KR20230020108A - pH 반응성 마이크로 입자 및 이를 이용한 암질환 치료용 약학 조성물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 화학적 결합을 통해 제작한 고분자 (HA-DMA)와 폴리락트산-글리콜산 공중합체 (PLGA), 항암 물질로 사용되는 독소루비신 (DOX)을 W1/O/W2 다중 유화법을 이용하여 pH에 민감한 마이크로 입자 (MP)의 제조방법에 관한 것이다. 상기 제작된 마이크로 입자는 pH 변화에 따라 형태가 변화하고, 이로 인해, 마이크로 입자 내에 봉입된 독소루비신과 이온 반발력이 발생하여 구조 붕괴가 일어나 약물의 효과적인 방출이 가능하다. 특히 pH 변화에 따라 방출된 독소루비신은 해당 부위에 효과적인 세포 사멸을 유도한다. 결과적으로 W1/O/W2 다중 유화법을 이용하여 제작한 pH 반응성 마이크로 입자는 자체적인 독성이 없으며, 종양세포에서 효과적인 사멸이 나타나기 때문에 종양 내 치료 분야에서 효과를 기대할 수 있다.
Description
본 발명은 pH 반응성 마이크로 입자 및 이를 이용한 암질환 치료용 약학 조성물을 제공한다.
마이크로 입자 제형은 약물 전달체와 같은 분야에 활용할 수 있어 이를 이용한 많은 연구가 이루어지고 있다. 현재 약물 전달체로써 연구된 마이크로 입자는 수용성 물질이나 생체 거대 분자들을 봉입할 수 있다는 점에서 큰 잠재력을 보여주고 있다. 하지만, 단순한 형태의 마이크로 입자 제형은 원하는 부위에서만 약물을 방출하기에는 부족하다는 단점이 존재한다. 따라서 최근 이러한 점을 보완하기 위한 다양한 시도가 계속되고 있다.
또한, 현재 화학적인 방법을 이용한 치료는 종양 치료에 있어 널리 이용되는 접근 중 하나이다. 하지만, 화학적 약물은 수용액 상에서 용해도가 낮거나 약물 투여 후 여러 부작용이 발생하기 때문에 현재 사용에 있어 제한적이다. 따라서 현재 이러한 제약을 극복하기 위한 다양한 방안으로 pH 변화나 이온성 상호작용과 같이 외부 자극에 반응하는 물질을 이용하는 시도가 진행 중이다. 특히, 암과 같은 질환은 주변 환경의 pH가 정상 세포에 비해 낮아 이러한 점을 이용한다면 약물의 빠른 방출을 유도하여 효과적인 치료 전략이 될 수 있어 많은 관심을 받고 있다.
본 발명의 목적은 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 포함하는 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA)를 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA), 생분해성 고분자 및 치료약물을 포함하는 pH 반응성 마이크로 입자 (micro particle; MP)를 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA)와 치료약물을 수용액 상에서 혼합하여 수분산액 (W1 phase)을 제조하는 단계; 생분해성 고분자를 유기 용매에 용해시켜 유기상 용액 (O phase)을 제조하는 단계; 상기 수분산액 (W1 phase)을 상기 유기상 용액 (O phase)으로 유화시켜 W1/O 에멀전을 제조하는 단계; 및 상기 W1/O 에멀젼을 외부 수상 (W2 phase)에 첨가하여 복합유제 (water in oil in water; W1/O/W2) 형태로 다중 유화시키는 단계를 포함하는, pH 반응성 마이크로 입자 (MP)의 제조방법을 제공하는 데에 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 pH 반응성 마이크로 입자 (MP)를 유효성분으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물을 제공하는 데에 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 포함하는 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA)를 제공한다.
본 발명은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA), 생분해성 고분자 및 치료약물을 포함하는 pH 반응성 마이크로 입자 (MP)를 제공한다.
본 발명은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA)와 치료 약물을 수용액 상에서 혼합하여 수분산액 (W1 phase)을 제조하는 단계; 생분해성 고분자를 유기 용매에 용해시켜 유기상 용액 (O phase)을 제조하는 단계; 상기 수분산액 (W1 phase)을 상기 유기상 용액 (O phase)으로 유화시켜 W1/O 에멀전을 제조하는 단계; 및 상기 W1/O 에멀젼을 외부 수상 (W2 phase)에 첨가하여 복합유제 (water in oil in water; W1/O/W2) 형태로 다중 유화시키는 단계를 포함하는, pH 반응성 마이크로 입자 (MP)의 제조방법을 제공한다.
