KR20230143108A - Cd30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체, 이를 발현하는 면역세포 및 이들의 용도 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체, 이를 발현하는 면역세포 및 이들의 용도에 관한 것으로, 보다 상세하게는, 본 발명은 세포내 신호전달 도메인으로 CD30 도메인 중 TRAF가 결합하는 부위의 일부 서열을 포함하는 키메라 항원 수용체를 사용하여 면역 효과기 세포의 증식 및 생존을 증가시킴으로써 항종양 효능 및 사이토카인 분비능을 높이는 효과가 있다.

Description

CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체, 이를 발현하는 면역세포 및 이들의 용도{Chimeric antigen receptor comprising CD30-derived intracellular signalling domain, immune cell expressing the same, and use thereof}
본 발명은 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체, 이를 발현하는 면역세포 및 이들의 용도에 관한 것이다.
지난 수십 년 간 암을 치료하기 위한 방법으로 외과적 수술(surgery), 방사선 요법(radiation therapy), 화학요법(chemotherapy) 등이 개발되어 왔으나, 심각한 부작용이나 돌연변이에 의한 내성 등 한계점들이 드러났다. 최근에는 면역관문 억제제(immune checkpoint inhibitor), 면역세포 치료제(adoptive immune cell therapy) 등이 유망한 암 치료법으로 각광받고 있다.
키메라 항원 수용체(chimeric antigen receptor, CAR)-T 세포 치료제는 체내의 세포독성 T 세포를 꺼내서 특정한 항원을 인식할 수 있는 CAR를 발현하도록 유전공학적으로 변형시켜 다시 넣어주는 치료법이다. 이를 통해, 주조직적합성 복합체(major histocompatibility complex, MHC)에 비제한적으로 암세포가 발현하는 항원을 인식하여 선택적으로 사멸시킬 수 있다. CAR은 특정 항원을 인식할 수 있는 단일쇄 가변 단편(single chain variable fragment, scFv), 연결 도메인(spacer domain), 막관통 도메인(transmembrane domain), T 세포의 활성 신호를 전달하는 세포내 신호전달 도메인(intracellular signaling domain)으로 구성된다.
1세대 CAR는 항원을 인식하는 scFv와 하나의 세포내 신호전달 도메인으로 구성되는데, 신호전달 도메인은 T 세포 수용체(T cell receptor, TCR) 주요 신호전달 사슬인 CD3 zeta 또는 활성 Fc 수용체의 신호전달 사슬 FcR-gamma가 사용되었다. 하지만 1세대 CAR-T 세포는 체내에서의 제한적인 증식 및 생존 능력으로 인해 임상에서의 효능이 부족했다. 이를 극복하기 위해 CD3 zeta에 CD28이나 4-1BB, ICOS, OX40, CD27과 같은 보조자극(costimulatory) 수용체의 신호전달 부위를 추가한 형태의 2세대 CAR, 그리고 서로 다른 종류의 두 보조자극 도메인을 조합한 3세대 CAR가 개발되었다. 2세대와 3세대 CAR는 생체 내에서 활발한 증식과 오랜 생존 능력을 통해 향상된 항암효과를 보였다. 또한, 고형암에 대한 효과를 보다 향상시키기 위해, 2세대 또는 3세대 CAR 기반에 T 세포의 활성에 도움을 주는 사이토카인이나 보조자극 리간드를 같이 발현하는 4세대 CAR, 인간 백혈구 항원(human leukocyte antigen, HLA) 또는 TCR 유전자를 억제하는 기술이 포함된 5세대 CAR 등이 계속 연구되고 있다.
CAR-T 세포의 효능을 향상시키기 위해, CAR를 구성하는 도메인들을 최적화하는 연구가 이루어지고 있는데, 특히 보조자극 도메인은 CAR-T 세포의 증식, 확장, 유지, 항종양 활성, 사이토카인 분비 등에 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 일반적으로 사용되는 보조자극 도메인은 크게 CD28, ICOS(CD278)과 같은 Immunoglobulin(Ig) superfamily 와 4- 1BB(CD137), OX40(CD134), CD27을 포함하는 tumor necrosis factor receptor(TNFR) superfamily 가 있다. Ig superfamily 보조자극 도메인들은 phosphatidylinositol 3-kinase(PI3K)를 활성화시켜 protein kinase B(Akt)와 nuclear factor κB(NF-κB) 신호경로를 활성화시킨다. 반면 TNFR superfamily 보조자극 도메인들은 여러 종류의 TNF receptor associated factors(TRAFs)을 통해 NF-κB 신호경로를 활성화시킨다.
종래의 CAR-T 세포 치료제로서 인간 CD19를 표적으로 하는 CAR-T 세포 치료제가 급성림프구성백혈병(acute lymphoblastic leukemia, ALL), 미만성거대 B 세포림프종(diffuse large B-cell lymphoma, DLBCL), 비-호지킨림프종(non-hodgkin's lymphoma)과 같은 혈액암에 대해 인상적인 치료효과를 보였으나 고형암에 대해서는 효과가 부족하다. 이는 CAR-T 세포가 체내에서의 지속성(persistence)이 부족하고, 고형암까지 도달하기 어려우며(trafficking), 고형암은 면역억제적인 종양미세환경(tumor microenvironment)에 둘러싸여 있기 때문이다.
따라서, 고형암에 대해서도 우수한 치료적 효과를 위해 CAR-T 세포의 체내 증식 및 생존을 증가시킬 수 있는 전략이 필요하다.
1. Michel Sadelain et al, 2013, Cancer Discov 3(4):388-98. 2. Cheng Zhang et al, 2017, Biomark Res 5:22 3. Barbara Savoldo et al, 2011, J Clin Invest 121(5):1822-6 4. Claudia M Kowolik et al, 2006, Cancer Res 15;66(22):10995-1004 5. Adrienne H Long et al, 2015, Nat Med 21(6):581-90 6. Michael C Milone et al, 2009, Mol Ther 17(8):1453-64 7. Sonia Guedan et al, 2014, Blood 14;124(7):1070-80 8. Andreas A Hombach et al, 2012, Oncoimmunology 1;1(4):458-466 9. De-Gang Song, 2012, Blood 19;119(3):696-706 10. Lijun Zhao et al, 2019, Front Immunol 10: 2250 11. Renier J Brentjen et al, 2013, Sci Transl Med 20;5(177):177ra38 12. David L Porter et al, 2015, Sci Transl Me 2;7(303):303ra139 13. Stephan A Grupp et al, 2013, N Engl J Med 18;368(16):1509-1518 14. Jonathan H Esensten, 2016, Immunity 17;44(5):973-88 15. Robert Weinkove, 2019, Clin Transl Immunology 11;8(5):e1049
본 발명의 목적은 항종양 효능 및 사이토카인 분비능을 높일 수 있는 키메라 항원 수용체 및 이의 용도를 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 표적 항원 결합 도메인; 막관통 도메인; SEQ ID NO: 44, 46, 48 및 50으로 구성된 군에서 선택된 하나 이상의 아미노산 서열을 포함하는 C30 유래의 세포내 신호전달 도메인; 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체를 제공한다.
본 발명은 또한 상기 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자를 제공한다.
본 발명은 또한 상기 핵산 분자를 포함하는 벡터를 제공한다.
본 발명은 또한 상기 키메라 항원 수용체, 이를 인코딩하는 핵산 분자, 또는 상기 핵산 분자를 포함하는 벡터를 포함하는 분리된 면역 효과기 세포를 제공한다.
본 발명은 또한 상기 면역 효과기 세포를 포함하는 항종양 조성물을 제공한다.
본 발명은 또한 치료적 유효량의 면역 효과기 세포를 이를 필요로 하는 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는 암의 치료방법을 제공한다.
본 발명은 세포내 신호전달 도메인으로 CD30 도메인 중 TRAF가 결합하는 부위의 일부 서열을 포함하는 키메라 항원 수용체를 사용하여 면역 효과기 세포의 증식 및 생존을 증가시킴으로써 항종양 효능 및 사이토카인 분비능을 높이는 효과가 있다.
도 1a는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30M-z, CD19-30Mmut-z, CD19-30ΔM-z, CD19-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 1b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 혈액암 세포주 U937mock, U937CD19, IM-9, Raji에서의 인간 CD19 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(isotype, 회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 1c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30M-z, CD19-30Mmut-z, CD19-30ΔM-z, CD19-30S-z CAR가 도입된 KHYG-1, NK-92, 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR(빨간색 영역)의 발현량을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 1d는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30M-z, CD19-30Mmut-z, CD19-30ΔM-z, CD19-30S-z CAR가 도입된 KHYG-1, NK-92, 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 혈액암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 2a는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-30S-z, CD19-30ΔS-z, CD19-30ΔSYN-z, CD19-30ΔSYF-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 2b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30S-z, CD19-30ΔS-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 2c는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30S-z, CD19-30ΔS-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 혈액암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 2d는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 CD19-28-z, CD19-30S-z, CD19-30ΔSYN-z, CD19-30ΔYF-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 2e는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-30S-z, CD19-30ΔSYN-z, CD19-30ΔSYF-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 혈액암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 3a는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-ICOS-z, CD19-4-1BB-z, CD19-OX40-z, CD19-27-z, CD19-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 3b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 CD19-28-z, CD19-ICOS-z, CD19-4-1BB-z, CD19-OX40-z, CD19-27-z, CD19-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 3c는 본 발명의 실시예에 따른 Ig receptor family CD19-28-z, CD19-ICOS-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 CD19-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 세포살해능과 함께 나타낸다.
도 3d는 본 발명의 실시예에 따른 TNFR family 인 CD19-4-1BB-z, CD19-OX40-z, CD19-27-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 CD19-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 세포살해능과 함께 나타낸다.
도 3e는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CD19-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T 세포 및 감마델타 T 세포에서의 CD19 음성 U937mock 및 양성 U937CD19에 대한 E/T 비율 1에서의 사이토카인 INF-γ, TNF-α, granzyme A, granzyme B, perforin 의 분비량을 나타낸다.
도 4a는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z, CD19-30S-27-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 4b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z, CD19-30S-27-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 4c는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z, CD19-30S-27-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CD19 양성 및 음성 인간 혈액암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 4d는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z, CD19-30S-27-z CAR가 도입된 알파베타 T 세포 및 감마델타 T 세포에서의 CD19 음성 U937mock 및 양성 U937CD19에 대한 E/T 비율 1에서의 사이토카인 INF-γ, TNF-α, granzyme A, granzyme B, perforin의 분비량을 나타낸다.
도 5a는 본 발명의 실시예에 따른 BCMA-28-BB-z, BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 5b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 혈액암 세포주 U937, IM-9, Daudi 에서의 인간 BCMA 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(isotype, 회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 5c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 BCMA-28-BB-z, BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 5d는 본 발명의 실시예에 따른 BCMA-28-BB-z, BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 BCMA 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 6a는 본 발명의 실시예에 따른 EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 6b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 폐암 세포주 A549, Calu-1, NCI-H292, NCI-H460 에서의 인간 EpCAM 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(isotype, 회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 6c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 6d는 본 발명의 실시예에 따른 EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 EpCAM 양성 인간 폐암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 6e는 본 발명의 실시예에 따른 EpCAM-28-BB-z, EpCAM-30S-BB-z, EpCAM-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 6f는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 EpCAM-28-BB-z, EpCAM-30S-BB-z, EpCAM-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 6g는 본 발명의 실시예에 따른 EpCAM-28-BB-z, EpCAM-30S-BB-z, EpCAM-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 EpCAM 양성 인간 폐암 세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 7a는 본 발명의 실시예에 따른 MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z, MSLN-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 7b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 폐암 세포주 NCI-H292, A549, 인간 췌장암 세포주 AsPC-1, 인간 난소암 세포주 SKOV3에서의 인간 MSLN 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(isotype, 회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 7c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z, MSLN-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 7d는 본 발명의 실시예에 따른 MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z, MSLN-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 MSLN 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 7e는 본 발명의 실시예에 따른 MSLN-28-BB-z, MSLN-30S-BB-z, MSLN-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 7f는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 MSLN-28-BB-z, MSLN-30S-BB-z, MSLN-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 7g는 본 발명의 실시예에 따른 MSLN-28-BB-z, MSLN-30S-BB-z, MSLN-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 MSLN 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 8a는 본 발명의 실시예에 따른 GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 8b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 간암 세포주 HepG2, 인간 폐암 세포주 NCI-H292, A549 에서의 인간 GPC3 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 8c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 8d는 본 발명의 실시예에 따른 GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 GPC3 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 9a는 본 발명의 실시예에 따른 PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 9b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 췌장암 세포주 AsPC-1, 인간 폐암 세포주 NCI-H292, Calu-1, 인간 두경부암 세포주 FaDu에서의 인간 PD-L1 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 9c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 9d는 본 발명의 실시예에 따른 PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 PD-L1 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 9e는 본 발명의 실시예에 따른 PD-1-28-BB-z, PD-1-30S-BB-z, PD-1-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 9f는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 PD-1-28-BB-z, PD-1-30S-BB-z, PD-1-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 9g는 본 발명의 실시예에 따른 PD-1-28-BB-z, PD-1-30S-BB-z, PD-1-28-30S-z CAR가 도입된 감마델타 T 세포에서의 각각의 PD-L1 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 10a는 본 발명의 실시예에 따른 NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z CAR 구조의 모식도를 나타낸다.
도 10b는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 인간 혈액암 세포주 U937, Raji, K562, 인간 폐암 세포주 A549에서의 인간 B7-H6 항원(빨간색 영역)의 발현량을 아이소타입(회색 영역)을 기준으로 나타낸다.
도 10c는 본 발명의 실시예에 따른 유세포 분석을 통해 NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 CAR의 발현량(빨간색 영역)을 CAR를 도입하지 않은 그룹(NT, 파란색 영역) 기준으로 나타낸다.
