KR20230039789A - 자연살해세포의 제조방법 및 이의 감염성 질환 예방 또는 치료 용도 - Google Patents

자연살해세포의 제조방법 및 이의 감염성 질환 예방 또는 치료 용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 세포에 복합 전사인자를 도입하고, 사이토카인, 성장인자 및 저분자 화합물의 최적화된 조성물을 이용하여 NK 세포 생산 효율이 개선된 유도 자연살해(induced natural killer; iNK) 세포 리프로그래밍 방법 및 이를 이용한 iNK 세포 제조 방법에 관한 것이다. 본 발명은 또한, 상기 방법에 의해 제조된 iNK 세포를 포함하는 바이러스, 세균 및 곰팡이 등으로 인한 감염성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제 및 조성물에 관한 것이다.

Description

자연살해세포의 제조방법 및 이의 감염성 질환 예방 또는 치료 용도{Method for producing induced natural killer cells and their use for preventing or treating infectious diseases}
본 발명은 직접 리프로그래밍을 이용한 자연살해세포 제조방법 및 이의 감염성 질환 예방 또는 치료 용도에 관한 것이다.
바이러스, 세균, 진균, 기생충 등의 병원체에 의해 매개되는 '감염성 질환'은 신종 병원체가 지속적으로 출현하면서 이에 대응할 수 있는 적절한 치료법이 없는 경우 치명적인 결과를 초래할 수 있다는 우려가 높아지고 있다.
NK(Natural killer) 세포는 선천 및 후천 면역 반응에 중요한 역할을 하는 림프구계 혈액세포의 하나로, 특히 바이러스, 세균(박테리아), 곰팡이, 기생충 등의 감염 세포 등 비정상 세포를 인지하여 즉각적으로 제거하는데 기능을 가지고 있어 이러한 기능을 이용한 치료제 개발 연구에 대한 관심이 높아지고 있다.
NK 세포는 상기 감염성 질환을 유발하는 다양한 병원체의 감염 초기, 즉 획득면역 반응(Adapted immune response)이 활성화되기 전에, 병원체에 빠르게 반응하여 면역 반응을 유도하는 것으로 알려져 있다. 즉, NK 세포는 바이러스 확산을 제한하고, 염증 반응을 감소시킬 수 있다.
또한, NK 세포는 세균 및 곰팡이 등에 대해 직접적인 살상 활성을 나타낼 뿐 아니라, NK 세포에 의해 분비되는 사이토카인, 인터페론 등도 간접적인 항균 효과를 나타냄이 알려져 있다.
한편, 코로나 바이러스 등의 바이러스 감염 질환에서 확인되는 NK 세포의 결핍은 환자의 면역저하(Immunocompromised), 질환 중증도 및 사망률 증가의 중요한 원인으로 알려져 있어, NK 세포의 활성 및 수를 증대시켜 감염을 치료하는 치료법 개발에 대한 관심이 급증하고 있다.
이에 따라 인체에서 분리, 배양한 NK 세포 및 줄기세포로부터 분화된 NK 세포를 세포치료제로 개발하기 위한 노력이 기울여지고 있으며, 이러한 노력에 따라 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cell, iPSC) 리프로그래밍 과정을 거쳐 NK 세포를 확보하는 기술이 개발되었으나, 여전히 낮은 NK 생산효율 및 치료 효능은 극복해야 할 문제점으로 지적되고 있다.
특히, NK 세포에 의해 매개되는 면역 효과는 NK 세포의 수와 높은 활성도가 모두 중요한 척도가 되는 것으로 알려져 있으나, 높은 활성도를 가진 NK 세포를 대량 확보하기 위한 기술 개발은 아직 미흡한 실정이다.
이러한 배경 하에, 본 발명자들은 종래의 유도만능줄기세포 리프로그래밍 과정을 거쳐 NK 세포를 확보하는 방법과는 차별화하여 유도만능줄기세포 리프로그래밍 과정을 거치지 않고 직접 리프로그래밍을 통해 NK 세포를 확보하는 새로운 접근법을 개발하여 NK 기반 치료제 생산에서의 다양한 문제를 해결하고자 예의 노력하였다.
그 결과, 본 발명자들은 직접 리프로그래밍 유도 배양 조건을 최적화하여 분리된 세포로부터 유도 자연살해(induced natural killer, iNK) 세포의 생산 효율을 개선하였고, 이를 통해 생산된 iNK 세포가 바이러스, 세균 또는 곰팡이 등에 감염된 세포에 대해 살상능을 나타내어 감염성 질환 및/또는 염증성 질환의 예방 또는 치료에 적용할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
1. Jordan S. Orange., REVIEWS AND FEATURE ARTICLE, VOLUME 132, ISSUE 3, P515-525, 2013.
본 발명의 하나의 목적은 (a) 분리된 세포에 리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)를 도입하는 단계;
(b) 상기 리프로그래밍 인자 도입 후 다음날부터 상기 (a) 단계의 세포를 i) 사이토카인, 성장인자 및 GSK3β(Glycogen synthase kinase 3β) 저해제(Inhibitor)를 포함하는 제1배지에서 배양하여 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키는 단계 및 ii) 사이토카인, 성장인자 및 AHR(Aryl hydrocarbon receptor) 저해제를 포함하는 제2배지에서 배양하여 자연살해(Natural killer) 세포생산을 촉진시키는 단계를 포함하는 방법으로 제조된 유도 자연살해(induced natural killer, iNK) 세포 를 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 조성물의 제조방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 하나의 목적은 상기 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 유효성분으로 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 유효성분으로 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제를 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 하나의 목적은 상기 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 유효성분으로 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
본 출원에서 개시된 각각의 설명 및 실시형태는 각각의 다른 설명 및 실시 형태에도 적용될 수 있다. 즉, 본 출원에서 개시된 다양한 요소들의 모든 조합이 본 출원의 범주에 속한다. 또한, 하기 기술된 구체적인 서술에 의하여 본 출원의 범주가 제한된다고 볼 수 없다.
본 발명의 목적을 달성하기 위한 하나의 양태로서, 본 발명은 (a) 분리된 세포에 리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)를 도입하는 단계; (b) 상기 리프로그래밍 인자 도입 후 다음날부터 상기 (a) 단계의 세포를 i) 사이토카인, 성장인자 및 GSK3β(Glycogen synthase kinase 3β) 저해제(Inhibitor)를 포함하는 제1배지에서 배양하여 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키는 단계 및 ii) 사이토카인, 성장인자 및 AHR(Aryl hydrocarbon receptor) 저해제를 포함하는 제2배지에서 배양하여 자연살해(Natural killer) 세포 생산을 촉진시키는 단계를 포함하는 방법으로 제조된 유도 자연살해세포 (induced natural killer, iNK) 세포 를 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 조성물의 제조방법을 제공한다.
본 발명에서 용어, "자연살해(Natural killer, NK) 세포"는 바이러스, 세균(박테리아), 곰팡이 및 기생충 등에 감염된 세포 또는 비정상적인 자가 세포를 즉각적으로 인식하여 제거하는 핵심 선천면역세포다. 항원-특이적인 수용체를 발현하여 표적세포를 인지하는 T 세포와는 달리 NK 세포는 항원에 대한 특이성 및 인간 백혈구 항원(Human leukocyte antigen, HLA) 매칭 없이 킬러 면역 글로불린 수용체(Killer immunoglobulin receptors, KIR), 자연 세포 독성 수용체(Natural cytotoxicity receptors, NCR), DNAM-1(DNAX accessory molecule-1) 및 NKG2D(NK group 2 member D) 등의 억제 수용체와 활성화 수용체의 균형, 표면 MHC(Major histocompatibility complex) 클래스(Class) I 항원의 소실 등 표적 세포(특히, 감염된 세포)의 비정상적인 변화를 인지하며, 다양한 기전을 통해 접촉 의존성(Contact-dependent) 세포독성을 나타낸다. 인간 백혈구 항원(HLA)이 일치하지 않는 비자기(non-self) 동종 세포에 대해 이식편대숙주질환(Graft-versus-host disease, GVHD)을 유발할 수 있는 T 세포와는 달리, 동종 NK 세포는 이식편대숙주질환의 부작용이 거의 없고 오히려 항암 효과가 강하게 나타남이 확인되고 있다.
이에 따라 인체에서 분리, 배양한 NK 세포 및 줄기세포로부터 분화된 NK 세포를 세포치료제로 개발하기 위한 노력이 기울여지고 있으나, 여전히 낮은 NK 생산효율 및 치료 효능은 극복해야 할 문제점으로 지적되고 있다.
특히, NK 세포에 의해 매개되는 면역 효과는 NK 세포의 수와 높은 활성도가 모두 중요한 척도가 되는 것으로 알려져 있어 높은 활성도를 가진 NK 세포를 대량 확보하기 위한 기술 개발이 활발히 진행되고 있다.
본 발명자들은 전술한 바와 같은 종래 NK 세포 대량생산의 문제점을 극복하고 치료 효능이 우수한 NK 세포 자원을 생산하는 새로운 기술을 개발하기위해, 직접 프로그래밍 기법을 이용하여 NK 세포를 효율적으로 제조하고자 예의 노력하였으며, 그 결과 직접 리프로그래밍 유도 배양 조건을 최적화하여 분리된 세포로부터 NK 세포를 약 5배 이상의 현저히 개선된 수율로 생산할 수 있는 방법을 규명하였고(도 2B), 이에 따라 생산된 유도 NK(iNK) 세포가 감염 세포에 대한 살상능이 상대적으로 우수함을 확인하였다(도 3 내지 도 12).
본 발명의 용어, "리프로그래밍(Reprogramming)"은 특정 세포가 가지는 전체 유전자 발현 패턴 (Global gene expression pattern) 등을 조절하여, 전분화능을 가진 유도만능줄기세포(induced pluripotent stem cell, iPSC)를 제작한 다음, 이를 목적하는 세포로 전환시키는 방법을 의미한다. 다시 말해서, 본 발명에서 리프로그래밍은 세포의 운명을 인위적으로 조작하여 전혀 다른 특성을 가지는 세포로 전환시키는 방법을 의미하며, 본 발명의 목적상 상기 리프로그래밍은 외래 유전자 혹은 DNA를 포함하는 벡터를 세포에 도입함으로써 수행되는 것일 수 있다. 본 발명에 있어서, 상기 리프로그래밍은 “역분화(Dedifferentiation)”, “분화(differentiation)”, “전환(conversion)” 또는 “교차분화(Trans-differentiation)” 등과 혼용할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 용어, "직접 리프로그래밍(Direct reprogramming)"은 리프로그래밍 과정을 통해 전분화능을 가진 유도만능줄기세포를 제작하는 기술과는 차별화되며, 리프로그래밍 배양을 통해 직접적으로 원하는 목적 세포로의 직접 전환을 유도하는 기술이다. 상기 "직접 리프로그래밍"은 외래 유전자 혹은 DNA를 포함하는 올리고뉴클레오타이드(Oligonucleotide) 또는 벡터를 세포에 도입함으로써 "세포전환"이 수행되는 것일 수 있으며, 세포가 다른 상태로 바뀌는 것을 의미할 수 있다. 본 발명에서 상기 “직접 리프로그래밍”은 특히 분리된 세포에서 NK 세포로의 직접 역분화 또는 직접 교차분화를 의미할 수 있다. 본 발명에 있어서, 직접 리프로그래밍은 “직접 역분화”, “직접 분화”, “직접 전환”, “직접 교차분화” 등과 혼용할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 용어, "분화"는 세포가 분열하여 만들어진 딸 세포들이 원래의 모 세포와 다른 기능을 얻는 현상을 의미한다.
본 발명에서 용어, "분화된 세포"는 구조나 기능이 특수화된 세포, 즉, 생물의 세포, 조직 등이 각각에게 주어지는 역할을 수행하기 위해 적합한 형태 및 기능으로 변화된 상태를 의미한다. 예를 들어, 넓게는 배아줄기세포와 같은 전분화능 줄기세포로부터 유래된 외배엽, 중배엽 및 내배엽 세포가 분화된 세포고, 좁게는 조혈모 세포로부터 유래된 적혈구, 백혈구, 혈소판 등이 분화된 세포일 수 있다.
본 발명의 용어, "중간체 세포", “조혈줄기(전구)세포” 또는 "자연살해 전구세포(NK 전구세포)"란, NK 세포로 분화되기 전 단계의 세포로서, 림프계 줄기세포일 수 있으나, NK 세포로 분화될 수 있는 가능성이 있다면 이에 제한되지 않는다.
