NO338812B1 - System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system - Google Patents
System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system Download PDFInfo
- Publication number
- NO338812B1 NO338812B1 NO20131294A NO20131294A NO338812B1 NO 338812 B1 NO338812 B1 NO 338812B1 NO 20131294 A NO20131294 A NO 20131294A NO 20131294 A NO20131294 A NO 20131294A NO 338812 B1 NO338812 B1 NO 338812B1
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- fish
- treatment
- fresh water
- parasite
- lice
- Prior art date
Links
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 title claims description 48
- 244000045947 parasite Species 0.000 title claims description 32
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 title claims description 22
- 238000000034 method Methods 0.000 title description 12
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M Potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 title description 6
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 title description 3
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 title description 3
- 238000003287 bathing Methods 0.000 title description 2
- 235000019688 fish Nutrition 0.000 claims description 47
- 239000013505 freshwater Substances 0.000 claims description 44
- 241000972773 Aulopiformes Species 0.000 claims description 36
- 241000238424 Crustacea Species 0.000 claims description 18
- 241001247234 Lepeophtheirus salmonis Species 0.000 claims description 8
- 230000000415 inactivating effect Effects 0.000 claims description 5
- 241001674048 Phthiraptera Species 0.000 description 46
- 235000019515 salmon Nutrition 0.000 description 32
- 239000013535 sea water Substances 0.000 description 28
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 13
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 11
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 description 10
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- BJIOGJUNALELMI-ONEGZZNKSA-N Isoeugenol Natural products COC1=CC(\C=C\C)=CC=C1O BJIOGJUNALELMI-ONEGZZNKSA-N 0.000 description 9
- BJIOGJUNALELMI-ARJAWSKDSA-N cis-isoeugenol Chemical compound COC1=CC(\C=C/C)=CC=C1O BJIOGJUNALELMI-ARJAWSKDSA-N 0.000 description 9
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 9
- BJIOGJUNALELMI-UHFFFAOYSA-N trans-isoeugenol Natural products COC1=CC(C=CC)=CC=C1O BJIOGJUNALELMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000005892 Deltamethrin Substances 0.000 description 8
- 229960002483 decamethrin Drugs 0.000 description 8
- OWZREIFADZCYQD-NSHGMRRFSA-N deltamethrin Chemical compound CC1(C)[C@@H](C=C(Br)Br)[C@H]1C(=O)O[C@H](C#N)C1=CC=CC(OC=2C=CC=CC=2)=C1 OWZREIFADZCYQD-NSHGMRRFSA-N 0.000 description 8
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 8
- 241000269951 Labridae Species 0.000 description 5
- 230000001665 lethal effect Effects 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 238000012404 In vitro experiment Methods 0.000 description 4
- 231100000518 lethal Toxicity 0.000 description 4
- 241000133262 Nauplius Species 0.000 description 3
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 3
- 231100000673 dose–response relationship Toxicity 0.000 description 3
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 3
- 238000009372 pisciculture Methods 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 229940124597 therapeutic agent Drugs 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000277275 Oncorhynchus mykiss Species 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 230000003444 anaesthetic effect Effects 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 2
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 2
- 239000002728 pyrethroid Substances 0.000 description 2
- 239000000932 sedative agent Substances 0.000 description 2
- 230000001624 sedative effect Effects 0.000 description 2
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 241001247232 Caligidae Species 0.000 description 1
- 241001405819 Caligus elongatus Species 0.000 description 1
- 229920002101 Chitin Polymers 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 206010061217 Infestation Diseases 0.000 description 1
- 241000973618 Labroides dimidiatus Species 0.000 description 1
- 208000030852 Parasitic disease Diseases 0.000 description 1
- 241000277289 Salmo salar Species 0.000 description 1
- 241000277331 Salmonidae Species 0.000 description 1
- 206010039897 Sedation Diseases 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- VEMKTZHHVJILDY-UXHICEINSA-N bioresmethrin Chemical compound CC1(C)[C@H](C=C(C)C)[C@H]1C(=O)OCC1=COC(CC=2C=CC=CC=2)=C1 VEMKTZHHVJILDY-UXHICEINSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000013065 commercial product Substances 0.000 description 1
- 244000078703 ectoparasite Species 0.000 description 1
- CXEGAUYXQAKHKJ-NSBHKLITSA-N emamectin B1a Chemical compound C1=C[C@H](C)[C@@H]([C@@H](C)CC)O[C@]11O[C@H](C\C=C(C)\[C@@H](O[C@@H]2O[C@@H](C)[C@H](O[C@@H]3O[C@@H](C)[C@H](NC)[C@@H](OC)C3)[C@@H](OC)C2)[C@@H](C)\C=C\C=C/2[C@]3([C@H](C(=O)O4)C=C(C)[C@@H](O)[C@H]3OC\2)O)C[C@H]4C1 CXEGAUYXQAKHKJ-NSBHKLITSA-N 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000013011 mating Effects 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 229940126601 medicinal product Drugs 0.000 description 1
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000003097 mucus Anatomy 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 239000011368 organic material Substances 0.000 description 1
- 230000000590 parasiticidal effect Effects 0.000 description 1
- 239000002297 parasiticide Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 230000036280 sedation Effects 0.000 description 1
- 238000003307 slaughter Methods 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000008400 supply water Substances 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 238000011287 therapeutic dose Methods 0.000 description 1
- 229940126585 therapeutic drug Drugs 0.000 description 1
- 230000007279 water homeostasis Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N59/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing elements or inorganic compounds
- A01N59/08—Alkali metal chlorides; Alkaline earth metal chlorides
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Agronomy & Crop Science (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Dentistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Farming Of Fish And Shellfish (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Description
SYSTEM FOR BADEBEHANDLING AV FISK INFISERT MED EN EKSTERN FISKEPARASITT OG FRAMGANGSMÅTE FOR BRUK AV KALIUMKLORID SOM BEHANDLINGSMIDDEL I SYSTEMET SYSTEM FOR BATH TREATMENT OF FISH INFECTED WITH AN EXTERNAL FISH PARASITE AND PROCEDURE FOR USING POTASSIUM CHLORIDE AS A TREATMENT AGENT IN THE SYSTEM
Det beskrives et system for behandling av fisk infisert med en ekstern marin krepsdyrparasitt. Oppfinnelsen vedrører mer spesifikt en badebehandling av fisken i systemet. Et medium for badebehandlingen omfatter ferskvann og et behandlingsmiddel som er tilsatt ferskvannet. Behandlingsmidlet utgjøres av kaliumklorid. Det beskrives også en framgangsmåte for bruk av behandlingsmidlet. A system for treating fish infected with an external marine crustacean parasite is described. The invention relates more specifically to a bath treatment of the fish in the system. A medium for the bath treatment comprises fresh water and a treatment agent that has been added to the fresh water. The treatment consists of potassium chloride. A procedure for using the treatment agent is also described.