도 10d는 본 발명의 실시예에 따른 NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T, 감마델타 T 세포에서의 각각의 B7-H6 양성 및 음성 인간 암세포주에 대한 여러 E/T 비율에서의 세포살해능을 나타낸다.
도 11a-b는 인간 백혈병 세포주 NALM6를 이종이식한 동물 모델에서 CD30S와 기존 ICD(CD28, 4-1BB)간의 조합에 따른 2세대 CD19-CAR 발현 T세포의 치료적 항종양 결과를 도시한 것으로, 도 11a는 본 발명의 실시예에 따른 CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CD19-30S-z CAR-αβ T세포 치료군의 시간 경과에 따른 종양 성장을 나타내고, 도 11b는 대조군과 CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CD19-30S-z CAR-αβ T세포 치료군의 48일까지 마우스 생존율을 나타낸다. 종양 성장은 개별 마우스에서 생체 내 생물 발광 영상화를 통해 모니터링 되었고, 생물 발광의 평균 광도로 정량화 하였다.
이하, 본 발명의 구성을 구체적으로 설명한다.
본 발명은 표적 항원 결합 도메인; 막관통 도메인; SEQ ID NO: 44, 46, 48 및 50으로 구성된 군에서 선택된 하나 이상의 아미노산 서열을 포함하는 C30 유래의 세포내 신호전달 도메인; 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체에 관한 것이다.
본 발명은 CD30 도메인 중 TRAF(TNF receptor-associated factor)가 결합하는 부위의 일부 서열을 세포내 신호전달 도메인으로 포함하는 키메라 항원 수용체를 제공하는 것을 특징으로 한다.
상기 CD30은 120 kD 크기의 막관통 당단백질 수용체로, TNFR(tumor necrosis factor receptor) family 중 하나이며, T 세포와 B 세포에서 발현된다. CD30이 활성화되면 TNFR associated factor(TRAF1, 2, 5)를 끌어들여서 NF-kB 또는 MAPK 신호 경로를 통해 JUNB 또는 AP-1 전사인자를 활성화시킨다. 이를 통해 T 세포의 증식 및 생존이 증가할 뿐만 아니라 표현형도 메모리(memory) 형태로 분화된다. 따라서, 본 발명자들은 TRAF에 의해 전달되는 신호를 사용함으로써 면역 효과기 세포, 특히 CAR-T 세포의 증식 및 생존을 증가시키고자 CD30 도메인 중 TRAF가 결합하는 부위(도메인 1, 2, 3)을 중심으로 여러 형태의 CD30 도메인(CD30L, CD30M, CD30Mmut, CD30M, CD30S)을 제작한 결과, 도메인 2+3의 539-595 a.a.의 57 a.a. 부위, 또는 544-588 a.a.를 키메라 항원 수용체의 세포내 신호전달 도메인으로 사용하였을 때 항종양 효능 및 사이토카인 분비능이 향상됨을 확인하였다.
본 발명의 키메라 항원 수용체의 상기 세포내 신호전달 도메인은 도메인 2+3의 539-595 a.a. 또는 544-588 a.a. 부위 외에도 특정 아미노산, YMNM 또는 YMFM을 추가로 포함하는 CD30ΔS, 즉, 544-588 a.a. + YMNM 또는 YMFM를 사용한다. 이들 아미노산 서열은 야생형 CD30에는 존재하지 않는 서열로서, phosphoinositide 3-kinase 결합부위 서열이며, 일 구체예에 따르면, CD30의 도메인 2+3의 539-595 a.a. 또는 544-588 a.a. 부위만을 키메라 항원 수용체에 사용하는 경우와 비교하여, 면역 효과기 세포의 항종양 효능 및 사이토카인 분비능이 유사했다.
따라서, 본 발명의 키메라 항원 수용체는 CD30S의 도메인 2+3의 539-595 a.a. 부위 또는 544-588 a.a. 부위 또는 544-588 a.a. + YMNM 또는 YMFM의 서열을 포함하는 세포내 신호전달 도메인을 사용함으로써 면역 효과기 세포의 항종양 효능 및 사이토카인 분비능을 현저히 높이는 것을 특징으로 한다.
본 발명에서, 용어 "키메라 항원 수용체, CAR"는 일반적으로 항원 및 하나 이상의 세포 내 도메인과 결합하는 능력을 갖는 세포외 도메인을 함유하는 융합 단백질을 지칭한다. 키메라 항원 수용체는 항원(예를 들어, 표면 항원, 종양 관련 항원 등) 결합 도메인, 막관통 도메인 및 세포내 신호전달 도메인을 포함할 수 있다. CAR는 표적 항원 특이성에 기초하여 T 세포 수용체-활성화 세포 내 도메인과 조합될 수 있다. 유전자가 변형된 CAR-발현 T 세포는 표적 항원-발현 악성 세포를 특이적으로 식별하고 제거할 수 있다.
본 발명에서, 용어 "표적 항원 결합 도메인"은 일반적으로 항원 단백질에 특이적으로 결합할 수 있는 도메인을 지칭한다. 예를 들어, 표적 항원에 특이적으로 결합하는 항체 또는 이의 단편일 수 있다.
본 발명에서, 용어 "결합 도메인(binding domain)"은 "세포외 도메인(extracellular domain)", "세포외 결합 도메인(extracellular binding domain)", "항원-특이적 결합 도메인(antigenspecific binding domain)" 및 "세포외 항원-특이적 결합 도메인(extracellular antigen-specific biding domain)"은 상호교환적으로 사용될 수 있으며, 표적 항원에 특이적으로 결합하는 능력을 갖는 CAR 도메인 또는 단편을 지칭한다.
상기 표적 항원은 혈액암 또는 고형암에서 발현되는 표면 항원 또는 종양 관련 항원일 수 있으며, 예컨대, 항원은 CD19, MUC16, MUC1, CAIX, CEA, CDS, CD7, CD10, CD20, CD22, CD30, CD33, CD34, CD38, CD41, CD44, CD49f, CD56, CD74, CD133, CD138, BCMA, PD-1, NKp30, 사이토메갈로바이러스(CMV) 감염된 세포 항원, EGP-2, EGP-40, EpCAM, Erb-B2, Erb-B3, Erb-B4, FBP, 태아 아세틸콜린 수용체, 폴레이트 수용체-α, GD2, GD3, HER-2, hTERT, IL-13R-α2, κ-경쇄, KDR, LeY, L1 세포 부착 분자, MAGE-A1, 메소텔린, NKG2D 리간드, NY-ESO-1, 암태아 항원(h5T4), PSCA, PSMA, ROR1, TAG-72, VEGF-R2, WT-1, CD24, CD47, EGFR, CD123, GPC3, CD117, Claudin18.2, cMET, EphA2, CLL-1, CD171, AXL, ROR2, FAP 또는 CD5 등으로부터 선택될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 있어서, 표적 항원에 특이적으로 결합하는 항체는 단클론 항체(monoclonal antibody)일 수 있다. 본 발명에서, 용어 "단클론 항체(monoclonal antibody)"는 모노클로날 항체 또는 단일클론 항체라고도 불리며, 단일 항체 형성세포가 생성하는 항체로, 1차 구조(아미노산 배열)가 균일한 특징이 있다. 오직 하나의 항원 결정기만을 인식하며, 일반적으로 암세포와 항체생산세포를 융합한 하이브리도마(hybridoma cell)을 배양하여 생산되지만, 확보된 항체 유전자 서열을 이용하여 다른 재조합 단백질 발현 숙주세포를 이용하여 생산할 수도 있다.
본 발명에서, 용어 "항체"는 2개의 전체 길이의 경쇄 및 2개의 전체 길이의 중쇄를 가지는 완전한 형태뿐만 아니라 항체 분자의 단편도 사용될 수 있다. 항체 분자의 단편이란 적어도 펩타이드 태그(에피토프) 결합 기능을 보유하고 있는 단편을 뜻하며 scFv, Fab, F(ab'), F(ab')2, 단일 도메인(single domain) 등을 포함한다.
항체 단편 중 Fab는 경쇄 및 중쇄의 가변영역과 경쇄의 불변 영역 및 중쇄의 첫 번째 불변 영역(CH1)을 가지는 구조로 1개의 항원 결합 부위를 가진다. Fab'는 중쇄 CH1 도메인의 C 말단에 하나 이상의 시스테인 잔기를 포함하는 힌지 부위(hinge region)를 가진다는 점에서 Fab와 차이가 있다. F(ab')2 항체는 Fab'의 힌지 부위의 시스테인 잔기가 디설파이드 결합을 이루면서 생성된다. Fv는 중쇄 가변부위 및 경쇄 가변부위만을 가지고 있는 최소의 항체조각으로 Fv 단편을 생성하는 재조합 기술은 국제공개 특허 WO 88/10649, WO 88/106630, WO 88/07085, WO 88/07086 및 WO 88/09344에 개시되어 있다. 이중쇄 Fv(dsFv)는 디설파이드 결합으로 중쇄 가변부위와 경쇄 가변부위가 연결되어 있고 단쇄 Fv(scFv)는 일반적으로 펩타이드 링커를 통하여 중쇄의 가변 영역과 경쇄의 가변 영역이 공유 결합으로 연결되어 있다. 이러한 항체 단편은 단백질 가수 분해 효소를 이용해서 얻을 수 있고(예를 들어, 전체 항체를 파파인으로 제한 절단하면 Fab를 얻을 수 있고 펩신으로 절단하면 F(ab')2 단편을 얻을 수 있다). 바람직하게는 유전자 재조합 기술을 통하여 제작할 수 있다.
본 발명에서, 용어 "인간화 항체"는 인간에 의해 생산된 항체의 것에 상응하는 아미노산 서열을 소유하고 및/또는 본원에서 개시된 바와 같은 인간 항체를 만들기 위한 기술 중에서 한 가지를 이용하여 만들어진 항체이다. 인간화 항체의 이러한 정의는 비인간 항원 결합 잔기를 포함하는 인간화 항체를 특정적으로 배제한다.
또한, 본 발명에 포함된 단백질, 폴리펩타이드 및/또는 아미노산 서열은 적어도 단백질 또는 폴리펩타이드와 동일하거나 유사한 기능을 갖는 기능성 변이체(functional variants) 또는 상동체를 포함하는 것으로 이해되어야한다.
본 발명에서, 기능적 변이체(functional variants)는 상기 단백질 및/또는 폴리펩타이드의 아미노산 서열에서 하나 이상의 아미노산을 치환, 결실 또는 첨가함으로써 수득되는 단백질 또는 폴리펩타이드일 수 있다. 예를 들어, 기능적 변이체(functional variants)는 1에서 30, 1에서 20 또는 1에서 10 또는 1, 2, 3, 4 또는 5와 같은 하나 이상의 아미노산의 치환, 결실 및/또는 삽입으로 인해 상이한 아미노산 서열을 갖는 단백질 또는 폴리펩타이드를 포함할 수 있다. 기능적 변이체(functional variants)는 변형되지 않은 단백질 또는 폴리펩타이드(치환, 결실 또는 첨가)의 생물학적 특성을 실질적으로 유지시킬 수 있다. 예를 들어, 기능적 변이체(functional variants)는 원래 단백질 또는 폴리펩타이드의 생물학적 활성 (항원 결합 능력과 같은)의 적어도 60 %, 70 %, 80 %, 90 % 또는 100 %로 유지될 수 있다.
본 발명에서, 상동체는 상기 단백질 및/또는 폴리펩타이드와 아미노산 서열 상동성이 약 85 % 이상(예컨대, 약 85 %, 90 %, 91 %, 92 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % 또는 그 이상)인 단백질 또는 폴리펩타이드(예를 들어 BCMA 또는 이의 단편과 특이적으로 결합할 수 있는 항체)일 수 있다.
본 발명에서, 상동성은 일반적으로 둘 이상의 서열 사이의 유사성, 유사성 또는 상관성을 지칭한다.
본 발명에서, 용어 "막관통 도메인(transmembrane domain)"은 일반적으로 세포막을 통과하고 세포내 신호전달 도메인에 연결되어 신호전달의 역할을 하는 CAR의 도메인을 지칭한다. 상기 막관통 도메인은 표적 항원 결합 도메인의 C-말단과 세포내 신호전달 도메인의 N-말단 사이에 연결되며, CD8, 4-1BB, CD27, CD28, CD30, 0X40, CD3e, CD3ζ, CD45, CD4, CD5, CD9, CD16, CD22, CD33, CD37, CD64, CD80, CD86, CD134, CD137, CD154 및 ICOS(CD278)로 구성된 군에서 선택된 TCR 공동 수용체 또는 T 세포 보조자극분자의 막관통 도메인 또는 이들로부터 유래하는 것일 수 있다. 구체적으로, CD28의 막관통 도메인을 사용할 수 있다.
상기 표적 항원 결합 도메인의 C-말단 및 막관통 도메인의 N-말단 사이에는 힌지 부위(hinge region)가 연결될 수 있으며, 상기 힌지 부위는 CD8α 또는 CD28 유래인 것을 사용할 수 있다. 상기 "힌지 부위(hinge region)"는 일반적으로 항원-결합 영역과 면역 세포 Fc 수용체 (FcR)-결합영역 사이의 연결 영역을 지칭한다.
본 발명에서, 용어 "세포내 신호전달 도메인(intracellular signal transduction domain)"은 일반적으로 세포 내부에 위치하고 신호를 전달할 수 있는 도메인을 지칭한다. 본 발명은 CD30의 TRAF가 결합하는 부위 중 도메인 2+3의 539-595 a.a. 부위 또는 이의 결실 부위인 544-588 a.a. 뿐만 아니라 544-588 a.a.에 특정 아미노산, YMNM 또는 YMFM을 추가로 포함하는 CD30S를 세포내 신호전달 도메인으로 사용할 수 있다. 더 구체적으로, SEQ ID NO: 44, 46, 48 또는 50의 아미노산 서열을 포함할 수 있다.