본 발명은 상기 pH 반응성 마이크로 입자 (MP)를 유효성분으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명에서 제조된 pH 반응성 마이크로 입자 (MP)는 국소 종양세포에 대해 높은 치료 효과를 지닌다. 제작된 마이크로 입자 (MP)는 pH의 변화에 따라 입자를 구성하는 pH 반응성 히알루론산 고분자와 항암 약물 사이에 이온 반발력을 발생시키는 특성으로 인해 종양세포에서 선택적으로 작용한다. 또한, 이러한 마이크로 입자 (MP)는 고분자의 특성으로 인하여 자체적인 독성이 매우 낮아 부작용을 최소화할 수 있다.
도 1의 (a)는 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 포함하는 pH 반응성 히알루론산 고분자 (이하, HA-DMA라고 함)의 합성 모식도를 나타내고, 도 1의 (b)는 HA-DMA의 1H-NMR 분석 결과를 나타낸다.
도 2의 (a)는 pH 7.4와 6.8 PBS (phosphate buffer saline)에서 각각의 마이크로 입자 (micro particle; 이하, MP라고 함)들의 제타 전위 값을 나타낸 도면(n = 3)이며, (b)는 각각의 MP들의 봉입 효율과 함량을 나타낸 도면이며, (c)는 각각의 MP들의 SEM (scanning electron microscope) 이미지를 나타낸다.
도 3는 각각 마이크로 입자들의 pH 7.4 및 pH 6.8 PBS (phosphate buffer saline)에서 약물 방출 동향성을 나타낸다.
도 4는 하기 실시예 5 및 7에 의해 제조된 MP의 독소루비신 (DOX) 약물 방출 개략도를 나타낸다.
도 5의 (a)는 독소루비신 (DOX)이 포함된 MP를 포함한 약물이 처리된 경우의 세포 독성을 CCK-8 assay를 통해 나타낸 도면이며(n = 7, free DOX와 비교하여 **p < 0.01), (b)는 상기 약물이 포함되지 않은 MP로 처리된 경우, 세포 독성을 CCK-8 assay를 통해 나타낸 도면이다(n = 7).
도 6의 (a)는 종양을 유발시킨 누드 마우스에 각각의 MP를 종양에 직접 주사 후 상대적인 종양 크기와 마우스 체중 변화를 나타낸 도면이고, 도 6의 (b)는 종양을 유발시킨 누드 마우스에 각각의 MP를 종양에 직접 주사 후 0일과 7일 후의 마우스의 광학 이미지와 7일 후의 종양 ex vivo 광학 이미지를 나타낸 도면을 나타낸다.
도 7의 (a)는 각각의 MP를 경구 주입한 종양을 유발시킨 누드 마우스에서 얻은 착색 조직 부분의 이미지이고, (b)는 상기 누드 마우스의 조직 독성을 확인한 도면이다.
도 2의 (a)는 pH 7.4와 6.8 PBS (phosphate buffer saline)에서 각각의 마이크로 입자 (micro particle; 이하, MP라고 함)들의 제타 전위 값을 나타낸 도면(n = 3)이며, (b)는 각각의 MP들의 봉입 효율과 함량을 나타낸 도면이며, (c)는 각각의 MP들의 SEM (scanning electron microscope) 이미지를 나타낸다.
도 3는 각각 마이크로 입자들의 pH 7.4 및 pH 6.8 PBS (phosphate buffer saline)에서 약물 방출 동향성을 나타낸다.
도 4는 하기 실시예 5 및 7에 의해 제조된 MP의 독소루비신 (DOX) 약물 방출 개략도를 나타낸다.
도 5의 (a)는 독소루비신 (DOX)이 포함된 MP를 포함한 약물이 처리된 경우의 세포 독성을 CCK-8 assay를 통해 나타낸 도면이며(n = 7, free DOX와 비교하여 **p < 0.01), (b)는 상기 약물이 포함되지 않은 MP로 처리된 경우, 세포 독성을 CCK-8 assay를 통해 나타낸 도면이다(n = 7).
도 6의 (a)는 종양을 유발시킨 누드 마우스에 각각의 MP를 종양에 직접 주사 후 상대적인 종양 크기와 마우스 체중 변화를 나타낸 도면이고, 도 6의 (b)는 종양을 유발시킨 누드 마우스에 각각의 MP를 종양에 직접 주사 후 0일과 7일 후의 마우스의 광학 이미지와 7일 후의 종양 ex vivo 광학 이미지를 나타낸 도면을 나타낸다.
