FI58500B - REFERENCE TO A FRAME RELEASE BETWEEN IMMUNOGENT FRAGMENT AND TETANUS TOXIN - Google Patents

REFERENCE TO A FRAME RELEASE BETWEEN IMMUNOGENT FRAGMENT AND TETANUS TOXIN Download PDF

Info

Publication number
FI58500B
FI58500B FI772305A FI772305A FI58500B FI 58500 B FI58500 B FI 58500B FI 772305 A FI772305 A FI 772305A FI 772305 A FI772305 A FI 772305A FI 58500 B FI58500 B FI 58500B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
fragment
tetanus toxin
molecular weight
tetanus
sodium dodecyl
Prior art date
Application number
FI772305A
Other languages
Finnish (fi)
Other versions
FI58500C (en
FI772305A (en
Inventor
Torsten Bertil Helting
Original Assignee
Behringwerke Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Behringwerke Ag filed Critical Behringwerke Ag
Publication of FI772305A publication Critical patent/FI772305A/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI58500B publication Critical patent/FI58500B/en
Publication of FI58500C publication Critical patent/FI58500C/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/08Clostridium, e.g. Clostridium tetani
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

n —.1 r_, „„ KUULUTUSJULKAISU Cftcnnn —.1 r_, „„ AD PUBLICATION Cftcnn

jfiFgj ^ <11) UTLÄGGNINGSSKMFT 5 8 5 UUjfiFgj ^ <11) UTLÄGGNINGSSKMFT 5 8 5 UU

c (45) ;λ ^ 10 ~ 'r'1 ^ ^ (51) ic».ik?/int.a.3 C 07 G 7/00, A 61 K 39/08 1 // C 12 H 1/145 SUOMI—FINLAND (21) Pwn«iw»mw-pe««i«ewBi 772305 (22) HakmnltpUvf—AiNeknlnfrftg 28.07.77 * * (23) AUaipUvi—Glltlghttadag 28.07.77c (45); λ ^ 10 ~ 'r'1 ^ ^ (51) ic ».ik? /int.a.3 C 07 G 7/00, A 61 K 39/08 1 // C 12 H 1 / 145 FINLAND — FINLAND (21) Pwn «iw» mw-pe «« i «ewBi 772305 (22) HakmnltpUvf — AiNeknlnfrftg 28.07.77 * * (23) AUaipUvi — Glltlghttadag 28.07.77

(41) Tutkit |ulkMoi — Bllvtc offwcNg q2 jQ(41) Investigate | external - Bllvtc offwcNg q2 jQ

Patentti· ja rekisterihallitus (44) Nihttvitolpanon |» kuuLlulkaium pvm. —National Board of Patents and Registration (44) Nihttvitolpanon | » month expiration date -

Patent» och registerstyrelsen 7 AnaMon utlagd oeh utl.»krlft*n pubiicarad 31.10.80 (32)(33)(31) Fppdattjr «tuoHcma—Baglrd priority 31 # 0γ # jgPatent »and register 7 AnaMon utlagd oeh utl.» Krlft * n pubiicarad 31.10.80 (32) (33) (31) Fppdattjr «TuoHcma — Baglrd priority 31 # 0γ # jg

Saksan Liittotasavalta-Förbundsrepubliken Tyskland(DE) P 2634584-6 (71) Behringwerke Aktiengesellschaft, D-3550 Marburg/Lahn, Saksan Liitto- tasavalta-Förbundsrepubliken Tyskland(DE) (72) Torsten Bertil Helting, Marburg/Lahn, Saksan Liittotasavalta-Förbunds-republiken Tyskland(DE) (7M Oy Kolster Ab (5^) Menetelmä tetanustoksiinista saadun myrkyttömän, immunogeenisen fragmentti B:n valmistamiseksi - Förfarande för framställning av ett gift-fritt, immunogent fragment B ur tetanustoxinFederal Republic of Germany-Förbundsrepubliken Tyskland (DE) P 2634584-6 (71) Behringwerke Aktiengesellschaft, D-3550 Marburg / Lahn, Federal Republic of Germany-Förbundsrepubliken Tyskland (DE) (72) Torsten Bertil Helting, Marburg / Lahn, German Liitt -Republiken Tyskland (DE) (7M Oy Kolster Ab (5 ^) Method for the preparation of a non-toxic, immunogenic fragment B derived from tetanus toxin - Förfarande för framställning av ett gift-fritt, immunogent fragment B ur tetanustoxin

Keksinnön kohteena on menetelmä tetanustoksiinista proteinaasin avulla saadun myrkyttömän, immunogeenisen tuotteen valmistamiseksi.The present invention relates to a process for the preparation of a non-toxic, immunogenic product obtained from tetanus toxin by means of a proteinase.