전술한 바와 같이 NK 세포는 면역 세포치료제 등으로써 사용하기 위해, 일차 분리 및 배양, 줄기 세포로부터 분화, 또는 세포 리프로그래밍 방법 등을 통해 생산되고 있다. 특히, 유도만능줄기세포(iPSC) 리프로그래밍 기술을 이용하여 NK 세포를 제조하기 위해서는 1) 우선적으로 분리된 체세포로부터 유도만능줄기세포를 제조한 후, 2) 유도만능줄기세포로부터 분화 중간체인 조혈줄기(전구)세포를 분화하고, 3) 추가적으로 NK 세포 분화를 유도하는 과정을 거쳐야 한다. 이와 같이 종래 iSPC 분화능을 이용한 NK 생산 기술은 복잡한 배양 및 분화 과정을 순차적으로 거쳐야 하기 때문에 제조 효율이 낮고 시간적, 비용적 소모가 크다는 단점이 있다. 또한, 전분화능을 가진 유도만능줄기세포를 경유하여 제조되기 때문에 미분화 세포의 잔류 여부는 종양형성 가능성과 밀접하게 연관되어 안전성 확보 여부가 검증되어야 할 중요한 쟁점으로 부각되고 있다.
이에 반해, 본 발명은 유도만능줄기세포를 경유하지 않고 직접 리프로그래밍 유도를 통해 분리된 세포로부터 NK 세포를 직접 제조함으로써 제조 시간이 짧고, 비용이 절감된다는 장점과 함께, 안전성이 확보되는 바, 종래 기술과 차별화되며, 기존 NK 세포원의 문제점을 극복할 수 있는 대안을 제공할 수 있다.
본 발명의 용어, “유도 자연살해(induced Natural killer, iNK) 세포”는 직접 리프로그래밍 유도를 통해 분리된 세포로부터 직접 제조된 NK 세포를 의미한다.
본 발명의 iNK 세포는 (a) 분리된 세포에 리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)를 도입하고, (b) 상기 리프로그래밍 인자 도입 후 다음날부터 상기 (a) 단계의 세포를 본 발명의 배지에서 배양하여 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키고, NK 세포 생산을 촉진시켜 제조하는 것일 수 있다.
본 발명의 방법에 있어서, (a) 단계는 분리된 세포에 하나 이상의 리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)를 도입하는 것을 포함한다.
본 발명의 용어, "분리된 세포"는 특별한 제한은 없으나, 일 예로, NK 세포를 제외한 생식세포, 체세포(Somatic cell) 또는 전구세포(Progenitor cell) 등 이미 계통(Lineage)이 특정된 분화된 세포일 수 있다.
상기 "체세포"는 생식세포를 제외한 동·식물을 구성하는 분화가 완결된 모든 세포를 의미한다. 상기 "전구세포"는 자손에 해당하는 세포가 특정 분화 형질을 발현하는 것으로 밝혀진 경우, 분화 형질을 발현하지 않으나, 그 분화 운명(Fate)를 가지고 있는 모세포를 말한다. 예를 들면, 신경세포(뉴런)에 대해서는 신경아세포(뉴런간세포)가 전구세포에 해당하고, 근관세포에 대해서는 근아세포가 전구세포에 해당한다.
상기 분리된 세포는 인간에게서 유래한 세포일 수 있으나, 이에 제한되지 않으며, 다양한 개체에서 유래된 세포 역시 본 발명의 범위 내에 속할 수 있다. 또한, 본 발명의 분리된 세포에는 생체내 또는 생체외의 세포가 모두 포함될 수 있다.
일 예로, 상기 분리된 세포는 체세포일 수 있고, 다른 일 예로, NK 세포를 제외한 체세포일 수 있다. 그 예로, 상기 분리된 세포는 혈액 세포(Blood cell) 및 섬유아 세포(Fibroblast) 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 용어, "리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)"는 세포에 도입되어 리프로그래밍을 유도할 수 있는 유전자(혹은 이를 코딩하는 폴리뉴클레오티드), 또는 단백질을 의미한다. 상기 리프로그래밍 인자는 리프로그래밍을 유도하고자 하는 그 목적 세포에 따라, 그리고 리프로그래밍이 유도되는 분리된 세포의 종류에 따라 달라질 수 있다.
예컨대, NK 세포를 제조하는 경우에 있어서 리프로그래밍 인자는, , ASC11, KLF4, LIN28, LMX1A, MYC, NANOG, NURR1, OCT3, OCT4, PITX3, 및 SOX2 등일 수 있고, 일 예로, OCT4, SOX2, KLF4 및 MYC로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 인자를 포함하는 것일 수 있으며, 그 외에도 NK 세포를 제조할 수 있는 것으로 당업계에 공지된 모든 인자를 포함할 수 있다.
당업자는 그 목적 세포 및 리프로그래밍되기 전의 세포의 종류에 따라 적절한 인자를 선택할 수 있고, 이는 당업계에 공지된 범위 내에서라면 모두 본 발명의 범위에 포함되는 것으로, 그 종류에 특별히 제한되지 않는다. 리프로그래밍 유전 인자를 이용한 리프로그래밍은 세포가 가지는 전체 유전자 발현 패턴을 조절하여 목적 세포로의 전환을 유도하는 것이므로, 상기 리프로그래밍 유전 인자가 세포에 도입되고, 세포를 일정 기간 배양함으로써 목적하는 종류의 세포의 유전자 발현 패턴을 가지는 목적 세포로 초기 세포를 리프로그래밍시킬 수 있다.
본 발명에서 "리프로그래밍 인자의 도입"은 세포 내에 존재하는 리프로그래밍 인자, 예컨대, OCT4, SOX2, KLF4 및/또는 MYC 유전자의 발현 수준을 증가시키는 방법; 또는 발현 벡터, 유전자 변형, 외래 발현 유전자 도입, 발현 유도 효과를 가지는 물질의 처리 등을 통하여 세포 내의 리프로그래밍 인자의 발현 수준을 증가시키는 방법일 수 있으나, 리프로그래밍 인자의 발현 수준을 증가시키는 한 제한되지 않는다. 특히, 리프로그래밍 인자를 도입하는 단계는 원하는 시간 및 조건 하에서 리프로그래밍 인자의 발현을 유도하는 방법일 수 있다.
구체적으로, 상기 (a) 단계의 리프로그래밍 인자를 세포에 도입하는 방법은 당업계에서 통상적으로 사용되는 세포에 핵산분자(DNA 또는 RNA) 또는 단백질을 도입하는 방법을 제한 없이 사용할 수 있다. 예를 들어, 리프로그래밍 인자를 세포의 배양액에 투여하는 방법, 리프로그래밍 인자를 세포에 직접 주입하는 방법 또는 리프로그래밍 인자의 유전자를 포함하는 발현벡터를 세포에 형질전환시키는 방법 등을 사용할 수 있다.
상기 리프로그래밍 인자를 세포에 직접 주입하거나, 형질전환하는 방법은 당업계에 공지된 임의의 방법을 선택하여 사용할 수 있으며, 이에 제한되지는 않으나, 미세주입법(Microinjection), 전기천공법(Electroporation), 입자분사법(Particle bombardment), 직접근육주입법, 인슐레이터(Insulator) 및 트랜스포존을 이용한 방법 중에서 적절하게 선택하여 적용할 수 있다.
본 발명의 용어 "발현벡터"는, 적당한 숙주세포에서 목적 단백질을 발현할 수 있는 벡터로서, 유전자 삽입물이 발현되도록 작동가능하게 연결된 필수적인 조절 요소를 포함하는 유전자 작제물을 말한다.
본 발명의 발현벡터는 프로모터, 오퍼레이터, 개시코돈, 종결코돈, 폴리아데닐화시그널, 인핸서 같은 발현 조절 요소 외에도 막 표적화 또는 분비를 위한 신호 서열 또는 리더 서열을 포함하며 목적에 따라 다양하게 제조될 수 있다. 발현벡터의 프로모터는 구성적 또는 유도성일 수 있다. 또한, 발현벡터는 벡터를 함유하는 숙주 세포를 선택하기 위한 선택성 마커를 포함하고, 복제 가능한 발현벡터인 경우 복제 기원을 포함할 수 있다. 발현벡터는 자가 복제하거나 숙주 DNA에 통합될 수 있다.
상기 발현벡터는 바이러스 벡터, 에피솜 벡터, 플라스미드 벡터, 코즈미드 벡터 등을 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 상기 바이러스 벡터는 센다이바이러스(Sendai virus), 렌티바이러스(Lentivirus), 레트로바이러스(Retrovirus), 예를 들어 HIV(Human immunodeficiency virus), MLV(Murineleukemia virus), ASLV(Avian sarcoma/Leukosis), SNV(Spleen necrosis virus), RSV(Rous sarcoma virus), MMTV(Mouse mammary tumor virus) 등, 아데노바이러스(Adenovirus), 아데노 관련 바이러스(Adeno-associated virus), 헤르페스 심플렉스 바이러스(Herpes simplex virus) 등에서 유래한 벡터를 포함할 수 있다. 또한, 더욱 구체적으로 RNA 기반 바이러스 벡터일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
또한, 본 발명 에피솜 벡터(Episomal vector)는 비바이러스성 비삽입성 벡터로서, 염색체 내에 삽입되지 않고 벡터에 포함된 유전자를 발현시킬 수 있는 특성을 가지는 것으로 알려져 있다. 본 발명의 목적상 에피솜 벡터를 포함하는 세포는, 에피솜 벡터가 유전체 내에 삽입되거나, 또는 유전체 내에 삽입되지 않은 상태로 세포 내 존재하는 경우를 모두 포함할 수 있다. 또한, 에피솜 벡터는 하나 이상의 리프로그래밍 인자를 포함할 수 있다.
본 발명의 용어 "작동가능하게 연결된(Operably linked)"은 일반적 기능을 수행하도록 핵산 발현조절 서열과 목적하는 단백질을 코딩하는 핵산 서열이 기능적으로 연결(Functional linkage)되어 있는 것을 말한다. 재조합 벡터와의 작동적 연결은 당해 기술 분야에서 잘 알려진 유전자 재조합 기술을 이용하여 제조할 수 있으며, 부위-특이적 DNA 절단 및 연결은 당해 기술 분야에서 일반적으로 알려진 효소 등을 사용할 수 있다.
다음으로, 본 발명의 방법에 있어서, (b) 단계는 상기 리프로그래밍 인자 도입 후 다음날부터 상기 (a) 단계의 세포를 본 발명의 배지에서 배양하여 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키고, NK 세포 생산을 촉진시켜 제조하는 것일 수 있다.
본 발명의 용어, "배양"은 세포를 적당히 조절된 환경 조건에서 생육시키는 것을 의미하며, 본 발명의 배양 과정은 당업계에 알려진 적당한 배지와 배양 조건에 따라 이루어질 수 있다. 이러한 배양 과정은 선택되는 세포에 따라 당업자가 용이하게 조정하여 사용할 수 있다.
본 발명의 용어, "배지"는 세포의 배양시 사용되는 공지된 배지를 의미하며, 공지의 세포 배양용 배지 또는 이들의 변형된 배지를 모두 포괄하는 의미이다.
본 발명에 있어서, 본 발명의 배지는 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키거나, NK 세포 생산을 촉진함으로써, 리프로그래밍 인자가 도입된 세포를 자연살해세포로 직접 리프로그래밍하거나, 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키는데에 적합한 조성을 갖는 것일 수 있다.
일 예로, 본 발명의 배지는 제1배지 및 제2배지로 구분할 수 있다.
본 발명의 제1배지는 사이토카인, 성장인자 및 GSK3β 저해제를 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 제2배지는 사이토카인, 성장인자 및 AHR 제해제를 포함하는 것일 수 있다.
다른 일 예로, 본 발명의 배지는 제3배지를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 제3배지는 사이토카인 및 성장인자를 포함하는 것일 수 있다.
본 발명에서 용어, "사이토카인"은 세포에서 제조되어 세포 신호 전달에 사용되는 비교적 작은 크기의 다양한 단백질로서, 자신을 포함하는 다른 세포에 영향을 끼칠 수 있다. 일반적으로 염증 또는 감염에 대한 면역 반응과 관련이 있는 것으로 알려져 있다.
상기 사이토카인은 예를 들면, IL(Interleukin)-2, IL-3, IL-5, IL-6, IL-7, IL-11, IL-15, IL-21, BMP4(Bone morphogenetic protein 4), 액티빈 A(Acivin A), 노치 리간드(Notch ligand), G-CSF(Granulocyte-colony stimulating factor) 및 SDF-1(Stromal cell-derived factor-1) 등일 수 있고, 구체적으로 IL-2, IL-3, IL-6, IL-7 및 IL-15 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에서 용어, "성장인자"는 여러 세포의 분열, 성장 및 분화를 촉진하는 폴리펩티드를 의미한다. 상기 성장인자는 예를 들면, EGF(Epidermal growth factor), PDGF-AA(Platelet-derived growth factor-AA), IGF-1(Insulin-like growth factor 1), TGF-β(Transforming growth factor-β), FGF(Fibroblast growth factor), SCF(Stem cell factor) 및 FLT3L(FMS-like tyrosine kinase ligand) 등일 수 있고, 구체적으로 SCF 및 FLT3L 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 목적상, 상기 사이토카인 및 성장인자는 분리된 세포를 목적 세포로 직접 세포전환 유도하는 배지에 포함되며, 성장인자 및 사이토카인의 종류는 직접 세포전환 유도에 이용될 수 있는 것이라면 특별히 제한되지 않는다.
