MD1171Y - Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare - Google Patents

Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare Download PDF

Info

Publication number
MD1171Y
MD1171Y MDS20160156A MDS20160156A MD1171Y MD 1171 Y MD1171 Y MD 1171Y MD S20160156 A MDS20160156 A MD S20160156A MD S20160156 A MDS20160156 A MD S20160156A MD 1171 Y MD1171 Y MD 1171Y
Authority
MD
Moldova
Prior art keywords
liver
decellularized
matrix
decellularized liver
cell adhesion
Prior art date
Application number
MDS20160156A
Other languages
English (en)
Russian (ru)
Inventor
Марианна ЖИАН
Виорел НАКУ
Виталие КОБЗАК
Константин ПАЛАДИЙ
Валериана ПАНТЯ
Original Assignee
ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ им. НИКОЛАЯ ТЕСТЕМИЦАНУ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ им. НИКОЛАЯ ТЕСТЕМИЦАНУ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА filed Critical ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ им. НИКОЛАЯ ТЕСТЕМИЦАНУ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА
Priority to MDS20160156A priority Critical patent/MD1171Z/ro
Publication of MD1171Y publication Critical patent/MD1171Y/ro
Publication of MD1171Z publication Critical patent/MD1171Z/ro

Links

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

Invenţia se referă la medicina regenerativă şi ingineria tisulară şi poate fi utilizată pentru prelucrarea matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare.Esenţa invenţiei constă în aceea că se spală matricea decelularizată a ficatului prin injectarea în vena portă a unui amestec de soluţie tampon fosfat salin, streptomicină 100 µg/ml, penicilină 100 U/ml şi amfotericină B 0,25 µg/ml, în cantitate de 20 ml/10 g de ficat decelularizat, apoi se injectează soluţie de colagen tip I, obţinut din tendonul Achile de bovină în concentraţie de 0,01%, dizolvat în 0,1M de acid acetic, în cantitate de 160...240 ml/10 g de ficat decelularizat, după care matricea hepatică se perfuzează cu soluţie tampon fosfat salin cu un pH 7,4 în cantitate de 300 ml/10 g de ficat cu o viteză de 5 ml/min.