Oppdrett av fisk, spesielt i sjøvann, plages av parasittære sykdommer. Spesielt er infeksjoner av såkalt lakselus på laksefisker vel kjent. Slike infeksjoner kan være dø-delige for laksefisken hvis de ikke behandles. Fish farming, especially in seawater, is plagued by parasitic diseases. In particular, infections of so-called salmon lice on salmon fish are well known. Such infections can be fatal for the salmon if they are not treated.
Lakselus vil her brukes om forskjellige typer eksterne, marine krepsdyrparasitter tilhø-rende familien Caligidae, blant annet skottelus { Caligus elongatus) og ekte lakselus ( Lepeophtheirus salmonis). Andre arter er også kjent. Som andre krepsdyr vokser disse ektoparasittene ved å skifte skall, og de gjennomgår i alt 10 stadier i sitt livsløp. Fra egget frigis først en frittsvømmende nauplius I larve. Hos L. salmonis er denne 0,5 mm lang og størrelsene nedenfor referer til lakselus. Nauplius I vokser til en nauplius II larve, 0,6 mm lang, som igjen vokser til en copepoditt, 0,7 mm lang. Det er copepoditten som utgjør det infeksiøse stadiet idet copepoditten fester seg til en vert. De tre første stadiene kan vare i flere uker og varigheten er avhengig av vanntempe-raturen. Ved lave vanntemperatur vokser larvene langsomt. Salmon louse will be used here for different types of external, marine crustacean parasites belonging to the family Caligidae, including the scotland louse {Caligus elongatus) and true salmon louse (Lepeophtheirus salmonis). Other species are also known. Like other crustaceans, these ectoparasites grow by changing their shells, and they go through a total of 10 stages in their life cycle. A free-swimming nauplius I larva is first released from the egg. In L. salmonis, this is 0.5 mm long and the sizes below refer to salmon lice. Nauplius I grows into a nauplius II larva, 0.6 mm long, which in turn grows into a copepodite, 0.7 mm long. It is the copepodite that forms the infectious stage as the copepodite attaches to a host. The first three stages can last for several weeks and the duration depends on the water temperature. At low water temperatures, the larvae grow slowly.
Etter at copepoditten har festet seg til vertens hud, skifter den igjen skall og utvikler seg gjennom fire chalimus-stadier, chalimus I - chalimus IV. Dette stadiet er kjennetegnet ved at parasitten er festet til vertens hud gjennom et fronta Ifi la ment. Parasitten kan derfor ikke bevege seg fritt rundt på verten. Parasitten lever av fiskeslim på vertens hud. Parasitten vokser fra 1,1 mm og til 2,3 mm i chalimus-stadiet. Etter chalimus IV kommer preadult I stadiet hvor parasitten ikke lenger sitter fast til verten ved frontalelementet, men kan bevege seg fritt på vertens hud. Preadult I hanner er 3,4 mm lange, hunnene er 3,6 mm lange. Parasitten vokser videre til preadult II stadiet, hannen er da 4,3 mm lang, hunnen 5,2 mm lang. Parasitten skifter deretter skall for siste gang og når det adulte stadiet. En voksen hann er 5-6 mm lang, hunnen er 8-12 mm lang. Etter parring slipper den voksne hunnen eggene ned i to eggsekker. Disse kan hver inneholde flere hundre egg. Eggstrengene frigjøres, eggene klekkes og livs-syklus gjentas. After the copepodite has attached itself to the host's skin, it changes its shell again and develops through four chalimus stages, chalimus I - chalimus IV. This stage is characterized by the fact that the parasite is attached to the host's skin through a fronta Ifi la ment. The parasite cannot therefore move freely around the host. The parasite feeds on fish slime on the host's skin. The parasite grows from 1.1 mm to 2.3 mm in the chalimus stage. After chalimus IV comes the preadult I stage where the parasite is no longer attached to the host by the frontal element, but can move freely on the host's skin. Preadult I males are 3.4 mm long, females are 3.6 mm long. The parasite continues to grow to the preadult II stage, the male is then 4.3 mm long, the female 5.2 mm long. The parasite then molts for the last time and reaches the adult stage. An adult male is 5-6 mm long, the female is 8-12 mm long. After mating, the adult female releases the eggs into two egg sacs. These can each contain several hundred eggs. The egg strings are released, the eggs hatch and the life cycle repeats.
Det er som fritt bevegelig preadult og adult at parasitten gjør størst skade. Primært lever parasitten av slim, men vil, spesielt når det er mange lus på en fisk, angripe hudlaget slik at underliggende muskelvev og beinvev avdekkes. Fisken er da sårbar for angrep av bakterier og sopp, og fisken får problemer med sin osmoregulering. Et omfattende angrep av lakselus er letalt. It is as freely moving preadults and adults that the parasite does the most damage. The parasite primarily feeds on mucus, but will, especially when there are many lice on a fish, attack the skin layer so that the underlying muscle and bone tissue is exposed. The fish is then vulnerable to attack by bacteria and fungi, and the fish has problems with its osmoregulation. A widespread infestation of salmon lice is lethal.
Det er kjent at lakselus ikke kan overleve lenge i vann med lav saltholdighet. It is known that salmon lice cannot survive for long in water with low salinity.
Laksefisk kan være laks ( Salmo salar) og regnbueørret ( Oncorhynchus mykiss). Salmon fish can be salmon (Salmo salar) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).