본 발명에서 용어, "GSK3β(Glycogen synthase kinase-3β) 저해제"는 GSK3β의 단백질에 직접/간접적으로 결합하여 활성을 저해 또는 억제하는 물질을 의미한다. 상기 GSK3β 저해제는 예를 들면, 1-Azakenpaullone, 2-D08, 3F8, 5-Bromoindole, 6-Bio, A 1070722, Aloisine A, AR-A014418, Alsterpaullone, AZD-1080, AZD2858, Bikinin, BIO, BIO-acetoxime, Bisindolylmaleimide I, Bisindolylmaleimide I hydrochloride, CAS 556813-39-9, Cazpaullone, CHIR98014, CHIR98023, CHIR99021(CT99021), CP21R7, Dibromocantherelline, GSK-3β inhibitor I, VI, VII, X, XI,XV, GSK-3 inhibitor IX, XVI, Hymenidin, Hymenialdisine, HMK-32, I3M(Indirubin-3-monoxime, Indirubin, Indole-3-acetamide, IM-12, Kenpaullone, L803-mts, Leucettine L41, Lithium, Lithium carbonate, LY-2090314, Manzamine A MeBIO, Meridianine A, NP00111, NP031115, NP031111, NSC 693868, Palinurin, Ro 31-8220 Methanesulfonate, SB-216763, SB-415286, TC-G 24, TCS 2002, TCS 21311, Tideglusib, Tricantin, Trihydrochloride, Tungstate, TWS-119, TZDZ-8, Zinc 등일 수 있고, 구체적으로 CHIR99021(CT99021) 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명에서 용어, "AHR(Aryl hydrocarbon receptor) 저해제"는 TCDD(Dioxin(2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin))에 의해 활성화되는 리간드-활성화 전사인자(Transcription factor)인 AHR의 활성을 하향조절하거나 감소시키는 물질을 의미한다. 상기 AHR 길항제는 예를 들면, 스템레게닌 I[StemRegenin I, SRI; 4-(2-(2-(벤조[b]티오펜-3-일)-9-이소프로필-9H-퓨린-6-일아미노)에틸)페놀하이드로클로라이드, 4-(2-((2-Benzo[b]thiphen-3-yl)-9-isopropyl-9H-purin-6-yl)amino)ethyl)phenol hydrochloride], CH-223191(1-메틸-N-[2-메틸-4-[2-(2-메틸페닐)디아제닐]페닐-1H-피라졸-5-카르복사미드, 1-Methyl-N-[2-methyl-4-[2-(2-methylphenyl)diazenyl]phenyl-1H-pyrazole-5-carboxamide) 등일 수 있고, 구체적으로 스템레게닌 I 및 CH-223191 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
그러나, 상기 저해제는 직접 리프로그래밍 효율을 높일 수 있는 역할을 하는 것이라면, 상기 전술한 바에 제한되지 않는다.
본 발명의 제1배지는 일 예로, CHIR99021, IL-3, IL-6 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함할 수 있다.
다른 일 예로, 상기 제1배지는 SCF, FLT3L, FBS(Fetal bovine serum), 항생제 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 추가로 포함할 수 있다.
상기 항생제는 페니실린/스트렙토마이신(Penicillin/Streptomycin)일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 제1배지는 FBS, 페니실린/스트렙토마이신, SCF, FLT3L, IL-3, IL-6 및 CHIR99021(CT99021)을 포함하는 StemSpan SFEM II를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 보다 구체적으로, 제1배지는 8 내지 12 %의 FBS, 0.1 내지 2 %의 페니실린/스트렙토마이신, 50 내지 300 ng/ml의 인간 SCF, 50 내지 300 ng/ml의 인간 FLT3L, 5 내지 50 ng/ml의 인간 IL-3, 5 내지 50 ng/ml의 인간 IL-6 및 2 내지 10 uM의 CHIR99021를 포함하는 StemSpan SFEM II일 수 있고, 보다 더욱 구체적으로, 9 내지 11 %의 FBS, 0.5 내지 1.5 %의 페니실린/스트렙토마이신, 80 내지 120 ng/ml의 인간 SCF, 80 내지 120 ng/ml의 인간 FLT3L, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-3, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-6 및 2 내지 8 uM의 CHIR99021를 포함하는 StemSpan SFEM II일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 제2배지는 일 예로, 스템레게닌 I, CH-223191, IL-2, IL-7, IL-15 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함할 수 있다.
다른 일 예로, 상기 제2배지는 SCF, FLT3L, FBS, 항생제 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 추가로 포함할 수 있다.
상기 항생제는 페니실린/스트렙토마이신일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 제2배지는 FBS, 페니실린/스트렙토마이신, SCF, FLT3L, IL-2, IL-7, IL-15 및 스템레게닌 I를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 보다 구체적으로, 제2배지는 8 내지 12 %의 FBS, 0.1 내지 2 %의 페니실린/스트렙토마이신, 10 내지 30 ng/ml의 인간 SCF, 10 내지 30 ng/ml의 인간 FLT3L, 150 내지 250 IU/ml의 인간 IL-2, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-7, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-15 및 0.5 내지 5 uM의 스템레게닌 I을 포함하는 StemSpan SFEM II일 수 있고, 보다 더욱 구체적으로, 9 내지 11 %의 FBS, 0.5 내지 1.5 %의 페니실린/스트렙토마이신, 10 내지 30 ng/ml의 인간 SCF, 10 내지 30 ng/ml의 인간 FLT3L, 180 내지 220 IU/ml의 인간 IL-2, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-7, 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-15 및 1 내지 3 uM의 스템레게닌 I을 포함하는 StemSpan SFEM II일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 제3배지는 일 예로, IL-2, IL-15 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함할 수 있다.
다른 일 예로, 상기 제3배지는 FBS, 항생제 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 추가로 포함할 수 있다.
상기 항생제는 페니실린/스트렙토마이신일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 제3배지는 FBS, 페니실린/스트렙토마이신, IL-2 및 IL-15를 포함하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다. 보다 구체적으로, 제3배지는 8 내지 12 %의 FBS, 0.1 내지 2 %의 페니실린/스트렙토마이신, 150 내지 250 IU/ml의 인간 IL-2 및 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-15를 포함하는 RPMI 1640일 수 있고, 보다 더욱 구체적으로, 9 내지 11 %의 FBS, 0.5 내지 1.5 %의 페니실린/스트렙토마이신, 180 내지 220 IU/ml의 인간 IL-2 및 10 내지 30 ng/ml의 인간 IL-15를 포함하는 RPMI 1640일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 방법에 있어서, 상기 리프로그래밍 인자가 도입된 분리된 세포는 본 발명의 제1배지에서 3 내지 10 일 동안 배양하고, 제2배지에서 12 내지 16일 동안 배양하는 것일 수 있다. 또한, 제2배지에서 배양한 다음에 제3배지에서 6일 이상 동안 추가로 배양하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 방법에 따라 제조된 NK 세포는 “유도 자연살해세포”, "iNK" 또는 "OSKM-iNK"와 혼용될 수 있다.
본 발명의 다른 하나의 양태는 본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 제공한다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명에 의해 제조된 iNK 세포는 CD56+, CD3- 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 발현할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 일 구현예에서는, 제1배지 및 제2배지에서 순차적으로 배양한 OSKM-iNK I 배지 조건과, 제1배지, 제2배지 및 제3배지에서 순차적으로 배양한 OSKM-iNK II 배지 조건에서 NK 세포가 제조되었는지 확인한 결과, 두 배지 조건에서 모두 CD56+CD3- NK 세포가 97 % 이상의 비율로 존재하는 것을 확인하였다(도 2A). 또한, 제3배지를 추가로 사용한 OSKM-iNK II 조건에서는 OSKM-iNK I 조건에 비해 NK 세포 수율이 평균 약 5 배 이상 높아(도 2B), OSKM-iNK II 조건에서 NK 세포를 약 5배 이상의 현저히 개선된 수율로 생산할 수 있음을 확인하였다.
본 발명의 다른 일 구현예에서는, 제1배지에서의 배양 시간보다 제2배지에서의 배양 시간이 더 길 때 NK 세포 제조 수율이 증가함을 확인하였다(도 1C). 반면, 제2배지에서만 배양하였을 때는 NK 세포의 비율이 거의 확인되지 않았다.
이에 따라, 본 발명의 제1배지, 제2배지 및 제3배지 및 각 배지에서의 배양 기간은 iNK 제조에 있어 최적화된 것임을 확인하였다.
본 발명의 또 하나의 양태는 본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함하는, 감염성 질환 및/또는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제를 제공한다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명의 조성물은 본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함함으로써 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환에 대한 예방 또는 치료 효능이 있는 것일 수 있다.
본 발명에 있어서, 감염성 질환은 바이러스, 세균 및 곰팡이로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상에 의해 발생 또는 발병하는 것일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 감염성 질환을 유발하는 바이러스는 RNA 바이러스 및/또는 DNA 바이러스일 수 있으나, 당업계에 알려진 바이러스라면 제한되지 않는다.
일 예로, 상기 바이러스는 Aviadeno(아비아데노) 바이러스, Alphatorque(알파토크) 바이러스, Arena(아레나) 바이러스, Alphapapilloma(알파유두종) 바이러스, Adeno(아데노) 바이러스(Ad5), Astro(아스트로) 바이러스, Aichi(아이치) 바이러스, Amapari(아마파리) 바이러스, Aravan(아라반) 바이러스, Aura(오라) 바이러스, Australian bat lyssa(호주 박쥐 리사) 바이러스, Banna(반나) 바이러스, Barmah forest(바마 포레스트) 바이러스, Batken(바트켄) 바이러스, Bunyamwera(부니암웨라) 바이러스, Bunga(분가) 바이러스, Bunya(분야) 바이러스 La crosse, BK(비케이) 바이러스, BK polyoma(비케이 폴리오마) 바이러스, Cercopithecine herpes(원숭이 헤르페스) 바이러스, Cardio(카디오) 바이러스, Crimean-congo hemorrhagic fever(크리미안 콩고 출혈열) 바이러스, Chapare(샤페어) 바이러스, Chandipura(찬디푸라) 바이러스, Chandipura vesiculo(찬디푸라 수포성) 바이러스, Chikungunya(치쿤구니야) 바이러스, Cosa(코사) 바이러스, Cowpox(우두) 바이러스, Coxsackie(콕삭키) 바이러스, Corona(코로나) 바이러스, Corona(코로나) 바이러스 알파(베타, 감마, 델타), Colti(콜티) 바이러스, Cytomegalo(거대세포) 바이러스, Denso(덴소) 바이러스, Dependo(데펜도) 바이러스, Dependoparvo(디펜도파르보) 바이러스, Dengue(댕기) 바이러스, Deltaretro(델타레트로) 바이러스, Dhori(도리) 바이러스, Dugbe(두그베) 바이러스, Duvenhage(두벤하게) 바이러스, Eastern equine encephalitis(동부 마 뇌염) 바이러스, Ebola(에볼라) 바이러스, Echo(에코) 바이러스, Ectromelia(엑트로멜리아) 바이러스, El Bo(엘보) 바이러스, Erbo(에르보) 바이러스, Entero(엔테로) 바이러스, Encephalomyocarditis(뇌심금염) 바이러스, Epstein-Barr(엡스타인바) 바이러스(EBV), European bat lyssa(유럽 박쥐 리사) 바이러스, Erythro(적아구증) 바이러스, Flavi(플라비) 바이러스, Flexal(플렉살) 바이러스, Fowl plague(조류독감) 바이러스, GB 바이러스 C/Hepatitis(감염) G 바이러스, Guanarito(구아나리토) 바이러스, Hantaan(한탄)/ Hantann river 바이러스, Hanta(한타) 바이러스, Hendra(헨드라) 바이러스, Hepato/Hepatitis(간염) 바이러스, Hepatitis(헤파티티스) 바이러스(A, B, C, D, E), Horsepox(마두) 바이러스, Human herpes(헤르페스) 바이러스(HHV-6, HHV-7), Henipa(헤니파) 바이러스, Herpes simplex(단순포진 헤르페스) 바이러스(1, 2), Hepaci(헤파시) 바이러스, Hepe(헤페) 바이러스, Henipa(헤니파) 바이러스, Human immunodeficiency(인간 면역결핍) 바이러스(HIV-1), Human cytomegalo(사이토메갈로) 바이러스, Ippy(입피) 바이러스, Influenza(인플루엔자) 바이러스(A, B, C), Isfahan(이스파한) 바이러스, John cunningham(JC) 바이러스, JC polyoma 바이러스, Japanese encephalitis(일본 뇌염) 바이러스, Junin(주닌) 바이러스 Junin arena(주닌 아레나) 바이러스, Kaposi's sarcoma-associated herpes(카포시 육종-관련 헤르페스) 바이러스(KSHV), KI polyoma 바이러스, Kobu(고부) 바이러스, Kunjin(쿤진) 바이러스, Lenti(렌티) 바이러스, Latino(라티노) 바이러스, Lassa(라싸) 바이러스, Lagos Bat(라고스 박쥐) 바이러스, Lake victoria Marburg(마르부르크) 바이러스, Lyssa(리사) 바이러스, Langat(란가트) 바이러스, Lordsdale(로즈데일) 바이러스, Louping ill(루핑병) 바이러스, Lugo(루고) 바이러스, Lymphocytic choriomeningitis(림프구성 맥락수막염) 바이러스, Lymphocrypto(수두-대상포진) 바이러스, Machupo(마추포) 바이러스, Mastadeno(마스타데노) 바이러스, Mamastro(마마스트로) 바이러스, Machupo(마추포) 바이러스, Mayaro(마야로) 바이러스, MERS corona(메르스 코로나) 바이러스, Measles(홍역) 