도 7의 (a)는 각각의 MP를 경구 주입한 종양을 유발시킨 누드 마우스에서 얻은 착색 조직 부분의 이미지이고, (b)는 상기 누드 마우스의 조직 독성을 확인한 도면이다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
화학적 약물은 수용액 상에서 용해도가 낮거나 약물 투여 후 여러 부작용이 발생하기 때문에 현재 사용에 있어 제한적인 문제가 있었으나, 생체적합성 및 생분해성의 고분자와 pH 반응성 물질을 유기화학적으로 결합하여 새로운 생체고분자를 개발하고 이를 W1/O/W2 다중 유화법을 이용하여 종양세포에서만 작용할 수 있는 새로운 형태의 마이크로 입자 (MP)를 제조함으로써 본 발명을 완성했다.
본 발명은 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 포함하는 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA)를 제공한다.
청구항 1에 있어서, 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자는 하기 화학식 1의 형태인 것을 특징으로 하는 pH 반응성 히알루론산 고분자로,
[화학식 1]
상기 화학식 1의 n은 10 내지 200일 수 있다.
본 발명은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자 (HA-DMA), 생분해성 고분자 및 치료약물을 포함하는 pH 반응성 마이크로 입자 (MP)를 제공한다.
상기 생분해성 고분자는 생분해 특성에 다른 약물 방출제어 성질을 가진 것일 수 있으며, 생분해성 고분자는 폴리락타이드 (PLA), 폴리글리코라이드 (PGA), 폴리(락타이드-코-글리코라이드) (PLGA), 폴리(락타이드-코-글리코라이드)글루코즈로 이루어진 군에서 선택된 하나일 수 있으며, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 치료약물은 양전하 성질 (+charge)을 가진 것일 수 있으며, 바람직하게는 종양세포의 사멸을 유도할 수 있는 독소루비신 (DOX)일 수 있다.
상기 마이크로 입자는 다중 유화법을 이용하여 제조될 수 있다.
상기 마이크로 입자는 평균 입경이 10 내지 15 ㎛일 수 있다.
본 발명은 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자와 치료약물을 수용액 상에서 혼합하여 수분산액 (W1 phase)을 제조하는 단계; 생분해성 고분자를 유기 용매에 용해시켜 유기상 용액 (O phase)을 제조하는 단계; 상기 수분산액 (W1 phase)을 상기 유기상 용액 (O phase)으로 유화시켜 W1/O 에멀전을 제조하는 단계; 및 상기 W1/O 에멀젼을 외부 수상 (W2 phase)에 첨가하여 복합유제 (water in oil in water; W1/O/W2) 형태로 다중 유화시키는 단계를 포함하는, 마이크로 입자 (MP)의 제조방법을 제공한다.
본 발명은 상기 마이크로 입자를 유효성분으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물을 제공한다.
상기 약학 조성물은 마이크로 입자 중의 히알루론산 (HA)에 결합된 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)이 종양세포의 pH 환경에서 탈락하여 노출된 아민기와 치료약물 간의 이온 반발력으로 인해 마이크로 입자가 붕괴되어 치료약물을 방출할 수 있다.
상기 암질환은은 유방암, 난소암, 대장암, 폐암, 뇌암, 자궁경부암, 췌장암, 결장암, 골암, 피부암, 피부 또는 안구내 흑색종, 자궁암, 직장암, 위암, 항문부근암, 결장암, 나팔관암종, 자궁내막암종, 질암, 음문암, 호지킨병(Hodgkin's disease), 식도암, 소장암, 내분비선암, 갑상선암, 부갑상선암, 부신암, 연조직 육종, 요도암, 음경암, 전립선암, 만성 또는 급성 백혈병, 림프구 림프종, 방광암, 신장 또는 수뇨관 암, 중추신경계 (CNS; central nervous system) 종양 및 췌장암으로 이루어진 군에서 선택된 하나로 바람직하게는 유방암일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
상기 약학 조성물은 겔제, 유제, 주사제, 산제, 과립제, 에어로솔제, 페이스트제, 경피흡수제 및 패치제로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상으로 바람직하게는 주사제일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
주사제, 예를 들어, 멸균 주사가능한 수성 또는 유성 현탁액은 분산제 또는 습윤제 및 현탁화제를 사용하여 공지된 기술 분야에 따라 조제될 수도 있다. 멸균 주사가능한 제제는 비독성 비경구 허용되는 희석제 또는 용매, 예를 들어, 1,3-부탄디올 내 용액에서의 멸균 주사가능한 용액, 현탁액 또는 에멀젼일 수도 있다. 허용되는 비히클 및 용매 중에서 채택될 수도 있는 것은 물, 링거 (Ringer's) 용액, U.S.P. 및 등장성 염화나트륨용액이다. 또한, 멸균, 고정 오일은 통상적으로 용매 또는 현탁 매질로서 채택되고 있다. 이를 위하여 합성 모노- 또는 디글리세리드를 포함하는 임의의 무자극 고정 오일이 채택될 수 있다. 또한, 지방산 예컨대 올레산이 주사제의 제조에 사용되고 있다.