I oppdrett av fisk er det kjent minst tre forskjellige behandlingsformer for lakselus. Den første behandlingsformen som ble utviklet, besto i å bade fisken i en oppløsning In fish farming, at least three different forms of treatment for salmon lice are known. The first form of treatment that was developed consisted of bathing the fish in a solution
av et behandlingsmiddel og sjøvann. Bademidler omfatter hydrogenperoksid, pyretro-ider og organofosfater. Én ulempe med badebehandling er at det må trekkes et skjørt i form av en presenning rundt merden som fisken befinner seg i, for å avgrense volumet. I tillegg løftes notbunnen opp for ytterligere å avgrense volumet. Behandlingsmidlet tilsettes deretter til sjøvannet og fisken svømmer omkring i behandlingsløs-ningen i en fastsatt tid. Det er tungt og arbeidskrevende å behandle fisken på denne måten, og behandlingen må gjerne gjentas flere ganger. Fisken stresses også av sammentrengingen når notbunnen løftes. of a treatment agent and seawater. Bath products include hydrogen peroxide, pyrethroids and organophosphates. One disadvantage of bath treatment is that a skirt in the form of a tarpaulin must be drawn around the cage in which the fish is located, to limit the volume. In addition, the base of the groove is lifted up to further define the volume. The treatment agent is then added to the seawater and the fish swims around in the treatment solution for a fixed time. It is heavy and labor-intensive to treat the fish in this way, and the treatment may have to be repeated several times. The fish is also stressed by the constriction when the bottom of the seine is lifted.
Den andre kjente behandlingsformen er å blande et parasittmiddel i foret som fisken The other known form of treatment is to mix a parasiticide in the food such as the fish
spiser. Slike kjente veterinærmedisinske legemidler omfatter innblanding av emamec-tin benzoat og kitinsyntesehemmere. For oppdretteren er dette en lite arbeidskrevende metode i og med at legemidlet gis i det foret som fisken skal ha. Ulempen er at for med legemiddel er et medisinsk preparat som tilvirkes på egen produksjonslinje hos forprodusentene. Slikt medisinfor er dyrt. eats. Such known veterinary medicinal products include admixture of emamectin benzoate and chitin synthesis inhibitors. For the breeder, this is a less labor-intensive method in that the medicine is given in the feed that the fish should have. The disadvantage is that pre-medicated is a medical preparation that is manufactured on the pre-manufacturers' own production line. Such medicine is expensive.
Den tredje kjente behandlingsformen er bruk av såkalt rensefisk eller pussefisk. I denne sammenheng har det vist seg at fisker i leppefiskfamilien Labridae er velegnet. The third known form of treatment is the use of so-called cleaning fish or cleaning fish. In this context, it has been shown that fish in the wrasse family Labridae are suitable.
Én ulempe med terapeutiske midler i enten bad eller i for, er at parasitten over tid utvikler resistens mot disse midlene, og midlene blir derfor mindre virkningsfulle. Ved One disadvantage of therapeutic agents in either the bath or in the bath is that over time the parasite develops resistance to these agents, and the agents therefore become less effective. By
bruk av terapeutiske legemidler skal det bestemmes en tilbakeholdelsestid fra behandling og til slakting av fisken for å sikre at fiskekjøttet ikke inneholder kjemikalet eller at kjemikaliemengden er under et fastsatt nivå. Den tredje metoden som omfatter bruk av rensefisk, spesielt leppefisk, er et alternativ til legemidler, og resistensutvik-ling er ikke et problem. Leppefisk vil fjerne parasitter som er lette å se og vil i hoved-sak fjerne preadulte og adulte parasitter. Ulempen ved bruk av leppefisk er at det er vanskelig å få de til å overvintre i merdene sammen med laksefisken, de kan rømme gjennom notveggen da de er vesentlig mindre enn laksefisken, og de kan skade laksefisken med såkalt øyenapping. use of therapeutic drugs, a withholding period must be determined from treatment to slaughtering the fish to ensure that the fish meat does not contain the chemical or that the amount of the chemical is below a set level. The third method, which includes the use of cleaner fish, especially wrasse, is an alternative to drugs, and the development of resistance is not a problem. Wrasses will remove parasites that are easy to see and will mainly remove pre-adult and adult parasites. The disadvantage of using wrasse is that it is difficult to get them to overwinter in the cages together with the salmon, they can escape through the net wall as they are significantly smaller than the salmon, and they can harm the salmon with so-called eye-grabbing.
Det er således et behov for alternativer til dagens metoder for å kontrollere krepsdyrparasitter i fiskeoppdrett, eller i det minste supplerende framgangsmåter. There is thus a need for alternatives to current methods for controlling crustacean parasites in fish farming, or at least supplementary procedures.
Med ferskvann menes i det følgende vann som har en salinitet mindre enn 0,5 %. In the following, fresh water means water that has a salinity of less than 0.5%.
Oppfinnerne har overraskende funnet at for så vidt kjente kjemikalier og legemidler forsterker den terapeutiske effekten av ferskvann. Ved å oppløse kjente legemidler mot lakselus i ferskvann i stedet for i sjøvann, er det også overraskende funnet at mengden aktiv substans kan reduseres i forhold til de kjente doseringsregimer og at behandlingstiden også kan reduseres. The inventors have surprisingly found that so far known chemicals and drugs enhance the therapeutic effect of fresh water. By dissolving known drugs against salmon lice in fresh water instead of in seawater, it has also surprisingly been found that the amount of active substance can be reduced in relation to the known dosage regimes and that the treatment time can also be reduced.
Det beskrives også en framgangsmåte for å behandle fisken om bord i en brønnbåt. A procedure for treating the fish on board a well boat is also described.
Oppfinnelsen har til formål å avhjelpe eller å redusere i det minste én av ulempene ved kjent teknikk, eller i det minste å skaffe til veie et nyttig alternativ til kjent teknikk. The purpose of the invention is to remedy or to reduce at least one of the disadvantages of known technology, or at least to provide a useful alternative to known technology.
Formålet oppnås ved trekk som er angitt i nedenstående beskrivelse og i etterfølgende patentkrav. The purpose is achieved by features that are stated in the description below and in subsequent patent claims.
I et første aspekt vedrører oppfinnelsen mer spesifikt et system for badebehandling av fisk infisert med en ekstern marin krepsdyrparasitt, hvor systemet omfatter: - en tank inneholdende ferskvann; In a first aspect, the invention relates more specifically to a system for bath treatment of fish infected with an external marine crustacean parasite, where the system comprises: - a tank containing fresh water;
- en fisk infisert med en ekstern marin krepsdyrparasitt; og - a fish infected with an external marine crustacean parasite; and
- et behandlingsmiddel tilsatt ferskvannet til en konsentrasjon mellom 400 og 9600 mg/l hvor behandlingsmidlet virker i det minste inaktiverende på den marine eksterne krepsdyrparasitten, og behandlingsmidlet utgjøres av KCI. - a treatment agent added to the fresh water at a concentration between 400 and 9600 mg/l, where the treatment agent has at least an inactivating effect on the marine external crustacean parasite, and the treatment agent is made up of KCI.