바이러스, Marburg(마르크부르크) 바이러스, Mumps(볼거리) 바이러스, Mengo(멩고) 바이러스, Merkel cell polyoma(메르켈세포 폴리오마) 바이러스, Mokola(모콜라) 바이러스, Molluscum contagiosum(전염성 연속종) 바이러스, Mopeia(모페이아) 바이러스, Monkeypox(원두) 바이러스, Mobala(모발라) 바이러스, Morbili(모빌리) 바이러스, Mupapilloma(무파필로마) 바이러스, Molluscipox(몰루시폭스) 바이러스, Murray valley encephalitis(머레이 밸리 뇌염) 바이러스, New York(뉴욕) 바이러스, Nairo(나이로) 바이러스, Nipah(니파) 바이러스, Noro(노로) 바이러스, Norwalk(노워크) 바이러스, Oliveros(올리베로스) 바이러스, O'nyong-nyong(오니옹니옹) 바이러스, Orbi(오르비) 바이러스, Orthopox(오르쏘폭스) 바이러스, Orthobunya(오르쏘분야) 바이러스, Orthohepadna(오르쏘헤파드나) 바이러스, Orf(오알에프) 바이러스, Oropouche(오로퓨스) 바이러스, Orthomyxo(오르토믹소) 바이러스, Orthopox(오르토폭스) 바이러스, Orthopneumo(오르토뉴모) 바이러스, Papilloma(유두종) 바이러스, Papova(파포바) 바이러스, Parainfluenza(파라인플루엔자) 바이러스, Parecho(파레코) 바이러스, Pegi(페기) 바이러스, Parana(파라나) 바이러스, Pichinde(피친데) 바이러스, Pirital(피리탈) 바이러스, Parvo(파보) 바이러스, Polio(폴리오) 바이러스, Polyoma(폴리오마) 바이러스, Pox(폭스) 바이러스, Punta toro phlebo(펀다토로플레보) 바이러스, Puumala(푸말라) 바이러스, Phlebo(플레보) 바이러스, Roseolo(장미진) 바이러스, Rabies(광견병) 바이러스, Rhino(리노) 바이러스, Respiratory syncytial(호흡기세포융합) 바이러스, Rift valley fever(리프트 밸리열) 바이러스, Rhadino(라디노) 바이러스, Rosa(로사) 바이러스, Rubi(루비) 바이러스, Ross river(로스 리버) 바이러스, Rota(로타) 바이러스, Rubella(루벨라) 바이러스, Rubula(루불라) 바이러스, Respiro(레스피로) 바이러스, Sabia(사비아) 바이러스, Sapo(사포) 바이러스, Sagiyama(사기야마) 바이러스, Sali(살리) 바이러스, Sandfly fever Sicilian(모래파리열 시칠리아) 바이러스, Snowshoe hare(눈덧신토끼) 바이러스, Sicilian phlebo(시칠리아 플레보) 바이러스, Spumaretro(수프마레트로) 바이러스, Sapporo(삿포로) 바이러스, SARS(Severe acute respiratory syndrome) (사스) 바이러스, SARS corona(사스 코로나) 바이러스, SARS-CoV-2 바이러스, Semliki forest(셈리키삼림열) 바이러스, Seoul(서울) 바이러스, Simian foamy(유인원 거품) 바이러스, Seadorna('South eastern Asia dodeca RNA) 바이러스, Simian(유인원) 바이러스, Sindbis(신드비스) 바이러스, Spuma(스푸마) 바이러스, Southampton(사우스햄튼) 바이러스, St. Louis encephalitis(세인트 루이스 뇌염) 바이러스, Tacaribe(타카리베) 바이러스, Tamiami(타미아미) 바이러스, Tick-borne Powassan(진드기 포와센) 바이러스, Tick-borne encephalitis(진드기 뇌염) 바이러스, T-lymphotropic(T 세포 림프친화) 바이러스, Toro(토로) 바이러스, Torque teno(토크테노) 바이러스, Thogoto(토고토) 바이러스, Toscana(토스카나) 바이러스, Uukuniemi(우우케니에미) 바이러스, Vaccinia(백시니아) 바이러스, Varicella-zoster(수두대상포진) 바이러스, Variola(두창) 바이러스, Venezuelan equine encephalitis(베네주엘라 이콰인 뇌염) 바이러스, Vesicular stomatitis(수포성구내염) 바이러스, Western equine encephalitis(서부마뇌염) 바이러스, West nile(웨스트나일) 바이러스, Whitewater Arroyo(화이트워터 아로요) 바이러스, WU polyoma(폴리오마) 바이러스, Yaba monkey tumor(야바 원숭이 종양) 바이러스, Yaba-like disease(야바 유사 질환) 바이러스, Yellow fever(황열) 바이러스, Vesiculo(수포성) 바이러스, Varicello(수두) 바이러스 및 Zika(지카) 바이러스 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 상기 바이러스는 Epstein-Barr(엡스타인바) 바이러스(EBV), Hepatitis 바이러스, Human immunodeficiency(인간 면역결핍) 바이러스(HIV), Influenza(인플루엔자) 바이러스, Papilloma(유두종) 바이러스, SARS(Severe acute respiratory syndrome) (사스) 바이러스, SARS corona(사스 코로나) 바이러스, SARS-CoV-2 바이러스 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 감염성 질환을 유발하는 세균은 그람음성 세균 및/또는 그람양성 세균일 수 있으나, 당업계에 알려진 세균이라면 제한되지 않는다.
일 예로, 상기 세균은 Achromobacter(아크로모박터) species(SPP), Acinetobacter(아시네토박터) spp, Actinomyces(방선균속) spp, Aeromonas(에어로모나스속) spp, Alternaria(알터나리아속) spp, Anthrax(탄저균) spp, Aspergillus(누룩곰팡이속) spp, Bacillus(간균) spp, Bacteroides(박테로이데스속) spp, Bartonella(바르토넬라) spp, Brucella(브루셀라속) spp, Borrelia(보렐리아속), spp, Bordetella(보르데텔라속) spp, Burkholderia(버크홀데리아속) spp, Campylobacter(캄필로박터속) spp, Capnocytophaga(카프노이시트파가속) spp, Chlamydophila(클라미도필라) spp, Chlamydia(클라미디아) spp, Citrobacter(시트로박터) spp, Clostridium(클로스트리듐속) spp, Corynebacterium(코리네박테리움) spp, Coxiella(콕시엘라속) spp, Diphtheria(디프테리아) spp, Ehrlichia(에를리히아속) spp, Escherichia(에스케리키아속) spp, Enterobacter(엔테로박터) spp, Enterococcus(장내구균) spp, Erysipelothrix(에리시펠로트릭스속) spp, Eikenella(아이케넬라) spp, Erwinia(에르비니아속) spp, Francisella(프란시셀라속) spp, Fusobacterium(푸소박테륨속) spp, Gardnerella(가드네렐라) spp, Haemophilus(헤모필루스속) spp, Helicobacter(헬리코박테르속) spp, Klebsiella(클렙시엘라) spp, Lactobacillus(젖산간균) spp, Legionella(레지오넬라) spp, Listeria(리스테리아) spp, Leptospira(렙토스피라속) spp, Micrococcus(미크로코쿠스속) spp, Moraxella(모락셀라속) spp, Morganella(모르가넬라) spp, Moniliformis(모닐리포르미스) spp, Meningococcus(수막염균) spp, Mycobacterium(미코박테륨) spp, Mycoplasma(미코플라스마) spp, Neisseria(나이세리아속) spp, Nocardia(노카르디아속) spp, Pertussis(백일해균) spp, Pneumococcus(폐렴구균) spp, Pseudomonas(슈도모나스) spp, Pasteurella(파스퇴렐라속) spp, Peptostreptococcus(펩토스트렙토코커스속) spp, Photorhabdus(포토랍두스) spp, Porphyromonas(포필로모나스) spp, Propionibacterium(프로피오니박테리움속) spp, Proteus(프로튜스) spp, Providencia(프로비덴시아속) spp, Pseudomonas(슈도모나스) spp, Salmonella(살모넬라) spp, Serratia(세라티아속) spp, Spiroplasma(스피로플라스마속) spp, Shigella(이질균) spp, Staphylococcus(포도상구균) spp, Stenotrophomonas(스테노트로포모나스속) spp, Streptococcus(스트렙토코커스) spp, Treponema(트레포네마속) spp, Vibrio(비브리오) spp, Wolbachia(월바키아속) spp, Xenorhabdus(제노랍두스) spp 및 Yersinia(예르시니아속) spp 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
그 예로, 상기 세균은 Achromobacter xylosoxidans, Acinetobacter baumannii, Acinetobacter haemolyticus, Acinetobacter junil, Acinetobacter johnsonil, Actinomyces israeli, Aeromonas hydrophilia, Aeromonas veronol, Aspergillus fumigatus, Bacillus anthracis, Bacillus cereus, Bacillus thuringiensis, Bacteroides fragilis, Bacteroides melaninogenicus, Bartonella chomelii, Brucella abortus, Brucella canis, Brucella melitensis, Brucella microti, Brucella suis, Borrelia afzelii, Borrelia burgdorferi, Borrelia garinii, Borrelia recurrentis, Bordetella(보르데텔라속) pertussis, Burkholderia cepacia, Burkholderia mimosarum, Burkholderia thailandensis, Campylobacter jejuni, Chlamydophila pneumoniae, Chlamydophila psittaci, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia trachomatis, Clostridium acidisoli, Clostridium aciditolerans, Clostridium bartlettii, Clostridium botulinum, Clostridium cellobioparum, Clostridium cellulovorans, Clostridium citroniae, Clostridium clariflavum, Clostridium cocleatum, Clostridium difficile, Clostridium hiranonis, Clostridium irregular, Clostridium perfringens, Clostridium return, Clostridium sulfidigenes, Clostridium tetani, Clostridium thermobutyricum, Corynebacterium appendics, Corynebacterium callunae, Corynebacterium diphtheria, Coxiella burnetii, Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Escherichia coli, Escherichia albertii, Enterobacter cloacae, Enterococcus aecalis, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Erysipelothrix inopinata, Erysipelothrix rhusiopathiae, Erysipelothrix rhusiopathiae, Eikenella corrodens, Erwinia carotovora, Francisella tularensis, Fusobacterium necrophorum, Gardnerella vaginalis, Haemophilus influenza, Helicobacter brantae, Helicobacter pylori, Klebsiella pneumoniae, Lactobacillus plantarum, Legionella brunensis, Legionella drancourtii, Legionella drozanskil, Legionella impletisoli, Legionella pneumophila, Listeria monocytogenes, Leptospira alexanderi, Leptospira meyeri, Leptospira wolbachil, Micrococcus luteus, Moraxella catarrhalis, Moniliformis streptococcus, Mycobacterium abscessus, Mycobacterium aurum, Mycobacterium brumae, Mycobacterium farcinogenes, Mycobacterium fortuitum, Mycobacterium leprae, Mycobacterium marinum, Mycobacterium moriokaense, Mycobacterium pallens, Mycobacterium pneumoniae, Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium tusciae, Mycoplasma pneumonia, Neisseria gonorrhoeae, Neisseria meningitides, Nocardia asteroids, Nocardia nova, Pseudomonas aeruginosa, Pasteurella multocida, Photorhabdus luminescens, Porphyromonas gingivalis, Propionibacterium acnes, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas entomophila, Rickettsia aeschlimannii, Rickettsia asiatica, Rickettsia canadensis, Rickettsia montanensis, Rickettsia raoultii, Rickettsia rickettsia, Salmonella enterica, Salmonella enteritis, Salmonella typhi, Salmonella typhimurium, Serratia liquefaciens, Serratia marcescens, Spiroplasma poulsonii, Shigella sonnei, Shigella dysenteriae, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus hominis, Staphylococcus saprophyticus, Staphylococcus xylosus, Stenotrophomonas maltophilia, Streptococcus agalactiae, Streptococcus anginosus group, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus pseudopneumoniae, Streptococcus pyogenes(groups A, B, C, G, F), Streptococcus viridans, Treponema azotonutricium, Treponema berlinense, Treponema denticola, Treponema medium, Treponema pallidum, Treponema primitia, Vibrio cholera, Xenorhabdus nematophila, Yersinia pseudotuberculosis 및 Yersinia pestis 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 상기 세균은 Escherichia(에스케리키아), Klebsiella(클렙시엘라), Burkholderia(버크홀데리아), Streptococcus(스트렙토코커스) 속 등에 속하는 세균일 수 있고, 보다 구체적으로, E. coli, K. pneumoniae, B. cepacia, S. pseudopneumoniae 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 