주사가능한 제제는 예를 들어 박테리아-보유 필터를 통한 여과에 의해, 또는 사용 전에 멸균수 또는 다른 멸균 주사가능한 배지에 용해 또는 분산될 수 있는 멸균 고체 조성물의 형태인 멸균제를 포함시킴으로써 멸균될 수 있다.
약물의 효과를 연장하기 위하여, 흔히 피하 또는 근육내 주사로부터 약물의 흡수를 느리게 하는 것이 바람직하다. 이는 낮은 수용해도를 갖는 결정질 또는 무정형 물질의 액체 현탁액을 사용함으로써 이루어진다. 그러면 약물의 흡수율은 결국 결정 크기 및 결정질 형태에 좌우될 수 있는 용해율에 좌우된다. 대안으로, 비경구 투여 약물의 지연된 흡수는 오일 비히클에서 약물을 용해 또는 현탁화함으로써 이루어진다.
[준비예 1] 화학물질 구입
히알루론산 (HA, Mn=7kDa)은 Bioland(Korea)에서 구입하였다. 아디픽산 디하이드라자이드 (adipic acid dihydrazide; ADH), N,N '-디사이클로헥실카보디이미드 (N,N′-dicyclohexylcarbodiimide; DCC), N-하이드록시석신이미드 (N-hydroxysuccinimide; NHS), 트리에틸아민 (triethylamine; TEA), 다이메틸설폭사이드 (dimethylsulfoxide; DMSO), 수산화 나트륨 (sodium hydroxide; NaOH), 2,3-디메틸말레산 무수물 (2,3-dimethylmaleic anhydride; DMA), 붕소산 사나트륨 (sodium tetraborate), 독소루비신 (doxorubicin; DOX), 다이클로로메테인 (dichloromethane; DCM), 폴리비닐알코올 (poly(vinyl alcohol); PVA, Mw=12-23kDa), 염화나트륨 (sodium chloride; NaCl), 파라포름알데하이드 (paraformaldehyde)는 Sigma-Aldrich(USA)에서 구입하였다. 폴리락트산-글리콜산 공중합체 (PLGA, RG503H; lactide/glycolide=50/50, Mw=24kDa)는 Boehringer Ingelhein(Germany)에서 구입하였다. 페니실린 (penicillin)과 스트렙토마이신 (streptomycin), 우태혈청 (fetal bovine serum; FBS), RPMI-1640 배양액, 트립신 (trypsin), 에틸렌디아민테트라아세트산 (ethylene diamine tetra-acetic acid; EDTA)는 Welgene Inc.(Korea)에서 구입하였다. CCK-8 (Cell Counting Kit-8)은 Dojindo Molecular Technologies Inc.(Japan)에서 구입하였다.
[준비예 2] 유방암 세포배양
인간 유방암 세포인 MDA-MB-231을 각 1 % 페니실린-스트렙토마이신 (penicillin-streptomycin), 10 % FBS를 첨가한 RPMI-1640 배지에서 5 % CO2농도, 37 ℃의 조건으로 배양하였다. 실험 전에, 0.25 %(w/v) 트립신과 0.03 %(w/v) EDTA 용액을 이용해 세포를 배지에서 분리하고 1×106 cells/mL의 농도로 희석하였다. 각 배지에 분산된 세포는 96-웰 배지에 분주하고 24시간 동안 배양한 뒤에 in vitro 실험에 사용하였다.
[준비예 3] 동물 사육
동물 실험은 6~8주령 암컷 누드 마우스 (BALB/c, Orient Bio Inc., Korea)를 이용해 진행하였으며, 가톨릭대학교 동물실험윤리위원회로부터 승인된 가이드라인에 따라 사육했다.
