NO772704L - ATOXIC, IMMUNOGENIC PRODUCT OF TETANUS TOXIN - Google Patents

ATOXIC, IMMUNOGENIC PRODUCT OF TETANUS TOXIN

Info

Publication number
NO772704L
NO772704L NO772704A NO772704A NO772704L NO 772704 L NO772704 L NO 772704L NO 772704 A NO772704 A NO 772704A NO 772704 A NO772704 A NO 772704A NO 772704 L NO772704 L NO 772704L
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
tetanus
product
tetanus toxin
fragment
toxin
Prior art date
Application number
NO772704A
Other languages
Norwegian (no)
Inventor
Torsten Bertil Helting
Original Assignee
Behringwerke Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Behringwerke Ag filed Critical Behringwerke Ag
Publication of NO772704L publication Critical patent/NO772704L/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/08Clostridium, e.g. Clostridium tetani
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Atoksisk, immunogent produkt av tetanus-toksin.Atoxic, immunogenic product of tetanus toxin.

Oppfinnelsen vedrører et atoksi.sk, immunogent produkt som kan fåes av tetanus-toksin ved hjelp av en proteinase. Den vedrører videre en tetanus-vaksine inneholdende det nye produkt. The invention relates to an atoxic, immunogenic product which can be obtained from tetanus toxin by means of a proteinase. It further relates to a tetanus vaccine containing the new product.

Tetanus-toksin er som kjent, høy-toksisk overfor pattedyr og også mennesker og må for dets anvendelse som immu-niserende stoff avgiftes. Det er kjent at tetanus-toksin er å avgifte ved at det behandles med formaldehyd. Det er videre kjent at et atoksisk, immunogent produkt kan fåes ved behandling av tetanus-toksin med en proteinase. Dette atoksiske, immunogene produkt betegnes i den vitenskapelige litteratur som fragment C av tetanus-toksinet. As is known, tetanus toxin is highly toxic to mammals and also to humans and must be detoxified for its use as an immunizing substance. It is known that tetanus toxin can be detoxified by treating it with formaldehyde. It is further known that an atoxic, immunogenic product can be obtained by treating tetanus toxin with a proteinase. This atoxic, immunogenic product is referred to in the scientific literature as fragment C of the tetanus toxin.

Det er nå overraskende funnet at ved behandling av tetanus-toksin med en proteinase, fortrinnsvis med papain, opp-står et ytterligere kjemisk entydig karakteriserbart stoff med spesielt fordelaktige egenskaper som kan isoleres.etter kjente biokjemiske fremgangsmåter. It has now surprisingly been found that by treating tetanus toxin with a proteinase, preferably with papain, a further chemically unambiguously characterizable substance with particularly advantageous properties is produced which can be isolated according to known biochemical methods.

Til de spesielt fordelaktige egenskaper av det som fragment Bo betegnede produkt hører dels manglende toksisitet og dets immunogenitet. Disse egenskaper gjør produktet egnet som bestanddel av vaksiner mot tetanus. The particularly advantageous properties of the product known as fragment Bo include its lack of toxicity and its immunogenicity. These properties make the product suitable as a component of vaccines against tetanus.

Oppfinnelsens gjenstand er følgelig et atoksisk, immunogent produkt oppnådd fra tetanus-toksin ved dets behandling med en proteinase, fortrinnsvis papain, idet produktet erkarakterisert vedfølgende parametre: The object of the invention is consequently an atoxic, immunogenic product obtained from tetanus toxin by its treatment with a proteinase, preferably papain, the product being characterized by the following parameters:

1. Sedimentasjonskonstant S°ow5,66-0,341. Sedimentation constant S°ow5.66-0.34

2. Immunologisk reaksjon med tetanus-antitoksin:2. Immunological reaction with tetanus antitoxin:

partielt identisk med det av tetanus-toksin.partially identical to that of tetanus toxin.

