KR20210061502A - InDel Markers for Discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and Method for Use thereof - Google Patents

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KR20210061502A KR1020190148701A KR20190148701A KR20210061502A KR 20210061502 A KR20210061502 A KR 20210061502A KR 1020190148701 A KR1020190148701 A KR 1020190148701A KR 20190148701 A KR20190148701 A KR 20190148701A KR 20210061502 A KR20210061502 A KR 20210061502A
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Abstract

The present invention relates to an InDel marker for discriminating between Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and a discrimination method using the same. In the case of using the InDel marker for species discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum of the present invention, and a primer to amplify the marker, it is possible to easily distinguish Cynanchum wilfordii from other plants of the genus of Cynanchum such as Cynanchum auriculatum, and classify the species of Cynanchum wilfordii in a rapid, accurate and economical manner.

Description

백수오와 이엽우피소 판별용 InDel 마커 및 이를 이용한 판별 방법{InDel Markers for Discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and Method for Use thereof}InDel Markers for Discrimination of Baek Soo-Oh and Lee Leaf Cattle, and a Discrimination Method Using the Same {InDel Markers for Discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and Method for Use thereof}

본 발명은 백수오와 이엽우피소 판별용 마커 및 이를 이용한 판별 방법에 관한 것으로, 더욱 구체적으로 백수오와 이엽우피소 판별용 InDel 마커 및 이를 이용한 백수오와 이엽우피소의 판별 방법에 관한 것이다.The present invention relates to a marker for discriminating Baek Soo and two leaf cows, and a method for discrimination using the same, and more specifically, to an InDel marker for discriminating Baek Soo and two leaf cows, and a method for discriminating Baek Soo and two leaf cows using the same.

2010년 공표된 나고야의정서는 생물자원을 활용하여 생기는 이익을 공유하기 위한 국제협약으로, 동 협약은 2017년 8월 17일부터 우리나라에서도 발효 중이다. 우리나라는 국립생물자원관과 2012년 설립되는 국립생태원을 중심으로, 10만여 종의 국내 생물 유전자원을 발굴하고 자원 이용을 위한 데이터베이스를 만들어 나고야의정서에 대비하고 있다.The Nagoya Protocol, announced in 2010, is an international agreement to share the benefits of utilizing biological resources, and the agreement is in effect in Korea from August 17, 2017. Korea is preparing for the Nagoya Protocol by discovering more than 100,000 species of domestic biological genetic resources and creating a database for the use of resources, centering on the National Institute of Biological Resources and the National Institute of Ecology established in 2012.

‘나고야의정서’가 발효되면서 우리 생물주권을 지키고 보전하는 것이 매우 중요한 문제로 떠오르고 있다. 우리 생물자원 보존과 관련하여 지리산과 한라산의 대표 식물인 구상나무는 1904년 서양으로 반출되어 크리스마스 트리로 외국에서 널리 사용된 바 있고, 1947년 미국으로 반출되어 ‘미스킴라일락’으로 불리며 정원수로 높은 인기를 누리고 있는 정향나무나, 소로나로 알려진 우리나라 토종 밀인 앉은뱅이밀은 모두 해외로 반출된 우리나라 생물자원이다.As the “Nagoya Protocol” comes into force, protecting and preserving our bio-sovereignty is emerging as a very important issue. Regarding the preservation of our biological resources, the bulbous tree, the representative plant of Mt. Jirisan and Mt. Halla, was exported to the West in 1904 and widely used as a Christmas tree. It was exported to the United States in 1947 and is called'Miss Kim Lilac' and has a high garden tree. The popular clove tree and the Korean native wheat, known as sorona, are all biological resources of Korea that have been exported overseas.

따라서, 우리나라 고유생물의 무단 반출을 막고, 생물자원을 확보하기 위한 다양한 노력이 필요하다. 특히, 나고야의정서에 대비하고, 경제적 부가가치가 높은 백수오와 같은 고유종의 경우에는 생물 주권보장을 위한 종특이 마커의 개발이 필수적인 상황이다. Therefore, various efforts are required to prevent the unauthorized export of Korean endemic organisms and secure biological resources. In particular, in the case of endemic species such as Baeksuo, which prepares for the Nagoya Protocol and has high economic added value, the development of a species-specific marker for securing biological sovereignty is essential.