[실시예 1] pH 반응성 고분자 (HA-DMA) 제조
도 1의 (a)에서와 같이, MP를 제조하기 전 HA-DMA를 제조하였다. 먼저, 다이메틸설폭사이드 (25 mL) 상에서 히알루론산 (이하, HA라고 함) (500 mg)과 아디픽산 디하이드라자이드 (이하, ADH라고 함) (1.15 g), N,N ´-다이사이클로헥실카르보다이이미드 (270 mg), N-하이드록시석신이미드 (150 mg), 트리에틸아민 (1 mL)을 상온에서 3일 동안 반응시켜 HA-ADH를 합성하였다. 반응하지 않은 물질을 제거하기 위해 투석막 (Spectra/Por® MWCO 2 kDa)을 이용해 다이메틸설폭사이드에서 2일간 투석하고 증류수에서 2일간 투석한 후 동결건조하였다. 이후, 1M NaOH를 이용하여 2,3-디메틸말레산 무수물 (이하, DMA라고 함) (700 mg)을 녹이고, 생성된 HA-ADH (360 mg)를 넣어준 다음, pH를 8~9로 조절하여 3일 동안 반응시켜 HA-DMA를 합성하였다. 반응하지 않은 물질을 제거하기 위해 투석막 (Spectra/Por® MWCO 2 kDa)을 이용해 5mM 붕소산 사나트륨 용액에서 3일간 투석한 후 동결건조 하였다.
HA-DMA의 구조를 확인하기 위해서 1H-NMR 분석을 하였다. 300 MHz NMR Spectrometer (Bruker, Germany)로 분석하였으며, 도 1의 (b)와 같이, 결합한 DMA의 양은 1H-NMR 피크 분석을 통해 δ 2.4 ppm(-CH3, HA)과 δ 1.8ppm(-CH3, DMA)에서 나타난 피크의 적분비로 계산하였다. HA-DMA에서 DMA의 평균 결합률은 HA 반복 단위를 기준으로 하여 0.50임을 확인하였다.
[
실시예
2 내지 7] 종양 부위에
선택적으로 치료가 가능한
마이크로 입자 (MP) 제조
폴리(락타이드-코-글리코라이드) (이하, PLGA라고 함)를 이용한 MP합성은 W1/O/W2 다중 유화법을 이용하여 제조하였다. 먼저 HA-DMA (0, 20, 40 mg)와 독소루비신 (이하, DOX라고 함) (0 mg 또는 20 mg)를 10 mM 붕소산 사나트륨 수용액 (1mL; W1상)에 녹인 다음, PLGA (200 mg)를 다이클로로메테인 (3 mL; O 상)에 녹인 용액에 넣고, 초음파분쇄기 (Amp : 50 %, Time : 30초)를 이용하여 유화시켰다. 생성된 에멀전을 1.0 wt.% 폴리비닐알코올, 0.9 wt.% 염화나트륨 수용액 (W2 상)에 넣어준 후, 호모믹서 (Homo-mixer)를 이용하여 3000 rpm에서 3분간 섞어 에멀전을 형성하였다. 형성된 에멀전은 상온에서 1시간 동안 교반 후, 3000 rpm에서 2분간 원심 분리하여 입자를 수득하였고, 수득한 입자는 0.9 wt.% 염화나트륨 수용액에서 3회 세척하고 동결 건조하였다. 이때, HA-DMA나 DOX의 양에 따라 실시예 2 (HA-DMA 0 mg, DOX 0 mg; 이하, PLGA MP라고 함), 실시예 3 (HA-DMA 0 mg, DOX 20 mg; 이하, PLGA/DOX MP라고 함), 실시예 4 (HA-DMA 20 mg, DOX 0 mg; 이하, PLGA(HA-DMA)0 .1 MP라고 함), 실시예 5 (HA-DMA 20 mg, DOX 20 mg; 이하, PLGA(HA-DMA)0 .1/DOX MP라고 함), 실시예 6 (HA-DMA 40 mg, DOX 0 mg; 이하, PLGA(HA-DMA)0 .2 MP라고 함), 실시예 7 (HA-DMA 40 mg, DOX 20 mg; 이하, PLGA(HA-DMA)0.2/DOX MP라고 함)로 구분하였다.
[실험예 1] 제조된 HA-DMA와 마이크로 입자 (MP)의 특성 분석
실시예 2, 4 및 6에 대해서, PLGA MP의 제타 전위는 PBS (pH 7.4 또는 6.8, 150 mM) 상에 분산된 각 샘플 (1.0 mg/mL)을 Zetasizer 3000 (Malvern Instruments, USA)로 확인하였다.
또한, 실시예 3, 5 및 7에 대해서, DOX 봉입 함량을 확인하기 위해 DOX가 봉입된 PLGA MP에 DMSO를 전처리하고 DOX의 형광을 이용해 분석하였다. DOX의 봉입 효율(%)은 DOX 초기 투여량에 대한 봉입량의 중량 백분율로 계산하였으며, DOX 봉입 함량(%)은 MP에 있는 DOX의 중량 백분율을 계산하여 확인하였다.