3. Immunologisk reaksjon med fragment C: ikke identisk.3. Immunological reaction with fragment C: not identical.

4. Molekylvekt, bestemt ved gel-elektroforese i natriumdodecylsulfat, 95.000 - 5000. 5. Ved reduksjon spaltbart i en underenhet med en molekylvekt på 45.000 - 2.500 4. Molecular weight, determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate, 95,000 - 5,000. 5. Cleavable by reduction into a subunit with a molecular weight of 45,000 - 2,500

og en med det kjente derivat av de lette kjeder av tetanus-toksin immunologisk identisk underenhet med and one with the known derivative of the light chains of tetanus toxin immunologically identical subunit with

en molekylvekt på 48.000 2.500 (hver gang bestemta molecular weight of 48,000 2,500 (each time determined

i natrium-dodecylsulfat-elektroforese).in sodium dodecyl sulfate electrophoresis).

De i parametrene gjengitte svingningsbredder beror på feilgrenser innen bestemmelsesmetodene. The fluctuation widths given in the parameters are based on error limits within the determination methods.

Sedimentasjonskonstantene ble bestemt i en vandig opp-løsning av 0,2M NaCl, 0,02M Na2H P04, 0,03M Na H2P04ved en pH The sedimentation constants were determined in an aqueous solution of 0.2M NaCl, 0.02M Na2HPO4, 0.03M NaH2PO4 at a pH

på 6,8 ifølge T. Svendberg og K.O. Pedersen "The Ultra-centrifuge", The Clarendon Press, Oxford, 1940, i en oversiktningscelle av en analyttisk ultrasentrifuge i tilknytning til Vinograd, Proc.Acad. Sei. USA, 49, 902 (1963). Oversiktningen av den prøveoppløsning of 6.8 according to T. Svendberg and K.O. Pedersen "The Ultra-centrifuge", The Clarendon Press, Oxford, 1940, in an overview cell of an analytical ultra-centrifuge associated with Vinograd, Proc.Acad. Pollock. USA, 49, 902 (1963). The overview of the sample solution

som inneholder produktet ifølge oppfinnelsen foregikk på 1 M Nacl-oppløsning av pH-verdi 7,0. containing the product according to the invention took place in 1 M NaCl solution of pH value 7.0.

Den immunologiske reaktivitet ble undersøkt under anvendelse av antisera, som ble dannet ved immunisering av kaniner med tetanus-toksid eller fragment C ifølge oppfinnelsen. Det ble anvendt den kjente dobbelt-diffusjonsteknikk. Ved hjelp av denne teknikk kan det vises at det tidligere omtalte fragment C at-skiller seg entydig fra fragment B ifølge oppfinnelsen. Som det videre kunne vises er fragment B å oppdele i to spaltstykker hvorav det ene viser det samme immunologiske forhold som deri-vatet av den lette kjede som er omtalt i tysk patent nr. (tysk søknad nr. P 25 57-047 /HOE 74/B 028). The immunological reactivity was investigated using antisera, which were formed by immunization of rabbits with tetanus toxide or fragment C according to the invention. The known double diffusion technique was used. With the help of this technique, it can be shown that the previously mentioned fragment C is distinctly different from fragment B according to the invention. As could be further shown, fragment B can be divided into two fragments, one of which shows the same immunological relationship as the derivative of the light chain which is mentioned in German patent no. (German application no. P 25 57-047 /HOE 74 /B 028).

Gel-elektroforesen i en 7%-ig polyakrylamidgel under anvendelse av natriumdodecylsulfat som bestanddel av elektroforese-pufferen ble gjennomført ifølge K. Weber og M. Osborn, J.Biol. Chem., Vol. 244, 4406 - 4412 (1969). Før gjennomføringen av gel-elektrof oresen ble prøvene som skulle analyseres i vandig oppløs-ning blandet med natriumdodecylsulfat inntil en konsentrasjon på The gel electrophoresis in a 7% polyacrylamide gel using sodium dodecyl sulfate as a component of the electrophoresis buffer was carried out according to K. Weber and M. Osborn, J.Biol. Chem., Vol. 244, 4406-4412 (1969). Before carrying out the gel electrophoresis, the samples to be analyzed in aqueous solution were mixed with sodium dodecyl sulfate until a concentration of

1% og holdt 1 minutt i kokende vann. Beregningen av molekylvekten foregikk ved sammenlikning med standardstoffer for molekylvekt-bestemmelser (aldolase og katalase, oppnådd gjennom firmaet Boehringer, Mannheim, Kat. Nr. 15 575 - "Eichproteine Grosse II"). Beregningsmetoden er angitt i ovennevnte arbeid av Weber og Osborn. 1% and held for 1 minute in boiling water. The calculation of the molecular weight took place by comparison with standard substances for molecular weight determinations (aldolase and catalase, obtained through the company Boehringer, Mannheim, Cat. No. 15 575 - "Eichproteine Grosse II"). The calculation method is indicated in the above-mentioned work by Weber and Osborn.