감염성 질환을 유발하는 곰팡이는 일 예로, Absidia(활털곰팡이속) spp, Alternaria(알터나리아속) spp, Aspergillus(누룩곰팡이속) spp, Ascosphaera(아스코스패라) spp, Ajellomyces(아젤로미세스) spp, Alternaria(알터나리아속) spp, Basidiobolus(바시디오볼루스) spp, Basidiomycete(담자균) spp, Bipolaris(바이폴라리스속) spp, Blastomyces(블라스토미세스) spp, Batrachochytrium(항아리곰팡이) spp, Beauveria(백강균속) spp, Bjerkandera(브제르칸데라) spp, Botrytis(보트리티스) spp, Blumeria(밀흰가루병균) spp, Candida(칸디다) spp, Coprinus(먹물버섯속) spp, Chromoblastomycosis(크로모블라스토마이코시스) spp, Cladosporium(클라도스포륨속) spp, Cladophialphora(클라도피알로포라) spp, Chaeotomium(케토미움속) spp, Conidiobolus(코니디오볼루스속) spp. Coccidioides(콕시디오이데스속) spp, Colletotrichum(콜레토트리쿰속) spp, Cordyceps(동충하초속) spp, Cryptococcus(크립토코커스) spp, Cunninghamella(쿤닝하멜라속) spp, Curvularia(쿠르불라리아속) spp, Dactylaria(닥티라리아) spp, Dacrymyces(다크리미세스) spp, Epidermophyton(에피더모피톤) spp, Exophiala(엑소피알라속) spp, Fusarium(푸사리움속) spp, Geotrichum(게오트리쿰속) spp, Geomyces(지오미세스) spp, Histoplasma(히스토플라스마속) spp, Lacazia(라카지아) spp, Lasiodiplodia(라시오디플로디아) spp, Leptosphaeria(렙토스패리아) spp, Lomentospora(로멘토스포라) spp, Malassezia(말라세시아속) spp, Madurella(마두렐라) spp, Malassezia(말라세시아 속) spp, Magnaporthe(마그나포르테) spp, Metarhizium(메타르히지움) spp, Microsporum(소포자균) spp, Mycosphaerella(미코스페레라속) spp, Memnoniella(멤노니엘라) spp, Melampsora(멜람프소라) spp, Mucor(털곰팡이속) spp, Mucorales(털곰팡이목) spp, Mucormycetes(접합균류, Zygomycetes) spp, Myrothecium(미로쎄시움) spp, Nectria(알보리수버섯속) spp, Paracoccidioides(파라콕시디오이데스) spp, Penicillium(푸른곰팡이) spp, Pneumocystis(폐포자충속) spp, Pneumocystis(폐포자충속) spp, Puccinia(푸치니아속) spp, Pseudoallescheria(슈달레쉐리아) spp, Pythium(피시움속) spp, Ramichloridium(라미클로리디움) spp, Rhizopus(거미줄곰팡이속) spp, Rhizoctonia(라이족토니아속) spp, Saccharomyces(사카로미세스속) spp, Scedosporium(스케도스포륨) spp, Scedosporium(세도스포리움) spp, Schizophyllum(치마버섯) spp, Sclerotinia(균핵버섯속) spp, Scopulariopsis(빗자루곰팡이속) spp, Scytalidium(스키탈리디움) spp, Stachybotrys(스타키보트리스) spp, Sporotrix(스포로트릭스속) spp, Septoria(셉토리아속) spp, Syncephalastrum(신세팔라스트룸) spp, Talaromyces(탈라로미케스) spp, Tremella(흰목이속) spp, Trichophyton(백선균속) spp, Trichosporon(트리코스포론속) spp, Trichoderma(트리코데르마속) spp, Ulocladium(울로크라디움) spp, Ustilago(깜부기병균속) spp 및 Zymoseptoria(지모셉토리아) spp 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
그 예로, 상기 곰팡이는 Absidia corymbifera, Alternaria alternate, Aspergillus alternate, Aspergillus versicolor, Aspergillus fumigatus, Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Ajellomyces dermatitidis, Basidiobolus ranarum, Bipolaris spicifera, Blastomyces dermatitidis, Blastomyces gilchristii, Batrachochytrium dendrobatidis, Beauveria bassiana, Botrytis cinerea, Blumeria graminis, Candida albicans, Candida auris, Candida glabrata, Candida krusei, Candida lusitaniae, Candida parapsilosis, Candida krusei, Candida silvativa, Candida tropicalis, Coprinus cinereus, Cladosporium herbarum, Cladosporium immitis, Cladophialphora bantianum, Conidiobolus coronatus, Conidiobolus incongruus, Coccidioides immitis, Coccidioides posadasii, Cryptococcus gattii, Cryptococcus neoformans, Cunninghamella bertholletiae, Curvularia lunata, Exophiala jeanselmei, Exophiala dermatitidis, Fusarium graminearum, Fusarium moniliforme, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, Dactylaria gallopava, Geotrichum candidum, Geomyces destructans, Histoplasma capsulatum, Lacazia loboi, Lomentospora prolificans, Malassezia furfur, Magnaporthe oryzae, Metarhizium anisopliae, Mycosphaerella graminicola, Melampsora lini, Mucor circillenoides, Mucor mucedo, Mucor pusillus, Paracoccidioides brasiliensi, Paracoccidioides lutzii, Penicillium brevicompactum, Penicillium chrysogenum, Penicillium citrinum, Penicillium corylophilum, Penicillium cyclopium, Penicillium expansum. Penicillium fellutanum, Penicillium marneffei, Penicillium spinulosum, Penicillium viridicatum, Pneumocystis carinii, Pneumocystis jirovecii, Pneumocystis murina, Pseudoallescheria boydii, Pythium debaryanum, Rhizopus oryzae, Rhizoctonia solani, Saccharomyces cerevisiae, Scedosporium anamorphs, Scedosporium apiospermum, Scedosporium prolificans, Schizophyllum commune, Sclerotinia Americana, Stachybotrys chartarum, Sporothrix schenckii, Septoria tritici, Talaromyces marneffei, Trichophyton rubrum, Trichophyton interdigitale, Trichophyton purpureum, Trichophyton violaceum, Trichosporon asahii, Trichoderma lignorum, Trichoderma viride, Ustilago maydis 및 Zymoseptoria tritici 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
구체적으로, 상기 곰팡이는 Aspergillus(누룩곰팡이), Candida(칸디다), Absidia(활털곰팡이), Mucor(털곰팡이), Rhizopus(거미줄곰팡이) 속 등에 속하는 곰팡이일 수 있고, 보다 구체적으로, 칸디다 알비칸스(Candida albicans), 아스페르길루스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus), 압시디아 코림비페라(Absidia corymbifera), 뮤코 서시넬로이드(Mucor circillenoides), 뮤코 뮤세도(Mucor mucedo), 뮤코 푸실러스(Mucor pusillus), 리조푸스 오리제(Rhizopus oryzae) 등일 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 용어 "예방"은 상기 조성물의 투여에 의해 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환을 억제시키거나 발생을 지연시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 용어, "치료"는 상기 조성물의 투여에 의해 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환에 의한 증세가 호전되거나 이롭게 변경되는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 용어, "세포치료제"는 개체로부터 분리, 배양 및 특수한 조작을 통해 제조된 세포 및 조직으로 치료, 진단 및 예방의 목적으로 사용되는 의약품(미국 FDA 규정)으로서, 세포 혹은 조직의 기능을 복원시키기 위하여 살아있는 자가, 동종, 또는 이종 세포를 체외에서 증식 선별하거나 다른 방법으로 세포의 생물학적 특성을 변화시키는 등의 일련의 행위를 통하여 치료, 진단 및 예방의 목적으로 사용되는 의약품을 의미한다.
상기 세포치료제 조성물은 본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함함으로써 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환의 예방 또는 치료 효능이 있는 것일 수 있다.
상기 세포치료제 조성물은 조성물 총 중량에 대하여 상기 iNK 세포를 1.0x10 내지 1.0x1010개 세포/ml, 구체적으로 1.0x106 내지 1.0x109개 세포/ml로 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 세포치료제 조성물은 약학 분야의 통상의 방법에 따라 환자의 신체 내 투여에 적합한 단위 투여형의 약학 제제로 제형화시켜 투여할 수 있으며, 상기 제제는 1회 또는 수회 투여에 의해 효과적인 투여량을 포함한다. 이러한 목적에 적합한 제형으로는 비경구투여 제제로서 주사용 앰플과 같은 주사제, 주입 백과 같은 주입제 및 에어로졸 제제와 같은 분무제 등이 바람직할 수 있다. 상기 주사용 앰플은 사용 직전에 주사액과 혼합 조제할 수 있으며, 주사액으로는 생리 식염수, 포도당, 만니톨, 링거액 등을 사용할 수 있다. 또한, 주입 백은 염화폴리비닐 또는 폴리에틸렌 재질의 것을 사용할 수 있으며, 박스터(Baxter), 벡톤 디킨슨(Becton dickinson), 메드셉(Medcep), 내셔날 호스피탈 프로덕츠(National hospital products) 또는 테루모(Terumo) 사의 주입 백을 예시할 수 있다.
상기 약학 제제에는 상기 유효성분 외에 하나 또는 그 이상의 약학적으로 허용가능한 통상의 불활성 담체, 예를 들어, 주사제의 경우에는 보존제, 무통화제, 가용화제 또는 안정화제 등을, 국소 투여용 제제의 경우에는 기제(base), 부형제, 윤활제 또는 보존제 등을 추가로 포함할 수 있다.
이렇게 제조된 본 발명의 세포치료제 조성물 또는 이의 약학 제제는 당업계에서 통상적으로 사용하는 투여방법을 이용하여 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환의 치료에 사용되는 다른 세포와 함께 또는 그러한 세포와의 혼합물의 형태로 투여될 수 있으며, 구체적으로 치료가 필요한 환자의 질환 부위에 직접 생착 또는 이식하거나 복강에 직접 이식 또는 주입하는 것이 가능하나 이에 한정되지는 않는다. 또한, 상기 투여는 카테터를 이용한 비외과적 투여 및 질환부위 절개 후 주입 또는 이식 등 외과적 투여방법 모두 가능하다. 또한 통상의 방법에 따라 비경구적으로, 예를 들면 직접 병변에 투여하는 것 외에 혈관 내 주입에 의한 이식도 가능하다.
상기 세포치료제 조성물은 1일 0.0001 내지 1,000 mg/kg으로, 구체적으로 0.01 내지 100 mg/kg의 용량으로 투여할 수 있으며, 상기 투여는 하루에 한 번 또는 수회 나누어 투여할 수도 있다. 그러나, 유효성분의 실제 투여량은 치료하고자 하는 질환, 질환의 중증도, 투여경로, 환자의 체중, 연령 및 성별 등의 여러 관련 인자에 비추어 결정되어야 하는 것으로 이해되어야 하며, 따라서, 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.
본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포는 다양한 바이러스에 대해 항바이러스 효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 일 구현예에서는, 본 발명의 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 바이러스에 감염되지 않은 B-lymphoma Ramos 및 EBV에 감염된 B-lymphoma Raji 세포에 대한 항바이러스 효과를 확인한 결과, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포는 모두 PBMC-NK 세포에 비해 바이러스 감염 세포 살상능이 우수하였으며, 비감염 Ramos보다 EBV 바이러스에 감염된 Raji에 대해 비교적 높은 독성을 가진 것을 확인하였다(도 3A). 또한, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포는 PBMC-NK 세포 대비 CD107a+ 세포 빈도가 현저히 증가하였으며(도 3B), LMP-1 발현 감소 정도가 PBMC-NK 세포에 비하여 높은 것을 확인하였다(도 3C).
본 발명의 다른 일 구현예에서는, OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포가 인간면역결핍 바이러스(Human immunodeficiency virus, HIV)에 감염된 CEM T 세포, Influenza 바이러스에 감염된 HEK-293T 세포, Papilloma 바이러스에 감염된 HK2 근위세뇨관 세포 및 Hepatitis 바이러스에 감염된 SNU449 간 세포에 대해 PBMC-NK 세포와 비교하여 낮은 E(Effector NK cell):T(Target cell) 비율에서도 높은 살상능(도 4A, 도 5A, 도 6A 및 도 7A)과 높은 CD107a+ 발현 빈도(도 4B, 도 5B, 도 6B 및 도 7B)를 나타냄을 확인하였다.
본 발명의 또 다른 일 구현예에서는, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 SARS-CoV-2 바이러스에 감염된 세포의 사멸을 증가시킴을 확인하였다(도 8).
이를 통해, iNK 세포인 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포 및 NK-92 세포에 비해 RNA 바이러스 및 DNA 바이러스에 대해 현저한 항균 효능을 나타냄을 확인하였다.
본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포는 다양한 세균에 대해 항균 효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 일 구현예에서는, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 그람음성 세균인 대장균에 대한 살상 효과를 공배양 후 E. coli 군집수(도 9A)와 CD107a+ 발현 세포 빈도(도 9B)를 통해 확인한 결과 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포에 비해 높은 항균 효능을 가진 것을 확인하였다.