_ Tetanustoksiini on tunnetusti imettäväisille ja myös ihmiselle erittäin myrkyllinen ja se on ennen käyttöä immunoivana aineena tehtävä myrkyttömäksi._ Tetanustoxin is known to be very toxic to mammals and also to humans and must be rendered non-toxic before use as an immunizing agent.

On tunnettua, että tetanustoksiini voidaan tehdä myrkyttömäksi käsittelemällä formaldehydillä. Lisäksi on tunnettua, että voidaan saada myrkytön, immunogee-ninen tuote käsittelemällä tetanustoksiinia proteinaasilla. Tätä myrkytöntä, immunogeenista tuotetta nimitetään tieteellisessä kirjallisuudessa tetanus-toksiinin fragmentiksi C.It is known that tetanus toxin can be detoxified by treatment with formaldehyde. In addition, it is known that a non-toxic, immunogenic product can be obtained by treating tetanus toxin with a proteinase. This non-toxic, immunogenic product is referred to in the scientific literature as fragment C of tetanus toxin.

Julkaisussa Biochem. Biophys. Res. Commun. j>7 (1974), 1263-1279 on esitetty fraktio B:ksi nimitetyn tetanustoksiinifraktion eristäminen. Tämä fraktio B (jolla harhaanjohtavasti on sama kirjainsymboli kuin fragmentti B:llä) on yhtä myrkyllinen kuin itse tetanustoksiini. Keksinnön mukaisesti valmistettu fragmentti B, joka on ensimmäisen kerran kuvattu eristettynä tuotteena julkaisussa J. Biol. Chem. 252 (1977), s. 187-193, on sensijaan myrkytön kysymykseen tulevina käyttömäärinä.In Biochem. Biophys. Res. Commun. j> 7 (1974), 1263-1279 discloses the isolation of a tetanus toxin fraction called fraction B. This fraction B (which misleadingly has the same letter symbol as fragment B) is as toxic as the tetanus toxin itself. Fragment B prepared according to the invention, first described as an isolated product in J. Biol. Chem. 252 (1977), pp. 187-193, is instead non-toxic in questionable uses.

2 58500 Κκillä olevan keksinnön mukaisesti saadaan käsittelemällä tetanustoksiinia proteinaasilla, esimerkiksi papaiinilla, yksiselitteisesti karakterisoitavissa olevaa ainetta, joka voidaan eristää tunnetuilla biokemiallisilla menetelmillä ja jolla on erityisesti edulliset ominaisuudet; saatu fragmentiksi B nimitetty tuote on immunogeeninen ja myrkytön. Fragmentti B on siten erittäin sopiva käytettäväksi rokotteisiin jäykkäkouristusta (tetanus) vastaan.According to the invention, 2,585,500 saadaanκ is obtained by treating tetanus toxin with a proteinase, for example papain, a substance which can be unambiguously characterized, which can be isolated by known biochemical methods and which has particularly advantageous properties; the resulting product, designated fragment B, is immunogenic and non-toxic. Fragment B is thus very suitable for use in vaccines against tetanus.

Keksinnön kohteena on menetelmä tetanustoksiinista saadun myrkyttömän, im-munogeenisen tuotteen valmistamiseksi, jolla on seuraavat ominaisuudet: a) sedimentaatiovakio S°2ow 5»66 + 0,3**, b) immunologinen reaktio tetanus-antitoksiinin kanssa: osittain sama kuin tetanustoksiinin kanssa, c) immunologinen reaktio fragmentin C kanssa: ei identtinen d) geelielektroforeesilla natriumdodekyylisulfaatissa määritetty molekyyli-paino 95 ooo + 5000, e) se on didulfidisillan pelkistävillä reagensseilla jaettavissa alayksiköksi, jonka molekyylipaino on **5 000 + 2500, ja alayksiköksi, joka on immunologisesti samanlainen kuin tetanustoksiinin keveiden ketjujen tunnetut johdannaiset ja jonka molekyylipaino on U8 000 + 2500, jotka mole-kyylipainot on määritetty geelielektroforeesilla natriumdodekyylisulfaa-tissa.The invention relates to a process for the preparation of a non-toxic, immunogenic product derived from tetanus toxin having the following properties: a) sedimentation constant S ° 2ow 5 »66 + 0.3 **, b) immunological reaction with tetanus antitoxin: partly the same as with tetanus toxin, c) immunological reaction with fragment C: not identical d) molecular weight determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulphate 95 ooo + 5000, e) it can be divided by reducing agents with didulfide bridge into a subunit with the same molecular weight ** 5,000 + 2500 and an immunologically similar subunit, than known derivatives of tetanus toxin light chains and having a molecular weight of U8,000 + 2500, which molecular weights have been determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate.