Det nye atoksiske, immunogene som fragment B av tetanus-toksin betegnede produkt er oppnåelig etter den i tysk søknad P 25 10 987 (HOE 73/B 018) omtalte fremgangsmåte ved behandling av tetanus-toksin med en proteinase. The new atoxic, immunogenic product designated as fragment B of tetanus toxin can be obtained by the method described in German application P 25 10 987 (HOE 73/B 018) by treating tetanus toxin with a proteinase.

I en foretrukket utførelsesform oppnås fragment B ved behandling av tetanus-toksin, som kan fremstilles fra kultur-filtrater av Clostrium-Tetani ved ioneutvekslingskromatografi med papain, fortrinnsvis i bærebundet form i nærvær av et redu-serende stoff. In a preferred embodiment, fragment B is obtained by treating tetanus toxin, which can be prepared from culture filtrates of Clostrium Tetani by ion exchange chromatography with papain, preferably in carrier-bound form in the presence of a reducing substance.

Det har da vist seg nyttig å velge inkubasjonstempera-turen høyere enn vanlig, d.v.s. mellom 30 og 60°C, fortrinnsvis mellom 45 og 55°C. Ved denne forholdsregel kan utbyttet av produktet ifølge oppfinnelsen økes. Etter den proteolyttiske inn-virkning på tetanus-toksinet fjernes det bærebundne enzym fra reaksjonsblandingen hensiktsmessig ved sentrifugering, og den gjengivende oppløsning underkastes en molekylsiktfraksjonering. Fordelaktig hardet derved vist seg anvendelsen av med epiklorhy-(R) It has then proved useful to choose the incubation temperature higher than usual, i.e. between 30 and 60°C, preferably between 45 and 55°C. With this precaution, the yield of the product according to the invention can be increased. After the proteolytic action on the tetanus toxin, the carrier-bound enzyme is removed from the reaction mixture appropriately by centrifugation, and the resulting solution is subjected to molecular sieve fractionation. Advantageously, the application of with epichlorohy-(R)

drin-nettdannet dextran, eksempelvis "Sephadex G 100 fra firmaet Pharmacia, Uppsala eller"Ultrogel(R)" fra LKB, Bromma drin-netted dextran, for example "Sephadex G 100 from the company Pharmacia, Uppsala or "Ultrogel(R)" from LKB, Bromma

(R) (R)

eller "Bio-Gel p fra Bio-Rad Laboratories, Richmond, Calif.or "Bio-Gel p from Bio-Rad Laboratories, Richmond, Calif.

I tilfellet at det anvendes et oppløselig enzymprepar-at skjer atskillelsen av enzymet ved gjennomføring av molekyl-siktf raksjoneringen. In the event that a soluble enzyme preparation is used, the separation of the enzyme takes place by carrying out the molecular sieve fractionation.

Så snart fragment B en gang.er oppnådd på denne måten, lar det seg dermed fremstille et antiserum ved immunisering av forsøksdyr med fragment B, med hvis hjelp det på vanlig måte kan fremstilles en immunadsorbens. Denne er igjen egnet til å utvinne fragment B i spesielt ren form fra inkubasjonsblandingen av nevnte fermentasjonsoppløsning. As soon as fragment B has once been obtained in this way, it is thus possible to prepare an antiserum by immunizing experimental animals with fragment B, with the help of which an immunoadsorbent can be prepared in the usual way. This in turn is suitable for extracting fragment B in a particularly pure form from the incubation mixture of said fermentation solution.