Konsentrasjonen kan være mellom 400 og 1200 mg KCI/I. Konsentrasjonen kan være mellom 2400 og 9600 mg KCI/I. The concentration can be between 400 and 1200 mg KCI/I. The concentration can be between 2400 and 9600 mg KCI/I.
Krepsdyrparasitten kan utgjøres av en lakselus. The crustacean parasite can be a salmon louse.
I et andre aspekt vedrører oppfinnelsen mer spesifikt en anvendelse av en ferskvanns-løsning omfattende et behandlingsmiddel i en konsentrasjon mellom 400-1200 mg/l eller mellom 2400-9600 mg/l som virker i det minste inaktiverende på en marin ekstern krepsdyrparasitt til behandling av fisk infisert med den marine eksterne krepsdyrparasitten, hvor behandlingsmidlet utgjøres av KCI. In a second aspect, the invention relates more specifically to the use of a fresh water solution comprising a treatment agent in a concentration between 400-1200 mg/l or between 2400-9600 mg/l which acts at least inactivatingly on a marine external crustacean parasite for the treatment of fish infected with the marine external crustacean parasite, where the treatment agent is KCI.
Den marine eksterne krepsdyrparasitten kan utgjøres av en lakselus. Fisken kan ut-gjøres av en laksefisk. The marine external crustacean parasite may be a salmon louse. The fish can be a salmon fish.
I det etterfølgende beskrives eksempler på foretrukne utførelsesformer. In the following, examples of preferred embodiments are described.
Eksempel 1 Example 1
Bruk av KCI som terapeutisk middel, lave doser. Use of KCI as a therapeutic agent, low doses.
Full styrke sjøvann inneholder ca. 380 mg/l K<+>og ca. 19.000 mg/l Cl". Full strength seawater contains approx. 380 mg/l K<+>and approx. 19,000 mg/l Cl".
Til forsøkene ble det anvendt ferskvann som hadde gjennomgått osmose for å fjerne metallioner og organisk materiale. En mindre mengde sjøvann ble tilsatt slik at vannets ledningsevne er 30 uS/cm. Vannets pH er 6,22. Forsøket ble gjennomført med en vanntemperatur på 10 °C. Fresh water that had undergone osmosis to remove metal ions and organic material was used for the experiments. A small amount of seawater was added so that the conductivity of the water is 30 uS/cm. The pH of the water is 6.22. The experiment was carried out with a water temperature of 10 °C.
Forsøket ble gjennomført som et in vitro forsøk med duplikat for hver konsentrasjon. The experiment was carried out as an in vitro experiment with duplicates for each concentration.
Forsøkene ble gjennomført i 250 ml begerglass med 100 ml stagnant KCI-løsning. For hver konsentrasjon var det i ett av duplikatene (A) én adult hannlus og én adult hunnlus. For hver konsentrasjon var det i den andre duplikaten (B) tre adulte hunnlus. Lusene ble observert etter 17, 24, 31 og 51 minutter og deretter overført til rennende sjøvann med en temperatur på 10 °C. Disse ble observert den påfølgende dagen for å vurdere mortalitet. The experiments were carried out in 250 ml beakers with 100 ml stagnant KCI solution. For each concentration, in one of the duplicates (A) there was one adult male louse and one adult female louse. For each concentration, there were three adult female lice in the second duplicate (B). The lice were observed after 17, 24, 31 and 51 minutes and then transferred to running seawater with a temperature of 10 °C. These were observed the following day to assess mortality.
Lakselus ble vurdert som inaktive når det ikke var tegn til bevegelse i bein og ledd ved berøring av lakselusa. Aktive lus festet seg til glassveggen, svømte omkring eller be-veget bein eller ledd ved berøring. Salmon lice were considered inactive when there were no signs of movement in the bones and joints when the salmon lice were touched. Active lice attached themselves to the glass wall, swam around or moved bones or joints when touched.
Resultatene er vist i tabell 1. The results are shown in table 1.
Lusene viste ingen umiddelbar reaksjon ved overføring til KCI-løsningen. Forsøket viste en tydelig dose-respons sammenheng der KCI i konsentrasjonen 800 mg/l og 1200 mg/l var mer virksom til å inaktivere lakselusene enn KCI i konsentrasjon 400 mg/l. Det syntes også som om hannlusene i A-replikatene ble inaktivert raskere enn hunnlusene. The lice showed no immediate reaction when transferred to the KCI solution. The experiment showed a clear dose-response relationship where KCI in the concentration 800 mg/l and 1200 mg/l was more effective at inactivating the salmon lice than KCI in the concentration 400 mg/l. It also appeared that the male lice in the A replicates were inactivated faster than the female lice.
Behandlingen var ikke letal da alle lusene var aktive dagen etter eksponering til de ulike KCI-konsentrasjonene. The treatment was not lethal as all the lice were active the day after exposure to the various KCI concentrations.
Eksempel 2 Example 2
Bruk av KCI som terapeutisk middel, høye doser. Use of KCI as a therapeutic agent, high doses.
Forsøket ble gjennomført som et in vitro forsøk med duplikat for hver konsentrasjon. Forsøkene ble gjennomført i 250 ml begerglass med 100 ml stagnant KCI-løsning ved 10 °C. For hver konsentrasjon var det i hver av duplikatene (A, B) én adult hannlus og to adulte hunnlus. Lusene ble observert etter 2, 4, 7 og 11 minutter og ble etter 15 minutter overført til rennende sjøvann ved 10 °C. Disse ble observert den påfølgende dagen for å vurdere mortalitet. The experiment was carried out as an in vitro experiment with duplicates for each concentration. The experiments were carried out in 250 ml beakers with 100 ml stagnant KCI solution at 10 °C. For each concentration, there was one adult male louse and two adult female louses in each of the duplicates (A, B). The lice were observed after 2, 4, 7 and 11 minutes and after 15 minutes were transferred to running seawater at 10 °C. These were observed the following day to assess mortality.
Resultatene er vist i tabell 2. The results are shown in table 2.