Keksinnön mukaiselle menetelmälle on tunnusomaista, että tetanustoksiini-liuos hajotetaan proteinaasilla, liuos, jossa hajotuksessa syntyneet tuotteet ovat, geelisuodatetaan geelillä, joka sopii sellaisten proteiinien erottamiseen, joiden molekyylipaino on noin 100 000, jolloin eluointi suoritetaan 0,1 M tris/suolahappo-puskurilla (pH 8), jossa on 1 mol/1 natriumkloridia, ja fraktioista kerätään ne, joissa on proteiineja, joiden molekyylipaino geelielektroforeesilla natriumdode-kyylisulfaatissa mitattuna on noin 95 000 ja jotka eivät muodosta saostumaa fragmentti-C-vastaseerumin kanssa.The method according to the invention is characterized in that the tetanus toxin solution is digested with proteinase, the solution containing the degradation products is gel-filtered with a gel suitable for separating proteins with a molecular weight of about 100,000, eluting with 0.1 M Tris / hydrochloric acid buffer ( pH 8) with 1 mol / l sodium chloride, and those containing proteins with a molecular weight of about 95,000 as measured by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate and which do not precipitate with fragment C anti-serum are collected.

Parametrien poikkeamarajat aiheutuvat määritysmenetelmien virherajöistä.The deviations of the parameters are due to the error limits of the analytical methods.

Sedimentaatiovakio määritettiin vesipitoisessa liuoksessa, joka oli 0,2M NaCl:n, 0,02M Na2H Ρ0^:η ja 0,03M Na HgPO^in suhteen ja jonka pH oli 6,8, T. Sved-bergin ja K.O. Pedersenin mukaan "The Ultracentrifuge", The Clarendon Press,The sedimentation constant was determined in an aqueous solution of 0.2 M NaCl, 0.02 M Na 2 H 2 O 2 and 0.03 M Na H 2 PO 4 at pH 6.8 by T. Sved-Berg and K.O. According to Pedersen, "The Ultracentrifuge", The Clarendon Press,

Oxford, 19*+0, analyyttisen ultrasentrifugin kerrostuskennossa Vinogradin mukaan,Oxford, 19 * + 0, in an analytical ultracentrifuge deposition cell according to Vinograd,

Proc.Acad.Sei. USA, 1*9, 902 (1963). Fragmenttia C sisältävän koeliuoksen kerrostaminen tapahtui IM NaCl-liuokseLla, jonka pH-arvo oli 7,0.Proc.Acad.Sei. USA, 1 * 9, 902 (1963). The test solution containing fragment C was layered with 1M NaCl solution having a pH of 7.0.

Immunologinen reaktiivisuus testattiin käyttäen vastaseerumeita, joita saatiin immunoimalla kaniineja tetanus-toksoidilla tai keksinnön mukaisella fragmentti C :11a. Käytettiin tunnettua kaksoisdiffuusiomenetelmää. Tämän menetelmän avulla voidaan osoittaa, että aikaisemmin kuvattu fragmentti C poikkeaa yksiselitteisesti keksinnön mukaisesti valmistetusta fragmentista B. Voitiin myös osoittaa, että fragmentti B voidaan jakaa kahteen osaan,joista toisella on samanlainen immunologinen käyttäytyminen kuin DE-hakemusjulkaisussa 2 *+57 0*+7 kuvatulla kevyen ketjun johdan- 3 58500 naisella.Immunological reactivity was tested using antisera obtained by immunizing rabbits with tetanus toxoid or fragment C of the invention. A known double diffusion method was used. By this method it can be shown that the previously described fragment C differs unambiguously from the fragment B prepared according to the invention. It could also be shown that the fragment B can be divided into two parts, one of which has similar immunological behavior to that described in DE 2 * + 57 0 * + 7. light chain management- 3,500,500 women.

Geelielektroforeesi 7~#:sessa polyakryyliamidigeelissä suoritettiin K.Gel electrophoresis on a 7 ~ polyacrylamide gel was performed on K.