본 발명의 키메라 항원 수용체는 CD27, CD28, 4-1BB(CD137), 0X40, CD40, ICOS, LFA-1(lymphocyte function-associated antigen-1), CD2, CD7, NKG2C, CD83, Dap10, GITR, OX40L, Myd88-CD40 및 KIR2DS2로 구성된 군에서 선택된 세포내 신호전달 도메인(또는 보조자극 도메인)을 더 포함하여 3세대 키메라 항원 수용체로 사용될 수 있다.
본 발명의 키메라 항원 수용체의 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인은 CD3ζ 유래의 154-492의 뉴클레오타이드(NCBI NM_198053.2)에 해당하는 SEQ ID NO: 18의 아미노산 서열을 가질 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다.
또한, 본 발명의 키메라 항원 수용체는 표적 항원 결합 도메인의 N-말단에 신호 펩타이드(signal peptide)를 추가로 포함할 수 있으며, 상기 "신호 펩타이드(signal peptide)"는 일반적으로 단백질 전달을 안내하기 위한 펩타이드 사슬을 지칭한다. 신호 펩타이드는 GM-CSF 수용체 신호 서열, CD8α 신호 서열, 면역글로불린 중쇄 신호 서열, PD-1 신호 서열, NKp30 신호 서열 등을 사용할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 일 구체예에 따르면, 본 발명의 키메라 항원 수용체는 신호 펩타이드; 표적 항원 결합 도메인; 힌지 도메인; 막관통 도메인; CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인; 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인이 순차적으로 연결된 2세대 키메라 항원 수용체일 수 있다.
본 발명의 다른 구체예에 따르면, 본 발명의 키메라 항원 수용체는 신호 펩타이드; 표적 항원 결합 도메인; 힌지 도메인; 막관통 도메인; CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인; CD27, CD28, 4-1BB(CD137), 0X40, CD40, ICOS, LFA-1(lymphocyte function-associated antigen-1), CD2, CD7, NKG2C, CD83, Dap10, GITR, OX40L, Myd88-CD40 및 KIR2DS2로 구성된 군에서 선택된 세포내 신호전달 도메인(보조자극 도메인); 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인이 순차적으로 연결된 3세대 키메라 항원 수용체일 수 있다.
본 발명은 또한 상기 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자에 관한 것이다.
상기 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자는 신호 펩타이드; 표적 항원 결합 도메인; 힌지 도메인; 막관통 도메인; CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인; 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인을 각각 코딩하는 폴리뉴클레오타이드를 포함할 수 있다.
상기 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자는 신호 펩타이드; 표적 항원 결합 도메인; 힌지 도메인; 막관통 도메인; CD27, CD28, 4-1BB(CD137), 0X40, CD40, ICOS, LFA-1(lymphocyte function-associated antigen-1), CD2, CD7, NKG2C, CD83, Dap10, GITR, OX40L, Myd88-CD40 및 KIR2DS2로 구성된 군에서 선택된 세포내 신호전달 도메인; 및 CD3ζ 세포내 신호전달 도메인을 각각 코딩하는 폴리뉴클레오타이드를 포함할 수 있다.
보다 구체적으로, 상기 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인은 SEQ ID NO: 47 또는 49의 염기 서열을 포함할 수 있다.
본 발명에서, 용어 "폴리뉴클레오타이드"는 일반적으로 임의의 길이로 분리된 핵산 분자, 데옥시리보뉴클레오티드 또는 리보뉴클레오티드, 또는 그의 유사체를 지칭한다. 예컨대, 본 발명의 폴리뉴클레오타이드는 (1) 중합효소 연쇄반응(PCR) 증폭과 같은 in vitro 증폭; (2) 클로닝 및 재조합; (3) 절단(digestion) 및 젤 전기영동 분리와 같은 정제; (4) 화학 합성과 같은 합성을 통해 제조될 수 있으며, 바람직하게 분리된 폴리뉴클레오타이드는 재조합 DNA 기술에 의해 제조된다. 본 발명에서, 항체 또는 이의 항원 결합 단편을 코딩하기 위한 핵산은 합성 올리고뉴클레오타이드의 제한 단편 조작(restriction fragment operation) 또는 SOE PCR의 적용을 포함하지만 이에 제한하지 않고, 당업계에 공지된 다양한 방법에 의해 제조될 수 있다.
본 발명은 또한 상기 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자를 포함하는 벡터에 관한 것이다.
본 발명에서, 용어 "벡터(expression vector)"는 적당한 숙주세포 내에서 목적 유전자가 발현할 수 있도록 프로모터 등의 필수적인 조절 요소를 포함하는 유전자 제조물이다. 벡터는 플라스미드, 레트로바이러스(retroviral) 벡터 및 렌티바이러스(lentiviral) 벡터 중 하나 이상으로부터 선택될 수 있다. 적당한 숙주로 형질전환되면, 벡터는 숙주 게놈과 무관하게 복제하고 기능할 수 있거나, 또는 일부 경우에 게놈 그 자체에 통합될 수 있다.
또한, 벡터는 코딩 영역이 적합한 숙주에서 정확하게 발현될 수 있게 하는 발현 조절 요소를 포함할 수 있다. 이러한 조절 요소는 당업자에게 잘 알려져 있으며, 예를 들어 프로모터, 리보솜 결합 부위(ribosome-binding site), 인핸서(enhancer) 및 유전자 전사 또는 mRNA 번역을 조절하기 위한 다른 조절 요소를 포함할 수 있다. 발현 조절 서열의 특정 구조는 종 또는 세포 유형의 기능에 따라 달라질 수 있으나, 일반적으로 TATA 박스(box), 캡핑된(capped) 서열, CAAT 서열 등과 같은 전사 개시 및 번역 개시에 각각 참여하는 5' 비-전사 서열, 및 5' 또는 3' 비-번역 서열을 함유한다. 예를 들어, 5' 비-전사 발현 조절 서열은 기능적으로 연결된 핵산을 전사 및 조절하기 위한 프로모터 서열을 포함할 수 있는 프로모터 영역을 포함할 수 있다.
상기 프로모터는 표적 항원 결합 도메인의 발현을 유도하도록 작동 가능하게 연결되어 있으며 여기서, "작동 가능하게 연결된(operably linked)"은 일반적 기능을 수행하도록 핵산 발현조절 서열과 목적하는 단백질을 코딩하는 핵산 서열이 기능적으로 연결되어 있는 것을 말한다. 재조합 벡터와의 작동적 연결은 당해 기술분야에서 잘 알려진 유전자 재조합 기술을 이용하여 제조할 수 있으며, 부위-특이적 DNA 절단 및 연결은 당해 기술분야에서 일반적으로 알려진 효소 등을 사용한다.
유전자를 세포 내로 도입하고 발현시키는 방법은 관련 기술분야에 공지되어 있다. 발현 벡터와 관련하여, 벡터는 관련 기술분야의 임의의 방법에 의해 숙주 세포 내로 용이하게 도입될 수 있다. 예를 들어, 발현 벡터는 물리적, 화학적, 또는 생물학적 수단에 의해 숙주 세포 내로 옮겨질 수 있다.
폴리뉴클레오티드를 숙주 세포 내로 도입하기 위한 물리적 방법은 인산칼슘 침전, 리포펙션, 입자 충격, 미세주사, 전기천공 등을 포함한다. 벡터 및/또는 외인성 핵산을 포함하는 세포를 생산하는 방법은 관련 기술분야에 널리 공지되어 있다. 예를 들어, 문헌 [Sambrook et al, 2012, MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL, volumes 1-4, Cold Spring Harbor Press, NY]을 참조한다.
숙주 세포 내로 폴리뉴클레오티드를 도입하기 위한 생물학적 방법은 DNA 및 RNA 벡터의 사용을 포함한다. 바이러스 벡터, 및 특히 레트로바이러스 벡터는 유전자를 포유동물, 예를 들어 인간 세포 내로 삽입하기 위해 가장 널리 사용되는 방법이 되었다. 다른 바이러스 벡터는 렌티바이러스, 폭스바이러스, 단순 포진 바이러스, 아데노바이러스 및 아데노-연관 바이러스 등으로부터 유래될 수 있다.
숙주 세포 내로 폴리뉴클레오티드를 도입하기 위한 화학적 수단은 콜로이드성 분산액 시스템, 예컨대 거대분자 복합체, 나노캡슐, 마이크로구체, 비드, 및 수중유 에멀젼, 미셀, 혼합된 미셀, 및 리포솜을 비롯한 지질-기반 시스템을 포함한다. 시험관 내 및 생체 내에서 전달 비히클로서 사용하기 위한 예시적인 콜로이드성 시스템은 리포솜 (예를 들어, 인공 막 소포)이다. 핵산의 최신 기술의 표적화된 전달, 예컨대 표적화된 나노입자 또는 다른 적합한 마이크로미터-미만 크기의 전달 시스템을 사용한 폴리뉴클레오티드의 전달을 위한 다른 방법이 이용 가능하다.
비-바이러스 전달 시스템이 이용되는 경우에, 예시적인 전달 비히클은 리포솜이다. 지질 제제의 사용은 숙주세포 내로의 핵산의 도입(시험관 내, 생체 외 또는 생체 내)을 위해 고려된다. 또 다른 측면에서, 핵산은 지질과 회합될 수 있다. 지질과 회합된 핵산은 리포솜의 수성 내부에 캡슐화되거나, 리포솜의 지질 이중층 내에 점재되거나, 리포솜 및 올리고뉴클레오타이드 둘 다와 회합된 연결 분자를 통해 리포솜에 부착되거나, 리포솜 내에 포획되거나, 리포솜과 복합체화되거나, 지질 함유 용액 중에 분산되거나, 지질과 혼합되거나, 지질과 조합되거나, 지질 내에 현탁액으로서 함유되거나, 미셀과 함께 함유 또는 복합체화되거나, 또는 지질과 달리 회합될 수 있다. 지질, 지질/DNA 또는 지질/발현 벡터 회합 조성물은 용액 중의 임의의 특정한 구조로 제한되지 않는다.
본 발명은 또한 상기 키메라 항원 수용체, 이를 인코딩하는 핵산 분자 또는 상기 핵산 분자를 포함하는 벡터를 포함하는 면역 효과기 세포에 관한 것이다.
상기 면역 효과기 세포는 포유동물 유래 세포일 수 있으며, 바람직하게는, αβ T 세포, γδ T 세포, NK 세포(KHYG-1, NK-92 세포주 포함), NK T 세포 또는 대식세포 등일 수 있다.
상기 키메라 항원 수용체를 발현하는 면역 효과기 세포는 본 발명의 CAR 벡터를 면역 효과기 세포, 예를 들어 T 세포 또는 NK 세포 내로 도입시켜 제조할 수 있다.
구체적으로, CAR 벡터는 전기천공법, 리포펙타민(lipofectamine 2000, Invitrogen) 등과 같은 당업계에 공지된 방법에 의해 세포 내로 도입될 수 있다. 예를 들어, 면역 효과기 세포에 플라스미드를 전기천공법에 의해 도입하여 CAR의 장기적이고 안정적인 발현을 보장할 수 있다.
키메라 항원 수용체를 발현하는 면역 효과기 세포를 제조하기 위한 면역 효과기 세포는 대상체로부터 수득할 수 있으며, 상기 "대상체"는 면역 반응이 도출될 수 있는 살아있는 유기체 (예를 들어, 포유동물)를 포함한다. 대상체의 예는 인간, 개, 고양이, 마우스, 래트, 및 그의 형질전환체를 포함한다. T 세포는 말초혈 단핵구 세포, 골수, 림프절 조직, 제대혈, 흉선 조직, 감염 부위로부터의 조직, 복수, 흉막 삼출, 비장 조직, 및 종양을 비롯한 수많은 공급원으로부터 수득될 수 있다.
상기 T 세포는 통상의 기술자에게 공지된 임의의 많은 기술, 예를 들면, 피콜(Ficoll)?? 분리를 사용하여 대상체로부터 수집된 혈액 단위로부터 수득될 수 있다. 혈액으로부터 세포는 분리반출술에 의해 수득되며, 분리반출술 생성물은 전형적으로 T 세포, 단핵구, 과립구, B 세포를 비롯한 림프구, 다른 유핵 백혈구, 적혈구, 및 혈소판을 함유한다.
분리반출술에 의해 수집된 세포는 혈장 분획을 제거하고 세포를 후속 프로세싱 단계를 위해 적절한 완충제 또는 배지에 두기 위해 세척될 수 있다. T 세포는 적혈구를 용해시키고, 예를 들어 퍼콜(PERCOLL)?? 구배를 통한 원심분리에 의해 또는 역류 원심 분리에 의해 단핵구를 고갈시킴으로써 말초혈 림프구로부터 단리된다.
본 발명은 또한 상기 면역 효과기 세포를 포함하는 항종양 조성물에 관한 것이다.
본 발명의 일 구체예에 따르면, CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체가 도입된 면역 효과기 세포들은 CD19 양성 혈액암 세포주, BCMA 양성 세포주, EpCAM 고형암 세포주, 메소텔린 양성 고형암 세포주, GPC3 양성 고형암 세포주, PD-L1 양성 고형암 세포주, B7-H6 양성 세포주 등에 대한 특이적인 세포 살해능을 나타낸다. 따라서, 본 발명의 키메라 항원 수용체가 도입된 면역 효과기 세포는 혈액암 또는 고형암 치료에 사용할 수 있다.
상기 고형암은 폐암, 대장암, 전립선암, 갑상선암, 유방암, 뇌암, 두경부암, 식도암, 피부암, 흑색종, 망막모세포종, 흉선암, 위암, 결장암, 간암, 난소암, 자궁암, 방광암, 직장암, 담낭암, 담도암 또는 췌장암일 수 있다. 또한, 상기 혈액암은 림프종, 백혈병 또는 다발성 골수종일 수 있다.
