PL133386B2 - Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives - Google Patents

Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives Download PDF

Info

Publication number
PL133386B2
PL133386B2 PL24298283A PL24298283A PL133386B2 PL 133386 B2 PL133386 B2 PL 133386B2 PL 24298283 A PL24298283 A PL 24298283A PL 24298283 A PL24298283 A PL 24298283A PL 133386 B2 PL133386 B2 PL 133386B2
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
hydrolysis
barley
lanatosides
phosphate
derivatives
Prior art date
Application number
PL24298283A
Other languages
English (en)
Other versions
PL242982A2 (en
Inventor
Janina Zurkowska
Mieczyslaw Darmetko
Original Assignee
Inst Przemyslu Farmaceutic
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Przemyslu Farmaceutic filed Critical Inst Przemyslu Farmaceutic
Priority to PL24298283A priority Critical patent/PL133386B2/pl
Publication of PL242982A2 publication Critical patent/PL242982A2/xx
Publication of PL133386B2 publication Critical patent/PL133386B2/pl

Links

Landscapes

  • Steroid Compounds (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Opis patentowy opublikowano: 1986 09 30 Int. Cl.3 C07J 19/00 CZY ftLNiA Urzedu P-^fn.-w.,- fllsiil! i • Twórcywynalazku: Janina Zurkowska, Mieczyslawa Darmetko Uprawniony z patentu tymczasowego: Instytut Przemyslu Farmaceutycznego, Warszawa (Polska) Sposób enzymatycznej hydrolizy lanatozydów A, B i C oraz ich dezacetylowych pochodnych Wynalazek dotyczy sposobu enzymatycznej hydrolizy lanatozydów A, B i C oraz ich dezacety¬ lowych pochodnych. W wyniku tej hydrolizy otrzymuje sie digitoksyne, gitoksyne i digoksyne oraz ich acetylowe pochodne. W lecznictwie stosowane sa jako glikozydy nasercowe digitoksyna, alfa-acetylodigitoksyna, digoksyna i beta-digoksyna oraz syntetyczna pochodna gitoksyny w formie piecioacetylogitoksyny.Znany sposób otrzymywania wyzej wymienionych zwiazków polega na hydrolitycznym oddzieleniu glukozy, czwartego koncowego cukru w lancuchu bocznym lanatozydów lub dezacety- lolanatozydów A, B, C w taki sposób, aby nie zostala naruszona struktura pozostalych dezoksy- cukrów. Jest to mozliwe jedynie na drodze enzymatycznej z zastosowaniem enzymu typu betaglukozydazy. Enzymy swoiscie dzialajace na wiazania betaglikozydowe miedzy czasteczka glukozy a trzecia z kolei digitoksoza lub acetylodigitoksoza lancucha cukrowego wystepuja w wielu zródlach biologicznych pochodzenia roslinnego lub zwierzecego. Izolowano je równiez z plesni, drobnoustrojów czy rzezniczych odpadów poubojowych. Enzymy te wykazuja przewaznie zrózni¬ cowana swoistosc enzymatyczna w stosunku do lanatozydów i dezacetylolanatozydów A, B i C.Juz poprzednio stwierdzono (Zukrowska J., Adamiec A., Herba Polonica 20 (3) 270-283 /1975/), ze ekstrahowana ze slodu jeczmiennego i oczyszczona frakcja bialek enzymatycznych poprzez selektywne wytracanie siarczanem amonu i saczenie molekularne na kolumnie sephadeksydowej nie wykazuje swoistosci hydrolitycznej w stosunku do lanatozydów A, B i C, natomiast hydrolizuje odacetylowane pochodne tych zwiazków czyli dezacetylolanatozydy A, BiC.Istote wynalazku stanowi enzematyczna hydroliza lanatozydów A, B i C oraz ich dezacetylo¬ wych pochodnych za pomoca enzymów wyizolowanych z ziarna slodu jeczmiennego lub jeczmie¬ nia. Slód jeczmienny lub jeczmien ekstrahuje sie woda, buforem fosforanowym badz octanowym.Ekstrakt zawiera beta-glukozydaze obok szeregu bialek enzymatycznych i bez oczyszczania jest stosowany do hydrolizy. Wykazuje on aktywnosc nie tylko w stosunku do dezacetylowych pochod¬ nych lanatozydów A, B i C lecz równiez do glikozydów natywnych czyli lanatozydów A, B i C. W wyniku hydrolizy dezacetylowych pochodnych lanatozydów A, B i C otrzymuje sie odpowiednio digitoksyne, gitoksyne i digoksyne, a hydroliza lanatozydów A, B i C daje odpowiednie pochodne2 133386 ( acetylowe digitoksyny, gitoksyny i digoksyny, w postaci izomeru al^a, które mozna ewentualnie zhydrolizowac w srodowisku alkalii, korzystnie za pomoca amoniaku w roztworze metanolowym.Wedlug wynalazku hydrolize enzymatyczna przeprowadza sie w; srodowisku buforu fosfora¬ nowego lub