Forsøket viste at KCI i de undersøkte konsentrasjonene hadde en rask effekt på lakselus. De fleste lakselusene var inaktiverte etter 2 til 4 minutter. Én hann var aktiv etter 2 minutt ved 2400 mg/l KCI og en hunn var aktiv etter 4 minutt ved 4800 mg/l KCI. The experiment showed that KCI in the investigated concentrations had a rapid effect on salmon lice. Most salmon lice were inactivated after 2 to 4 minutes. One male was active after 2 minutes at 2400 mg/l KCI and one female was active after 4 minutes at 4800 mg/l KCI.
Behandlingen var ikke letal da alle lusene var aktive dagen etter eksponering til de ulike KCI-konsentrasjonene. Det ble også observert at fire av hunnene hadde egg-strenger, og hos tre av disse var eggstrengene deformerte. Eggstrengene framsto som vridde og krøllede. The treatment was not lethal as all the lice were active the day after exposure to the various KCI concentrations. It was also observed that four of the females had egg strings, and in three of these the egg strings were deformed. The egg strings appeared twisted and curled.
Eksempel 3 Example 3
Isoeugenol er et sedateringsmiddel og et bedøvelsesmiddel for fisk. Sedasjon oppnås ved en konsentrasjon mellom 2-5 mg/l. Bedøvelse oppnås ved konsentrasjon mellom 10 - 14 mg/l. Et kommersielt preparat av dette sedateringsmidlet og bedøvel-sesmidlet er tilgjengelig i en konsentrasjon på 540 mg/ml. Til bedøvelse anvendes i praksis 15-25 ml av det kommersielle midlet til 1 m<3>vann. Dette gir en konsentrasjon i vannet på 8,1 - 13,5 mg/l. Isoeugenol is a sedative and anesthetic for fish. Sedation is achieved at a concentration between 2-5 mg/l. Anesthesia is achieved at a concentration between 10 - 14 mg/l. A commercial preparation of this sedative and anesthetic is available in a concentration of 540 mg/ml. For anesthesia, 15-25 ml of the commercial agent is used in practice for 1 m<3> of water. This gives a concentration in the water of 8.1 - 13.5 mg/l.
En pretest ble gjennomført in vivo med laks i sjøvann ved 10 °C. Laksen, som veide ca. 1 kg, var infisert med lakselus. Isoeugenol ble tilsatt til 10 x anbefalt dose. Til 1 m3 sjøvann ble det tilsatt 250 ml kommersielt produkt slik at konsentrasjonen var 135 mg isoeugenol/l. Etter noen minutter ble det observert at lakselus begynte å falle av fisken. Hunnlusene falt seinere av fisken enn hannlusene. Det ble også observert at 30 sekunder var for kort eksponeringstid. Det ble også anslått at fisken maksimalt kunne eksponeres for denne konsentrasjonen av isoeugenol i 4 minutt. Lakselus som hadde falt av, ble samlet opp og overført til rennende rent sjøvann. Lakselusene ble observert dagen etterpå. Behandlingen var ikke letal. A pretest was carried out in vivo with salmon in seawater at 10 °C. The salmon, which weighed approx. 1 kg, was infected with salmon lice. Isoeugenol was added to 10 x the recommended dose. 250 ml of commercial product was added to 1 m3 of seawater so that the concentration was 135 mg isoeugenol/l. After a few minutes, it was observed that salmon lice began to fall off the fish. The female lice fell off the fish later than the male lice. It was also observed that 30 seconds was too short an exposure time. It was also estimated that the fish could be exposed to this concentration of isoeugenol for a maximum of 4 minutes. Salmon lice that had fallen off were collected and transferred to running clean seawater. The salmon lice were observed the following day. The treatment was not lethal.
Forsøket ble gjennomført som et in vitro forsøk med duplikat for hver konsentrasjon i ferskvann og uten replikat i sjøvann. Forsøkene ble gjennomført i 250 ml begerglass med 100 ml stagnant isoeugenol-løsning. Det ble testet tre ulike nivåer av isoeugenol, 2,5x; 5x; og 10x av den anbefalte dosen på 25 ml/m<3>av det kommersielle preparatet. Dette tilsvarer en konsentrasjon av isoeugenol på henholdsvis 33,75 mg/l; 67,5 mg/l og 135 mg/l. For hver konsentrasjon var det i hvert av begerglassene én adult hannlus og én adult hunnlus. Lusene ble observert etter 2, 5 og 10 minutt og ble etter 10 minutter overført til rennende sjøvann ved 10 °C. Disse ble observert den påfølgende dagen for å vurdere mortalitet. The experiment was carried out as an in vitro experiment with a duplicate for each concentration in fresh water and without a replicate in seawater. The experiments were carried out in 250 ml beakers with 100 ml stagnant isoeugenol solution. Three different levels of isoeugenol were tested, 2.5x; 5x; and 10x the recommended dose of 25 ml/m<3> of the commercial preparation. This corresponds to a concentration of isoeugenol of respectively 33.75 mg/l; 67.5 mg/l and 135 mg/l. For each concentration, there was one adult male louse and one adult female louse in each of the beakers. The lice were observed after 2, 5 and 10 minutes and after 10 minutes were transferred to running seawater at 10 °C. These were observed the following day to assess mortality.
Resultatene er vist i tabell 3. The results are shown in table 3.
Resultatene viser at lakselusene ble raskt inaktiverte i ferskvann ved alle de undersøk-te konsentrasjonene. Lakselusene ble også raskt inaktiverte i sjøvann. Inaktiveringen gikk raskere i ferskvann enn i sjøvann. I sjøvann ble det også observert en dose-respons effekt ved økende konsentrasjon. Dette kunne ikke observeres i ferskvann da en dose-respons effekt vil være ved mindre doser enn de undersøkte. The results show that the salmon lice were quickly inactivated in fresh water at all the concentrations examined. The salmon lice were also quickly inactivated in seawater. Inactivation was faster in fresh water than in seawater. In seawater, a dose-response effect was also observed with increasing concentration. This could not be observed in fresh water as a dose-response effect will be at lower doses than those investigated.
I alle tilfelle der det ble observert at én av to lus var inaktive, så var det hunnlusen som var aktiv. In all cases where one out of two lice was observed to be inactive, it was the female louse that was active.
Lusene ble undersøkt dagen etterpå. Med unntak av én lus, var alle aktive. Den ene døde lusa var en hannlus fra den høyeste konsentrasjonen av isoeugenol i sjøvann. The lice were examined the following day. With the exception of one louse, all were active. The one dead louse was a male louse from the highest concentration of isoeugenol in seawater.