Weberin ja M. Osbornen mukaisesti, J. Biol. Chem., nide 2HU, UU06-UU12 (1969)·According to Weber and M. Osborne, J. Biol. Chem., Volume 2HU, UU06-UU12 (1969) ·

Ennen geelielektroforeesin suorittamista laimennettiin analysoitavat näytteet natriumdodekyylisulfaatin vesiliuoksella 1 %:n pitoisuuteen ja pidettiin minuutin ajan kiehuvassa vedessä. Molekyylipainon laskeminen tapahtui vertaamalla mole-kyylipainomäärityksiin tarkoitettuihin standardiaineisiin (aldolaasiin ja kata-laasiin, joita toimittaa firma Boehringer, Mannheim, Kat.Nr. 15 575 -"Eichproteine Grösse II"). Laskentamenetelmä on esitetty edellä mainitussa Weberin ja Osbornen julkaisussa.Prior to performing gel electrophoresis, the samples to be analyzed were diluted with 1% aqueous sodium dodecyl sulfate to a concentration of 1% and kept in boiling water for one minute. Molecular weight was calculated by comparison with standard materials for Mole weight assays (aldolase and catalase, supplied by Boehringer, Mannheim, Cat. No. 15,575 - "Eichproteine Grösse II"). The calculation method is presented in Weber and Osborne, cited above.

Uusi myrkytön, immunogeeninen, tetanustoksiinin fragmentti B:ksi nimitetty tuote voidaan saada DE-hakemusjulkaisussa 25 10 987 kuvatulla menetelmällä käsittelemällä tetanustoksiinia proteinaasilla. Eräässä edullisessa suoritusmuodossa saadaan fragmenttia B käsittelemällä tetanustoksiinia, jota voidaan saada Clostridium " tetanin viljelysuodoksista ioninvaihtokromatografiaa käyttäen, papaiinilla, edul lisesti kantajaan sidottuna, pelkistävän aineen läsnäollessa.A new non-toxic, immunogenic, tetanustoxin fragment B product can be obtained by the method described in DE-A-25 10 987 by treating tetanus toxin with a proteinase. In a preferred embodiment, fragment B is obtained by treating a tetanus toxin obtainable from culture filtrates of Clostridium tetanus using ion exchange chromatography, with papain, preferably bound to a support, in the presence of a reducing agent.

Tällöin on osoittautunut hyödylliseksi valita inkuboimislämpötila tavallista korkeammaksi, ts. väliltä 30-60°C, edullisesti väliltä ^5-55°C. Tällä toimenpiteellä voidaan keksinnön mukaisesti valmistetun tuotteen saantoa lisätä. Tetanustoksiinin proteolyyttisen käsittelyn jälkeenpoistetaan kantajaan sidottu entsyymi reaktioseoksesta, edullisesti linkoamalla, ja jäljelle jäänyt liuos fraktioidaan mo-lekyyliseulalla. Edullisesti käytetään tällöin epikloorihydriinillä ristisidottua dekstraania, esimerkiksi Sephadexv G 100, jota tuottaa firma Pharmacia, Uppsala, (R) (p) tai Ultragel' , tuottaa LKB, Bromma, tai Bio-gel p , tuottaa Bio-Rad Laboratories, Richmond, Calif..In this case, it has proved useful to select an incubation temperature higher than usual, i.e. between 30-60 ° C, preferably between ^ 5-55 ° C. By this measure, the yield of the product prepared according to the invention can be increased. After proteolytic treatment of the tetanus toxin, the enzyme bound to the support is removed from the reaction mixture, preferably by centrifugation, and the remaining solution is fractionated through a molecular sieve. Preferably, epichlorohydrin-crosslinked dextran is used, for example Sephadexv G 100, manufactured by Pharmacia, Uppsala, (R) (p) or Ultragel ', produced by LKB, Bromma, or Bio-gel p, produced by Bio-Rad Laboratories, Richmond, Calif. .

Mikäli käytetään liukoista entsyymivalmistetta, tapahtuu entsyymin erottaminen molekyyliseulafraktiointia suoritettaessa.If a soluble enzyme preparation is used, the enzyme is separated during molecular sieve fractionation.

Heti kun fragmenttia B tällä tavalla kerran on saatu, voidaan valmistaa sen vastaseerumi immunoimalla koe-eläimiä fragmentilla B, jonka vastaseerumin avulla tavalliseen tapaan voidaan saada immunoadsorbentti. Tätä puolestaan voidaan käyttää fragmentin B erityisen puhtaan muodon valmistamiseen edellä mainitun käymisliuoksen inkuboimispanoksesta.Once fragment B has been obtained in this way, its antiserum can be prepared by immunizing experimental animals with fragment B, which antiserum can be used to obtain an immunoadsorbent in the usual manner. This in turn can be used to prepare a particularly pure form of fragment B from the incubation batch of the above fermentation broth.