상기 약학적 조성물은 약학적으로 허용되는 담체를 추가로 포함할 수 있다. 경구 투여 시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소, 향료 등을 사용할 수 있고, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제 등을 혼합하여 사용할 수 있으며, 국소 투여용의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제, 보존제 등을 사용할 수 있다.
상기 약학적 조성물의 제형은 상술한 약학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를들어, 경구 투여 시에는 정제, 트로키, 캡슐, 엘릴시르, 서스펜션, 시럽, 웨이퍼 등의 형태로 제조될 수 있으며, 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 형태로 제조될 수 있다.
또한, 상기 약학적 조성물은 막 투과성을 향상시킬 수 있는 계면활성제를 포함할 수 있다. 이러한 계면활성제는 스테로이드에서 유도된 것이거나 N-[1-(2,3-디올레오일)프로필-N,N,N-트리메틸암모늄클로라이드(DOTMA) 등의 양이온성 지질, 또는 콜레스테롤 헤미숙시네이트, 포스파티딜 글리세롤 등의 각종 화합물일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 약학적 조성물은 상기한 약리학적 또는 생리학적 성분과 함께 투여되거나 순차적으로 투여될 수 있으며, 또한 추가의 종래의 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 이러한 투여는 단일 또는 다중 투여일 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
본 발명에서 사용되는 용어 "투여"는 임의의 적절한 방법으로 대상체에게 본 발명의 약학적 조성물을 제공하는 것을 의미한다. 본 발명의 약학적 조성물은 연구자, 수의사, 의사 또는 기타 임상에 의해 생각되는 조직계, 동물 또는 인간에서 생물학적 또는 의학적 반응을 유도하는 유효 성분 또는 약학적 조성물의 양, 즉 치료되는 질환 또는 장애의 증상의 완화를 유도하는 양인 치료상 유효량으로 투여할 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물에 대한 치료상 유효 투여량 및 투여횟수는 원하는 효과에 따라 변화될 것임은 당업자에게 자명하다. 그러므로, 투여될 최적의 투여량은 당업자에 의해 쉽게 결정될 수 있으며, 질환의 종류, 질환의 중증도, 조성물에 함유된 유효성분 및 다른 성분의 함량, 제형의 종류, 환자의 연령, 체중, 일반 건강 상태, 성별 및 식이, 투여시간, 투여 경로 및 조성물의 분비율, 치료기간, 동시 사용되는 약물을 비롯한 다양한 인자 등에 따라 조절될 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물은 1~10,000㎎/㎏/일의 양으로 투여할 수 있으며, 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수 회에 나누어 투여할 수도 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "대상체"는 상기 약학적 조성물을 투여하여 경감, 억제 또는 치료될 수 있는 상태 또는 질환을 앓고 있거나 그러한 위험이 있는 포유동물을 의미하며, 바람직하게 사람을 의미한다.
따라서, 본 발명은 또한 치료적 유효량의 면역 효과기 세포를 이를 필요로 하는 대상체에게 투여하는 단계를 포함하는 암의 치료방법을 제공한다.
상기 면역 효과기 세포는 종양 항원이 발현되는 암을 치료하기 위해 약학적으로 효과적인 양으로 투여될 수 있다. 질환 종류, 환자의 연령, 체중, 증상의 특성 및 정도, 현재 치료법의 종류, 치료 회수, 투여 형태 및 경로 등 다양한 요인에 따라 달라질 수 있으며, 해당분야의 전문가들에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
상기 대상체는 본 발명의 약학적 조성물의 투여 대상과 같다.
이하, 본 발명에 따르는 실시예 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하나, 본 발명의 범위가 하기 제시된 실시예에 의해 제한되는 것은 아니다.
<실시예 1> 키메라 항원 수용체의 제조
(인간 세포주)
인간 다발성 골수종 세포주 IM-9, 인간 림프종 세포주 U937mock, U937CD19, 인간 버킷림프종 세포주 Raji, 인간 폐암 세포주 NCI-H292, NCI-H460, 인간 췌장암 세포주 AsPC-1은 10% FBS를 포함하는 RPMI-1640 (Gibco, Grand Island, NY, USA)에서 배양되었다. 인간 간암 세포주 HepG2, 인간 폐암 세포주 A549, Calu-1, 인간 두경부암 세포주 FaDu는 10% FBS를 포함하는 DMEM(Gibco)에서 유지되었다. 인간 난소암 세포주 SKOV3는 10% FBS를 포함하는 McCoy(Gibco)에서 유지되었다. 자연살해세포주인 KHYG-1과 NK-92는 10% FBS와 인터류킨-2(IL-2) 300 U/ml이 포함된 RPMI-1640에서 유지되었다. 알파베타 T 세포는 10% FBS와 IL-2 500 U/ml이 포함된 RPMI-1640에서 유지되었다. 감마델타 T 세포는 10% FBS와 IL-2 1000 U/ml이 포함된 RPMI-1640에서 배양되었다.
(인간 알파베타 T 세포 및 감마델타 T 세포 배양)
*알파베타 T 세포 배양을 위해 항-CD3 항체(2 ㎍/ml), 항-CD28 항체(2 ㎍/ml)가 부착된 배양 접시에 말초혈 단핵구 세포(peripheral blood mononuclear cell, PBMC)를 인터류킨rleukin, IL)-2 300 U/ml 이 포함된 RPMI-1640 (10% FBS)을 넣어 37℃ 세포배양기에서 7일간 배양하였다. 2-3일 마다 새로운 배양액으로 계대배양하였다. 7일째에 알파베타 T 세포의 수를 측정하여 10% dimethyl sulfoxide(DMSO)와 90% fetal bovine serum(FBS)로 이루어진 동결액으로 동결시켰다.
감마델타 T 세포를 배양하기 위해, 말초혈 단핵구 세포에 졸레드론산 5 μM 과 IL-2 500 U/ml이 포함된 배양액을 넣어 37℃ 세포배양기에서 7일간 배양하였다. 2-3일 마다 새로운 배양액으로 계대배양하였다. 7일째에 감마델타 T 세포의 수를 계산한 후, 120 Gy 세기의 X-선이 조사된 지지세포(feeder cell)를 감마델타 T 세포:지지세포(feeder cell) 비율 2:1로 하여 7일 동안 함께 배양하였다. 14일 동안 배양된 감마델타 T 세포는 세포 수를 측정하여 상기와 같은 동결액으로 동결시켰다.
(플라스미드)
- CD19 scFv
신호 서열(GM-CSF receptor signal sequence) 및 FMC63 항-CD19 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH), CD28의 힌지 및 막관통 도메인; CD8α의 힌지 및 막관통 도메인; CD28의 힌지 및 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, CD30과 CD30의 다양한 돌연변이체, 4-1BB, CD27, ICOS, OX40 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 이들은 PCR(overlapping extension by PCR)을 이용하여 다양한 조합으로 조립되었다. 양 말단에 XhoI 및 EcoRV, NotI 서열을 연결하여 증폭한 PCR 결과물은 pCI 벡터(pCI Mammalian Expression vector, Promega E1731)의 XhoI 및 NotI 사이트에 삽입(fusion cloning, ligation) 되었다. PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- BCMA
신호 서열(GM-CSF receptor signal sequence) 및 Bb2121 항-BCMA 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH), CD28의 힌지, 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- EpCAM
scFv 신호 서열(CD8α signal sequence) 및 VB4-845 항-EpCAM 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH), CD8α의 힌지 및 막관통 도메인; CD28의 힌지 및 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호 전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- Mesothelin
scFv 신호 서열(GM-CSF receptor signal sequence) 및 MORAb-009 항- Mesothelin 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중 쇄 가변(VH), CD8α의 힌지 및 막관통 도메인; CD28의 힌지 및 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포 내 신호전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- Glypican-3
면역글로불린 중쇄(immunoglobulin heavy-chain) 신호 서열 및 GC33 항-Glypican-3 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH), CD28의 힌지, 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- PD-1 ECD
PD-1의 신호 서열 및 세포외 도메인, 힌지, CD28의 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다. 상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
- NKp30
NKp30의 신호 서열 및 세포외 도메인, 힌지, CD28의 막관통 도메인; 세포내 신호전달 도메인; CD28, 4-1BB, CD30의 돌연변이체 및 CD3ζ(CD3z)의 세포내 신호 전달 도메인은 각각 인공적으로 합성되었다.
상기 CD19 scFv에서와 같이, PCR을 이용하여 조립되고, pCI 벡터에 삽입되었으며, PCR 결과물은 시퀀싱으로 확인되었다.
상술한 키메라 항원 수용체(chimeric antigen receptor, CAR)는 표 1 내지 13에 나열하였으며, 이들의 서열은 표 14에 나열하였다. 모든 CAR의 도메인들은 서로 직렬로(in tandem) 연결된 것이며, 또한 in frame으로 연결된 것이다.
CD19를 표적으로 하는 2세대 CAR : CD30 도메인 스크리닝
약칭 신호 서열 scFv 힌지 TM 신호-1 신호-2
CD19-28S-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD28 CD28 CD28 CD3ζ
CD19-30L-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD8α CD28 CD30L CD3ζ
CD19-30M-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD8α CD28 CD30M CD3ζ
CD19-30MMut-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD8α CD28 CD30MMut CD3ζ
CD19-30ΔM-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD8α CD28 CD30ΔM CD3ζ
CD19-30S-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 CD8α CD28 CD30S CD3ζ
표 1에 도시된, CD19-28-z는 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 뉴클레오타이드(nt), NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); FMC63 항-CD19 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH)(KR10-2019-7034220/WO2018/200496 JS scFv); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 및 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
CD19-30L-z는 인간 CD8α 유래의 힌지(412-546 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001768)와 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인(1219-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)을 사용한 점을 제외하고 CD19-28-z와 동일하다.
CD19-30M-z는 인간 CD8α 유래의 힌지(412-546 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001768)와 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1501-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-z와 동일하다.
CD19-30MMut-z는 인간 CD8α 유래의 힌지(412-546 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001768)와 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1501-1785 nt의 521 아미노산 K→Q, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-z와 동일하다.
CD19-30ΔM-z는 인간 CD8α 유래의 힌지(412-546 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001768)와 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1501-1614, 1678-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-z와 동일하다.
CD19-30S-z는 인간 CD8α 유래의 힌지(412-546 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001768)와 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-z와 동일하다.
CD19를 표적으로 하는 2세대 CAR : 변형된 형태의 CD30S
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2
CD19-30S-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
CD19-30ΔS-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30ΔS CD3ζ
CD19-30ΔSYN-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30ΔSYN CD3ζ
CD19-30ΔSYF-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30ΔSYF CD3ζ
표 2에 도시된 CD19-30S-z는 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 nt, NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); FMC63 항-CD19 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH)(KR10-2019-7034220/WO2018/200496 JS scFv); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 및 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
CD19-30ΔS-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1630-1764 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 표 2의 CD19-30S-z와 같다.
CD19-30ΔSYN-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(CD30의 1630-1764 nt)에 CD28 세포내 신호전달 도메인 일부인 YMNM(16 a.a.)부위가 결합된 도메인을 사용한 점을 제외하고 표 2의 CD19-30S-z와 같다.
CD19-30ΔSYF-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(CD30의 1630-1764 nt)에 CD28 세포내 신호전달 도메인 일부인 YMFM(16 a.a.) 부위가 결합된 도메인을 사용한 점을 제외하고 표 2의 CD19-30S-z와 같다.
CD19를 표적으로 하는 2세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2
CD19-30S-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
CD19-28-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD3ζ
CD19-4-1BB-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
CD19-27-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD27 CD3ζ
CD19-ICOS-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 ICOS CD3ζ
CD19-OX40-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 OX40 CD3ζ
CD19-28-z와 CD19-30S-z는 상기와 같은 방법으로 제작되었다. CD19-4-1BB-z는 제1 세포내 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 CD19-30S-z와 동일하다.
CD19-27-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD27 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-780 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001242.4)를 사용한 점을 제외하고 CD19-30S-z와 동일하다.
CD19-ICOS-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 ICOS 유래의 세포내 신호전달 도메인(484-597 nt, NCBI Reference Sequence: NM_012092.2)를 사용한 점을 제외하고 CD19-30S-z와 동일하다.
CD19-OX40-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 OX40 유래의 세포내 신호전달 도메인(706-831 nt, NCBI Reference Sequence: NM_003327.2)를 사용한 점을 제외하고 CD19-30S-z와 동일하다.
CD19를 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2 신호-3
CD19-28-BB-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
CD19-30S-BB-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
CD19-28-30S-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
CD19-30S-ICOS-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S ICOS CD3ζ
CD19-30S-CD27-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S CD27 CD3ζ
CD19-30S-OX40-z GM-CSF rec FMC63 anti-CD19 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S OX40 CD3ζ
CD19-28-BB-z는 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 nt, NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); FMC63 항-CD19 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH)(KR10-2019-7034220/WO2018/200496 JS scFv); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 및 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인 (154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
CD19-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 보조자극 도메인(제2 신호전달 도메인)으로, 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-BB-z와 동일하다.
CD19-28-30S-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2), 보조자극 도메인(제2 신호전달 도메인)으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-BB-z와 동일하다.
CD19-30S-ICOS-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 보조자극 도메인(제2 신호전달 도메인)으로, 인간 ICOS 유래의 세포내 신호전달 도메인(484-597 nt, NCBI Reference Sequence: NM_012092.2)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-BB-z와 동일하다.
CD19-30S-CD27-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 보조자극 도메인(제2 신호전달 도메인)으로, 인간 CD27 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-780 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001242.4) 를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-BB-z와 동일하다.
CD19-30S-OX40-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 보조자극 도메인(제2 신호전달 도메인)으로, 인간 OX40 유래의 세포내 신호전달 도메인(706-831 nt, NCBI Reference Sequence: NM_003327.2)를 사용한 점을 제외하고 CD19-28-BB-z와 동일하다.