Eksempel 4 Example 4
Deltametrin er et syntetisk pyretroid som anvendes til badebehandling av fisk infisert med eksterne parasitter, spesielt lakselus. Et kommersielt preparat av deltametrin er tilgjengelig i konsentrasjon 10 mg/ml. Anbefalt dosering er 0,2 ml preparat pr 1 m<3>. Dette tilsvarer 2 ug deltametrin pr. liter sjøvann. Anbefalt behandlingstid er 30 minutt. Deltamethrin is a synthetic pyrethroid used for bath treatment of fish infected with external parasites, especially salmon lice. A commercial preparation of deltamethrin is available in a concentration of 10 mg/ml. The recommended dosage is 0.2 ml preparation per 1 m<3>. This corresponds to 2 ug deltamethrin per liters of seawater. Recommended treatment time is 30 minutes.
I forsøket ble den anbefalte dosen undersøkt i ferskvann og i sjøvann. I tillegg ble den anbefalte dosen tynnet ut i forholdet 2:1 og 1:1 i ferskvann og sjøvann, slik at delta-metrinkonsentrasjonen i løsningene var henholdsvis 1,67 ug/l og 1 ug/l. Forsøket ble gjennomført med duplikat for de ulike deltametrinkonsentrasjonene i ferskvann. For-søket omfattet også en kontroll med rent ferskvann og en kontroll med rent sjøvann. In the experiment, the recommended dose was examined in fresh water and in sea water. In addition, the recommended dose was diluted in the ratio 2:1 and 1:1 in fresh water and seawater, so that the delta-methrin concentration in the solutions was 1.67 ug/l and 1 ug/l, respectively. The experiment was carried out in duplicate for the various deltamethrin concentrations in fresh water. The pre-search also included a check with clean fresh water and a check with clean seawater.
Forsøket ble gjennomført som et in vitro forsøk som beskrevet for eksemplene 1-3. Det var 3 adulte lus i hvert begerglass. Lusene ble observert etter 10, 20, 30 og 40 minutt og ble etter 40 minutter overført til rennende sjøvann ved 10 °C. Disse ble observert den påfølgende dagen for å vurdere mortalitet. Resultatene er vist i tabell 4. Resultatene viser at de undersøkte lakselusene har utviklet motstandsdyktighet mot deltametrin siden de ikke ble inaktiverte etter 40 minutter. Det tok noe tid å få alle lusene på plass i begerglassene slik at 40 minutts observasjonstid for noen av lusene tilsvarer den anbefalte behandlingstiden på 30 minutt. I innledende forsøk (ikke vist) var lakselus aktive i rent ferskvann i 30 minutt. I eksempel 4 ble lakselusene raskere inaktivert i ferskvann enn forventet. Likevel er det en tendens at lakselus i ferskvann med deltametrin inaktiveres raskere enn i kontrollen med rent ferskvann. The experiment was carried out as an in vitro experiment as described for examples 1-3. There were 3 adult lice in each beaker. The lice were observed after 10, 20, 30 and 40 minutes and after 40 minutes were transferred to running seawater at 10 °C. These were observed the following day to assess mortality. The results are shown in table 4. The results show that the examined salmon lice have developed resistance to deltamethrin since they were not inactivated after 40 minutes. It took some time to get all the lice in place in the beakers so that 40 minutes of observation time for some of the lice corresponds to the recommended treatment time of 30 minutes. In initial trials (not shown), salmon lice were active in clean fresh water for 30 minutes. In example 4, the salmon lice were more quickly inactivated in fresh water than expected. Nevertheless, there is a tendency for salmon lice in fresh water with deltamethrin to be inactivated faster than in the control with pure fresh water.
Lusene ble undersøkt dagen etterpå. Alle lusene som hadde vært eksponert for ferskvann var døde. Alle lus som hadde vært eksponert for sjøvann var aktive. The lice were examined the following day. All the lice that had been exposed to fresh water were dead. All lice that had been exposed to seawater were active.
Eksempel 5 Example 5
Dette eksemplet beskriver en framgangsmåte for å anvende en brønnbåt av for så vidt kjent type til å gjennomføre badebehandling av oppdrettsfisk. Behandling av oppdrettsfisk som laks og ørret i ferskvann er for så vidt kjent. Slik behandling forutsetter tilgang til ferskvann i store nok kvanta. Oppdrettsmerder i sjø ligger vanligvis slik til at det ikke er tilgang til ferskvann i nærheten. Det er heller ikke praktisk å føre fram vann i ledninger både på grunn av de nødvendige kvanta og at behandlingen krever en lukket behandlingsenhet for å kunne holde på ferskvannet. This example describes a procedure for using a well boat of a known type to carry out bath treatment of farmed fish. Treatment of farmed fish such as salmon and trout in fresh water is so far known. Such treatment requires access to fresh water in sufficiently large quantities. Breeding cages in the sea are usually located in such a way that there is no access to fresh water nearby. It is also not practical to supply water in pipes, both because of the required quantities and because the treatment requires a closed treatment unit to be able to hold the fresh water.
Brønnbåten posisjoneres i et første område ved et oppdrettsanlegg i nærheten av en merd som huser fisk som skal badebehandles med ferskvann. Fisken ledes til brønn-båtens tanker på kjent måte, for eksempel ved bruk av en fiskepumpe. Brønnbåtens tanker er fylt med sjøvann. Brønnbåten forflyttes deretter med fisk i tankene til et andre område hvor det er tilgang på ferskvann i tilstrekkelig mengde til å fylle brønn-båtens tanker med ferskvann. Dette kan for eksempel være ved kai i nærheten av en elveos. Gangtiden for brønnbåten kan for eksempel være 30 minutter mellom det førs-te området og det andre området. Brønnbåten forflyttes deretter tilbake til det første området. Gangtiden tilpasses den tid en ønsker at fisken skal være eksponert for ferskvann. Hvis avstanden mellom det første området og det andre området er for stor, kan ferskvannet i brønnbåtens tanker erstattes med sjøvann ved hjelp av brønn-båtens pumper. Ved ankomst til ønsket merd i det første området, forflyttes fisken fra brønnbåten og til merden på kjent måte. The well boat is positioned in a first area at a breeding facility near a cage that houses fish to be bathed in fresh water. The fish are led to the well-boat's tanks in a known way, for example by using a fish pump. The well boat's tanks are filled with seawater. The well boat is then moved with fish in the tanks to another area where there is access to fresh water in sufficient quantity to fill the well boat's tanks with fresh water. This could be, for example, at a quay near a river estuary. The travel time for the well boat can be, for example, 30 minutes between the first area and the second area. The well boat is then moved back to the first area. The walking time is adapted to the time you want the fish to be exposed to fresh water. If the distance between the first area and the second area is too great, the fresh water in the wellboat's tanks can be replaced with seawater using the wellboat's pumps. On arrival at the desired cage in the first area, the fish are moved from the well boat to the cage in a known manner.