한편, 백수오(Cynanchum wilfordii)는 한국과 중국의 산이나 들의 양지바른 풀밭, 바닷가 경사지에 나는 박주가리과(또는 협죽도와 박주가리아과) 백미꽃속의 덩굴성 여러해살이풀로, 큰조롱, 은조롱 등으로도 불린다. 백수오는 동의보감이나 동의수세보원 등 많은 한의학 서적에서 한약재로서의 특성이 기술되어 있는데, 독성이 없고 갱년기 여성에게 좋다고 알려져 건강기능식품으로 많이 이용되고 있다. 최근에는 백수오가 퇴행성 관절염의 개선, 유방암, 자궁내막암 등의 에스트로겐 활성에 따른 부작용이 없다는 사실이 과학적으로 입증되어 있을 뿐만 아니라 그 효능에 대한 메커니즘이 규명되고 있다.On the other hand, Cynanchum wilfordii is a vine-like perennial plant in the white rice flower that grows on sunny meadows and beach slopes in the mountains and fields of Korea and China. . Baek Soo-o is characterized as a medicinal herb in many oriental medicine books such as Donguibogam and Donguisusebowon, but it is widely used as a health functional food because it is known to be non-toxic and good for menopausal women. Recently, it has been scientifically proven that Baek Su-Oh does not have side effects due to estrogen activity such as improvement of degenerative arthritis, breast cancer, and endometrial cancer, as well as mechanisms for its efficacy.

한편, 백수오와 이엽우피소는 모두 박주가리과(Asclepiadaceae) 백미꽃 속(Cynanchum)에 속하는 덩굴성 여러해살이 식물로 국내에서는 백수오 뿌리, 중국에서는 이엽우피소 뿌리를 각각 약용으로 사용하며, 같은 백미꽃 속에 속하는 친척이지만 종에서는 차이가 있다. 현재 국내 한약재 유통시장에서는 하수오를 적하수오(적수오)와 백하수오(백수오)로 나누고 동일하게 취급하고 있으며, 특히 백수오의 경우는 중국에서 수입된 백수오의 개량종으로 잘못 알려져, 대한약전 및 생약규격집에 등재되어있지 않은 전혀 다른 식물인 이엽우피소가 백수오로 유통되고 있다. 적하수오(적수오)로 알려진 하수오는 적갈색을 띄며 절편하면 불가사리 모양의 형태적 특징이 있어 하얀색을 띄는 백하수오(백수오)와 구분되나, 이엽우피소의 경우는 모양과 색깔이 백수오와 같아 육안으로 구분하기가 매우 어렵다. 또한, 형태학적 특징에 따른 종 동정 및 분류는 환경요인에 따라 변수가 발생하기 쉽고, 형태학적 특징에 따른 구분을 통한 종 동정 작업은 많은 시간과 노력, 비용이 요구되며, 많은 경험과 전문성을 가진 연구자들에 의해서만 제한적으로 가능하다. 그러나, 최근 생명공학 기술의 발달로 인해 DNA 수준에서 생물 종의 다양성 연구가 가능해지면서, 핵산지문 분석법을 통한 신속 정확한 종 동정이 가능해졌다.On the other hand, Baekshuo and dileaf cattle are both tendril perennial plants belonging to the genus Cynanchum of the Asclepiadaceae family.In Korea, Baekshuo roots and Baekshui cattle roots in China are used for medicinal purposes, respectively, and belong to the same white rice flower genus. They are relatives, but they differ in species. Currently, in the Korean herbal medicine distribution market, sewage is divided into Jeokshou (Jeokshou) and Baekshou (Baekshou) and treated the same.In particular, Baekshou is erroneously known as an improved species of Baekshou imported from China. A completely different plant, which is not listed in the herbal medicine standard, is distributed as Baeksuo. Hasuo, known as Jeoksu-o (Jeok-su-o), has a reddish-brown color and is distinguished from white-colored Baek-su-o (Baek-su-o) because it has a starfish-shaped morphology when sliced. However, in the case of Lee-yeop cattle, the shape and color are the same as those of Baek-su-o. It is very difficult to distinguish with the naked eye. In addition, species identification and classification according to morphological characteristics tends to generate variables according to environmental factors, and species identification through classification according to morphological characteristics requires a lot of time, effort, and cost, and has a lot of experience and expertise. Limited only by researchers. However, recent developments in biotechnology have made it possible to study the diversity of biological species at the DNA level, enabling rapid and accurate species identification through nucleic acid fingerprint analysis.