Myös fragmentin C tai tetanustoksiinin poistaminen seoksesta, jossa on fragmenttia B, voidaan suorittaa immunoadsorptiivisesti. Tätä varten valmistetaan ensin vastaseerumi tunnettua fragmenttia C vastaan. Tällä vastaseerumilla voidaan tavallisella tavalla saada immunoadsorbentti. Tällä puolestaan voidaan poistaa fragmentin C ja tetanustoksiinin jäännökset fragmentista B, koska sekä fragmentti C että myös tetanustoksiini reagoivat fragmentti C-vastaseerumin kanssa, mutta eivät fragmentin B kanssa.Removal of fragment C or tetanus toxin from the mixture containing fragment B can also be performed immunoadsorbently. To this end, an antiserum against a known fragment C is first prepared. An immunoadsorbent can be obtained with this antiserum in the usual manner. This, in turn, can remove residues of fragment C and tetanus toxin from fragment B, since both fragment C and tetanustoxin react with fragment C antiserum, but not with fragment B.

ι> 5 8500ι> 5 8500

Tetanustoksiinista saatava fragmentti B osoittautui vertailtaessa tetanus-toksiiniin myrkyttömäksi. Tetanustoksiini sisältää. 30 x 10^ ja fragmentti B 5 kuolettavaa vähimmäisannosta (MLD) mg:aa proteiinia kohti. Fragmentti B osoittautui myrkyllisyysoireiden suhteen tetanustoksiinista täysin poikkeavaksi: se ei aiheuta spastiselle halvautumiselle ominaisia oireita. Huolimatta myrkyllisyyden alentu- g misesta 1 : 6 x 10 -osaan, on tarkoituksenmukaista käsitellä fragmenttia B aldehy-dillä, kuten seuraavassa kuvataan.Fragment B from tetanus toxin proved to be non-toxic when compared to tetanus toxin. Tetanust toxin contains. 30 x 10 4 and fragment B 5 of the minimum lethal dose (MLD) per mg of protein. Fragment B proved to be completely different from tetanus toxin in terms of toxicity symptoms: it does not cause the symptoms characteristic of spastic paralysis. Despite the reduction in toxicity to 1: 6 x 10, it is appropriate to treat fragment B with an aldehyde as described below.

Adsorptiokokeilla voidaan osoittaa, että noin puolet kaikista tetanustoksiinin vasta-aineista ovat fragmentin B vasta-aineita.Adsorption experiments can show that about half of all tetanus toxin antibodies are antibodies to fragment B.

Keksintöä valaistaan nyt lähemmin seuraavan esimerkin avulla.The invention will now be further illustrated by the following example.

EsimerkkiExample

Clostridium tetani-viljelmässä muodostunut toksiini adsorboidaan dietyyli-aminoetyyliselluloosa-ioninvaihtimella ja eluoidaan fosfaattipuskurin (pH-arvo 7) nousevalla moolisuus-gradientilla 0,01-molaarisesta 0,U-molaariseen. Toksiinia sisältävät jakeet jaetaan vielä kromatografisesti pylväässä, joka on täytetty Sephadex^ G 100:11a (epikloorihydriini-verkkoutettu dekstraani, valmistaja Pharmacia, Uppsala, Ruotsi), ja toksiinia sisältävät jakeet otetaan talteen ja yhdistetään.The toxin formed in the Clostridium tetani culture is adsorbed on a diethylaminoethylcellulose ion exchanger and eluted with an increasing molarity gradient of phosphate buffer (pH 7) from 0.01 molar to 0.1 U molar. The toxin-containing fractions are further chromatographed on a column packed with Sephadex® G 100 (epichlorohydrin-crosslinked dextran, manufactured by Pharmacia, Uppsala, Sweden), and the toxin-containing fractions are collected and combined.

2,5 g tetanustoksiinia liuoksessa, jonka loppuväkevyys on 15 mg tetanus-toksiinia/ml 0,1-m fosfaattipuskuria, jonka pH on 6,5 ja joka sisältää 0,01-m Na^EDTA ja 0,001-m kysteiini-HCl, sekoitetaan 1*0 mg:n kanssa papaiinia. Papaiini sisältää 30 yksikköä entsymaattista aktiivisuutta/mg ainetta. Ensin seosta pidetään tunnin ajan U50C:ssa ja sen jälkeen vielä 2 tuntia 55°C:ssa.2.5 g of tetanus toxin in a solution with a final concentration of 15 mg tetanus toxin / ml in 0.1 M phosphate buffer, pH 6.5, containing 0.01 M Na 2 EDTA and 0.001 M cysteine HCl are mixed With 1 * 0 mg of papain. Papain contains 30 units of enzymatic activity / mg of substance. The mixture is first kept for one hour at 50 ° C and then for a further 2 hours at 55 ° C.