Lakselus som faller av fisken i brønnbåtens tanker samles opp ved å lede vannet som pumpes ut, gjennom siler. Salmon lice that fall from the fish in the well boat's tanks are collected by directing the pumped water through strainers.
Med denne framgangsmåten oppnås det at en brønnbåt kan brukes til å badebehandle oppdrettsfisk selv om oppdrettsanlegget ikke er forsynt med en ferskvannskilde. With this procedure, it is achieved that a well boat can be used to bathe farmed fish even if the farm is not supplied with a source of fresh water.
Eksempel 6 Example 6
Dette eksemplet beskriver det samme som i eksempel 5. I tillegg anvendes det et tilsetningsmiddel i ferskvannet hvor tilsetningsmidlet har en inaktiverende eller letal effekt på lakselus. Et slikt tilsetningsmiddel kan være KCI som beskrevet i eksempel 1 og 2, eller isoeugenol som beskrevet i eksempel 3. This example describes the same as in example 5. In addition, an additive is used in the fresh water where the additive has an inactivating or lethal effect on salmon lice. Such an additive can be KCI as described in examples 1 and 2, or isoeugenol as described in example 3.
Tilsetningsmidlet kan også være et kjent badebehandlingsmiddel som anvendes i en lavere dose enn det som er kjent som terapeutisk dose i sjøvann. Tilsetningsmidlet kan også være et kjent badebehandlingsmiddel som anvendes i en kortere behandlingstid enn det som er kjent som terapeutisk behandlingstid i sjøvann. Badebehand-lingsmidlet kan være deltametrin som beskrevet i eksempel 4. Tilsetningsmidlet kan også være et annet pyretroid. The additive can also be a known bath treatment agent that is used in a lower dose than what is known as a therapeutic dose in seawater. The additive can also be a known bath treatment agent that is used for a shorter treatment time than what is known as the therapeutic treatment time in seawater. The bath treatment agent can be deltamethrin as described in example 4. The additive can also be another pyrethroid.
Framgangsmåten er som beskrevet i eksempel 5. Ferskvannet som fylles på brønnbå-tens tanker, kan inneholde tilsetningsmidlet. En slik løsning kan tillages på forhånd på for så vidt kjent måte. Tilsetningsmidlet kan i en alternativ utførelsesform tilsettes til ferskvannet i det dette fylles på brønnbåtens tanker. I en ytterligere alternativ utførel-sesform kan tilsetningsmidlet blandes med ferskvannet etter at ferskvannet er fylt på brønnbåtens tanker. I alle framgangsmåtene tilsettes tilsetningsmidlet til ønsket slutt-konsentrasjon. The procedure is as described in example 5. The fresh water that is filled into the wellboat's tanks may contain the additive. Such a solution can be prepared in advance in a manner known to the extent known. In an alternative embodiment, the additive can be added to the fresh water as it is being filled into the well boat's tanks. In a further alternative embodiment, the additive can be mixed with the fresh water after the fresh water has been filled in the well boat's tanks. In all procedures, the additive is added to the desired final concentration.
Etter at fisken har vært eksponert for ferskvannet med tilsetningsmiddel i ønsket tid, erstattes ferskvannet i brønnbåtens tanker med sjøvann som pumpes inn i tankene ved hjelp av brønnbåtens pumper. After the fish have been exposed to the fresh water with additives for the required time, the fresh water in the well boat's tanks is replaced with seawater that is pumped into the tanks using the well boat's pumps.
Claims (7)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
NO20131294A NO338812B1 (en) | 2013-09-27 | 2013-09-27 | System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
NO20131294A NO338812B1 (en) | 2013-09-27 | 2013-09-27 | System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO20131294A1 NO20131294A1 (en) | 2015-03-30 |
NO338812B1 true NO338812B1 (en) | 2016-10-24 |
Family
ID=53038873
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO20131294A NO338812B1 (en) | 2013-09-27 | 2013-09-27 | System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
NO (1) | NO338812B1 (en) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
NO20160382A1 (en) * | 2016-03-04 | 2017-09-05 | Nordfjord Laks As | Preparation containing seawater added to a potassium compound |
WO2019055515A1 (en) * | 2017-09-12 | 2019-03-21 | University Of Maine System Board Of Trustees | Parasite treatment compound |
Citations (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992016106A1 (en) * | 1991-03-18 | 1992-10-01 | Peter Hand Animal Health Limited | Control of sea lice in seawater fish |
US5770621A (en) * | 1994-09-12 | 1998-06-23 | Grampian Pharmaceuticals Limited | Control of sea lice in fish |
WO1999063824A2 (en) * | 1998-06-09 | 1999-12-16 | Alpharma As | Control of parasitic infestations in farmed and wild fish |
WO2008059225A1 (en) * | 2006-11-13 | 2008-05-22 | Biotec Pharmacon Asa | Treatment of ectoparasitic infestation |
WO2010109198A2 (en) * | 2009-03-25 | 2010-09-30 | Nettforsk As | Compositions to combat ectoparasites |
US7836851B2 (en) * | 2007-05-23 | 2010-11-23 | Anthony Gergely | Formula and method for treating water in fish tanks |
WO2011032894A1 (en) * | 2009-09-15 | 2011-03-24 | Solvay Sa | Process for treating with a chemical compound a body of water used in aquaculture |
WO2011135384A1 (en) * | 2010-04-29 | 2011-11-03 | Biotatools As | Sea lice control |
CA2711191A1 (en) * | 2010-07-27 | 2012-01-27 | Aquaculture Engineering Group Inc. | Treatment system for fish |
WO2013001317A2 (en) * | 2011-06-30 | 2013-01-03 | Bergen Teknologioverføring As | Fish lice treatment method |
WO2013167640A1 (en) * | 2012-05-08 | 2013-11-14 | Novartis Ag | Treatment of fish populations with lufenuron |
-
2013
- 2013-09-27 NO NO20131294A patent/NO338812B1/en unknown