또한, 상기 실시예 2, 3, 5 및 7을 따라 제작된 PLGA MP의 형태는 PBS (pH 7.4 또는 6.8, 150 mM)에 37 ℃에서 24시간 동안 분산시키고 field emission scanning elelctron microscopy (FE-SEM, Hitachi s-4800, Japan)를 이용해 확인하였다.
그 결과, 도 2의 (a)에 의할 때, pH 7.4에서 실시예 6 (PLGA(HA-DMA)0 .2 MP) 및 실시예 4 (PLGA(HA-DMA)0 .1 MP)의 제타 전위 값은 각각 -18.92 mV, -17.24 mV로, 약 -15.00 mV의 제타 전위 값을 가지는 순수한 실시예 2 (PLGA MP)에 비해 더 큰 음의 제타 전위 값을 가지는 것을 확인하였다. 반면, pH 6.8에서는 각각 -7.71 mV, -9.68 mV로 pH 7.4에서의 제타 전위 값보다 증가하는 것을 확인하였다.
또한, 도 2의 (b)에 의할 때, 서로 다른 실시예 7 (PLGA(HA-DMA)0 .2/DOX MP) 및 실시예 5 (PLGA(HA-DMA)0 .1/DOX MP), 실시예 3 (PLGA/DOX MP) 제형의 봉입 효율과 함량을 분석한 결과, 모든 MP의 봉입 효율은 75 내지 78 wt.%이며, 모든 MP의 DOX 봉입 함량은 9-11 wt.%를 나타낸 것을 확인하였다.
추가로 실시예 2, 3, 5 및 7의 제형을 FE-SEM으로 촬영하여 입자의 형태 및 크기를 확인하였다. 그 결과, 도 2의 (c)에 의할 때, pH 7.4에서 모든 MP는 약 10 내지 15 μm 크기의 구형을 나타내는 것을 확인하였다. 반면, pH 6.8에서 실시예 7 (PLGA(HA-DMA)0.2/DOX MP)와 실시예 5 (PLGA(HA-DMA)0 .1/DOX MP)는 구조가 붕괴됨을 확인하였으나 실시예 3 (PLGA/DOX MP), 실시예 2 (PLGA MP)는 pH 6.8에서 그 형태를 유지하는 것을 확인하였다.
[실시예 2]
In vitro
약물 방출 동향
상기 실시예 3, 5 및 7을 따라 제작된 MP (equivalent to DOX 0.5 mg/mL)를 PBS (pH 7.4 또는 6.8, 150 mM, 2 mL)에 분산시킨 후, 투석막 (Spectra/Por® MWCO 50K)에 넣고 봉인하고 15 mL fresh PBS (pH 7.4 또는 6.8)에 각각 넣어 37 ℃ 및 100 rpm 기계적 교반 조건에서 DOX의 방출 시험을 48시간 동안 진행하였다. 방출액의 소량을 시간별로 수득해 방출액 내의 DOX의 양을 분광형광계로 λex 470 nm와 λem 592 nm에서 형광 세기를 측정해 계산하였다.
그 결과, 도 3의 (a)에 의할 때, pH 7.4에서 모든 MP의 DOX의 누적 방출은 차이가 거의 없으며 24시간 이후 방출이 종료되는 것을 확인하였다. 반면, 도 3의 (b) 및 도 4에 의할 때, pH 6.8에서 실시예 7 (PLGA(HA-DMA)0 .2/DOX MP) 및 실시예 5 (PLGA(HA-DMA)0.1/DOX MP)의 DOX 방출 속도는 급격히 증가하였으며, 방출 시작 24시간 후 각각 82%와 64%의 DOX 방출 효율을 보이는 것을 확인하였다.
[실시예 3]
In vitro
세포 독성 실험
상기 실시예 3, 5 및 7에서 제작한 MP를 사용하여 MDA-MB-231 세포에서의 세포 독성을 확인하였다. 배지에 상기 실시예들 (equivalent DOX 10 μg/mL)을 37 ℃에서 4시간 동안 배양하였다. 이후, PBS (pH 7.4, 150 mM) 로 세 번 세척한 다음, 추가로 배지에서 24시간 동안 배양하고, 세포 생존율을 CCK-8 assay를 이용해 측정하였다. 추가적으로, DOX를 봉입하지 않은 세포 독성은 상기 실시예 2, 4 및 6에서 제작한 샘플을 서로 다른 농도 (1~200 μg/mL)로 처리한 다음 24시간 이후에 CCK-8 assay를 이용해 측정하였다.