Også fjerning av fragment C eller tetanus-toksin fra en blanding med fragment B, lar seg oppnå immunadsorptivt. Dertil fremstilles i første rekke et antiserum mot det kjente fragment C. Med dette antiserum kan det på vanlig måte fremstilles et immunadsorbens. Dette er igjen egnet til å fjerne rester av fragment C og av tetanus-toksin fra fragment B, da såvel fragment C som også tetanus-toksin reagerer med anti-fragment C-serum, imidlertid„;.ikke fragment B. ■ Also, removal of fragment C or tetanus toxin from a mixture with fragment B can be achieved immunoadsorptively. In addition, an antiserum against the known fragment C is first prepared. With this antiserum, an immunoadsorbent can be prepared in the usual way. This is again suitable for removing residues of fragment C and of tetanus toxin from fragment B, as both fragment C and tetanus toxin react with anti-fragment C serum, but not fragment B.

Andre isoleringsf remgangsmåter som o står til disposi-sjon for fagfolk til atskillelse av protein av forskjellig .elek- trisk ladning fører likeledes til resultat. Det er spesielt elek-troforetisk og ioneutvekslings-kromatografi-fremgangsmåter. Other isolation methods that are available to professionals for the separation of proteins of different electrical charge likewise lead to results. It is particularly electrophoretic and ion exchange chromatography methods.

Dette på denne måten oppnådde rene fragment B av tetanus-toksin viser seg sammenliknet med tetanus-toksin som ikke toksisk. Mens man ved tetanus-toksin pr. mg påviser 30 x 10g minimal dødelig dose, har fragment B 5 minimal dødelig dose pr.mg. Fragment B viser seg med hensyn til den toksiske foreteelse helt forskjellig til tetanus-toksin, den viser ikke de ved spastisk paralyse karakteriserte foreteelser. På tross av nedsettelse av toksisiteten til 1 : 6 x 10 er det hensiktsmessig som omtalt i det følgende å behandle fragment B med et aldehyd. This thus obtained pure fragment B of tetanus toxin proves to be non-toxic compared to tetanus toxin. While with tetanus toxin per mg shows 30 x 10g minimal lethal dose, fragment B has 5 minimal lethal dose per mg. Fragment B is completely different from tetanus toxin with regard to the toxic phenomenon, it does not show the phenomena characterized by spastic paralysis. Despite reducing the toxicity to 1:6 x 10, it is appropriate, as discussed below, to treat fragment B with an aldehyde.

For denne behandling behandles det ved hjelp av proteinase fremstilte produkt etter dets isolering med en proteinkonsen-trasjon på ca. 1 mg protein pr. ml. eller mindre enn en puffer-oppløsning på pH-verdi 6,0 - 8,5, fortrinnsvis 7,8, og en molaritet av pufferoppløsningen på 0,01 - 0,2 M med 0,015 - 0,3 M av et alifatisk mono- eller dialdehyd med 1-6 karbonatomer, fortrinnsvis formaldehyd i 14 - 28 dager ved 20 - ^37°C. Produktet kan hvis ønsket underkastes en 10 - 20, fortrinnsvis 15 timers dialyse mot en fysiologisk tålbar oppløsning som 0,15 molar natriumklorid og/eller sterilfiltreres. For fremstilling av en vaksine blandes produktet hensiktsmessig dessuten med et adju-vans, f.eks. aluminiumhydroksyd. Ved fortynning med en fysiologisk tålbar oppløsning som 0,15 molar natriumkloridoppløsning inn-stilles konsentrasjonen på det ønskede antigeninnhold. For this treatment, the product produced by proteinase is treated after its isolation with a protein concentration of approx. 1 mg of protein per ml. or less than a buffer solution of pH 6.0 - 8.5, preferably 7.8, and a molarity of the buffer solution of 0.01 - 0.2 M with 0.015 - 0.3 M of an aliphatic mono- or dialdehyde with 1-6 carbon atoms, preferably formaldehyde for 14 - 28 days at 20 - ^37°C. If desired, the product can be subjected to a 10 - 20, preferably 15 hour dialysis against a physiologically tolerable solution such as 0.15 molar sodium chloride and/or sterile filtered. For the production of a vaccine, the product is suitably mixed with an adjuvant, e.g. aluminum hydroxide. When diluting with a physiologically tolerable solution such as 0.15 molar sodium chloride solution, the concentration is set to the desired antigen content.