Patent Citations (11)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1992016106A1 (en) * | 1991-03-18 | 1992-10-01 | Peter Hand Animal Health Limited | Control of sea lice in seawater fish |
US5770621A (en) * | 1994-09-12 | 1998-06-23 | Grampian Pharmaceuticals Limited | Control of sea lice in fish |
WO1999063824A2 (en) * | 1998-06-09 | 1999-12-16 | Alpharma As | Control of parasitic infestations in farmed and wild fish |
WO2008059225A1 (en) * | 2006-11-13 | 2008-05-22 | Biotec Pharmacon Asa | Treatment of ectoparasitic infestation |
US7836851B2 (en) * | 2007-05-23 | 2010-11-23 | Anthony Gergely | Formula and method for treating water in fish tanks |
WO2010109198A2 (en) * | 2009-03-25 | 2010-09-30 | Nettforsk As | Compositions to combat ectoparasites |
WO2011032894A1 (en) * | 2009-09-15 | 2011-03-24 | Solvay Sa | Process for treating with a chemical compound a body of water used in aquaculture |
WO2011135384A1 (en) * | 2010-04-29 | 2011-11-03 | Biotatools As | Sea lice control |
CA2711191A1 (en) * | 2010-07-27 | 2012-01-27 | Aquaculture Engineering Group Inc. | Treatment system for fish |
WO2013001317A2 (en) * | 2011-06-30 | 2013-01-03 | Bergen Teknologioverføring As | Fish lice treatment method |
WO2013167640A1 (en) * | 2012-05-08 | 2013-11-14 | Novartis Ag | Treatment of fish populations with lufenuron |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
CONNERS, et. al. Effects of varying salinities on Lepeophtheirus salmonis survival on juvenile pink and chum salmon, Journal of Fish Biology, Volume 72, Issue 7, pages 1825¿1830, May 2008., Dated: 01.01.0001 * |
FAJER-ÀVILE, et. Al., Effectiveness of freshwater treatment against Lepeophtheirus simplex (Copepoda: Caligidae) and Neobenedenia sp. (Monogenea: Capsalidae), skin parasites of bullseye puffer fish, Sphoeroides annulatus reared in tanks, Aquaculture 01/2008; 284(1):277-280, Dated: 01.01.0001 * |
Gildeskål forskningsstasjon a.s., Ferskvannsavlusing i brønnbåt, mai 2013. , Dated: 01.01.0001 * |
POWELL, M. D., et. al. Freshwater treatment of amoebic gill disease and sea-lice in seawater salmon production: considerations of water chemistry and fish welfare, Norwegian Intstitute for Water Research, , Dated: 01.01.0001 * |
STONE, J. et. al., An Evaluation Of Freshwater Bath Treatments For The Control Of Sea Lice, Lepeophtheirus Salmonis (Krøyer), Infections In Atlantic Salmon, Salmo Salar L., Journal of Fish Diseases Volume 25, Issue 6, pages 371¿373, June 2002., Dated: 01.01.0001 * |
URSULA, et, al. Effects of the pyrethroid insecticide, cypermethrin, on a freshwater community studied under field conditions. I. Direct and indirect effects on abundance measures of organisms at different trophic levels, Aquatic Toxicology (2003), 63(4), 357-371, Dated: 01.01.0001 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
NO20131294A1 (en) | 2015-03-30 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US9320771B2 (en) | TTO-based wide spectrum therapeutics, disinfectants and anesthetics for use in aquaculture | |
Pironet et al. | Treatments for ectoparasites and diseases in captive Western Australian dhufish | |
JP7105776B2 (en) | Treatment to remove ectoparasites from fish | |
Kamble et al. | The efficacy of clove oil as anesthetic in common carp (Cyprinus carpio) and its potential metabolism reducing capacity | |
Hakalahti-Sirén et al. | Control of freshwater fish louse Argulus coregoni: a step towards an integrated management strategy | |
Kitancharoen et al. | The fungistatic effect of NaCl on rainbow trout egg saprolegniasis | |
Mill et al. | Effects of sea louse chemotherapeutants on early life stages of the spot prawn (Pandalus platyceros) | |
Thing et al. | Antiparasitic effect of formalin, trichlorfon, hydrogen peroxide, and copper sulfate on the parasitic isopod Caecognathia coralliophila | |
KITANCHAROEN et al. | Effects of sodium chloride, hydrogen peroxide and malachite green on fungal infection in rainbow trout eggs | |
Can et al. | Disinfection of gilthead sea bream (Sparus aurata), red porgy (Pagrus pagrus), and commondentex (Dentex dentex) eggs from sparidae with different disinfectants | |
NO333012B1 (en) | Use of clove oil for fish lice. | |
NO338812B1 (en) | System for bathing fish infected with an external fish parasite and method for using potassium chloride as a treatment agent in the system | |
NO20160382A1 (en) | Preparation containing seawater added to a potassium compound | |
KR101850697B1 (en) | Composition for preventing or treating scuticociliatosis in fishes, and natural feed having the same | |
DK202070848A1 (en) | Treatment for removing ectoparasites from fish | |
WO2020091606A1 (en) | Composition and method to remove parasites from fish and to prevent or treat infestation or infection of parasites on fish | |
Iqbal et al. | Treatment of lernaeasis in carps with thunder: An organophosphate | |
Hublou | The use of malachite green to control Trichodina | |
RU2788121C2 (en) | Treatment for removal of ectoparasites in fish | |
Meyer | A potential control for leeches | |
Reed et al. | Monogenean Parasites of Fish: FA28/FA033, rev. 6/2012 | |
Parween et al. | Anaesthetic efficacy of table salt on two live fishes Anabas testudineus and Channa punctatus | |
GB2500381A (en) | The combination of pyrethroid and hydrogen peroxide for control of ectoparasite infestation in fish | |
Zafar Iqbal et al. | Treatment of lernaeasis in carps with thunder: an organophosphate. | |
Lewbart | FOR THE EXOTIC COMPANION MEDICINE HANDBOOK |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
CHAD | Change of the owner's name or address (par. 44 patent law, par. patentforskriften) |
Owner name: NORDFJORD LAKS AS, NO |
|
CHAD | Change of the owner's name or address (par. 44 patent law, par. patentforskriften) |
Owner name: VESTLAND PHARMA AS, NO |