Description

Invenţia se referă la medicina regenerativă şi ingineria tisulară şi poate fi utilizată pentru prelucrarea matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare.
Cu aceeaşi destinaţie, în condiţii de laborator matricea decelularizată a unui lob al ficatului este recelularizată cu câte 1,5x107 hepatocite la fiecare 10 min până se ajunge la 2x108 celule [1]. În timpul procesului de recelularizare nu se utilizează suplimentar nici o substanţă pentru mărirea aderării celulelor la matricea extracelulară a ficatului decelularizat.
Dezavantajul constă în aceea că în timpul procesului de recelularizare are loc pierderea excesivă de hepatocite din cauza adeziunii insuficiente a hepatocitelor injectate de matricea hepatică decelularizată.
Problema pe care o rezolvă invenţia constă în utilizarea unei metode noi, ce ar permite amplificarea adeziunii hepatocitelor de matricea decelularizată a ficatului şi ar împiedica pierderea lor excesivă după injectare.
Esenţa invenţiei constă în aceea că se spală matricea decelularizată a ficatului prin injectarea în vena portă a unui amestec de soluţie tampon fosfat salin, streptomicină 100 µg/ml, penicilină 100 U/ml şi amfotericină B 0,25 µg/ml, în cantitate de 20 ml/10 g de ficat decelularizat, apoi se injectează soluţie de colagen tip I, obţinut din tendonul Achile de bovină în concentraţie de 0,01%, dizolvat în 0,1M de acid acetic, în cantitate de 160...240 ml/10 g de ficat decelularizat, după care matricea hepatică se perfuzează cu soluţie tampon fosfat salin cu un pH 7,4 în cantitate de 300 ml/10 g de ficat cu o viteză de 5 ml/min.
Avantajele metodei revendicate constau în aceea că este simplă, economă şi eficientă. Metoda propusă ameliorează şi majorează viteza procesului de recelularizare a ficatului prin sporirea adeziunii matricei extracelulare hepatice.
Rezultatul constă în aceea că respectiva metodă - eficientă, sigură, economă şi uşor de implementat, permite o adeziune mai rapidă, evitându-se pierderi excesive de hepatocite injectate în matricea hepatică decelularizată în timpul procesului de recelularizare.
În scopul creşterii adeziunii hepatocitelor de matricea extracelulară a ficatului decelularizat şi evitării pierderii lor excesive, s-a utilizat soluţie de colagen tip I obţinut din tendon Achile de bovină cu o concentraţie de 0,01% dizolvat în 0,1 M de acid acetic, care se injectează foarte încet în matricea hepatică decelularizată prin vena portă.
Modalitatea de creştere a adeziunii hepatocitelor de matricea extracelulară a ficatului decelularizat constă în injectarea soluţiei colagen tip I obţinut din tendon Achile de bovină, cu concentraţia de 0,01% dizolvat în 0,1 M de acid acetic, după o spălare prealabilă cu soluţie PBS şi un compus antibiotic-antimicotic (streptomicină 100 µg/ml, penicilină 100 U/ml, amfotericină B 0,25 µg/ml). Cantitatea de soluţie de colagen injectată este direct proporţională cu masa ficatului. La 10 g de masă umedă de ficat se utilizează 200 ml ±40 ml de soluţie de colagen, acesta se injectează foarte lent pentru a permite ataşarea fibrelor de colagen de matricea hepatică decelularizată evitând formarea conglomeratelor şi obturarea vaselor intrahepatice. Pentru a verifica dacă vasele matricei decelularizate nu sunt obturate de fibrele de colagen şi a aduce pH-ul la unul normal de 7,2…7,4 pentru a asigura viabilitatea celulelor, matricea hepatică se perfuzează cu PBS în volum de 300 ml/10 g ficat decelularizat, cu o viteză de 5 ml/min şi un pH egal cu 7,4. Totodată se urmăreşte umplerea şi extravazarea uniformă a lichidului din matricea hepatică decelularizată.
Exemplu
Prin vena portă matricea extraxelulară a 10 g de ficat decelularizat se spală cu 20 ml soluţie PBS şi antibiotic antimicotic. Apoi cu viteza de 1 ml/min se injectează 200 ml de soluţie de colagen tip I de 0,01%, obţinut din tendon Achile de bovină dizolvat în acid acetic de 0,1 M. Ulterior, matricea decelularizată se spală cu o viteză de 5 ml/min cu 300 ml soluţie PBS cu pH-ul de 7,4.
Metoda corespunde cerinţelor şi normelor sanitare, necesită utilizarea soluţiei de colagen de 0,01% şi a matricei hepatice decelularizate şi se efectuează în condiţii sterile.
Această metodă se utilizează pentru mărirea adeziunii hepatocitelor în timpul recelularizării ficatului decelularizat în cadrul Laboratorului de Inginerie Tisulară şi Culturi Celulare.
1. Uygun B., Price G., Saeidi N., Izamis M., Berendsen T., Yarmush M., Uygun K. Decellularization and Recellularization of Whole Livers. JoVE, 48, 2011. http://www.jove.com/details.php?id=2394

Claims (1)

  1. Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare, care constă în aceea că se spală matricea decelularizată a ficatului prin injectarea în vena portă a unui amestec de soluţie tampon fosfat salin, streptomicină 100 µg/ml, penicilină 100 U/ml şi amfotericină B 0,25 µg/ml, în cantitate de 20 ml/10 g de ficat decelularizat, apoi se injectează soluţie de colagen tip I, obţinut din tendonul Achile de bovină în concentraţie de 0,01%, dizolvat în 0,1M de acid acetic, în cantitate de 160...240 ml/10 g de ficat decelularizat, după care matricea hepatică se perfuzează cu soluţie tampon fosfat salin cu un pH 7,4 în cantitate de 300 ml/10 g de ficat cu o viteză de 5 ml/min.
MDS20160156A 2016-12-23 2016-12-23 Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare MD1171Z (ro)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
MDS20160156A MD1171Z (ro) 2016-12-23 2016-12-23 Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
MDS20160156A MD1171Z (ro) 2016-12-23 2016-12-23 Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare

Publications (2)

Publication Number Publication Date
MD1171Y true MD1171Y (ro) 2017-07-31
MD1171Z MD1171Z (ro) 2018-02-28

Family

ID=59383904

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
MDS20160156A MD1171Z (ro) 2016-12-23 2016-12-23 Metodă de prelucrare a matricei decelularizate a ficatului pentru sporirea adeziunii celulare

Country Status (1)

Country Link
MD (1) MD1171Z (ro)