Denne vaksine kan anvendes alene, men også i kombina-sjon med andre vaksiner. Til kombinasjonen egner det seg spesielt difterietoksoid, pertussisimmunogen, poliomyelittvira eller meslinger-vira. Ved adsorpsjonsforsøk kan man vise at om-trent halvparten av alle mot tetanus-toksin rettede beskyttende antilegemer er rettet mot fragment B. This vaccine can be used alone, but also in combination with other vaccines. Diphtheria toxoid, pertussis immunogen, poliomyelitis viruses or measles viruses are particularly suitable for the combination. In adsorption experiments, it can be shown that approximately half of all protective antibodies directed against tetanus toxin are directed against fragment B.

Oppfinnelsen skal forklares nærmere ved hjelp av noen eksempler. The invention will be explained in more detail with the help of some examples.

Eksempel 1.Example 1.

Clostrium-Tetani fermenteres i et latam-medium. Det derved dannede toksin absorberes på dietylaminoetylcellulose-ioneut-veksler og elueres ved hjelp av en gradientøkende molaritet av en Clostrium-Tetani is fermented in a latam medium. The toxin thus formed is absorbed on a diethylaminoethyl cellulose ion exchanger and eluted using a gradient increasing molarity of a

fosfatpuffer av pH-verdi 7 fra 0,01 mol til 0,4 mol. Fraksjonene phosphate buffer of pH value 7 from 0.01 mol to 0.4 mol. The factions

.som inneholder toksinet oppdeles igjen ved en kromatografi på en .which contains the toxin is divided again by a chromatography on a

søyle som er fylt med "Sephadex(R)" G 100 og fraksjoner som inneholder toksinet utvinnes og forenes. column packed with "Sephadex(R)" G 100 and fractions containing the toxin are recovered and combined.

2,5 g tetanus-toksin i en oppløsning med en sluttkonsen-trasjon på 15 mg tetanus-toksin/ml av en 0,1 mol fosfatpuffer pH 6,5 inneholdende 0,01 mol Na2EDTA og 0,001 mol cystein HC1 blandes med 40 mg papain. Papainet inneholder 30 enheter enzym-atrisk aktivitet/mg stoff. I første rekke holdes blandingen i en time ved 45°C, deretter ytterligere i 2 timer ved 55°C. 2.5 g of tetanus toxin in a solution with a final concentration of 15 mg tetanus toxin/ml of a 0.1 mol phosphate buffer pH 6.5 containing 0.01 mol Na2EDTA and 0.001 mol cysteine HCl are mixed with 40 mg papain . Papain contains 30 units of enzymatic activity/mg substance. First, the mixture is held for one hour at 45°C, then for a further 2 hours at 55°C.

For spaltningen av tetanus-toksinet kan det fortrinnsvis også anvendes bærebundet papain. Carrier-bound papain can preferably also be used for the cleavage of the tetanus toxin.

Hertil sammenbringer en mot 0,1 mol Na^O^-puffer av pH-verdi 10,0 dialysert oppløsning av 500 ml papain med 50 mg/ml med en ved hjelp av cyanbromid-aktivert agarosegel og hensettes i 24 timer ved 4°C. Det flere ganger med en 4 mol urinstoff og 0,5 mol NaCl pr. liter holdige oppløsning vaskede reaksjonspro-dukt anvendes analogt til det oppløselige enzym for den proteolyttiske spaltning av tetanus-toksinet. For this, a dialyzed solution of 500 ml of papain with 50 mg/ml against 0.1 mol of Na^O^ buffer of pH value 10.0 is combined with an agarose gel activated by means of cyanide bromide and left for 24 hours at 4°C . It several times with a 4 mol urea and 0.5 mol NaCl per liters of solution containing washed reaction product are used analogously to the soluble enzyme for the proteolytic cleavage of the tetanus toxin.