Tetanustoksiinin erottamista varten voidaan edullisesti käyttää myös kantajaan immobilisoitua papaiinia.Papain immobilized on a carrier can also be advantageously used for the separation of tetanus toxin.

Tämän valmistamiseksi saatetaan 0,1-m Na^CO^-puskuriaipH-arvo 10,0) vastaan dialysoitua liuosta yhteen 500 ml:n kanssa papaiinia, jossa on 50 mg/ml syaanibromidilla aktivoitua agaroosigeeliä ja annetaan olla 2k tuntia U°C:ssa. Useampaan kertaan k moolia virtsa-ainetta ja 0,5 moolia NaCl/l sisältävällä liuoksella pestyä reaktiotuotetta käytetään samalla tavalla kuin liukoista entsyymiä tetanustoksiinin proteolyyttisessä fraktioinnissa.To prepare this, a solution dialyzed against 0.1 M Na 2 CO 2 buffer (10.0) is combined with 500 ml of papain on a 50 mg / ml cyanogen bromide-activated agarose gel and allowed to stand for 2 hours at U ° C. . The reaction product, which has been washed several times with a solution containing k moles of urea and 0.5 moles of NaCl / l, is used in the same way as the soluble enzyme in the proteolytic fractionation of tetanus toxin.

Papaiinikäsittelyn jälkeen seos saa jäähtyä, sitä väkevöidään ultrasuodat-timen avulla ja se pannaan 10 x 100 cm pylvääseen, joka on täytetty Sephadex' ‘ G 100:11a. Eluoiminen tapahtuu 0,1-m trishydroksimetyyliaminometaani-kloorivety-happopuskurilla, jonka pH-arvo on 8,0 ja joka sisältää 1 moolin NaCl/l.After the papain treatment, the mixture is allowed to cool, concentrated by means of an ultrafilter and applied to a 10 x 100 cm column packed with Sephadex '' G 100. Elution is carried out with a 0.1 M trishydroxymethylaminomethane-hydrochloric acid buffer having a pH of 8.0 and containing 1 mol of NaCl / l.

Eluoinnin aikana mitataan jatkuvati adsorptio aaltopituudella 280 nm.During elution, the adsorption is continuously measured at 280 nm.

Jakeet, jotka tällä alueella osoittavat adsorptiota, otetaan erikseen talteen. Saadaan neljä jaetta, joista ensimmäinen antaa kaksoishuipun.Fractions showing adsorption in this range are collected separately. Four fractions are obtained, the first of which gives a double peak.

5 585005,585,500

Toistamalla kromatografointi samoissa olosuhteissa erotetaan kaksoishuiput toisistaan ja lopuksi eristetään 2. huippu. Tämä sisältää keksinnön mukaisen myrkyttömän, immunogeenisen tuotteen, tetanustoksiinin fragmentin B.By repeating the chromatography under the same conditions, the double peaks are separated and finally the 2nd peak is isolated. This includes fragment B of the non-toxic, immunogenic product of the invention, tetanus toxin.

Erityisen yksinkertaisesti saadaan keksinnön mukainen fragmentti B talteen, kun vastaseerumia, joka kohdistuu tunnettua fragmenttia C vastaan (10 ml, jossa 1 000 IU/ml), tavalliseen tapaan sidotaan BrCN-aktivoituun agaroosiin, ja senjäl-keen sekoitetaan geelikromatografisesti osittain puhdistettu fragmentin B preparaatti tällaisen immunoadsorbentin kanssa, βθ-minuuttisen sekoittamisen jälkeen erotetaan geeli siihen sitoutuneiden epäpuhtauksien kanssa ja fragmentti B saadaan talteen toistetulla geelikromatografoinnilla.Particularly simply, fragment B of the invention is recovered by binding anti-serum against a known fragment C (10 ml with 1000 IU / ml) to BrCN-activated agarose in the usual manner, and then mixing the gel-chromatographed partially purified preparation of fragment B with such with an immunoadsorbent, after βθ-minute mixing, the gel is separated with the impurities bound to it and fragment B is recovered by repeated gel chromatography.

„ On myös mahdollista neutraloida epäpuhtaudet lisäämällä vastafragmentti C- vastaseerumia (igG-jae) ja erottaa immuunikompleksi geelikromatografisesti fragmentista B.“It is also possible to neutralize the impurities by adding the anti-fragment C anti-serum (IgG fraction) and separating the immune complex by gel chromatography from fragment B.