octanowego o pH 5-6, korzystnie o pH 5,2-5,5, do którego dodaje sie ekstrakt slodowy lub jeczmienny oraz alkohol, zwlaszcza metanol. Stezenie alkoholu, od 10% do 20% korzystnie 12-15%, jest tak dobrane, aby bialka enzymatyczne nie ulegaly denaturacji i wytraceniu w postaci nieaktywnego osadu i wkraplane alkoholowe roztwory odpowiednich lanatozydów A, B i C lub ich dezacetylowych pochodnych pozostawaly w roztworze hydrolizatów. Hydrolize prowadzi sie w temperaturze 35-45°C, korzystnie 38-42°C, w czasie 16-30 godzin, korzystnie 18-24 godziny.W sposobie wedlug wynalazku warunki reakcji hydrolizy zostaly tak dobrane, ze reakcja przebiega z wysoka wydajnoscia rzedu 80-90%. Glikozydy poddawane hydrolizie nie wytracaja sie po wprowadzeniu do hydrolizatów, natomiast w toku reakcji produkty hydrolizy wydzielaja sie czesciowo w postaci krystalicznego osadu, który mozna latwo oddzielic w znany sposób. Osiaga sie przez to wydatne zmniejszenie ilosci rozpuszczalników organicznych takich jak benzen, trójchlo¬ roetylen lub chloroform, koniecznych do selektywnej ekstrakcji produktów hydrolizy.Przyklad I. Do 850 ml wody destylowanej wlewa sie 25ml buforu fosforanowego o pH 5,2-5,5 a nastepnie 30-40 ml ekstraktu enzymatycznego, przygotowanego przez wytrzasniecie w ciagu 1 godziny 50 g drobno zmielonego slodu jeczmiennego lub jeczmienia ze 100 ml wody lub wody z buforem fosforanowym lub octanowym o pH 5,0-5,5 (o skladzie 80 ml wody i 20 ml buforu) i odsaczeniu przez karbowany saczek bibuly filtracyjnej. Doprowadza sie pH otrzymanej miesza¬ niny do pH 5,2-5,5, ogrzewa do temperatury 38-42°C, dodaje 5 ml toluenu, umieszcza w termosta¬ cie i rozpoczyna wkraplanie roztworu odpowiedniego dezacetylolanatozydu A, B lub C, otrzymanego przez rozpuszczenie Ig substancji w 100ml metanolu. Roztwór metanolowy gliko¬ zydu wkrapla sie przez 30 minut przy wolnym mieszaniu, a nastepnie pozostawia w termostacie w temperaturze 38-42°C na okres 18-24 godzin wolno mieszajac. Po tym okresie czasu hydrolizat ochladza sie do temperatury pokojowej, a nastepnie saczy pod próznia. Przesacz (A) pozostawia do dalszego przerobu, a odsaczony osad rozpuszcza sie w 150-200 ml metanolu, miesza przez 1 godzine, odsacza od wytraconych metanolem resztek bialek enzymatycznych i przemywa doklad¬ nie 10-15 ml metanolu. Osad odrzuca sie, a przesacz zageszcza do 50 ml (I).Przesacz (A) zageszcza sie do 100-150 ml przy temperaturze 40°C i zawarte w nim glikozydy ekstrahuje trzykrotnie uzywajac kazdorazowo po 50 ml chloroformu wysyconego woda destylo¬ wana. Polaczone ekstrakty chloroformowe przemywa sie jeden raz 30 ml wody destylowanej wysyconej chloroformem i zageszcza do sucha, a utworzony osad rozpuszcza w 30-50 ml metanolu i laczy z roztworem metanolowym (I), dodaje 0,5 g wegla aktywnego, miesza i saczy pod próznia, przemywajac wegiel 10-15 ml metanolu. Otrzymany klarowny i bezbarwny roztwór metanolowy zageszcza sie, otrzymujac digitoksyne, gitoksyne lub digoksyne w postaci krystalicznej z wydajnos¬ cia 80-90%.Przyklad II. Postepuje sie jak w przykladzie I z tym, ze do przygotowanej mieszaniny hydrolizatu wkrapla sie metanolowy roztwór odpowiedniego dezacetylolanatozydu A, B, C przy¬ gotowany w nastepujacy sposób: 1 g odpowiedniego lanatozydu A, B lub C rozpuszcza sie w 50 ml metanolu, dodaje 10 ml wody i 10 ml 25% roztworu amoniaku, hydrolizuje w ciagu 40-48 godzin w temperaturze 40°C, zakwasza za pomoca lodowatego kwasu octowego do pH 5-5,5 i rozciencza dodajac 50 ml metanolu.Przyklad III. Do 1250 ml buforu octanowego o pH 5,2-5,5 dodaje sie 50 ml metanolu i 5 ml toluenu. Nastepnie wlewa sie 125 ml ekstraktu enzymatycznego otrzymanego przez wytrzasniecie z woda 150 g drobno zmielonego slodu jeczmiennego lub jeczmienia. Uzyskana mieszanine o pH 5,2-5,5 ogrzewa sie do temperatury 38-40°C, umieszcza w termostacie i rozpoczyna wkraplanie roztworu 1 g odpowiedniego lanatozydu A, B lub C rozpuszczonego w 100 ml metanolu. Wkrapla¬ nie trwa okolo 30 minut. Hydrolize prowadzi sie 18-24 godziny przy wolnym mieszaniu. Po zakonczeniu procesu hydrolizat ochladza sie za pomoca wody z lodem, a nastepnie saczy. PL

