¬ mienny tym, ze grzybnie wydzielona z brzeczki fermentacyjnej i przemyta woda przemywa sie na¬ stepnie rozpuszczalnikiem organicznym mieszaja¬ cym sie z woda, takim jak metanol lub tetrahydro- furan albo mieszanina rozpuszczalnika mieszajace¬ go sie z woda z rozpuszczalnikiem nie mieszajacym sie z woda, takim jak chlorowcopochodne alkanów i alkenów, weglowodory alifatyczne i aromatycz¬ ne, etery, ketony, korzystnie roztworem metanolu i czterochloroetylenu w stosunku 1 : 1 obj/obj, po czym z grzybni ekstrahuje sie polifungine metano- lowowodnym roztworem chlorku wapnia, zawiera¬ jacym 1—10 moli CaCl2 na 1 mol antybiotyku oraz 2—30% wody, a nastepnie z ekstraktu odparowuje sie metanol albo dodaje wode tak, aby zawartosc jej wynosila 20—30%, odsacza sie wytracone sole wapniowe kwasów tluszczowych, zwieksza zawar¬ tosc wody powyzej 30%, koryguje pH przesaczu do wartosci 4—7 kwasem wersenowym, winowym, cy¬ trynowym lub ich buforami i prowadzi krystaliza¬ cje polifunginy dodajac do ekstraktów wode badz oddestylowujac metanol tak, aby zawartosc jej w mieszaninie krystalizacyjnej wynosila korzystnie objetosciowo 60—80%, ewentualnie szczepi roztwór krystalicznym preparatem antybiotyku po czym wy¬ tracony osad antybiotyku odsacza sie. 10 15 20 25 30 35 4* PL

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób izolacji polifunginy z hodowli wysokowy- dajnego mutanta R 851/26/77 szczepu Streptomyces noursei var. polifungini ATCC 21581 na pozywce, w której jedynym zródlem wegla jest olej sojowy, polegajacy na przemyciu grzybni kolejno woda i rozpuszczalnikiem organicznym i ekstrakcji, zna¬ mienny tym, ze grzybnie wydzielona z brzeczki fermentacyjnej i przemyta woda przemywa sie na¬ stepnie rozpuszczalnikiem organicznym mieszaja¬ cym sie z woda, takim jak metanol lub tetrahydro- furan albo mieszanina rozpuszczalnika mieszajace¬ go sie z woda z rozpuszczalnikiem nie mieszajacym sie z woda, takim jak chlorowcopochodne alkanów i alkenów, weglowodory alifatyczne i aromatycz¬ ne, etery, ketony, korzystnie roztworem metanolu i czterochloroetylenu w stosunku 1 : 1 obj/obj, po czym z grzybni ekstrahuje sie polifungine metano- lowowodnym roztworem chlorku wapnia, zawiera¬ jacym 1—10 moli CaCl2 na 1 mol antybiotyku oraz 2—30% wody, a nastepnie z ekstraktu odparowuje sie metanol albo dodaje wode tak, aby zawartosc jej wynosila 20—30%, odsacza sie wytracone sole wapniowe kwasów tluszczowych, zwieksza zawar¬ tosc wody powyzej 30%, koryguje pH przesaczu do wartosci 4—7 kwasem wersenowym, winowym, cy¬ trynowym lub ich buforami i prowadzi krystaliza¬ cje polifunginy dodajac do ekstraktów wode badz oddestylowujac metanol tak, aby zawartosc jej w mieszaninie krystalizacyjnej wynosila korzystnie objetosciowo 60—80%, ewentualnie szczepi roztwór krystalicznym preparatem antybiotyku po czym wy¬ tracony osad antybiotyku odsacza sie. 10 15 20 25 30 35 4* PL
PL23932782A 1982-12-02 1982-12-02 Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain PL136958B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL23932782A PL136958B1 (en) 1982-12-02 1982-12-02 Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL23932782A PL136958B1 (en) 1982-12-02 1982-12-02 Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL239327A1 PL239327A1 (en) 1984-07-30
PL136958B1 true PL136958B1 (en) 1986-04-30

Family

ID=20014888

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL23932782A PL136958B1 (en) 1982-12-02 1982-12-02 Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL136958B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL239327A1 (en) 1984-07-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69301571T2 (de) Verfahren zur Herstellung von Clavulansäure
SU613724A3 (ru) Способ получени 8-тиометил-эрголинов или их солей
SK130494A3 (en) Separating method of macrolide from acid, basic and unpolar neutral impurities
US3616242A (en) Hydrolysis process for the preparation of rubidomycin
US2786781A (en) Process of recovering nystatin
PL136958B1 (en) Method of isolation of polyfungine from the culture of highefficient mutant of streptomyces noursei var. polifungini strain
US3127315A (en) Hypocholesterolemic agent m-
DE69824744T2 (de) Verbesserungen bezogen auf die herstellung von lactamverbindungen
US3332844A (en) Process for recovering nystatin
US4219641A (en) Process for preparing erythromycin succinate
US2881162A (en) Recovery process
CN1215769C (zh) 乙酰甲胺磷可溶粉的制备方法
US2534250A (en) Process of isolating quercitrin
DE2523280A1 (de) Cephalosporinderivate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
WO1995003419A1 (en) Method for precipitating natural avermectins
US3376339A (en) Purification of amphoteric and basic antibiotics
KR880001120B1 (ko) 엘라스타제의 정제 방법(Elastase의 精製方法)
EP0001797B1 (de) Verfahren zur Gewinnung von Cephalosporin C, seinen Salzen und Derivaten aus Kulturfiltraten oder -lösungen
US3632647A (en) Processes for preparing and/or purifying chlortetracycline hydrochloride and chlortetracycline neutral base
KR970009152B1 (ko) 리소셀린 고체의 정제방법
US3230254A (en) Process of precipitating tetracycline base in crystalline form
US3821085A (en) Antibiotic-glicoside and method of producing thereof
JP3831476B2 (ja) キシロースの精製方法
DE3519074C2 (pl)
US3530114A (en) Isolation procedures of coumermycin a1