BCMA를 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 힌지 TM 신호-1 신호-2 신호-3
BCMA-28-30S-z GM-CSF rec Anti-BCMA02 CD28 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
BCMA-28-BB-z GM-CSF rec Anti-BCMA02 CD28 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
BCMA-30S-BB-z GM-CSF rec Anti-BCMA02 CD28 CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
BCMA-28-30S-z는 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 nt, NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); Bb2121 항-BCMA 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH) 영역(KR10-2021-7003369/WO2020/014333); 인간 CD28 유래의 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인 (154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
BCMA-28-BB-z는 제2 신호전달 도메인(보조자극 도메인)으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 BCMA-28-30S-z와 동일하다.
BCMA-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인(보조자극 도메인)으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)을 사용한 점을 제외하고 BCMA-28-30S-z와 동일하다.
EpCAM을 표적으로 하는 2세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2
EpCAM-28-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD3ζ
EpCAM-BB-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
EpCAM-30S-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
EpCAM-28TM CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 - -
EpCAM-28-z는 인간 CD8α의 신호 서열 도메인(1-63 nt, NCBI Reference Sequence ID: NM_001768.5); 최적화 VB4-845 항-EpCAM 항체의 경쇄 가변(VL) 영역(PCT/CA2008/001680); 및 중쇄 가변(VH) 영역(PCT/CA2008/001680); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
EpCAM-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 EpCAM-28-z와 동일하다.
EpCAM-30S-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 EpCAM-28-z와 동일하다.
EpCAM-28TM은 제1 신호전달 도메인과 제2 신호전달 도메인을 포함하지 않는 점을 제외하고 EpCAM-28-z와 동일하다.
EpCAM을 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2 신호-3
EpCAM-28-30S-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
EpCAM-28-BB-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
EpCAM-30S-BB-z CD8α VB4-845 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
EpCAM-28-30S-z는 인간 CD8α의 신호 서열 도메인(1-63 nt, NCBI Reference Sequence ID: NM_001768.5); 최적화 VB4-845 항-EpCAM 항체의 경쇄 가변(VL) 영역(PCT/CA2008/001680); 및 중쇄 가변(VH) 영역(PCT/CA2008/001680); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
EpCAM-28-BB-z는 제2 신호전달 도메인(보조자극 도메인)으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 EpCAM-28-30S-z와 동일하다.
EpCAM-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인(보조자극 도메인)으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 EpCAM-28-30S-z와 동일하다.
MSLN을 표적으로 하는 2세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2
MSLN(MOR)-28-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD3ζ
MSLN(MOR)-BB-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
MSLN(MOR)-30S-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
MSLN(MOR)-28-z는 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 nt, NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); MORAb-009 항-Mesothelin 항체의 중쇄 가변(VH) 영역(amatuximab, chimeric monoclonal antibody; gamma1 heavy chain, 1-119) 및 경쇄 가변(VL) 영역 (amatuximab, chimeric monoclonal antibody; kappa light chain 1-106); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
MSLN(MOR)-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 MSLN(MOR)-28-z와 동일하다.
MSLN(MOR)-30S-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)를 사용한 점을 제외하고 MSLN(MOR)-28-z와 동일하다.
MSLN을 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv 링커 힌지 TM 신호-1 신호-2 신호-3
MSLN(MOR)-28-30S-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
MSLN(MOR)-28-BB-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
MSLN(MOR)-30S-BB-z GM-CSF rec MORAb-009 (G4S)3 CD28 CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
MSLN(MOR)-28-30S-z은 인간 GM-CSF receptor의 신호 서열 도메인(1-66 nt, NCBI Reference Sequence ID: 001161531.2); MORAb-009 항-Mesothelin 항체의 중쇄 가변(VH) 영역(amatuximab, chimeric monoclonal antibody; gamma1 heavy chain, 1-119) 및 경쇄 가변(VL) 영역 (amatuximab, chimeric monoclonal antibody; kappa light chain 1-106); 인간 CD28 유래의 힌지(340-456 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2) 및 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
MSLN(MOR)-28-BB-z은 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137 (4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)을 사용한 점을 제외하고 MSLN(MOR)-28-30S-z와 동일하다.
MSLN(MOR)-30S-BB-z은 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)을 사용한 점을 제외하고 MSLN(MOR)-28-30S-z와 동일하다.
GPC3을 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 scFv TM 신호-1 신호-2 신호-3
GPC3-28-30S-z immunoglobulin heavy-chain GC33 CD28 CD28 CD30S CD3ζ
GPC3-28-BB-z immunoglobulin heavy-chain GC33 CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
GPC3-30S-BB-z immunoglobulin heavy-chain GC33 CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
GPC3-28-30S-z는 인간 면역글로불린 중쇄(immunoglobulin heavy-chain)의 신호 서열 도메인(1-57 nt, GenBank ID: AAC18316.1); GC33 항-GPC3 항체의 경쇄 가변(VL) 영역 및 중쇄 가변(VH) 영역(US2017/0281683); 인간 CD28 유래의 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
GPC3-28-BB-z는 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 GPC3-28-30S-z와 동일하다.
GPC3-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 GPC3-28-30S-z와 동일하다.
PD-L1을 표적으로 하는 2세대 CAR
약칭 신호 서열 ECD TM 신호-1 신호-2
PD-1-28-z PD-1 PD-1 PD-1 5aa+CD28 CD28 CD3ζ
PD-1-BB-z PD-1 PD-1 PD-1 5aa+CD28 4-1BB CD3ζ
PD-1-30S-z PD-1 PD-1 PD-1 5aa+CD28 CD30S CD3ζ
PD-1-28TM PD-1 PD-1 PD-1 5aa+CD28 - -
PD-1-28-z는 인간 PD-1의 신호서열 도메인(1-60 nt, NCBI Reference Sequence: NM_005018.2); 인간 PD-1의 세포외 도메인(61-510 nt, NCBI Reference Sequence: NM_005018.2); 인간 PD-1의 막관통 도메인(511-525 nt, NCBI Reference Sequence: NM_005018.2); 인간 CD28 유래의 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
PD-1-4-1BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전 달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 PD-1-28-z와 동일하다.
PD-1-30S-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3)을 사용한 점을 제외하고 PD-1-28-z와 동일하다.
PD-1-28TM은 제1 신호전달 도메인 및 제2 신호전달 도메인이 없는 것을 제외하고 PD-1-28-z와 동일하다.
PD-L1을 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 ECD 힌지 TM 신호-1 신호-2 신호-3
PD-1-28-30S-z PD-1 PD-1 CD28 PD-1 5aa +CD28 CD28 CD30S CD3ζ
PD-1-28-BB-z PD-1 PD-1 CD28 PD-1 5aa +CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
PD-1-30S-BB-z PD-1 PD-1 CD28 PD-1 5aa +CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
PD-1-28-30S-z는 인간 PD-1의 신호서열 도메인(1-60 nt, NCBI Reference Sequence:NM_005018.2); 인간 PD-1의 세포외 도메인(61-510 nt, NCBI Reference Sequence: NM_005018.2); 인간 PD-1의 막관통 도메인(511-525 nt, NCBI Reference Sequence: NM_005018.2); 인간 CD28 유래의 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포 내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
PD-1-28-BB-z는 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 PD-1-28-30S-z와 동일하다.
PD-1-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 PD-1-28-30S-z와 동일하다.
NKp30을 표적으로 하는 3세대 CAR
약칭 신호 서열 ECD TM 신호-1 신호-2 신호-3
NKp30-28-30S-z NKp30 NKp30 NKp30 5aa+CD28 CD28 CD30S CD3ζ
NKp30-28-BB-z NKp30 NKp30 NKp30 5aa+CD28 CD28 4-1BB CD3ζ
NKp30-30S-BB-z NKp30 NKp30 NKp30 5aa+CD28 CD30S 4-1BB CD3ζ
NKp30-28-30S-z는 인간 NKp30의 신호 서열 도메인 (1-54 nt, NCBI Reference Sequence ID: NM_147130.1); 인간 NKp30의 세포외 도메인(55-405 nt, NCBI Reference Sequence NM_147130.1); 인간 NKp30 유래의 막관통 도메인(406-420 nt, NCBI Reference Sequence: NM_147130.1); 인간 CD28 유래의 막관통 도메인(457-537 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인(538-660 nt, NCBI Reference Sequence: NM_006139.2); 인간 CD30 유래의 세포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3); 인간 CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(154-492 nt, 50th_Q deletion, NCBI Reference Sequence: NM_198053.2, 코돈 최적화)과 종결코돈 TAA가 연결된 것이다.
NKp30-28-BB-z는 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)을 사용한 점을 제외하고 NKp30-28-30S-z와 동일하다.
NKp30-30S-BB-z는 제1 신호전달 도메인으로 인간 CD30 유래의 세 포내 신호전달 도메인의 잘린 돌연변이체(1615-1785 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001243.3), 제2 신호전달 도메인으로 인간 CD137(4-1BB) 유래의 세포내 신호전달 도메인(640-765 nt, NCBI Reference Sequence: NM_001561.4, 코돈 최적화)를 사용한 점을 제외하고 NKp30-28-30S-z와 동일하다.
실시예에 기재된 키메라 항원 수용체 및 이의 제조에 사용된 도메인들의 서열 리스트
서열
번호
서열이름 서열에 대한 설명
1 GM-SCF rec LS nucleotide 인간 GM-CSF 수용체 신호 서열 도메인의 뉴클레오타이드 서열
2 GM-SCF rec LS amino acid 인간 GM-CSF 수용체 신호 서열 도메인의 아미노산 서열
3 CD19 VL nucleotide CD19 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
4 CD19 VL amino acid CD19 단일쇄 단편 가변- 경쇄 가변의 아미노산 서열
5 Linker nucleotide CD19 VL과 CD19 VH를 연결하는 링커의 뉴클레오타이드 서열
6 Linker amino acid CD19 VL과 CD19 VH를 연결하는 링커의 아미노산 서열
7 CD19 VH nucleotide CD19 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
8 CD19 VH amino acid CD19 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 아미노산 서열
9 Linker nucleotide CD19 scFv와 힌지를 연결하는 링커의 뉴클레오타이드 서열
(gcggccgca)
10 Linker amino acid CD19 scFv와 힌지를 연결하는 링커의 아미노산 서열(AAA)
11 CD28 Hinge nucleotide CD28 유래의 연결 도메인(Spacer Domain)의 뉴클레오타이드 서열
12 CD28 Hinge amino acid CD28 유래의 연결 도메인의 아미노산 서열
13 CD28 TM nucleotide CD28 유래의 막관통 도메인의 뉴클레오타이드 서열
14 CD28 TM amino acid CD28 유래의 막관통 도메인의 아미노산 서열
15 CD28 ICD nucleotide CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
16 CD28 ICD amino acid CD28 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
17 CD3z nucleotide CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(Δ301-303)의 뉴클레오타이드 서열
18 CD3z amino acid CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(Δ101)의 아미노산 서열
19 CD19-28-z nucleotide CD19-28-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
20 CD19-28-z amino acid CD19-28-z CAR 의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
21 CD8α Hinge nucleotide CD8α 유래의 연결 도메인의 뉴클레오타이드 서열
22 CD8α Hinge amino acid CD8α 유래의 연결 도메인의 아미노산 서열
23 CD30L ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 189aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
24 CD30L ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 189aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
25 CD3z nucleotide CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(Δ301-303)의 코돈 최적화된 뉴클레오타이드 서열
26 CD3z amino acid CD3z 유래의 세포내 신호전달 도메인(Δ101)의 코돈 최적화된 아미노산 서열
27 CD19-30L-z nucleotide CD19-30L-z CAR의 뉴클레오타이드 서열 (hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-CD30L ICD-CD3 zeta)
28 CD19-30L-z amino acid CD19-30L-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-CD30L ICD-CD3 zeta)
29 RSK nucleotide CD28 유래 3개 아미노산의 뉴클레오타이드 서열(aggagcaag)
30 RSK amino acid CD28 유래 3개 아미노산의 서열(RSK)
31 CD30M ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 95aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
32 CD30M ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 95aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
33 CD19-30M-z nucleotide CD19-30M-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-CD30M ICD-CD3 zeta)
34 CD19-30M-z amino acid CD19-30M-z CAR 의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-CD30M ICD-CD3 zeta)
35 CD30Mmut ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 95aa, 521_KQ) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
36 CD30Mmut ICDamino acid CD30(TNFRSF8, 95aa, 521_KQ) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
37 CD19-30Mmut-z nucleotide CD19-30Mmut-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-CD30Mmut ICD-CD3 zeta)
38 CD19-30Mmut-z amino acid CD19-30Mmut-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-CD30Mmut ICD-CD3 zeta)
39 CD30ΔM ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 73aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
40 CD30ΔM ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 73aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
41 CD19-30ΔM-z nucleotide CD19-30ΔM -z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-ΔCD30M ICD-CD3 zeta)
42 CD19-30ΔM-z amino acid CD19-30ΔM -z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8α Hinge-CD28 TM-RSK-ΔCD30M ICD-CD3 zeta)
43 CD30S ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 57aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
44 CD30S ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 57aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
45 CD30ΔS ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 45aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
46 CD30ΔS ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 45aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
47 CD30ΔSYN ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 45aa), CD28 (YMNM, 16aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
48 CD30ΔSYN ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 45aa), CD28 (YMNM, 16aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
49 CD30ΔSYF ICD nucleotide CD30(TNFRSF8, 45aa), CD28(YMFM, 16aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
50 CD30ΔSYF ICD amino acid CD30(TNFRSF8, 45aa), CD28(YMFM, 16aa) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
51 CD19-30S-z nucleotide CD19-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열 (hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8a Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
52 CD19-30S-z amino acid CD19-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-linker-CD19 VH-AAA-CD8a Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
53 (G4S)3 linker nucleotide CD19 VL과 CD19 VH를 연결하는 링커의 뉴클레오타이드 서열
54 (G4S)3 linker amino acid CD19 VL과 CD19 VH를 연결하는 링커의 아미노산 서열
55 CD19-30S-z nucleotide CD19-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열 (hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