Claims (4)

  1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób enzymatycznej hydrolizy lanatozydów A, B i C oraz ich dezacetylowych pochód nych za pomoca enzymu typu beta-glukozydazy otrzymanego ze slodu jeczmiennego lub jeczmie-i ) j { \ 133386 3 i < nia, znamienny tym, ze slód jeczmienny lub jeczmien poddaje sie ekstrakcji woda, buforem fosforanowym badz octanowym i otrzymany ekstrakt dodaje sie do buforowego roztworu wodno- alkoholowego o pH 5-6 i zawartosci alkoholu 10-20%, a nastepnie przy temperaturze 35-45°C wkrapla sie alkoholowy roztwór odpowiedniego lanatozydu A, B i C lub jego dezacetylowa pochodna i prowadzi sie hydrolize przy stalej temperaturze 35-45°C w czasie 16-30 godzin, nastepnie wyodrebnia sie produkty hydrolizy w znany sposób, przy czym alfa-acetylowe pochodne digitoksyny, gitoksyny i digoksyny poddaje sie ewentualnie hydrolizie alkalicznej korzystnie za pomoca metanolowego roztworu amoniaku.
  2. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze slód jeczmienny lub jeczmien wytrzasa sie z woda lub z buforem fosforanowym badz octanowym o pH 5-5,5.
  3. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze hydrolize prowadzi sie w srodowisku buforu fosforanowego badz octanowego, korzystnie przy pH 5,2-5,5 z dodatkiem alkoholu, zwlaszcza metanolu, korzystnie do stezenia 12-15%.
  4. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze hydrolize prowadzi sie korzystnie w temperatu¬ rze 38-42°C w czasie 18-24 godziny. PL
PL24298283A 1983-07-13 1983-07-13 Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives PL133386B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL24298283A PL133386B2 (en) 1983-07-13 1983-07-13 Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL24298283A PL133386B2 (en) 1983-07-13 1983-07-13 Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL242982A2 PL242982A2 (en) 1984-05-21
PL133386B2 true PL133386B2 (en) 1985-05-31

Family

ID=20017882

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL24298283A PL133386B2 (en) 1983-07-13 1983-07-13 Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL133386B2 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL242982A2 (en) 1984-05-21

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hackman Studies on chitin I. Enzymic degradation of chitin and chitin esters
Perkins et al. The products of the partial acid hydrolysis of the mucopeptide from cell walls of Micrococcus lysodeikticus
Stacey The chemistry of mucopolysaccharides and mucoproteins
Marks et al. Carbohydrates in protein. 6. Studies on the carbohydrate–peptide bond in hen's-egg albumin
Wolfrom et al. Configurational correlation of L-(levo)-glyceraldehyde with natural (dextro)-alanine by a direct chemical method
GAUSE et al. Eremomycin-new glycopeptide antibiotic: Chemical properties and structure
CA1266265A (en) Isolation of unreduced oligosaccharides
JP2004519224A (ja) ジンセノサイド糖基を加水分解するジンセノサイドグリコシダーゼ及びその使用
EP0599159B1 (de) Heterogenes Proteingemisch mit alpha-L-rhamnosidase Aktivität, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung.
Matta et al. Glycosidases of Aspergillus niger: IV. Purification and characterization of α-mannosidase
US5061627A (en) Method for preparing enzymes from crustaceans
PL133386B2 (en) Process for enzymatic hydrolysis of a,b and c lanatosides and their desacetyl derivatives
DE69518246T2 (de) Aminosäuren konjugaten
KR20010080330A (ko) 루티노사이드의 효소적 분할 방법
DE2509482C2 (de) Verfahren zur Herstellung des Kallikrein-Trypsin-Inhibitors aus Rinderlunge
Willstätter Problems and methods in enzyme research
Bogdanov et al. Some properties and the structure of a glucosamine-aspartic fragment from ovalbumin
Dixon et al. The specific substance from Pneumococcus type 34. The configuration of the glycosidic linkages
RU2249042C2 (ru) Способ получения производных стероидных гликозидов ruscus aculeatus методом ферментативного гидролиза
DE2658563C2 (pl)
JPH0662852A (ja) フコイダン分解酵素
JPS6244180A (ja) 汎用型エンド−β−N−アセチルグルコサミニダ−ゼおよびその製造法
RU2316593C2 (ru) Ферментативный способ получения 4-о-бета-d-галактопиранозил-d-ксилозы
WO1999001564A1 (en) Process for the modification of toxic and/or off-flavoured compounds
US3423288A (en) Process for preparing gentiobiose