그 결과, 도 5의 (a)에 의할 때, 실시예 7 (PLGA(HA-DMA)0 .2/DOX MP) 및 실시예 5 (PLGA(HA-DMA)0 .1/DOX MP)는 pH 7.4에서 낮은 종양세포 사멸률을 보인 반면, pH 6.8에서 실시예 7 및 실시예 5는 높은 종양세포 사멸률을 보였다. 특히, 다량의 HA-DMA가 포함된 실시예 7은 더욱 우수한 종양세포 치료 활성을 나타내는 것을 확인하였다. 또한, 도 5의 (b)에 의할 때, DOX가 봉입되지 않은 PLGA MP 제형(1-200 μg/mL)의 세포 독성을 평가하여 PLGA MP 제형 자체의 세포 독성은 없음을 확인하였다.
[실시예 4]
In vivo/ ex vivo
치료 실험
동물 실험을 위해, MDA-MB-231 종양 세포 (pH 7.4인 PBS에 1×107 cells/mL)를 암컷 누드 마우스에 피하 주사하여 준비하였다. 이후, 상기 실시예 3 (PLGA/DOX MP) 및 7 (PLGA(HA-DMA)0 .2/DOX MP)에서 제작한 MP (equivalent to DOX 2.5 mg/kg), free DOX (2.5 mg/kg) 및 식염수를 종양세포가 이식된 누드 마우스의 종양 내로 주사한 후, 시간에 따라 종양의 크기와 마우스 체중 변화를 관찰하였다. 또한, 1주일 후 이산화탄소 (CO2) 가스를 이용하여 누드 마우스를 안락사 시키고, 10 wt.% 포름알데히드 용액으로 종양 조직을 25 ℃에서 24시간 동안 고정하였다. 이후, 종양 조직을 파라핀 블록에 넣은 후, 4 μm 두께로 잘라 슬라이드 글래스에 놓고 헤마톡실린 (hematoxylin)과 에오신 (eosin) (H&E)을 이용하여 염색하였다. 염색된 샘플들은 Aperio CS2 슬라이드 스캐너 (Leica Biosystems Inc., Germany)를 이용하여 분석하였다.
그 결과, 도 6의 (a)에 의할 때, 실시예 7에서 가장 높은 종양 억제를 보이는 것을 확인하였다. 특히, 실시예 7을 처리한 마우스에서 상대적인 종양 부피는 실시예 3, free DOX 및 식염수를 처리한 마우스와 비교 시, 각각 1.84 및 3.03, 5.29배 감소하는 것을 확인하였다. 또한, 실시예 7을 주입한 지 7일이 지난 누드 마우스의 몸무게는 변화가 거의 없음을 확인하였으며, 이는 실시예 7이 일반 장기들에 대해 독성이 없다는 것을 나타낸다. 또한, 도 6의 (b)에 의할 때, 광학 이미지상에서도 실시예 7이 다른 대조군들보다 종양 치료 효능이 뛰어나다는 것을 확인하였다.
[실시예 5]
In vivo
조직 독성
상기 실시예 7 (PLGA(HA-DMA)0 .2 MP)에서 제작된 MP (100mg/kg)를 암컷 누드마우스에게 피하 주사하였다. 이후, 샘플 처리된 누드마우스들은 샘플 이식 1주 후에 이산화탄소 (CO2) 가스를 이용해 안락사 시키고 조직을 절개하여 10 wt.% 포름알데히드 용액에 고정하였다. 고정된 조직은 파라핀 블록 내에 넣은 후 마이크로톰을 이용하여 4 μm 두께로 절개하였으며, 절개된 조직을 슬라이드글라스 위에 부착하고 헤마톡실린 (hematoxylin)과 에오신 (eosin) (H&E)으로 염색하였다. 최종 샘플의 결과는 슬라이드 스캐너로 확인했다.
그 결과, 도 7의 (a)에 의할 때, 종양세포에 식염수를 처리하였을 때보다 실시예 7를 처리하였을 때, 유사분열 (mitotic event)이 감소한 것을 확인하였다. 또한, 도 7의 (b)에 의할 때, 누드 마우스에 피하 주사시킨 실시예 7의 국소 조직 독성을 확인한 결과, 조직 내 외부물질에 대해 무시할 수 있을 정도의 반응을 보여주며, 이는 실시예 7의 우수한 생체적합성을 증명하였다.
모든 결과는 t-test 또는 ANOVA를 이용해 유의수준 p < 0.01(**)에서 분석하였다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술 분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.
본 발명의 범위는 후술하는 청구범위에 의하여 나타내어지며, 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 균등 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.