Etter blandingens avkjøling inndampes volumet ved hjelp av ultrafilter og deretter påføres på en 10 x 100 cm lang After the mixture has cooled, the volume is evaporated using an ultrafilter and then applied to a 10 x 100 cm long

(R) (R)

søyle, fylt med "Sephadex " G 100. Elueringen foregår med 0,1 M trishydroksymetylaminometan-saltsyrepuffer av pH-verdi 8,0, inneholdende 1 mol NaCl. column, filled with "Sephadex" G 100. The elution takes place with 0.1 M trishydroxymethylaminomethane hydrochloric acid buffer of pH value 8.0, containing 1 mol of NaCl.

Under elueringen foregår kontinuerlig måling av adsorp-sjonen i området til bølgelengdene på 280 nm. Fraksjonene som i dette området viser en adsorpsjon, oppfanges atskilt. Det opp-står 4 fraksjoner, idet den første danner en dobbelttopp. During the elution, continuous measurement of the adsorption takes place in the range of wavelengths of 280 nm. The fractions that show adsorption in this area are collected separately. There are 4 fractions, the first forming a double peak.

Ved en gjentatt kromatografi under de samme betingelser trekkes dobbelttoppen fra hverandre og endelig isoleres 2. topp. Denne inneholder det ifølge oppfinnelsen atoksiske, immunogene produkt, fragment B av tetanus-toksin. In a repeated chromatography under the same conditions, the double peak is pulled apart and finally the 2nd peak is isolated. This contains the atoxic, immunogenic product according to the invention, fragment B of tetanus toxin.

Spesielt enkelt lar fragment B ifølge oppfinnelsen seg utvinne når man binder antiserum rettet mot det kjente fragment C (10 ml med 1000 IU/ml) på vanlig måte til Br-CN-aktivert agarose og deretter sammenblander et ved gel-kromatografi partielt renset preparat av fragment B med et slikt immunadsorbens. Etter 60 minutters omrøring atskilles gelen de dertil bundne forurens-ninger og fragment B utvinnes ved hjelp av en gjentatt gel-kromatograf i . Fragment B according to the invention can be recovered particularly easily when you bind antiserum directed against the known fragment C (10 ml with 1000 IU/ml) in the usual way to Br-CN-activated agarose and then mix together a preparation partially purified by gel chromatography of fragment B with such an immunoadsorbent. After 60 minutes of stirring, the gel is separated from the contaminants bound to it and fragment B is recovered with the aid of a repeated gel chromatograph in .

Det er også mulig å nøytralisere forurensningene ved tilsetning av antifragment C-antiserum (IgG fraksjon) og å at-skille immunkomplekset ved gel-kromatografi fra fragment B. It is also possible to neutralize the contaminants by adding antifragment C antiserum (IgG fraction) and to separate the immune complex from fragment B by gel chromatography.

Endelig lar fragment B ifølge oppfinnelsen seg også fremstille når det ved hjelp av et engang fremstillet fragment B over et antiserum fremstilles et immunadsorbens for fragment B. Man kan derved betjene seg av kjente fremgangsmåter. Ved hjelp av immunadsorbenset adsorberes fragment B selektivt fra blandingen med andre reaksjonsprodukter fra proteinasebehandlingen av tetanus-toksinet selektivt, hvoretter det kan elueres selektivt fra immunadsorbens. Finally, according to the invention, fragment B can also be prepared when an immunoadsorbent for fragment B is prepared with the help of a once-prepared fragment B over an antiserum. One can thereby make use of known methods. Using the immunoadsorbent, fragment B is selectively adsorbed from the mixture with other reaction products from the proteinase treatment of the tetanus toxin, after which it can be selectively eluted from the immunoadsorbent.

Eksempel 2.Example 2.

Fragment B fortynnes med 0,1 molar fosfatpufferoppløs-ning av pH-verdi 6,5 til 200 yug pr. ml og blandes med 0,06% formaldehyd og hensettes ved 37 oC i 21 dager. Deretter dialyseres mot et flere ganger volum 0,15 natriumkloridoppløsning i 16 timer og forarbeides på vanlig måte til en vaksine. Fragment B is diluted with 0.1 molar phosphate buffer solution of pH value 6.5 to 200 yug per ml and mixed with 0.06% formaldehyde and left at 37 oC for 21 days. It is then dialysed against a several times volume of 0.15 sodium chloride solution for 16 hours and processed in the usual way into a vaccine.