Keksinnön mukainen fragmentti B voidaan saada talteen myös valmistamalla aikaisemmin valmistetun fragmentin B avulla vastaseerumi, ja sitä käyttäen immuno-adsorbentti fragmentille B. Tällöin voidaan käyttää hyväksi tunnettuja menetelmiä. Immunoadsorbentin avulla fragmentti B adsorboidaan selektiivisesti tetanustoksiinin proteinaasikäsittelyssä muodostuneiden reaktiotuotteiden seoksesta, minkä jälkeen se voidaan selektiivisesti eluoida immunoadsorbentista.Fragment B according to the invention can also be recovered by preparing an antiserum with the previously prepared fragment B, and using it as an immuno-adsorbent for fragment B. In this case, well-known methods can be used. Using an immunoadsorbent, fragment B is selectively adsorbed from a mixture of reaction products formed in the proteinase treatment of tetanus toxin, after which it can be selectively eluted from the immunoadsorbent.

Claims (1)

6 58500 Patenttivaatimus: Menetelmä tetanustoksiinista saadun myrkyttömän, immunogeenisen fragmentti B:n valmistamiseksi, jolla on seuraavat ominaisuudet: a) sedimentaatiovakio S°2o\} 5,66^3,3*+, b) immunologinen reaktio tetanus-antitoksiinin kanssa: osittain sama kuin tetanus-toksiinin kanssa, c) immunologinen reaktio fragmentin C kanssa: ei identtinen d) geelielektroforeesilla natriumdodekyylisulfaatissa määritetty molekyyli-paino 95 000 + 5000, e) se on disulfidisillan pelkistävillä reagensseilla jaettavissa alayksiköksi, jonka molekyylipaino on 1*5 000 - 2500, ja alayksiköksi, joka on immunologisesti samanlainen kuin tetanustoksiinin keveiden ketjujen tunnetut johdannaiset ja jonka molekyylipaino on U8 000 - 2500, jotka molekyylipainot on määritetty geelielektroforeesilla natriumdodekyylisulfaatissa, tunnettu siitä, että tetanustoksiiniliuos hajotetaan proteinaasilla, liuos, jossa hajotuksessa syntyneet tuotteet ovat, geelisuodatetaan geelillä, joka sopii sellaisten proteiinien erottamiseen, joiden molekyylipaino on noin 100 000, jolloin eluointi suoritetaan 0,1 M tris/suolahappopuskurilla (pH 8), jossa on 1 mol/1 natriumkloridia, ja fraktioista kerätään ne, joissa on proteiineja, joiden molekyylipaino geelielektroforeesilla natriumdodekyylisulfaatissa mitattuna on noin 95 000 ja jotka eivät muodosta saostumaa fragmentti-C-vastaseerumin kanssa.Claim 6,500,500: A method for producing a non-toxic, immunogenic fragment B derived from tetanus toxin having the following properties: a) sedimentation constant S020 \ 3.66 ^ 3.3 * +, b) immunological reaction with tetanus antitoxin: partially the same than with tetanus toxin, c) immunological reaction with fragment C: not identical d) molecular weight determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulphate 95,000 + 5000, e) it can be divided into subunits with molecular weights of 1 * 5,000 to 2,500 by disulfide bridge reducing reagents, as a subunit immunologically similar to known derivatives of tetanus toxin light chains and having a molecular weight of U8,000 to 2,500, the molecular weights determined by gel electrophoresis in sodium dodecyl sulfate, characterized in that the tetanus toxin solution is digested with a proteinase, protein for the separation of proteins with a molecular weight of about 100,000, eluting with 0.1 M Tris / hydrochloric acid buffer (pH 8) with 1 mol / l sodium chloride, and collecting from the fractions those with proteins with a molecular weight of about 95% measured by sodium electrophoresis in sodium dodecyl sulfate. 000 and which do not precipitate with fragment C antiserum.
FI772305A 1976-07-31 1977-07-28 REFERENCE TO A FRAME RELEASE BETWEEN IMMUNOGENT FRAGMENT AND TETANUS TOXIN FI58500C (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2634584A DE2634584C3 (en) 1976-07-31 1976-07-31 Atoxic, immunogenic product from tetanus toxin
DE2634584 1976-07-31

Publications (3)

Publication Number Publication Date
FI772305A FI772305A (en) 1978-02-01
FI58500B true FI58500B (en) 1980-10-31
FI58500C FI58500C (en) 1981-02-10

Family

ID=5984461

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI772305A FI58500C (en) 1976-07-31 1977-07-28 REFERENCE TO A FRAME RELEASE BETWEEN IMMUNOGENT FRAGMENT AND TETANUS TOXIN

Country Status (18)