56 CD19-30S-z amino acid CD19-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
57 CD19-CD30ΔS-z nucleotide CD19-CD30ΔS-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS ICD-CD3 zeta)
58 CD19-CD30ΔS-z amino acid CD19-CD30ΔS-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS ICD-CD3 zeta)
59 CD19-CD30ΔSYN-z nucleotide CD19-CD30ΔS YN-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS YN ICD-CD3 zeta)
60 CD19-CD30ΔSYN-z amino acid CD19-CD30ΔS YN-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS YN ICD-CD3 zeta)
61 CD19-CD30ΔSYF-z nucleotide CD19-CD30ΔS YF-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS YF ICD-CD3 zeta)
62 CD19-CD30ΔSYF-z amino acid CD19-CD30ΔS YF-z Chimeric Antigen Receptor의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30ΔS YF ICD-CD3 zeta)
63 CD19-28-z nucleotide CD19-28-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
64 CD19-28-z amino acid CD19-28-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
65 4-1BB(CD137) ICD nucleotide 4-1BB(CD137, TNFRSF9) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 코돈 최적화된 뉴클레오타이드 서열
66 4-1BB(CD137) ICDamino acid 4-1BB(CD137, TNFRSF9) 유래의 세포내 신호전달 도메인의 코돈 최적화된 아미노산 서열
67 CD19-BB-z nucleotide CD19-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
68 CD19-BB-z amino acid CD19-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
69 CD27 ICD nucleotide CD27 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
70 CD27 ICD amino acid CD27 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
71 hCD19-27-z nucleotide CD19-27-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD27 ICD-CD3 zeta)
72 hCD19-27-Z amino acid CD19-27-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD27 ICD-CD3 zeta)
73 ICOS ICD nucleotide ICOS 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
74 ICOS ICD amino acid ICOS 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
75 hCD19-ICOS-z nucleotide CD19-ICOS-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-ICOS ICD-CD3 zeta)
76 hCD19-ICOS-zamino acid CD19-ICOS-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-ICOS ICD-CD3 zeta)
77 OX40 ICD nucleotide OX40 유래의 세포내 신호전달 도메인의 뉴클레오타이드 서열
78 OX40 ICD amino acid OX40 유래의 세포내 신호전달 도메인의 아미노산 서열
79 hCD19-OX40-z nucleotide CD19-OX40-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-OX40 ICD-CD3 zeta)
80 hCD19-OX40-zamino acid CD19-OX40-z CAR의 아미노산 서열 (hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-OX40 ICD-CD3 zeta)
81 hCD19-28-BB-z nucleotide CD19-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
82 hCD19-28-BB-zamino acid CD19-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
83 hCD19-30S-BB-z nucleotide CD19-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
84 hCD19-30S-BB-zamino acid CD19-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
85 hCD19-28-30S-z nucleotide CD19-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28-CD30S-CD3 zeta)
86 hCD19-28-30S-Zamino acid CD19-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28-CD30S-CD3 zeta)
87 hCD19-30S-ICOS-Z nucleotide CD19-30S-ICOS-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-ICOS ICD-CD3 zeta)
88 hCD19-30S-ICOS-Zamino acid CD19-30S-ICOS-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD30S-RSK-CD27 ICD-CD3 zeta)
89 hCD19-30S-27-Z nucleotide CD19-30S-27-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD27 ICD-CD3 zeta)
90 hCD19-30S-27-Zamino acid CD19-30S-27-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD27 ICD-CD3 zeta)
91 hCD19-30S-OX40-Z nucleotide CD19-30S-OX40-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-OX40 ICD-CD3 zeta)
92 hCD19-30S-OX40-Zamino acid CD19-30S-27-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-CD19 VL-(G4S)3 linker-CD19 VH-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-OX40 ICD-CD3 zeta)
93 CD8α LS nucleotide 인간 CD8α 신호 서열 도메인의 뉴클레오타이드 서열
94 CD8α LS amino acid 인간 CD8α 신호 서열 도메인의 아미노산 서열
95 EpCAM VL nucleotide EpCAM 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
96 EpCAM VL amino acid EpCAM 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 아미노산 서열
97 EpCAM VH nucleotide EpCAM 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
98 EpCAM VH amino acid EpCAM 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 아미노산 서열
99 EpCAM-28-z nucleotide EpCAM-28-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
100 EpCAM-28-z amino acid EpCAM-28-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
101 EpCAM-BB-z nucleotide EpCAM-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-4-1BB ICD-CD3 zeta)
102 EpCAM-BB-z amino acid EpCAM-BB-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-4-1BB ICD-CD3 zeta)
103 EpCAM-30S-z nucleotide EpCAM-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
104 EpCAM-30S-z amino acid EpCAM-30S-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
105 EpCAM-28TM nucleotide EpCAM-28TM의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-AA)
106 EpCAM-28TM amino acid EpCAM-28TM의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker- EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-AA)
107 EpCAM-28-30S-z nucleotide EpCAM-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
108 EpCAM-28-30S-zamino acid EpCAM-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
109 EpCAM-28-BB-z nucleotide EpCAM-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
110 EpCAM-28-BB-zamino acid EpCAM-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
111 EpCAM-30S-BB-z nucleotide EpCAM-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
112 EpCAM-30S-BB-zamino acid EpCAM-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hCD8a LS-EpCAM VL-(G4S)3 linker-EpCAM VH-CD28 Hinge-CD28 TM- RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
113 PD-1 LS nucleotide 인간 PD-1 유래 신호서열 뉴클레오타이드 서열
114 PD-1 LS amino acid 인간 PD-1 유래 신호서열 아미노산 서열
115 PD-1 ECD nucleotide 인간 PD-1 유래 세포외 도메인의 뉴클레오타이드 서열
116 PD-1 ECD amino acid 인간 PD-1 유래 세포외 도메인의 아미노산 서열
117 PD-1 TM nucleotide 인간 PD-1 유래 막관통 도메인의 뉴클레오타이드 서열 15bp
118 PD-1 TM amino acid 인간 PD-1 유래 막관통 도메인의 아미노산 서열 5aa
119 PD-1-28-z nucleotide PD-1-28-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
120 PD-1-28-z amino acid PD-1-28-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
121 PD-1-BB-z nucleotide PD-1-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
122 PD-1-BB-z amino acid PD-1-BB-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
123 PD-1-30S-z nucleotide PD-1-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
124 PD-1-30S-z amino acid PD-1-30S-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
125 PD-1-28TM nucleotide PD-1-28TM의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-AA)
126 PD-1-28TM amino acid PD-1-28TM의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-AA)
127 PD-1-28-30S-z nucleotide PD-1-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
128 PD-1-28-30S-zamino acid PD-1-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
129 PD-1-28-BB-z nucleotide PD-1-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
130 PD-1-28-BB-zamino acid PD-1-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
131 PD-1-30S-BB-z nucleotide PD-1-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS-hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
132 PD-1-30S-BB-zamino acid PD-1-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hPD-1 LS-hPD-1 LS- hPD1TM5aa-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
133 MSLN(MOR) VH nucleotide Mesothelin 단일쇄 가변- 중쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
134 MSLN(MOR) VHamino acid Mesothelin 단일쇄 단편 가변
- 중쇄 가변의 아미노산 서열
135 MSLN(MOR) VL nucleotide Mesothelin 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
136 MSLN(MOR) VLamino acid Mesothelin 단일쇄 단편 가변
-경쇄 가변의 아미노산 서열
137 hMSLN(MOR)-28-znucleotide hMSLN(MOR)-28-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
138 hMSLN(MOR)-28-zamino acid hMSLN(MOR)-28-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD3 zeta)
139 hMSLN(MOR)-BB-znucleotide hMSLN(MOR)-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
140 hMSLN(MOR)-BB-zamino acid hMSLN(MOR)-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-4-1BB ICD-CD3 zeta)
141 hMSLN(MOR)-30S-znucleotide hMSLN(MOR)-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
142 hMSLN(MOR)-30S-zamino acid hMSLN(MOR)-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM- RSK-CD30S ICD-CD3 zeta)
143 hMSLN(MOR)-28-30S-znucleotide hMSLN(MOR)-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
144 hMSLN(MOR)-28-30S-z amino acid hMSLN(MOR)-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
145 hMSLN(MOR)-28-BB-znucleotide hMSLN(MOR)-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
146 hMSLN(MOR)-28-BB-zamino acid hMSLN(MOR)-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker-MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
147 hMSLN(MOR)-30S-BB-znucleotide hMSLN(MOR)-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
148 hMSLN(MOR)-30S-BB-zamino acid hMSLN(MOR)-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-MSLN(MOR) VH-(G4S)3 linker- MSLN(MOR) VL-CD28 hinge-CD28TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
149 NKp30 LS nucleotide 인간 NKp30 유래 신호서열(Leader sequence) 뉴클레오타이드 서열
150 NKp30 LS amino acid 인간 NKp30 유래 신호서열 아미노산 서열
151 NKp30 ECD nucleotide 인간 NKp30 유래 세포외 도메인의 뉴클레오타이드 서열
152 NKp30 ECD amino acid 인간 NKp30 유래 세포외 도메인의 아미노산 서열
153 NKp30 TM nucleotide 인간 NKp30 유래 막관통 도메인의 뉴클레오타이드 서열 15bp
154 NKp30 TM amino acid 인간 NKp30 유래 막관통 도메인의 아미노산 서열 5aa
155 NKp30-28-30S-z nucleotide NKp30-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
156 NKp30-28-30S-z amino acid NKp30-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
157 NKp30-28-BB-z nucleotide NKp30-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
158 NKp30-28-BB-zamino acid NKp30-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
159 NKp30-30S-BB-z nucleotide NKp30-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
160 NKp30-30S-BB-zamino acid NKp30-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hNKp30 LS-hNKp30 ECD-hNKp30 TM 5aa-CD28TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
161 Ig LS nucleotide 인간 면역글로불린 중쇄 유래의 신호 서열(leader sequence)의 뉴클레오타이드 서열
162 Ig LS amino acid 인간 면역글로불린 중쇄 유래의 신호 서열의 아미노산 서열
163 GPC3 VH nucleotide Glypican3 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
164 GPC3 VH amino acid Glypican3 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 아미노산 서열
165 GPC3 VL nucleotide Glypican3 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
166 GPC3 VL amino acid Glypican3 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 아미노산 서열
167 GPC3-28-30S-znucleotide GPC3-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(immunoglobulin heavy-chain LS-Glypican3 VH-(G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
168 GPC3-28-30S-zamino acid GPC3-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(immunoglobulin heavy-chain LS-Glypican3 VH-(G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
169 GPC3-28-BB-znucleotide GPC3-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(immunoglobulin heavy-chain LS-Glypican3 VH-(G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
170 GPC3-28-BB-zamino acid GPC3-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(immunoglobulin heavy-chain LS -Glypican3 VH- (G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
171 GPC3-30S-BB-znucleotide GPC3-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(immunoglobulin heavy-chain LS -Glypican3 VH- (G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
172 GPC3-30S-BB-zamino acid GPC3-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(immunoglobulin heavy-chain LS -Glypican3 VH- (G4S)3 linker- Glypican3 VL-AAA-CD28 hinge-CD28TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
173 BCMA VH nucleotide BCMA 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
174 BCMA VH amino acid BCMA 단일쇄 단편 가변-중쇄 가변의 아미노산 서열
175 BCMA VL nucleotide BCMA 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 뉴클레오타이드 서열
176 BCMA VL amino acid BCMA 단일쇄 단편 가변-경쇄 가변의 아미노산 서열
177 BCMA-28-30S-z nucleotide BCMA-28-30S-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
178 BCMA-28-30S-z amino acid BCMA-28-30S-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-CD30S ICD-CD3 zeta)
179 BCMA-28-BB-z nucleotide BCMA-28-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
180 BCMA-28-BB-z amino acid BCMA-28-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-CD28 ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
181 BCMA-30S-BB-z nucleotide BCMA-30S-BB-z CAR의 뉴클레오타이드 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
182 BCMA-30S-BB-z amino acid BCMA-30S-BB-z CAR의 아미노산 서열(hGMCSF rec LS-BCMA VH-(G4S)3 linker-BCMA VL-AAA-CD28 Hinge-CD28 TM-RSK-CD30S ICD-4-1BB ICD-CD3 zeta)
(mRNA 합성)
MN NucleoBond Xtra Midi Plus Endotoxin free 키트를 사용하여 상기의 플라스미드 벡터를 증폭하였다. 증폭한 플라스미드 벡터는 제한효소를 이용하여 선형화하였다. 선형화 된 플라스미드를 주형으로 mRNA를 시험관내 전사(In Vitro Transcription)를 통해 생산하였다. MEGAscript® Kit(AM1330, AMBION)를 이용하여 Transcription 과정을 진행한후 DNase 처리하였고 Poly(A) Tailing kit(AM1350, AMBION)를 이용한 3'polyA tailing을 통해 mRNA를 최종 생산하였다. mRNA를 40㎍/tube로 분주 후 nanodrop 장비와 tapestation 장비를 이용하여 농도와 품질을 확인하였다. mRNA 생성물은 -80℃에서 보관 후 CAR evaluation에 사용하였다.
(유전자 전달 (전기천공법))
KHYG-1 세포, NK-92 세포에 CAR 유전자를 도입하기 위해, 1Х107 개의 세포를 1500 rpm 에서 3 분간 원심분리 한다. 원심분리가 끝나면 배양액 opti-MEM 300 ㎕로 재부유한다. 세포에 CAR mRNA 40 ㎍ 을 넣고 200 V, 2 ms, 1 회의 조건으로 전기천공법을 실시하였다. 알파베타 T 세포, 감마델타 T 세포는 상기와 같은 수의 세포에 40 ㎍ mRNA를 380 V, 1 ms, 1 회의 조건으로 CAR 유전자를 도입하였다.