Claims (8)

1. Atoksisk, immunogent produkt av tetanus-toksin, karakterisert ved følgende parametre: a) sedimentasjonskonstanter S°qw 5,66 - 0,34 , b) immunologisk reaksjon med tetanus-antitoksin: partielt identisk med det fra tetanus-toksin, ci immunologisk reaksjon med fragment C: ikke identisk, d) molekylvekt bestemt ved gel-elektroforese i natrium-dodecylsulf at , 95.000 - 5.000, e) ved reduksjon spaltbart i en underenhet med en molekylvekt på 45.000 - 2.5000 og en med det kjente derivat av de lette kjeder av tetanus-toksin immunologisk identisk underenhet med molekylvekt på 48.000 - 2.500 (hver gang bestemt i natriumdodecylsulfat-elektroforese).1. Non-toxic, immunogenic product of tetanus toxin, characterized by the following parameters: a) sedimentation constants S°qw 5.66 - 0.34, b) immunological reaction with tetanus antitoxin: partially identical to that from tetanus toxin, ci immunological reaction with fragment C: not identical, d) molecular weight determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate, 95,000 - 5,000, e) by reduction cleavable into a subunit with a molecular weight of 45,000 - 2,5000 and an immunologically identical subunit with a molecular weight of 48,000 - 2,500 with the known derivative of the light chains of tetanus toxin (each time determined in sodium dodecyl sulfate electrophoresis). 2. Fremgangsmåte til fremstilling av det atoksiske, immunogene produkt ifølge krav 1, karakterisert ved at det ved behandling av tetanus-toksin med en proteinase oppnådde produkt fremstilles ved molekylsikt-fraksjonering, immunadsorpsjon, elektroforese og/eller ioneutvekslings-kromatografi.2. Process for producing the non-toxic, immunogenic product according to claim 1, characterized in that the product obtained by treating tetanus toxin with a proteinase is produced by molecular sieve fractionation, immunoadsorption, electrophoresis and/or ion exchange chromatography. 3. Fremgangsmåte ifølge krav 2, karakterisert ved at produktet behandles med en pH-verdi på 0,6 - 8,5 med 0,015 - 0,3 M av et alifatisk mono- eller dialdehyd med 1-6 karbonatomer i 14 - 28 dager ved 20 - 37°C.3. Method according to claim 2, characterized in that the product is treated with a pH value of 0.6 - 8.5 with 0.015 - 0.3 M of an aliphatic mono- or dialdehyde with 1-6 carbon atoms for 14 - 28 days at 20 - 37°C. 4. Produkt, karakterisert ved parametre av et produkt oppnådd ifølge krav 3.4. Product, characterized by parameters of a product obtained according to claim 3. 5. Anvendelse av produktet ifølge krav 1 som vesentlig bestanddel i en vaksine mot tetanus.5. Use of the product according to claim 1 as an essential component in a vaccine against tetanus. 6. Anvendelse av produktet ifølge krav 4 som vesentlig bestanddel i en vaksine mot tetanus.6. Use of the product according to claim 4 as an essential component in a vaccine against tetanus. 7. Tetanusvaksine, inneholdende som virksom bestanddel et produkt ifølge krav 1.7. Tetanus vaccine, containing as active ingredient a product according to claim 1. 8. Tetanusvaksine, inneholdende som virksom bestanddel et produkt ifølge krav 4.8. Tetanus vaccine, containing as active ingredient a product according to claim 4.
NO772704A 1976-07-31 1977-07-29 ATOXIC, IMMUNOGENIC PRODUCT OF TETANUS TOXIN NO772704L (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2634584A DE2634584C3 (en) 1976-07-31 1976-07-31 Atoxic, immunogenic product from tetanus toxin

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NO772704L true NO772704L (en) 1978-02-01

Family

ID=5984461

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO772704A NO772704L (en) 1976-07-31 1977-07-29 ATOXIC, IMMUNOGENIC PRODUCT OF TETANUS TOXIN