Country Link
JP (1) JPS5326319A (en)
AT (1) AT362498B (en)
AU (1) AU516191B2 (en)
BE (1) BE857373A (en)
CA (1) CA1099635A (en)
DE (1) DE2634584C3 (en)
DK (1) DK342577A (en)
EG (1) EG12732A (en)
FI (1) FI58500C (en)
FR (1) FR2360315A1 (en)
GB (1) GB1570958A (en)
IE (1) IE45539B1 (en)
IL (1) IL52617A (en)
IT (1) IT1085660B (en)
LU (1) LU77874A1 (en)
NL (1) NL7708279A (en)
NO (1) NO772704L (en)
SE (1) SE7708693L (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB8516442D0 (en) * 1985-06-28 1985-07-31 Wellcome Found Cloned antigen

Also Published As

Publication number Publication date
FI58500C (en) 1981-02-10
FR2360315B1 (en) 1980-04-11
IE45539B1 (en) 1982-09-22
DE2634584B2 (en) 1979-03-22
DK342577A (en) 1978-02-01
DE2634584C3 (en) 1979-11-08
GB1570958A (en) 1980-07-09
JPS5326319A (en) 1978-03-11
AU516191B2 (en) 1981-05-21
IL52617A0 (en) 1977-10-31
EG12732A (en) 1979-09-30
IE45539L (en) 1978-01-31
NL7708279A (en) 1978-02-02
FI772305A (en) 1978-02-01
SE7708693L (en) 1978-02-01
DE2634584A1 (en) 1978-02-02
BE857373A (en) 1978-02-01
IT1085660B (en) 1985-05-28
NO772704L (en) 1978-02-01
CA1099635A (en) 1981-04-21
LU77874A1 (en) 1978-02-02
AU2738077A (en) 1979-02-01
IL52617A (en) 1980-12-31
ATA563477A (en) 1980-10-15
AT362498B (en) 1981-05-25
FR2360315A1 (en) 1978-03-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rush et al. The interaction of dopamine-β-hydroxylase with concanavalin A and its use in enzyme purification
Olins et al. Reconstitution of 7S molecules from L and H polypeptide chains of antibodies and γ-globulins
Willis et al. Preparation of the periplasmic binding proteins from Salmonella typhimurium and Escherichia coli
Goldberg Immunochemical specificity of lactate dehydrogenase-X
Mekalanos et al. Purification of cholera toxin and its subunits: new methods of preparation and the use of hypertoxinogenic mutants
Yan et al. Multiple forms of pyrophosphate: D-fructose-6-phosphate 1-phosphotransferase from wheat seedlings. Regulation by fructose 2, 6-bisphosphate.
Buchanan et al. Activation of the cell wall degrading protease, lysin, during sexual signalling in Chlamydomonas: the enzyme is stored as an inactive, higher relative molecular mass precursor in the periplasm.
Hoffschulte et al. Identification of a soluble SecA/SecB complex by means of a subfractionated cell-free export system.
Lin et al. Isolation and characterization of a cuticular polyester (cutin) hydrolyzing enzyme from phytopathogenic fungi
Kawashima et al. Studies on fraction I protein: II. Comparison of physical, chemical, immunological and enzymatic properties between spinach and tobacco fraction I proteins
JPH03191789A (en) Purification of antigenic protein of 69000 dalton from pertussis bacteria
Heumann et al. Purification and immunological characterization of the human hexokinase isoenzymes I and III (ATP-D-hexose 6-phosphotransferase EC 2.7. 1.1)
Amos et al. Synthesis of ‘bacterial’protein by cultured chick cells
Crofton Site of alkaline phosphatase attachment in alkaline phosphatase-immunoglobulin G complexes
Jenkins et al. Extracellular antigens from Listeria monocytogenes I. purification and resolution of hemolytic and lipolytic antigens from culture filtrates of Listeria monocytogenes
Anderson et al. Borohydride reduction of L-glutamate decarboxylase
JPH07502896A (en) Multifunctional surface proteins of streptococci
FI58500B (en) REFERENCE TO A FRAME RELEASE BETWEEN IMMUNOGENT FRAGMENT AND TETANUS TOXIN
Phillips et al. Immunological characterization of human liver α-d-mannosidase
Lerman Characterization of the insoluble protein fraction in the ocular lens
EP0298991B1 (en) Novel lectins derived from bacterial pili
Suzuki et al. Isolation and some properties of glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase from vegetative cells of Bacillus cereus
JPS60146154A (en) Osteocarcin related derivative
RU2230325C2 (en) Method for preparing purified preparation of botulinic toxin type a
Hannestad et al. Multiple M-components in a single individual-iI studies on urinary Fab μ like fragments in macroglobulinema

Legal Events

Date Code Title Description
MM Patent lapsed

Owner name: BEHRINGWERKE AKTIENGESELLSCHAFT