(CAR 발현 검출)
NK-92, KHYG-1, 알파베타 T 세포, 감마델타 T 세포에 도입된 항-CD19 CAR, 항-EpCAM CAR를 검출하기 위해 4% bovine serum albumin(BSA) 완충액을 사용하여 세척한 후, Protein L 또는 인간 Fab 항체를 사용하여 30 분간 염색하였다. 반응시간이 끝나면 4% BSA 완충액으로 세척한 후 2% PFA 용액으로 고정하였다. Protein L 로 염색한 그룹은 Streptavidin-PE 항체를 사용하여 25 분간 더 염색한 후, 4% BSA 완충액으로 세척 및 2% PFA 용액으로 고정하였다. 항-BCMA CAR, 항-MSLN CAR, 항-GPC3 CAR의 검출은 쥐 Fab 항체를 사용하여 상기와 같은 방법으로 염색하였다. PD-1 CAR의 검출은 인간 항-PD-1 항체를 사용하였다. 또한, NKp30 CAR는 인간 항-NKp30 항체를 사용하였다. 염색된 세포들의 발현비율은 aurora(Cytek) 장비를 사용하여 측정되었다.
(루시퍼레이즈 (luciferease) 기반 세포독성)
루시퍼레이즈 유전자가 도입된 표적 세포들을 96-well 플레이트에 50 ul 가 되도록 1Х104 cells/well 로 넣었다. CAR 유전자가 도입된 효과 세포는 다양한 E/T (effector-to-target) 비율로 50 ㎕ 넣고, 37℃ 세포배양기에서 반응하였다. 4 시간 반응 후, Bright-Glo 용액을 100 ㎕ 넣고 500 rpm으로 2 분간 진탕배양 하였다. 배양이 끝나면 반응 용액을 파이펫으로 잘 섞어주고, 100 ㎕를 흰색 불투명 96-well 에 옮긴 후 마이크로 플레이트 리더기로 파장 및 파장에서 형광 값을 측정하였다. 세포독성은 다음과 같이 계산되었다: percent specific lysis = 100-target with effector/only target x 100.
(사이토카인)
표적세포들은 120 Gy X-선을 조사한 후, 96-well 플레이트에 100 ㎕가 되도록 1Х105 cells/well 로 넣었다. E/T 비율이 1 이 되도록, CAR 유전자가 도입된 효과 세포 역시 1Х105 cells/well 로 넣어주었다. 37℃ 세포배양기에서 24 시간 동안 반응시킨 후, 플레이트를 1500 rpm 에서 5 분간 원심분리 하고, 150 ㎕의 상층액을 수집하였다. 인간 CD8/NK multi-analyte flow assay 키트(BioLegend, SD, USA)의 실험 방법에 따라 분비된 사이토카인의 양을 측정하였다.
<실험예 1> 다양한 형태의 CD30 도메인을 보조자극 도메인으로 사용하는 CAR를 발현하는 여러 면역세포의 CD19 음성 및 양성 혈액암 세포주에 대한 세포독성 평가
면역세포의 항종양 효능을 증가시켜줄 수 있는 보조자극 도메인으로서 최적의 CD30 도메인을 찾기 위해, 상기 실시예 플라스미드를 표 1 에 언급된 구조로 인간 CD19 항원을 표적으로 하면서 CD30 도메인을 포함하는 2세대 CAR를 제작하였다(도 1a). 제작된 2세대 CAR는 다음과 같다: CD19-30L-z(CD30 서열의 1219-1785 nt), CD19-30M-z(CD30 서열의 1501-1785 nt), CD19-30Mmut-z(CD30 서열의 1501-1785 nt 중 521 번 아미노산 리신을 글루타민으로 변경, 521 K→Q), CD19-30ΔM-z(CD30 서열의 1501-1785 nt 중 Δ1615-1677 nt 결실, D1615-1677), CD19-30S-z(CD30 서열의 1615-1785 nt).
상기 CAR mRNA를 자연살해세포주인 KHYG-1와 NK-92 뿐만 아니라 알파베타 T 세포, 감마델타 T 세포에 도입하여, 다양한 면역세포에서의 발현 및 항종양 효능을 확인하였다.
모든 면역세포에서 CD19-28-z 와 CD19-30L-z, CD19-30S-z 는 높은 수준으로 발현되었으나 CD19-30M-z, CD19-30Mmut-z, CD19-30ΔM-z 는 거의 발현되지 않았다(도 1c).
CD19 음성 및 양성 혈액암 세포주들에 대한 세포독성 효능 평가에서는 CD19-28-z 와 CD19-30S-z 만이 CD19 양성 암세포주를 특이적으로 살해하였다(도 1d).
따라서, 본 발명자들은 CD30S를 최적의 보조자극 도메인으로 선정하여 후속 실험을 진행하였다.
<실험예 2> 변형된 형태의 CD30S 도메인을 보조자극 도메인으로 사용하는 CAR를 발현하는 여러 면역세포의 CD19 음성 및 양성 혈액암 세포주에 대한 세포독성 평가
상기 실험에서 다양한 형태의 CD30 도메인을 포함하는 CAR 구조 중에서 CD30S를 포함하는 CAR 구조만 다양한 면역세포에서 안정적으로 발현되었고, 우수한 항종양 효능을 나타냈다. 본 발명자들은 향후 CD30S 도메인을 이용한 3세대 CAR 형태나 인터류킨, 케모카인 수용체 등과의 조합을 보다 용이하게 하기 위해, CD30S 도메인을 보다 작은 형태인 CD30ΔS로 제작한 후 항종양 효능을 평가하였다. 도 2a와 같이, CD19-28-z, CD19-30L-z, CD19-30S-z, CD19-CD30ΔS-z(CD30 서열의 1630-1764 nt) mRNA를 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 전기천공법을 통해 도입시킨 후 CD19 양성 및 음성 암세포주에 대한 세포독성 효능을 평가하였다.
CD19-28-z와 CD19-30S-z는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포 모두에서 안정적으로 발현하였으며 높은 세포사멸능을 나타냈다. CD19-CD30ΔS-z는 알파베타 T 세포에 비해 감마델타 T 세포에서는 발현이 비교적 낮았지만, 두 세포 모두 CD19 양성 혈액암 세포를 효과적으로 사멸시켰다(도 2b 및 2c).
다음으로는, CD30ΔS 도메인의 기능을 더욱 향상시키기 위해, 기존의 보조자극 도메인 CD28과 ICOS가 각각 가지고 있는 phosphoinositide 3-kinase 결합부위 YMNM, YMFM을 CD30ΔS에 추가한 후 항종양 효능을 평가하였다. CD19-28-z, CD19-30S-z, CD19-CD30ΔSYN-z (CD30 서열의 1630-1764 nt와 CD28 서열의 562-609 nt 연결), CD19-CD30ΔSYF-z(CD30 서열의 1630-1764 nt와 CD28 서열의 562-609 nt 중 193 번의 아스파라긴이 페닐알라닌으로 변경된 형태의 연결, N→F) mRNA를 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 도입시켰다.
CD19- CD30ΔSYN-z, CD19-CD30ΔSYF-z CAR 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었으며, 기존의 CD19-28-z, CD19-30S-z CAR가 도입된 T 세포들과 유사한 세포독성 효능이 확인되었다(도 2d 및 2e).
<실험예 3> CD30S 또는 기존 세포내 신호전달 도메인을 보조자극 도메인으로 사용하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 CD19 음성 및 양성 혈액암 세포주에 대한 세포독성 및 사이토카인 분비능 비교
CD30S 또는 기존 ICD(CD28, 4-1BB, CD27, ICOS, OX40)를 보조자극 도메인으로 사용하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포가 특이적으로 암세포를 사멸하는지 확인하기 위해, CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CD19-27-z, CD19-ICOS-z, CD19-OX40-z, CD19-30S-z CAR mRNA를 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 전기천공법을 통해 도입시켰다(도 3a).
CD19-ICOS-z, CD19-OX40-z를 제외한 나머지 CAR 들은 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었다. CD19 양성 암세포주 U937CD19, IM-9, Raji 에 대해 CD19-30S-z CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포 모두 기존 ICD를 포함하는 CAR를 발현하는 세포들과 유사한 세포독성 효능이 확인되었다. 반면, 상기 CAR들은 CD19 음성 세포주 U937mock에 대해서는 CAR 유전자가 도입되지 않은 그룹 (NT)와 유사한 정도로, 세포살해능을 거의 나타내지 않았다(도 3b 내지 3d).
또한 상기의 항-CD19 2세대 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포를 각각 CD19 양성 U937CD19와 음성 U937mock 과 함께 배양한 후 분비된 사이토카인 IFN-γ, TNF-α, granzyme A, granzyme B, perforin 의 양을 측정하였다.
알파베타 T 세포에서는 상기 사이토카인을 CD19-30S-z CAR는 CD19-28-z 보다 적게, CD19-4-1BB-z 와 비슷한 양을 분비하였다. 반면 감마델타 T 세포에서 CD19 양성 세포주에 대해 CD19-30S-z CAR는 CD19-28-z 보다는 적고 CD19-4-1BB-z보다는 많은 양의 IFN-γ, TNF-α를 분비하였다. CD19-30S-z는 CD19-28-z와 유사한 정도로 granzyme A, granzyme B, perforin을 분비하였다(도 3e).
<실험예 4> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 3세대 형태의 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 CD19 음성 및 양성 혈액암 세포주에 대한 세포독성 및 사이토카인 분비능 비교
두 개의 보조자극 도메인 중 하나는 CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하면서 다른 하나는 기존 ICD(CD28, 4-1BB, CD27, ICOS, OX40)를 보조자극 도메인으로 사용하는 3세대 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포가 항원 특이적으로 반응하는지 확인하기 위해, 상기 실시예 플라스미드에 언급된 구조로 CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-27-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z mRNA를 제작하였다(도 4a).
전기천공법을 이용하여 상기 항-CD19 3세대 CAR mRNA를 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 도입시켰고, 모든 CAR 들이 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었다(도 4b).
또한, CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 CAR(CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z, CD19-30S-27-z, CD19-30S-ICOS-z, CD19-30S-OX40-z)들은 기존 CD19-28-BB-z와 유사하게 CD19 양성 세포주 U937CD19, IM-9, Raji 에 대한 특이적인 세포 살해능이 확인되었다. 반면, CD19 음성 세포주 U937mock에 대해서는 세포 살해능을 보이지 않았다(도 4c).
또한, CD19-28-BB-z, CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포를 각각 U937mock, U937CD19과 함께 배양한 후 분비된 사이토카인의 양을 측정하였다.
알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포 모두에서 CD19 양성 U937CD19에 대해 CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 CD19-30S-BB-z, CD19-28-30S-z CAR가 CD19-28-BB-z 보다 많은 양의 IFN-γ, TNF-α, granzyme A, granzyme B 를 분비하였다(도 4d).
<실험예 5> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 BCMA 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 감마델타 T 세포의 인간 혈액암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 혈액암에서 발현되는 BCMA를 표적으로 하는 CAR 에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 BCMA-28-BB-z, BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z mRNA를 합성하였다(도 5a). 또한, 인간 혈액암 세포주 U937, IM-9, Daudi에서의 인간 BCMA 발현을 측정하였다. U937에서는 BCMA가 발현되지 않았고, IM-9 과 Daudi에서는 BCMA 가 발현되었다(도 5b).
BCMA-28-BB-z, BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z mRNA를 전기천공법을 이용하여 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다. CD30S를 포함하는 BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z는 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었으나, BCMA-28-BB-z는 매우 낮게 발현되었다(도 5c). BCMA-30S-BB-z, BCMA-28-30S-z를 발현하는 감마델타 T 세포는 BCMA 양성 세포주 IM-9과 Daudi에 대해 높은 세포 살해능을 나타내었고, BCMA 음성 세포주 U937 에 대해서는 세포 살해능을 보이지 않았다(도 5d).
<실험예 6> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 EpCAM 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 인간 고형암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 고형암에서 발현되는 EpCAM을 표적으로 하는 CAR 에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예 플라스미드에 언급된 구조로 EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM mRNA를 합성하였다. 또한, 인간 폐암 세포주 A549, Calu-1, NCI-H292, NCI-H460에서의 인간 EpCAM 발현을 측정하였다. 폐암 세포주 A549, Calu-1, NCI-H292, NCI-H460에서 EpCAM이 70% 이상으로 발현되었다. EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM mRNA를 전기천공법을 이용하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다(도 6a).
EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z, EpCAM-28TM 키메라 항원 수용체 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 높게 발현되었다(도 6B). EpCAM-28-z, EpCAM-4-1BB-z, EpCAM-30S-z를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포 모두 EpCAM을 발현하는 폐암 세포주에 대해 유사한 세포 살해능이 평가된 반면, CAR를 도입하지 않은 그룹 (NT)과 EpCAM-28TM을 도입한 그룹은 세포 살해능이 나타나지 않았다(도 6c 및 6d).
또한, EpCAM을 표적으로 하는 3세대 CAR에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 EpCAM-28-BB-z, EpCAM-30S-BB-z, EpCAM-28-30S-z mRNA를 합성하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다(도 6e).
EpCAM-28-BB-z, EpCAM-30S-BB-z, EpCAM-28-30S-z 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었다(도 6f). 상기 EpCAM 3세대 CAR가 도입된 알파베타 T 세포는 A549, Calu-1, NCI-H292, NCI-H460에 대한 우수한 세포독성 효능이 평가되었다. 감마델타 T 세포에서 역시 상기 EpCAM CAR 들이 EpCAM 양성 폐암 세포주를 효과적으로 살해하였다(도 6g).
<실험예 7> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 메소텔린 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 인간 고형암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 고형암에서 발현되는 메소텔린을 표적으로 하는 CAR에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 인간 폐암 세포주 A549, NCI-H292, 인간 췌장암 세포주 AsPC-1, 인간 난소암 세포주 SKOV3에서의 인간 메소텔린 발현을 측정하였다. 폐암 세포주 NCI-H292와 췌장암 세포주 AsPC-1 에서는 메소텔린이 높게 발현되었고, 폐암 세포주 A549 와 난소암 세포주 SKOV3 에서는 적게 발현되었다(도 7b). 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z, MSLN-30S-z mRNA를 합성하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다(도 7a).