Country Status (18)

Country Link
JP (1) JPS5326319A (en)
AT (1) AT362498B (en)
AU (1) AU516191B2 (en)
BE (1) BE857373A (en)
CA (1) CA1099635A (en)
DE (1) DE2634584C3 (en)
DK (1) DK342577A (en)
EG (1) EG12732A (en)
FI (1) FI58500C (en)
FR (1) FR2360315A1 (en)
GB (1) GB1570958A (en)
IE (1) IE45539B1 (en)
IL (1) IL52617A (en)
IT (1) IT1085660B (en)
LU (1) LU77874A1 (en)
NL (1) NL7708279A (en)
NO (1) NO772704L (en)
SE (1) SE7708693L (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8516442D0 (en) * 1985-06-28 1985-07-31 Wellcome Found Cloned antigen

Also Published As

Publication number Publication date
FI58500C (en) 1981-02-10
FR2360315B1 (en) 1980-04-11
IE45539B1 (en) 1982-09-22
DE2634584B2 (en) 1979-03-22
DK342577A (en) 1978-02-01
DE2634584C3 (en) 1979-11-08
GB1570958A (en) 1980-07-09
JPS5326319A (en) 1978-03-11
AU516191B2 (en) 1981-05-21
IL52617A0 (en) 1977-10-31
EG12732A (en) 1979-09-30
IE45539L (en) 1978-01-31
NL7708279A (en) 1978-02-02
FI772305A (en) 1978-02-01
SE7708693L (en) 1978-02-01
DE2634584A1 (en) 1978-02-02
BE857373A (en) 1978-02-01
IT1085660B (en) 1985-05-28
CA1099635A (en) 1981-04-21
LU77874A1 (en) 1978-02-02
FI58500B (en) 1980-10-31
AU2738077A (en) 1979-02-01
IL52617A (en) 1980-12-31
ATA563477A (en) 1980-10-15
AT362498B (en) 1981-05-25
FR2360315A1 (en) 1978-03-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4742159A (en) Digitalis antibodies, process for the preparation thereof and the use thereof for the therapy of digitalis intoxications
EP0336736B1 (en) Purification of pertussis toxins and production of vaccine
DK165358C (en) Purified Bordetella pertussis antigen, vaccine containing such antigen and method for isolating such antigen
US4704274A (en) Method for the purification of LPF-HA
US5667787A (en) Purification of a pertussis outer membrane protein
US20100055134A1 (en) Method of separating protective components of bordetella pertussis
US4181713A (en) Isolation of HBs Ag
KR950010323B1 (en) Purification method of pertussis antigen
JP2950970B2 (en) Method for purifying a 69000 dalton antigenic protein from B. pertussis
US4314994A (en) Process for obtaining a plasminogen activator
EP0175841A2 (en) Method for the production of pertussis component vaccine and combined vaccine of pertussis antigen; diphtheria toxoid and tetanus toxoid
US5045203A (en) Separation of protein antigens of Bordetella bacteria by affinity chromatography
NO772704L (en) ATOXIC, IMMUNOGENIC PRODUCT OF TETANUS TOXIN
JPS62258326A (en) Purification and solubilization of protein antigen, detoxification of bordetella pertussis toxin and cell free pertussis vaccine
Horiguchi et al. Simplified procedure for purification of Bordetella bronchiseptica dermonecrotic toxin
US4200627A (en) Atoxic, immunogenic product of tetanus toxin
US6444211B2 (en) Purification of a pertussis outer membrane protein
JP3747077B2 (en) Separation and acquisition method of pertussis-derived infection protective components
Soares et al. An effective toxoid from tetanus toxin prepared by stepwise iodination of purified toxin
US4859766A (en) Purified appetite-regulating substances of biological orgin, their antibodies, immunocomplexes of the appetite--regulating substances formed with the antibodies and processes for preparing same
CA2224052C (en) Pertussis outer membrane protein
George et al. Purification of serotype I antigen from nutritionally variant streptococci
JPS641445B2 (en)
JPS60142924A (en) Production of low-molecular alpha2-macroglobulin
CA2359307A1 (en) Pertussis outer membrane protein