본 발명의 다른 일 구현예에서는, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 그람음성 세균인 K. pneumoniae 및 B. cepacia에 대한 세포 살상능을 증가시킴을 확인하였다(도 10A).
본 발명의 또 다른 일 구현예에서는, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 그람양성 세균인 연쇄상구균에 대한 항균 효과를 공배양 후 CD107a+ 발현 세포 빈도를 통해 확인한 결과, OSKM-iNK II 세포가 PMBC-NK 세포에 비해 높은 항균 효능을 가진 것을 확인하였다(도 10B).
이를 통해, iNK 세포인 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포 및 NK-92 세포에 비해 그람음성 세균 및 그람양성 세균에 대해 현저한 항균 효능을 나타냄을 확인하였다.
본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포는 다양한 곰팡이에 대해 항곰팡이 효과를 나타낼 수 있다.
본 발명의 일 구현예에서는, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 칸디다 곰팡이의 일종인 칸디다 알비칸스(Candida Albicans)에 대한 항곰팡이 효과를 공배양 후 CD107a+ 발현 세포 빈도(도 11)를 통해 확인한 결과, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포에 비해 높은 항곰팡이 효능을 가진 것을 확인하였다.
본 발명의 다른 일 구현예에서는, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 아스페르길루스균에 감염된 세포의 사멸을 증가시킴을 확인하였다(도 12).
본 발명의 또 다른 하나의 양태는, 본 발명의 방법으로 제조된 iNK 세포를 유효성분으로 포함하는, 감염성 질환 및/또는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명의 조성물은 본 발명의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함함으로써 감염성 질환 및/또는 상기 감염성 질환으로부터 야기되는 염증성 질환에 대한 예방 또는 치료 효능이 있는 것일 수 있다.
본 발명의 약학 조성물은 조성물 총 중량에 대하여 상기 iNK 세포를 1.0x104 내지 1.0x1010개 세포/ml, 구체적으로 1.0x106 내지 1.0x109개 세포/ml로 포함할 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
상기 약학 조성물은 약학 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 약학적으로 허용가능한 담체, 부형제 또는 희석제를 추가로 포함할 수 있고, 상기 담체는 비자연적 담체(Non-naturally occurring carrier)를 포함할 수 있다. 상기 담체, 부형제 및 희석제로는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다.
또한, 상기 약학 조성물은 각각 통상의 방법에 따라 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제, 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제, 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조제제, 경피흡수제, 겔제, 로션제, 연고제, 크림제, 첩부제, 카타플라스마제, 페이스트제, 스프레이, 피부 유화액, 피부 현탁액, 경피 전달성 패치, 약물 함유 붕대 또는 좌제의 형태로 제형화하여 사용할 수 있다.
구체적으로, 제형화할 경우 통상 사용하는 충진제, 중량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제될 수 있다. 경구투여를 위한 고형제제로는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등을 포함하지만, 이에 제한되지 않는다. 이러한 고형제제는 적어도 하나 이상의 부형제, 예를 들면, 전분, 칼슘 카보네이트, 수크로오스, 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 조제될 수 있다. 또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제 등도 사용될 수 있다. 경구를 위한 액상물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등을 첨가하여 조제될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제는 멸균된 수용액, 비수성 용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제 및 좌제를 포함한다. 비수성 용제 및 현탁제로는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 오일, 에틸올레이트와 같은 주사가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔, 마크로골, 트윈 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 약학 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여될 수 있다. 상기 용어, "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분한 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 개체 종류 및 중증도, 연령, 성별, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료 기간, 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 예를 들면, 상기 약학 조성물은 1일 0.0001 내지 1000 mg/kg으로, 구체적으로 0.001 내지 100 mg/kg의 용량으로 투여할 수 있으며, 상기 투여는 하루에 한 번 또는 수회 나누어 투여할 수도 있다.
상기 약학 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 그리고 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
상기 "투여"는 어떠한 적절한 방법으로 개체에게 본 발명의 조성물을 도입하는 것을 의미하며, 상기 조성물의 투여 경로는 목적 조직에 도달할 수 있는 한 어떠한 일반적인 경로를 통하여 투여될 수 있다. 복강 내 투여, 정맥 내 투여, 근육 내 투여, 피하 투여, 피내 투여, 경구 투여, 국소 투여, 비 내 투여될 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다.
상기 "개체"는 감염성 질환 및/또는 염증성 질환이 발병하였거나 발병할 수 있는 인간, 원숭이, 소, 말, 양, 돼지, 닭, 칠면조, 메추라기, 고양이, 개, 마우스, 쥐, 토끼 또는 기니아 피그를 포함한 모든 동물을 의미한다. 본 발명의 약학 조성물을 개체에게 투여함으로써 상기 질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있다면 개체의 종류는 제한없이 포함될 수 있다.
본 발명의 또 다른 하나의 양태는, 상기 세포치료제 조성물 또는 약학 조성물을 인간을 제외한 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 감염성 질환 및/또는 염증성 질환의 치료방법을 제공한다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명의 또 다른 하나의 양태는, a) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질을 함유하는 제 1용기; b) 본 발명의 제1배지를 함유하는 제 2용기; 및 c) 본 발명의 제2배지를 함유하는 제 3용기;를 포함하는, iNK 세포 제조용 직접 리프로그래밍 유도 배지 키트를 제공한다.
여기에서 사용되는 용어는 전술한 바와 같다.
본 발명의 키트는 상기 a) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질을 함유하는 제 1용기, b) 본 발명의 제1배지를 함유하는 제 2용기 및 c) 본 발명의 제2배지를 함유하는 제 3용기를 포함하여 iNK 세포 제조용 직접 리프로그래밍 배지로 사용될 수 있는 도구를 의미한다. 상기 키트는 그 종류가 특별히 제한되지 아니하며, 당해 기술 분야에서 통상적으로 사용되는 형태의 키트를 사용할 수 있다.
본 발명의 상기 키트는 d) 본 발명의 제3배지를 함유하는 제4용기를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 상기 키트는 상기 i) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 및 제2배지 또는 ii) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 제2배지; 및 제3배지가 각각 개별 용기에 담긴 형태, 또는 하나 이상의 구획으로 나누어진 한 개의 용기 내에 담긴 형태로 포장되어 있을 수 있으며, 상기 i) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 및 제2배지 또는 ii) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 제2배지; 및 제3배지는 각각 1회 투여 용량의 단위 용량 형태로 포장되어 있을 수 있다.
상기 키트 내의 상기 i) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 및 제2배지 또는 ii) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 제2배지; 및 제3배지는 당업자의 실험 계획에 따라 적절한 시기에 순차적으로 투여될 수 있다.
본 발명의 상기 키트는 상기 i) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 및 제2배지 또는 ii) 리프로그래밍 인자를 코딩하는 핵산분자(DNA 또는 RNA), 이를 포함하는 벡터 또는 단백질; 제1배지; 제2배지; 및 제3배지의 각각의 첨가량, 첨가 방법과 첨가 빈도 등을 기재한 사용설명서를 더 포함할 수 있다.
본 발명은 세포에 복합 전사인자를 도입하고, 사이토카인, 성장인자 및 저분자 화합물의 최적화된 조성물을 이용하여 생산 효율이 개선된 유도 자연살해(induced natural killer; iNK) 세포 리프로그래밍 방법을 구축하고, 이를 이용하여 유도 자연살해(induced natural killer; iNK) 세포를 효율적으로 제조할 수 있음을 확인하였다. 본 발명을 통해 제작된 iNK 세포는 바이러스, 세균 및 곰팡이 감염 세포에 대한 세포 살상능이 우수한 바, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제 및 조성물로 적용할 수 있다.
도 1은 직접 리프로그래밍에 의한 유도 자연살해(induced natural killer; iNK)세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 배양 조건(A), 제1배지 및 제2배지에서 서로 다른 기간 동안 배양하는 조건(B) 및 도 1B의 조건에 따라 배양한 세포의 NK 특이적 마커의 발현을 검증한 결과(C)이다.
도 2는 도 1A의 OSKM-iNK I 배양 및 OSKM-iNK II 배양 조건에 따라 제조한 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포에 대해 NK 마커를 이용하여 NK 세포 생산을 확인한 결과(A) 및 OSKM-iNK I 배양 및 OSKM-iNK II 배양 조건에 따른 iNK 세포 생산 효율(B)이다.
도 3은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 엡스타인바 바이러스(Epstein-Barr Virus, EBV)에 감염된 B-lymphoma Raji 세포에 대한 세포 살상능(A), EBV 감염된 Raji 세포에서의 CD107a+ 세포 빈도(B) 및 EBV 감염된 Raji 세포에서의 LMP-1(Latent Membrane Protein 1) 발현 수준(C)이다.
도 4은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 인간면역결핍 바이러스(Human immunodeficiency virus, HIV)에 감염된 CEM T 세포에 대한 세포 살상능(A) 및 CD107a+ 세포 빈도(B)이다.
도 5는 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 인플루엔자(Influenza) 바이러스에 감염된 HEK-293T 세포에 대한 세포 살상능(A) 및 CD107a+ 세포 빈도(B)이다.
도 6은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 파필로마(Papilloma) 바이러스에 감염된 HK2 근위세뇨관 세포에 대한 세포 살상능(A) 및 CD107a+ 세포 빈도(B)이다.
도 7은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 헤파티티스(Hepatitis) 바이러스에 감염된 SNU449 간 세포에 대한 세포 살상능(A) 및 CD107a+ 세포 빈도(B)이다.
도 8은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포와 SARS-CoV-2 바이러스에 감염된 세포의 공배양에 따른 세포 사멸 분석 결과이다.
도 9는 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 배양에 따른 대장균 군집수(A) 및 CD107a+ 세포 빈도(B) 결과이다.
도 10은 OSKM-iNK II 세포 배양에 따른 그람음성 세균 및 그람양성 세균에 대한 항균 효능을 분석한 결과이다. OSKM-iNK II 세포 배양에 따른 그람음성 세균인 폐렴막대균(Klebsiella pneumoniae) 및 버크홀데리아 세파시아(Burkholderia cepacia) 군집수 결과(A), OSKM-iNK II 세포 배양에 따른 그람양성 세균인 연쇄상구균의 CD107a+ 세포 빈도(B) 결과이다.
도 11은 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포와 칸디다 알비칸스(Candida albicans)와의 공배양에 따른 CD107a+ 세포 빈도 결과이다.
도 12는 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 아스페르길루스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)에 대한 항곰팡이 활성 분석 결과이다.
이하 본 발명을 실시예 및 실험예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예 및 실험예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예 및 실험예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 리프로그래밍 배양을 통한 iNK(induced natural killer) 세포 제조 및 NK(Natural killer) 특이적 마커의 발현 검증
1-1. iNK 세포 제조
분리된 말초혈액 단핵세포(Peripheral blood mononuclear cell: PBMC)를 배양액(2.5% StemPro-34 영양 보충물(Nutrient supplement), 2 mM 글루타맥 스(Glutamax) I, 1% 페니실린/스트렙토마이신(Penicillin/Streptomycin), 20 ng/ml 인간 IL(Interleukin)-3, 20 ng/ml 인간 IL-6, 100ng/ml 인간 SCF(Stem cell factor), 100 ng/ml 인간 FLT3L(FMS-like tyrosine kinase ligand)을 포함하는 Stempro SFEM II)에서 2 일에 한번씩 배지를 교환하며 4 일간 배양하였다.
상기 PBMC 세포에 리프로그래밍 인자(OCT4, SOX2, KLF4 및 MYC)를 도입하기 위해 리프로그래밍 인자를 발현하는 센다이바이러스 시스템[OCT4, SOX2, KLF4 및 MYC 발현 RNA 기반 센다이바이러스(CytoTune 2.0 Sendai reprogramming kit, Thermo Scientific); OSKM-SeV]를 이용하였다. 구체적으로, PBMC 세포를 상기 센다이바이러스(5 MOI), PBMC 세포 및 폴리브렌(4 μg/ml)가 포함된 표준 배양 배지(SCM 배지)에서 1 일 동안 배양하여 리프로그래밍 인자를 발현하는 센다이바이러스로 형질전환시킨 후, 다음날부터 다음의 제1배지, 제2배지, 또는 제3배지로 순차적으로 교체하면서 배양하였다.
OSKM-iNK I 조건(도 1A)에서는 형질전환된 세포(2x105 개 세포/48-웰 플레이트)를 GSK3β(Glycogen synthase kinase 3β) 저해제(Inhibitor)를 포함하는 제1배지(10% FBS, 1% 페니실린/스트렙토마이신, 100 ng/ml 인간 SCF, 100 ng/ml 인간 FLT3L, 20 ng/ml 인간 IL-3, 20 ng/ml 인간 IL-6, 5 uM CHIR99021(CT99021)을 포함하는 StemSpan SFEM II)에서 8~10일 동안 배양한 후, AHR(Aryl hydrocarbon receptor) 길항제(Antagonist)를 포함하는 제2배지(10% FBS, 1% 페니실린/스트렙토마이신, 20 ng/ml 인간 SCF, 20 ng/ml 인간 FLT3L, 200 IU/ml 인간 IL-2, 20 ng/ml 인간 IL-7, 20 ng/ml 인간 IL-15, 2 uM 스템레게닌 I(StemRegenin I, SR1)을 포함하는 StemSpan SFEM II)에서 14~16 일 동안 배양하여 NK 세포(OSKM-iNK I 세포)로 유도하였다.