Claims (14)
- 히알루론산 (HA), 아디픽산 디하이드라자이드 (ADH) 및 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)을 포함하는 pH 반응성 히알루론산 고분자.
- 청구항 1에 있어서, 상기 pH 반응성 히알루론산 고분자는 하기 화학식 1의 형태인 것을 특징으로 하는 pH 반응성 히알루론산 고분자로,
[화학식 1]
상기 화학식 1의 n은 10 내지 200인 것을 특징으로 함. - 청구항 1의 pH 반응성 히알루론산 고분자, 생분해성 고분자 및 치료약물을 포함하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 3에 있어서, 상기 생분해성 고분자는 폴리락타이드 (PLA), 폴리글리코라이드 (PGA), 폴리(락타이드-코-글리코라이드) (PLGA) 및 폴리(락타이드-코-글리코라이드)글루코즈로 이루어진 군에서 선택된 하나인 것을 특징으로 하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 3에 있어서, 상기 치료약물은 양전하 성질을 갖는 것을 특징으로 하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 5에 있어서, 상기 양전하 성질을 갖는 치료약물은 독소루비신인 것을 특징으로 하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 3에 있어서, 상기 마이크로 입자는 다중 유화법을 이용하여 제조되는 것을 특징으로 하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 3에 있어서, 상기 마이크로 입자는 평균 입경이 10 내지 15 ㎛인 것을 특징으로 하는 pH 반응성 마이크로 입자.
- 청구항 1의 pH 반응성 히알루론산 고분자와 치료약물을 수용액 상에서 혼합하여 수분산액 (W1 phase)을 제조하는 단계;
생분해성 고분자를 유기 용매에 용해시켜 유기상 용액 (O phase)을 제조하는 단계;
상기 수분산액 (W1 phase)을 상기 유기상 용액 (O phase)으로 유화시켜 W1/O 에멀전을 제조하는 단계; 및
상기 W1/O 에멀젼을 외부 수상 (W2 phase)에 첨가하여 복합유제 (water in oil in water; W1/O/W2) 형태로 다중 유화시키는 단계를 포함하는, 마이크로 입자의 제조방법. - 청구항 3의 pH 반응성 마이크로 입자를 유효성분으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물.
- 청구항 10에 있어서, 상기 약학 조성물은 암질환의 국소 치료를 위한 것을 특징으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물.
- 청구항 11에 있어서, 상기 약학 조성물은 마이크로 입자 중의 히알루론산 (HA)에 결합된 2,3-디메틸말레산 무수물 (DMA)이 종양세포의 pH 환경에서 탈락하여 노출된 아민기와 치료약물 간의 이온 반발력으로 인해 마이크로 입자가 붕괴되어 치료약물을 방출하는 것을 특징으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물.
- 청구항 10에 있어서, 상기 암질환은은 유방암, 난소암, 대장암, 폐암, 뇌암, 자궁경부암, 결장암, 골암, 피부암, 피부 또는 안구내 흑색종, 자궁암, 직장암, 위암, 항문부근암, 결장암, 나팔관암종, 자궁내막암종, 질암, 음문암, 호지킨병(Hodgkin's disease), 식도암, 소장암, 내분비선암, 갑상선암, 부갑상선암, 부신암, 연조직 육종, 요도암, 음경암, 전립선암, 만성 또는 급성 백혈병, 림프구 림프종, 방광암, 신장 또는 수뇨관 암, 중추신경계 (CNS; central nervous system) 종양 및 췌장암으로 이루어진 군에서 선택된 하나인 것을 특징으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물.
- 청구항 10에 있어서, 상기 약학 조성물은 겔제, 유제, 주사제, 산제, 과립제, 에어로솔제, 페이스트제, 경피흡수제 및 패치제로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 제형으로 하는 것을 특징으로 하는 암질환 치료용 약학 조성물.
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR101306765B1 (ko) | 2011-02-28 | 2013-09-10 | 부산대학교병원 | 히아루론산과 폴리락타이드글리코라이드공중합으로 이루어지는 블록공중합체 및 이를 이용한 치료용 약물을 담지한 고분자 담지체 |
| KR20170075367A (ko) * | 2015-12-23 | 2017-07-03 | 성균관대학교산학협력단 | 표면전하 전환형 약물전달용 나노입자 및 이의 제조방법 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Molecules, vol. 26, pp. 1-11(2021.06.10.) 1부.* * |
| RSC Advances, vol 7, pp. 41919-41928(2017.08.30.) 1부.* * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| KR102688912B1 (ko) | 2024-07-29 |
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