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU952958A1 (ru) * 1980-08-01 1982-08-23 Институт проблем онкологии им.Р.Е.Кавецкого Способ получени изолированных клеток печени
SU1053803A1 (ru) * 1981-11-05 1983-11-15 2-Й Московский Ордена Ленина Государственный Медицинский Институт Им.Н.И.Пирогова Способ консервировани изолированных клеток печени
SU1289437A1 (ru) * 1984-08-20 1987-02-15 Казахский научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной хирургии им.А.Н.Сызганова Способ консервации изолированных клеток печени
SU1310426A1 (ru) * 1985-06-17 1987-05-15 Институт проблем криобиологии и криомедицины АН УССР Способ получени изолированных клеток печени
SU1564550A1 (ru) * 1986-02-06 1990-05-15 Харьковский научно-исследовательский институт терапии Способ выделени изолированных клеток из печени и миокарда
SU1673969A1 (ru) * 1986-04-08 1991-08-30 Научно-исследовательский институт физико-химической медицины Способ получени суспензии дл реконструкции мембран клеток печени
SU1463757A1 (ru) * 1987-04-02 1989-03-07 Институт проблем криобиологии и криомедицины АН УССР Способ получени изолированных клеток печени
SU1513390A1 (ru) * 1987-10-28 1989-10-07 Тюменский государственный медицинский институт Способ исследовани клеток печени
SU1578192A1 (ru) * 1988-04-26 1990-07-15 Институт проблем онкологии им.Р.Е.Кавецкого Способ выращивани клеток печени
MD1015Z (ro) * 2015-05-12 2016-10-31 ОП ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ И ФАРМАЦЕВТИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ им. НИКОЛАЯ ТЕСТЕМИЦАНУ РЕСПУБЛИКИ МОЛДОВА Metodă de decelularizare a ficatului la animalele experimentale

Also Published As

Publication number Publication date
MD1171Z (ro) 2018-02-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Nascimento et al. Human umbilical cord tissue-derived mesenchymal stromal cells attenuate remodeling after myocardial infarction by proangiogenic, antiapoptotic, and endogenous cell-activation mechanisms
Gao et al. The use of chitosan based hydrogel for enhancing the therapeutic benefits of adipose-derived MSCs for acute kidney injury
Tao et al. Proangiogenic features of mesenchymal stem cells and their therapeutic applications
Jha et al. Enhanced survival and engraftment of transplanted stem cells using growth factor sequestering hydrogels
Park et al. Human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells prevent diabetic renal injury through paracrine action
Yu et al. Human adipose-derived stem cells enriched with VEGF-modified mRNA promote angiogenesis and long-term graft survival in a fat graft transplantation model
Wang et al. Exosomes/microvesicles from induced pluripotent stem cells deliver cardioprotective miRNAs and prevent cardiomyocyte apoptosis in the ischemic myocardium
O’Loughlin et al. Topical administration of allogeneic mesenchymal stromal cells seeded in a collagen scaffold augments wound healing and increases angiogenesis in the diabetic rabbit ulcer
Rustad et al. Enhancement of mesenchymal stem cell angiogenic capacity and stemness by a biomimetic hydrogel scaffold
Zhang et al. Autophagy mediates the beneficial effect of hypoxic preconditioning on bone marrow mesenchymal stem cells for the therapy of myocardial infarction
Xinaris et al. In vivo maturation of functional renal organoids formed from embryonic cell suspensions
US10105395B2 (en) Microvesicles (MVs) derived from adult stem cells for use in the therapeutic treatment of a tumor disease
Zhang et al. Mesenchymal stem cells: potential application for the treatment of hepatic cirrhosis
Wu et al. The roles of mesenchymal stem cells in tissue repair and disease modification
Aggarwal et al. Concise review: stem/progenitor cells for renal tissue repair: current knowledge and perspectives
Saito et al. Homing effect of adipose‐derived stem cells to the injured liver: the shift of stromal cell‐derived factor 1 expressions
Xu et al. hiPS-MSCs differentiation towards fibroblasts on a 3D ECM mimicking scaffold
Dao et al. Comparing the angiogenic potency of naïve marrow stromal cells and Notch-transfected marrow stromal cells
Chen et al. Sphingosine 1-phosphate promotes mesenchymal stem cell-mediated cardioprotection against myocardial infarction via ERK1/2-MMP-9 and Akt signaling axis
Mayhew et al. Tumor dormancy in bone
Gomzikova et al. Cytochalasin B-induced membrane vesicles convey angiogenic activity of parental cells
Jia et al. Bone marrow mesenchymal stromal cells ameliorate angiogenesis and renal damage via promoting PI3k-Akt signaling pathway activation in vivo
Shou et al. Enhancement of bone‐marrow‐derived mesenchymal stem cell angiogenic capacity by NPWT for a combinatorial therapy to promote wound healing with large defect
Yu et al. Human umbilical cord mesenchymal stem cell attenuates renal fibrosis via TGF-β/Smad signaling pathways in vivo and in vitro
Hou et al. Stem/progenitor cells and their therapeutic application in cardiovascular disease

Legal Events

Date Code Title Description
FG9Y Short term patent issued
KA4Y Short-term patent lapsed due to non-payment of fees (with right of restoration)