OSKM-iNK II 조건(도 1B)에서는 형질전환된 세포(2x105 개 세포/48-웰 플레이트)를 상기 제1배지에서 3~6일 동안 배양한 후, 상기 제2배지에서 12~15일 동안 배양하고, 이후 제3배지(10% FBS, 1% 페니실린/스트렙토마이신, 200 IU/ml 인간 IL-2, 20 ng/ml 인간 IL-15를 포함하는 RPMI 1640)에서 6일 이상 배양하여 NK 세포(OSKM-iNK II 세포)로 유도하였다.
1-2. NK 세포 제조 수율 확인
상기 실시예 1-1의 OSKM-iNK I 세포 또는 OSKM-iNK II 세포의 생산 여부 및 수율을 확인하기 위해, CD56 항체 및 CD3 항체로 상기 세포를 염색하고 유세포 분석기(Flow cytometry)를 이용하여 NK 세포군(CD56+ 및 CD3-)의 비율을 분석하였다.
그 결과, NK 세포(CD56+CD3-)는 OSKM-iNK I 조건과 OSKM-iNK II 조건에서 모두 97 % 이상의 비율로 존재하여, OSKM-iNK I 조건과 OSKM-iNK II 조건에서 높은 효율로 NK 세포로 제조되었음을 확인하였다(도 2A).
또한, 제3배지를 추가로 사용한 OSKM-iNK II 조건에서는 OSKM-iNK I 조건에 비해 NK 세포 수율이 평균 약 5 배 이상 높아(도 2B), OSKM-iNK II 조건에서 NK 세포를 약 5배 이상의 현저히 개선된 수율로 생산할 수 있음을 확인하였다.
실시예 2: 배지 구성 요소가 iNK 세포 제조 수율에 미치는 영향
상기 실시예 1-1과 동일한 방법으로 PBMC에 리프로그래밍 인자(OCT4, SOX2, KLF4 및 MYC)를 발현하는 센다이바이러스를 형질전환하여 도입한 후, 도 1B에 도시한 바와 같이 제1배지 및 제2배지에서 서로 다른 기간 동안 배양하였다. 제3배지는 18일째(D18) 이후 배양에서 사용하였다.
구체적으로, 배양 조건은 다음과 같다.
- I 조건: 형질전환 후 다음날(D1)부터 D18까지 제2 배지에서 배양하였다.
- II 조건: D1부터 D4까지 제1배지에서 배양한 후 D5부터 D18까지 제2배지에서 배양하였다.
- III 조건: D1부터 D6까지 제1배지에서 배양한 후 D7부터 D18까지 제2배지에서 배양하였다.
- IV 조건: D1부터 D8까지 제1배지에서 배양한 후 D9부터 D18까지 제2배지에서 배양하였다.
- V 조건: D1부터 D10까지 제1배지에서 배양한 후 D11부터 D18까지 제2배지에서 배양하였다.
상기 배양을 통해 NK 세포의 생산 여부 및 수율을 확인하기 위해, 유세포 분석기를 이용하여 NK 세포군(CD56+ 및 CD3-)의 비율을 분석하였다.
그 결과, NK 세포(CD56+CD3-)는 V 조건(30%)보다 II 조건(54 %), III 조건(65%) 및 IV 조건(61%)에서 더 높은 비율로 존재하여, 제1배지에서의 배양 시간보다 제2배지에서의 배양 시간이 더 길 때 NK 세포 제조 수율이 증가함을 확인하였다(도 1C). 반면, 제2배지에서만 배양하였을 때는 NK 세포의 비율이 거의 확인되지 않았다.
실시예 3: iNK의 항바이러스 효능 검증
3-1. iNK 세포와 인간 말초혈액세포 유래 자연살해 세포의 바이러스 감염 세포에 대한 세포 살상능 비교
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 항바이러스 효과를 확인하기 위해, 바이러스에 감염되지 않은 Ramos(Human B-lymphoma) 및 엡스타인바 바이러스(Epstein-Barr virus, EBV)에 감염된 Raji에 대한 세포 살상능(세포 독성)을 측정하였다. 양성 대조군으로 PBMC-NK 세포를 사용하였다.
양성 대조군인 PBMC-NK 세포는 NK isolataion kit을 이용하여 PBMC 세포로부터 분리하였다. 상기 PBMC-NK 세포는 PBMC 세포로부터 분리 후에 NK 배지(1 % 페니실린/스트렙토마이신, 200 IU/ml 인간 IL-2 및 20 ng/ml 인간 IL-15을 포함하는 RPMI1640)에서 2 일 동안 배양한 다음 사용하였다.
구체적으로, EBV 감염 Raji 및 비감염 Ramos를 10 % FBS을 포함하는 DMEM 배지에서 각각 1x105개 세포/ml이 되도록 희석한 후, 칼세인-AM을 최종 농도가 25 μM이 되도록 첨가하고, 37℃에서 1 시간 배양 후에 DMEM 배지로 세척하여, 칼세인 표지 표적 세포를 제작하였다.
상기 실시예 1-1의 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 배양액을 이용하여 각각 0.25x105개 세포/ml, 1x105개 세포/ml 및 2.5x105개 세포/ml의 밀도로 희석하여 준비한 후에 96 웰 플레이트에 100 ml씩 분주하였다. 상기의 96 웰 플레이트에 제작한 칼세인 표지 표적 세포(1x105개 세포/ml)를 100 ul/well씩 첨가한 후, 400 g로 1분간 원심분리하고, 37℃, 5 % CO2의 배양기에서 4시간 동안 공배양하였다. 각 웰로부터 상층액 100 ul를 취하여 형광 플레이트 리더(485 nm/535 nm)로 측정하였다. 바이러스 감염 세포 살상능(%)은 아래 수식에 따라서 산출하였다.　
세포 살상능(%)={(측정값-최소값)/(최대값-최소값)}x100
상기 식에서, 최소값은 칼세인 표지 표적 세포만 존재하는 웰의 측정값이고, 최대값은 칼세인 표지 표적 세포에 1.0 % TritonX-100을 첨가하여 세포를 완전 용해한 웰의 측정값이다.
그 결과, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포는 모두 PBMC-NK 세포에 비해 바이러스 감염 세포 살상능이 우수하였으며, 비감염 Ramos보다 EBV 바이러스에 감염된 Raji에 대해 비교적 높은 독성을 가진 것을 확인하였다(도 3A).
3-2. iNK 세포와 인간 말초혈액세포 유래 자연살해 세포의 바이러스 감염 세포에 대한 CD107a + 세포 빈도 비교
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포와 EBV 감염 Raji 및 비감염 Ramos를 공배양하여 CD107a+ 세포의 빈도를 확인하였다.
구체적으로, EBV 감염 Raji 및 비감염 Ramos 각각 1x106개 세포/ml와, OSKM-iNK I 세포, OSKM-iNK II 세포 및 양성 대조군으로 PBMC-NK 세포 각각 1x106개 세포/ml를 6 웰 플레이트에 1 ml씩 분주한 후 400 g로 1 분간 원심분리하고, 이를 37℃, 5 % CO2의 배양기에서 4 시간 동안 공배양한 다음, 상기 세포를 원심분리기를 이용하여 세척 및 회수하고 FACS(Fluorescence-activated cell sorting) 분석하여 감염 세포에 반응하는 CD107a+ 세포의 빈도를 확인하였다.
CD107a+ 세포를 확인하기 위해, OSKM-iNK I 세포, OSKM-iNK II 세포 및 양성 대조군으로 PBMC-NK 세포 각각 1x106개 세포/ml를 형광이 부착된 CD56 및 CD107a에 대한 항체가 첨가된 FACS 완충액에 투여하고 상온에서 20 분 반응 후, 상기 세포를 원심분리기를 이용하여 세척 및 회수하고 FACS 분석하였다.
그 결과, OSKM-iNK I 세포, OSKM-iNK II 세포 및 양성 대조군인 PBMC-NK 세포 모두 Ramos보다 EBV 감염된 Raji와 공배양하였을 때 CD107a+ 세포 빈도(%)가 증가하였으며, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포는 PBMC-NK 세포 대비 CD107a+ 세포 빈도가 현저히 증가하였다(도 3B).
3-3. iNK 세포와 인간 말초혈액세포 유래 자연살해 세포의 바이러스 감염 세포에서의 LMP-1(Latent membrane protein 1) 발현 비교
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포와 EBV 감염 Raji 및 비감염 Ramos를 공배양하여 EBV 특이 유전자인 LMP-1의 발현 정도를 확인하였다.
구체적으로, GFP 발현 렌티바이러스 벡터[CTIP2 (BCL11B) Human shRNA Plasmid Kit (Locus ID 64919) 내의 control vector, ORIGENE, CAT#: TL306424]로부터 얻은 렌티바이러스 5 MOI 및 8 μg/ml 폴리브렌을 처리한 다음, RPMI 배지에서 16 시간 동안 배양 후 신선한 배지로 교체하여, Raji를 GFP-Raji로 형질전환시켰다.
제조한 GFP-Raji 1x106개 세포/ml와 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포 각각 1x106개 세포/ml를 6 웰 플레이트에 각각 1 ml씩 분주하여 파이펫팅하고, 37℃, 5% CO2의 배양기에서 24 시간 동안 공배양한 후에 반응물을 원심분리하여 회수하였다. 양성 대조군으로 PBMC-NK 세포(pNK)를 사용하였다. 세포 반응물로부터 Total RNA를 RNeasy Mini 키트(Qiagen)를 사용하여 추출하고 제조업체의 지침에 따라 SuperScript VILOTM cDNA 합성 키트(Thermo Fisher Scientific Inc.)를 사용하여 역전사하였다. SYBR Green으로 qRT-PCR을 수행하고 7500 Fast real-time PCR 시스템(Applied Biosystems)을 사용하여 LMP-1의 발현 수준을 분석하였다.
여기에서 사용된 프라이머 서열은 하기 표 1과 같다.
서열번호 서열명 서열(5' -> 3')
1 LMP-1 Forward TCCTCCTGTTTCTGGCGATT
2 LMP-1 Reverse GGAGTCATCGTGGTGGTGTTC
3 GFP Forward ATGGTGAGCAAGGGCGAGGAG
4 GFP Reverse CGGTGGTGCAGATGAACTTCAGG
그 결과, 공배양하지 않은 대조군(No target)에 비하여, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포와 GFP-Raji 세포를 공배양할 경우 GFP 대비 LMP-1의 발현 정도가 감소함을 확인하였으며, LMP-1 발현 감소 정도가 PBMC-NK 세포에 비하여 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포에서 높은 것을 확인하였다(도 3C).
3-4. iNK 세포와 인간 말초혈액세포 유래 자연살해 세포의 항바이러스 효과 비교
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 인간면역결핍 바이러스(Human immunodeficiency virus, HIV)에 감염된 CEM T 세포, 인플루엔자(Influenza) 바이러스에 감염된 HEK-293T 세포, 파필로마(Papilloma) 바이러스에 감염된 HK2 근위세뇨관 세포 및 헤파티티스(Hepatitis) 바이러스에 감염된 SNU449 간 세포에 대한 세포 살상능 및 공배양을 통해 발현된 CD107a+ 세포 빈도를 상기와 동일한 방법으로 측정하여 PBMC-NK 세포와 비교하였다.
그 결과, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포와 비교하여 낮은 E(Effector NK cell):T(Target cell) 비율에서도 높은 살상능(도 4A, 도 5A, 도 6A 및 도 7A)과 높은 CD107a+ 발현 빈도(도 4B, 도 5B, 도 6B 및 도 7B)를 나타냄을 확인하였다.
다음으로, 상기의 OSKM-iNK II 세포의 코로나 바이러스에 대한 항바이러스 효과를 확인하기 위해, SARS-CoV-2에 감염된 A549 폐 상피 세포와 바이러스에 감염되지 않은 A549 세포에서의 세포 사멸(Apoptosis)을 측정하였다.
구체적으로, 비감염 A549 세포 또는 SARS-CoV-2 감염 A549 세포와 OSKM-iNK II 세포 각각 10 x 104개를 96 웰 플레이트에 분주하고, 37℃, 5% CO2의 배양기에서 4시간 동안 공배양하였다. 양성 대조군으로 PBMC-NK 세포를 사용하였다.
그 결과, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 SARS-CoV-2 바이러스에 감염된 세포의 사멸을 증가시켰다(도 8).
이에 따라, iNK 세포인 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 우수한 항바이러스 효과를 나타냄을 확인하였다.
실시예 4: iNK의 항균 효능 검증
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 그람음성 세균에 대한 항균 효과를 확인하기 위해 대장균(Escherichia coli, E. coli)에 대한 세포 살상능 및 공배양을 통해 발현된 CD107a+ 세포의 빈도를 측정하였다.