상기의 항-메소텔린 2세대 CAR 들은 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 높은 수준으로 발현되었다(도 7c). MSLN-28-z 와 MSLN-4-1BB-z CAR가 도입된 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포가 메소텔린 양성 NCI-H292, AsPC-1에 대해서만 세포독성 효능이 확인되었다. MSLN-30S-z CAR가 도입된 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포는 MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z CAR 보다는 조금 낮은 세포독성 효능이 평가되었다. MSLN-28-z, MSLN-4-1BB-z, MSLN-30S-z CAR 모두 메소텔린을 발현하는 세포주에만 특이적으로 세포독성 효능을 나타내는 것을 확인하였다(도 7d).
또한, 메소텔린을 표적으로 하는 3세대 CAR에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예 플라스미드에 언급된 구조로 MSLN-28-BB-z, MSLN-30S-BB-z, MSLN-28-30S-z mRNA를 합성한 후 전기천공법을 이용하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다(도 7e). MSLN-28-BB-z, MSLN-30S-BB-z, MSLN-28-30S-z CAR 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 높게 발현되었다(도 7f). NT 그룹을 제외한 나머지 MSLN-CAR 알파베타 T 세포의 경우 NCI-H292 에 대해서만 세포 살해능을 나타내었고, AsPC-1, SKOV3, A549 에 대해서는 세포 살해능을 나타내지 않았다. 감마델타 T 세포에서는 상기 항-메소텔린 3세대 CAR 들이 메소텔린을 높게 발현하는 NCI-H292 와 AsPC-1 만을 선택적으로 살해하였다(도 7g).
<실험예 8> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 GPC3 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 감마델타 T 세포의 인간 고형암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 고형암에서 발현되는 GPC3 를 표적으로 하는 CAR 에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z mRNA를 합성하였다(도 8a). 인간 간암 세포주 HepG2, 인간 폐암 세포주 NCI-H292, A549 에서의 인간 GPC3 발현을 측정하였다. GPC3는 간암 세포주 HepG2 에서는 발현하였으나, 폐암 세포주 NCI-H292 와 A549 에서는 발현하지 않았다(도 8b).
GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z mRNA는 전기천공법을 이용하여 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다. GPC3-28- BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z CAR 모두 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었다(도 8c). GPC3-28-BB-z, GPC3-30S-BB-z, GPC3-28-30S-z CAR를 발현하는 감마델타 T 세포는 GPC3 양성 세포주 HepG2에 대해서만 특이적인 세포 살해능이 확인되었으며, 음성 세포주 NCI-H292 와 A549 에서는 살해능을 나타내지 않았다(도 8d).
<실험예 9> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 PD-L1 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 인간 고형암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 고형암에서 발현되는 PD-L1을 표적으로 하는 CAR에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM mRNA를 합성하였다(도 9a). 폐암 세포주 NCI-H292, Calu-1, 췌장암 세포주 AsPC-1, 두경부암 세포주 FaDu 에서의 인간 PD-L1 발현을 측정하였다. 모든 세포주에서 PD-L1 이 높게 발현하였다(도 9b). PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM mRNA를 전기천공법을 이용하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다. PD-1-28-z, PD-1-4- 1BB-z, PD-1-30S-z, PD-1-28TM CAR 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 높게 발현되었다(도 9c). 알파베타 T 세포의 경우 NT 와 PD-1-28TM CAR T 세포를 제외한 CAR 들은 NCI-H292 와 Calu-1 에 대해서만 세포 살해능을 나타냈다. 반면 감마델타 T 세포에서는 상기의 CAR(PD-1-28-z, PD-1-4-1BB-z, PD-1-30S-z)들이 NCI-H292, Calu-1, FaDu 를 선택적으로 살해하였다. 모든 PD-1 CAR는 PD-L1 양성 세포주인 AsPC-1 에 대해서는 살해능을 나타내지 않았다(도 9d).
또한, PD-L1을 표적으로 하는 3세대 CAR에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 PD-1-28-BB-z, PD-1-30S-BB-z, PD-1-28-30S-z mRNA를 합성한 후 전기천공법을 이용하여 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다(도 9e). PD-1-28-BB-z, PD-1-30S-BB-z, PD-1-28-30S-z CAR 모두 감마델타 T 세포에서 높게 발현되었다(도 9f). PD-1 2세대 CAR 가 도입된 감마델타 T 세포의 세포독성 실험결과와 유사하게 상기 PD-1 3세대 CAR가 도입된 감마델타 T 세포는 NCI-H292, Calu-1, FaDu를 선택적으로 살해하였으며, AsPC-1에 대해서는 살해능을 나타내지 않았다(도 9g).
<실험예 10> CD30S를 보조자극 도메인으로 사용하는 인간 B7-H6 항원을 표적으로 하는 CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포의 인간 고형암 세포주에 대한 세포독성 평가
인간 고형암에서 발현되는 B7-H6을 표적으로 하는 CAR 에서의 CD30S 보조자극 도메인의 효능을 평가하기 위해, 상기 실시예에서 언급된 플라스미드 구조로 NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z mRNA를 합성하였다(도 10a). 인간 림프종 세포주 U937, K562, 인간 버킷림프종 세포주 Raji, 인간 폐암 세포주에서의 인간 B7-H6 발현을 측정하였다. A549 에서는 B7-H6 가 발현되지 않았고, U937, Raji, K562 에서는 B7-H6 가 70% 이상 발현되었다(도 10b).
NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z mRNA 는 전기천공법을 이용하여 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에 각각 도입시켰다. NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28-30S-z CAR 모두 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포에서 안정적으로 발현되었다(도 10c). NKp30-28-BB-z, NKp30-30S-BB-z, NKp30-28- 30S-z CAR를 발현하는 알파베타 T 세포와 감마델타 T 세포 모두 B7-H6 양성 세포주 U937, Raji, K562 에 대해 특이적인 세포 살해능이 확인되었으며, 음성 세포주 A549 에서는 살해능을 나타내지 않았다(도 10d).
<실험예 11> 인간 백혈병 세포주 NALM6를 이종이식한 동물모델에서 CD30S와 기존 ICD(CD28, 4-1BB)간의 조합에 따른 2세대 CD19-CAR 발현 T세포의 치료적 항종양효과
2세대 CD19-CAR 발현 T세포의 항종양능 평가 및 실험 방법은 다음과 같다.
(마우스, 세포주)
6 주령된 암컷 NOG(NOD.Cg-Prkdc scid Il2rg tm1sug/JicKoat) 마우스는 Koatech inc.(Pyeongtaek, Kyunggi)에서 구입하였고, 무균 조건 하에서 가톨릭대학교 동물실험실에서 사육하였다. 동물 연구의 모든 과정은 서울 가톨릭대학교(Approval number: CUMS-2022-0285-02) 의과대학 IACUC(Institutional Animal Care and Use Committee)에서 제공받은 설치류 실험에 대한 가이드라인 및 정책, 실험동물의 관리 및 이용에 대한 가이드, 실험동물 복지법에 따라 수행되었다. NALM6 세포는 American Type Culture Collection (Manassas, VA)에서 구입하였으며 모든 세포주는 제조사의 권장에 따라 배양되었다.
(치료적 항종양 효과의 평가)
생체 내에서 치료 효과를 평가하기 위해, 마우스 꼬리에 1x106 NALM-6-luc-thy1.1 세포를 정맥투여 후 7일째에 1x107 CD19-CAR-αβ T세포를 1회 정맥 투여하였다. 세포치료 받지 않은 마우스(No Treat)를 대조군으로 포함시켰다. 종양 성장은 개별 마우스에서 생체 내 생물 발광 영상화의 시간경과에 의해 모니터링되었고 고정된 시간에 동물 체중을 측정하여 체중이 20% 이상 감소한 마우스는 승인된 실험동물계획서에 따라 안락사시켰다.
IVIS Lumina XRMS(생체 내 발광 생물 이미징)을 사용하여 전체 동물에서 생물 발광을 검출하여 시간 경과에 따라 종양 성장을 모니터링하였다. Luciferin(Promega, P1043)을 멸균 생리식염수를 사용하여 15 mg/mL로 준비하고 -80℃ 냉동고에 보관하여 사용시 37℃로 녹여서 사용하였다. 생물 발광을 확인하기 위해, 마우스는 luciferin 3 mg/200 ㎕을 복강내 주사를 받고 7-8 분의 반응시간 동안 대기하였다. 반응시간이 끝난 마우스는 빛이 새지 않는 챔버에서 생물 발광을 측정하며 노즈 콘 이소플루오란 산소전달 장치를 통해 전체 이미징 과정 동안 마취를 유지하였다. 종양 성장 이미지 분석은 개별 마우스에서 생체 내 생물 발광의 평균 광도로 정량화하여 평가하였다.
도 11a-b에 도시된 바와 같이, 인간 백혈병 세포주 NALM6를 이종이식한 동물모델을 확립하여 CD19를 표적으로 하는 CD30S 또는 기존 보조자극 도메인으로 사용하는 2세대 CAR가 형질도입된 αβ T세포 치료제의 생체내 효능을 평가한 결과, CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CD19-30S-z CAR-αβ T세포의 항종양 효과는 형질도입 되지 않은 αβ T세포 치료제와 비교하여 종양성장이 지연되고 생존력이 증가하는 치료적 이점을 나타내었다. 그 중 CD19-30S-z CAR-αβ T세포 치료군이 CD19-28-z, CD19-4-1BB-z, CAR-αβ T세포 치료군보다 실질적으로 더 높은 항종양 효과를 가졌으며 이때, 유의한 독성은 관찰되지 않았다.

Claims (12)

  1. 표적 항원 결합 도메인;
    막관통 도메인;
    SEQ ID NO: 44, 46, 48 및 50으로 구성된 군에서 선택된 하나 이상의 아미노산 서열을 포함하는 C30 유래의 세포내 신호전달 도메인; 및
    CD3ζ 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체.
  2. 제1항에 있어서,
    표적 항원 결합 도메인은 표적 항원에 특이적으로 결합하는 항체 또는 이의 단편을 포함하는, 키메라 항원 수용체.
  3. 제1항에 있어서,
    표적 항원은 CD19, MUC16, MUC1, CAIX, CEA, CDS, CD7, CD10, CD20, CD22, CD30, CD33, CD34, CD38, CD41, CD44, CD49f, CD56, CD74, CD133, CD138, BCMA, PD-1, NKp30, 사이토메갈로바이러스(CMV) 감염된 세포 항원, EGP-2, EGP-40, EpCAM, Erb-B2, Erb-B3, Erb-B4, FBP, 태아 아세틸콜린 수용체, 폴레이트 수용체-α, GD2, GD3, HER-2, hTERT, IL-13R-α2, κ-경쇄, KDR, LeY, L1 세포 부착 분자, MAGE-A1, 메소텔린, NKG2D 리간드, NY-ESO-1, 암태아 항원(h5T4), PSCA, PSMA, ROR1, TAG-72, VEGF-R2, WT-1, CD24, CD47, EGFR, CD123, GPC3, CD117, Claudin18.2, cMET, EphA2, CLL-1, CD171, AXL, ROR2, FAP 및 CD5로 구성된 군에서 선택되는, 키메라 항원 수용체.
  4. 제1항에 있어서,
    막관통 도메인은 CD8, 4-1BB, CD27, CD28, CD30, 0X40, CD3e, CD3ζ, CD45, CD4, CD5, CD9, CD16, CD22, CD33, CD37, CD64, CD80, CD86, CD134, CD137, CD154 및 ICOS(CD278)로 구성된 군에서 선택된 TCR 공동 수용체 또는 T 세포 보조자극분자의 막관통 도메인 또는 이들로부터 유래하는, 키메라 항원 수용체.
  5. 제1항에 있어서,
    키메라 항원 수용체는 표적 항원 결합 도메인의 C-말단 및 막관통 도메인의 N-말단 사이에 힌지 부위(hinge region)를 더 포함하는, 키메라 항원 수용체.
  6. 제1항에 있어서,
    키메라 항원 수용체는 CD27, CD28, 4-1BB(CD137), 0X40, CD40, ICOS, LFA-1(lymphocyte function-associated antigen-1), CD2, CD7, NKG2C, CD83, Dap10, GITR, OX40L, Myd88-CD40 및 KIR2DS2로 구성된 군에서 선택된 세포내 신호전달 도메인을 더 포함하는, 키메라 항원 수용체.
  7. 제1항에 있어서,
    키메라 항원 수용체는 표적 항원 결합 도메인의 N-말단에 신호 펩타이드를 더 포함하되, 상기 신호 펩타이드는 GM-CSF 수용체 신호 서열, CD8α 신호 서열, 면역글로불린 중쇄 신호 서열, PD-1 신호 서열 및 NKp30 신호 서열로 구성된 군에서 선택되는, 키메라 항원 수용체.
  8. 제1항의 키메라 항원 수용체를 인코딩하는 핵산 분자.
  9. 제7항의 핵산 분자를 포함하는 벡터.
  10. 제1항의 키메라 항원 수용체, 제8항의 핵산 분자 또는 제9항의 벡터를 포함하는 분리된 면역 효과기 세포.
  11. 제10항에 있어서,
    면역 효과기 세포는 αβ T 세포, γδ T 세포, NK 세포, NK T 세포 또는 대식세포인 면역 효과기 세포.
  12. 제10항의 면역 효과기 세포를 포함하는 항종양 조성물.
KR1020230041676A 2022-03-30 2023-03-30 Cd30 유래의 세포내 신호전달 도메인을 포함하는 키메라 항원 수용체, 이를 발현하는 면역세포 및 이들의 용도 KR20230143108A (ko)

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