구체적으로, LB 한천 플레이트에서 E. coli DH5a 군집 한 개를 취하여 LB 배지에서 37℃로 16-17 시간 동안 배양한 후, 5000 x g에서 5 분 동안 원심분리한 다음, 10 % FBS를 포함하고 항생제를 포함하지 않는 RPMI 1640 배지로 세척하였다. 상기 실시예 1-1의 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포를 배양액을 이용하여 각각 1X104개 세포/100μl, 3X104개 세포/100μl 및 9X104개 세포/100μl의 밀도로 희석하여 준비한 후에 96 웰 플레이트에 분주하였다. 상기의 96 웰 플레이트에 3X104 개 세포/100μl의 E. coli를 첨가한 후 37℃에서 각각 0 및 2 시간 동안 배양하였다. 상기의 연속 희석한 배양액을 LB 한천 플레이트에 접종하고, 20 시간 동안 37℃에서 배양한 다음, LB 한천 플레이트의 E. coli 군집수를 계산하였다.
CD107a+ 세포의 빈도는 3X104개 세포/100μl의 OSKM-iNK I 세포 또는 OSKM-iNK II 세포 및 3X104 개 세포/100μl의 E. coli(E:T 비율 = 1:1) 반응 2 시간 후에 측정하였다. 배양이 완료된 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포를 형광이 부착된 CD56 및 CD107a에 대한 항체가 첨가된 FACS 완충액에 투여하고 상온에서 20 분간 반응시킨 후, 세포를 원심분리기를 이용하여 세척 및 회수하고 FACS 분석하여 측정하였다.
그 결과, OSKM-iNK I 세포, OSKM-iNK II 세포 및 양성 대조군인 PBMC-NK 모두 낮은 E. coli 군집수(도 9A)를 나타내어, E. coli에 대해 높은 독성을 가짐을 확인하였다[PBMC-NK: 0h(0:1); 19,825개, 2h(0:1); 28,000개, 2h(0.3:1); 3,670개, 2h(1:1); 873개, 2h(3:1); 105개, OSKM-iNK I: 0h(0:1); 19,825개, 2h(0:1); 28,000개, 2h(0.3:1); 1,645개, 2h(1:1); 173개, 2h(3:1); 55개, OSKM-iNK II: 0h(0:1); 19,825개, 2h(0:1); 28,000개, 2h(0.3:1); 1,950개, 2h(1:1); 250개, 2h(3:1); 60개].
또한, 양성 대조군에 비해 현저히 낮은 E. coli 군집수를 나타낸 E:T 비율(1:1)에서, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포는 PBMC-NK 세포에 비해 높은 CD107a+ 세포 빈도를 나타냄을 확인하였다(도 9B).
다음으로, 상기의 OSKM-iNK II 세포의 폐렴막대균(Klebsiella pneumoniae, K. pneumoniae) 및 버크홀데리아 세파시아(Burkholderia cepacia, B. cepacia)에 대한 항균 효과를 확인하기 위해, 상기와 동일한 방법으로 세포 살상능을 측정하였다.
그 결과, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 K. pneumoniae 및 B. cepacia에 대한 세포 살상능을 증가시켰다(도 10A).
다음으로, 상기의 OSKM-iNK II 세포의 그람양성 세균에 대한 항균 효과를 확인하기 위해, 연쇄상구균(Streptococcus pseudopneumoniae)과의 공배양을 통해 발현된 CD107a+ 세포의 빈도를 측정하였다.
구체적으로, TSB(Tryptic soy broth)에 연쇄상구균을 현탁하고, 10 % FBS를 포함하고 항생제를 포함하지 않는 RPMI 1640 배지로 세척하였다. 상기 OSKM-iNK II 세포 또는 양성 대조군인 PBMC-NK 세포를 배양액을 이용하여 각각 15X104개 세포/100μl의 밀도로 희석하여 준비한 후에 96 웰 플레이트에 분주하였다. 상기의 96 웰 플레이트에 15X104개 세포/100μl의 연쇄상구균을 첨가한 후 37℃에서 2시간 동안 5% CO2 조건으로 배양한 후, 유세포 분석기를 통해 CD107a+ 세포의 빈도를 확인하였다.
CD107a+ 세포의 빈도는 OSKM-iNK II 세포 또는 PBMC-NK 세포를 형광이 부착된 CD56 및 CD107a에 대한 항체가 첨가된 FACS 완충액에 투여하고 상온에서 20분 반응시킨 후, 세포를 원심분리기를 이용하여 세척 및 회수하고 FACS 분석하였다.
그 결과, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포에 비해 OSKM-iNK II 세포를 공배양한 시험군에서 연쇄상구균에 대하여 현저한 항균 효과를 나타냄을 확인하였다(도 10B).
이를 통해, iNK 세포인 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포가 PBMC-NK 세포 및 NK-92 세포에 비해 그람음성 세균 및 그람양성 세균에 대해 현저한 항균 효능을 나타냄을 확인하였다.
실시예 5: iNK의 항곰팡이 효능 검증
상기 실시예 1-1에서 제조된 iNK 세포인 OSKM-iNK I 및 OSKM-iNK II 세포의 항곰팡이 효능을 확인하기 위해 칸디다 알비칸스(Candida albicans)와의 공배양을 통해 발현된 CD107a+ 세포의 빈도를 측정하였다.
구체적으로, YPD 한천 플레이트(1 % 효모 추출물, 2 % 펩톤, 2 % D-글루코스 및 1 % 아가 포함)에서 칸디다 알비칸스 군집 한 개를 취하여 YPD 배지(1 % 효모 추출물, 2 % 펩톤 및 2 % D-글루코스 포함)에서 37℃에서 2시간 동안 배양한 후, 1000 x g에서 5분 동안 원심분리한 다음, 10 % FBS를 포함하고 항생제를 포함하지 않는 RPMI 1640 배지로 세척하였다. 상기 실시예 1-1의 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포를 배양액을 이용하여 각각 2X105 개 세포/100μl의 밀도로 희석하여 준비한 후에 96 웰 플레이트에 분주하였다. 상기의 96 웰 플레이트에 2X105 개 세포/100μl의 칸디다균을 첨가한 후(E:T 비율=1:1) 37℃에서 6 시간 동안 공배양한 후, CD107a+ 세포의 빈도를 측정하였다.
CD107a+ 세포의 빈도는 배양이 완료된 OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포를 형광이 부착된 CD56-PE 및 CD107a-APC 항체가 첨가된 FACS 완충액에 투여하고 상온에서 20분간 반응 후, 세포를 원심분리기를 이용하여 세척 및 회수하고 FACS 분석하여 측정하였다.
그 결과, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포와 칸디다균을 공배양한 경우 CD107a+ 세포의 빈도가 가장 높았으며(24.6 %~25.2 %), PBMC-NK 세포와 칸디다균의 공배양(10.0 %), OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포 단독 배양(7.5 %~7.8 %), PBMC-NK 세포 단독 배양(5.6 %) 순으로 CD107a+ 세포의 빈도가 높아, OSKM-iNK I 세포 및 OSKM-iNK II 세포의 CD107a+ 빈도가 양성 대조군인 대조군 PBMC-NK 세포보다 상대적으로 높음을 확인하였다(도 11).
다음으로, 상기의 OSKM-iNK II 세포의 아스페르길루스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)에 대한 항곰팡이 효과를 확인하였다.
구체적으로, 아스페르길루스 푸미가투스 군집을 취하여 감자한천배지(Potato Dextrose Agar, PDA) 플레이트에서 25℃로 5일간 배양한 후, 0.05% Tween 20을 포함하는 PBS 12ml을 첨가하고 화염멸균한 슬라이드 글라스(slide glass)로 긁어내어 균체 현탁액을 수득하였다. 40 μm 셀 스트레이너(Cell Strainer)에 균체 현탁액을 여과하고 4000 rpm, 10분간 원심분리 후 상층액을 제거하여 분생자(Conidia)를 회수하였다. 회수한 분생자를 PBS로 현탁하고 원심분리 후 상층액을 제거하는 과정을 2차례 반복하여 세척하고, RPMI 1640 배지에 현탁하였다. 5X103 개의 분생자를 96 웰 플레이트에 접종하여 37℃, 5% CO2의 배양기에서 4시간 동안 배양하고, 상기 실시예 1-1의 OSKM-iNK II 세포, 양성 대조군인 PBMC-NK 세포와 E:T 비율=1:1로 6시간 동안 공배양하였다. 96 웰 플레이트에서 상층액을 제거하고 멸균 증류수로 세포 용해(cell lysis) 및 세척 후, Coenzyme Q0(2,3-Dimethoxy-5-methyl-p-benzoquinone)이 포함된 XTT(2,3-Bis-(2-Methoxy-4-Nitro-5-Sulfophenyl)-2H-Tetrazolium-5-Carboxanilide) 용액 150 ul를 첨가하였다. 37℃, 5% CO2의 배양기에서 1시간 동안 배양한 후, 상층액 100 ul를 새로운 96 웰 플레이트로 옮기고 마이크로플레이트 리더를 이용하여 450nm, 690nm에서 흡광도를 측정하였다.
그 결과, OSKM-iNK II 세포와의 공배양은 양성 대조군(PMBC-NK 세포) 대비 아스페르길루스균에 감염된 세포의 사멸을 증가시켰다(도 12).
상기 실시예의 결과로부터, 본 발명을 통해 제작된 직접 리프로그래밍에 의한 자연살해세포인 iNK 세포는 바이러스, 세균 및 곰팡이 감염 세포에 대한 세포 살상능이 우수한 바, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제 및 조성물로 적용할 수 있다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (16)

  1. (a) 분리된 세포에 리프로그래밍 인자(Reprogramming factor)를 도입하는 단계;
    (b) 상기 리프로그래밍 인자 도입 후 다음날부터 상기 (a) 단계의 세포를 i) 사이토카인, 성장인자 및 GSK3β(Glycogen synthase kinase 3β) 저해제(Inhibitor)를 포함하는 제1배지에서 배양하여 직접 리프로그래밍의 효율을 증가시키는 단계 및 ii) 사이토카인, 성장인자 및 AHR(Aryl hydrocarbon receptor) 저해제를 포함하는 제2배지에서 배양하여 자연살해(Natural killer) 세포 생산을 촉진시키는 단계를 포함하는 방법으로 제조된 iNK(induced natural killer) 세포를 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 조성물의 제조방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 (a) 단계의 리프로그래밍 인자는 Lin28, Asc11, Pitx3, Nurr1, Lmx1a, Nanog, Oct4, Oct3, Sox2, Klf4 및 Myc로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 방법.
  3. 제1항에 있어서, 상기 (b) 단계의 제1배지는 GSK3β 저해제, IL(Interleukin)-3, IL-6 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함하는 것인, 방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 (b) 단계의 제2배지는 AHR 저해제, IL-2, IL-7, IL-15 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함하는 것인, 방법.
  5. 제1항에 있어서, 상기 방법은 상기 ii) 단계 이후에, 사이토카인 및 성장인자를 포함하는 제3배지에서 배양하여 자연살해세포 생산을 촉진시키는 단계를 추가로 포함하는 것인, 방법.
  6. 제5항에 있어서, 상기 제3배지는 IL-2, IL-15 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 포함하는 것인, 방법.
  7. 제1항에 있어서, 상기 분리된 세포는 자연살해세포를 제외한 체세포인 것인,
    방법.
  8. 제1항에 있어서, 상기 제조된 자연살해세포는 CD56+, CD3- 및 이들의 조합으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 발현하는 것을 특징으로 하는 것인, 방법.
  9. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 세포치료제.
  10. 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항의 방법에 따라 제조된 iNK 세포를 포함하는, 감염성 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  11. 제10항에 있어서, 상기 감염성 질환은 바이러스, 세균 및 곰팡이로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상에 의해 발생하는 것인, 조성물.
  12. 제11항에 있어서, 상기 바이러스는 RNA 바이러스 및 DNA 바이러스로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 조성물.
  13. 제11항에 있어서, 상기 바이러스는 Epstein-Barr(엡스타인바) 바이러스(EBV), Hepatitis 바이러스, Human immunodeficiency(인간 면역결핍) 바이러스(HIV), Influenza(인플루엔자) 바이러스, Papilloma(유두종) 바이러스, SARS(Severe acute respiratory syndrome) (사스) 바이러스, SARS corona(사스 코로나) 바이러스 및 SARS-CoV-2 바이러스로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 조성물.
  14. 제11항에 있어서, 상기 세균은 그람음성 세균 및 그람양성 세균으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 조성물.
  15. 제11항에 있어서, 상기 세균은 Escherichia(에스케리키아), Klebsiella(클렙시엘라), Burkholderia(버크홀데리아) 및 Streptococcus(스트렙토코커스) 속으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 조성물.
  16. 제11항에 있어서, 상기 곰팡이는 Aspergillus(누룩곰팡이), Candida(칸디다), Absidia(활털곰팡이), Mucor(털곰팡이) 및 Rhizopus(거미줄곰팡이) 속으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것인, 조성물.
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