종래기술인 특허등록 KR 제10-1821040호는 엽록체의 matK 유전자와 trnL-trnF 지역의 InDel 부위를 기반으로 한 마커를 공개하고 있다. 또한, 특허등록 KR 제10-1866163호는 백수오와 이엽우피소의 엽록체 게놈을 분석하여 발굴한 InDel 마커를 공개한 바 있다. 그리고, 공개특허공보 KR 제10-2017-0024388호는 단일염기다형성(Single Nucleotide Polymorphism)을 이용한 하수오, 백수오 및 이엽우피소의 판별 마커를 제공한다. Patent Registration KR No. 10-1821040, which is a prior art, discloses a marker based on the matK gene of the chloroplast and the InDel region of the trnL-trnF region. In addition, Patent Registration KR No. 10-1866163 has disclosed InDel markers discovered by analyzing the chloroplast genome of Baek Su-Oh and Lee Yeop Soo. In addition, Korean Patent Application Publication No. KR 10-2017-0024388 provides discriminant markers of Ha Su-oh, Baek Su-oh, and Lee Yeop cattle using Single Nucleotide Polymorphism.

그러나, 상기 엽록체 유전자 유래의 InDel 부위를 기반으로 한 마커들은 모계 유전되는 엽록체 유전자를 기반으로 하는 마커 특성으로 인하여, 꽃가루에 의해 발생하는 hybrid 식물체를 구별할 수 없는 한계를 가지고 있었다. However, the markers based on the InDel region derived from the chloroplast gene had a limitation in that it was not possible to distinguish hybrid plants caused by pollen due to the marker characteristics based on the maternal chloroplast gene.

또한, 백수오와 이엽우피소의 종 판별을 위하여 엽록체의 유전자를 기반으로 한 종래기술들은 엽록체의 인트론 부분의 높은 변이성을 포함하는 부위를 InDel 부위를 기반으로 하여 해당 부위의 변이가 있는 경우 판별에 어려움이 있었고, 단일염기다형성(Single Nucleotide Polymorphism)을 이용한 마커의 경우 InDel 마커에 비해 분석의 직관성이 떨어지는 단점이 있었다. In addition, conventional techniques based on the gene of the chloroplast to determine the species of Baeksu-Oh and Epiphytes have been used to determine if there is a mutation in the corresponding region based on the InDel region based on the region containing the high variability of the intron part of the chloroplast. There was a difficulty, and in the case of markers using Single Nucleotide Polymorphism, there was a disadvantage that the analysis was less intuitive than InDel markers.

이에, 본 발명자들은 백수오와 이엽우피소를 구분할 수 있는 종 특이 마커를 개발하기 위해 예의 연구노력한 결과, 백미꽃 속 식물체의 표준유전체를 작성하고 이를 백수오, 이엽우피소, 절관우피소 등의 개체에서 분석된 단서열 유전체 정보와 비교 분석하여 백수오와 이엽우피소의 상 염색체 상에 존재하는 SNP 부위를 확보한 후, 다시 백수오와 이엽우피소의 상 염색체 상에 존재하는 9개의 Indel 부위를 발굴하였고, 상기 SNP와 Indel 부위를 크로스 체크하여 동 Indel 서열을 기반으로 제작한 프라이머들을 이용하여 백수오와 이엽우피소를 손쉽게 구분할 수 있음을 밝힘으로써, 본 발명을 완성하였다.Accordingly, the present inventors have made extensive research efforts to develop species-specific markers that can distinguish between Baeksuoh and Leeup cattle, and as a result of preparing the standard genome of the plant in the white rice flower, this resulted in individuals such as Baeksuoh, Leeyeopso, and Jeolgwan cattle. After comparing and analyzing the genome information of the single sequence analyzed in, SNP sites present on the autosomal of Baeksu-oh and Leeyeop cattle were secured, and then 9 Indel sites present on the autosomal of Baeksu-oh and Leeyeop cattle were again analyzed. The present invention was completed by discovering that the SNP and Indel sites were cross-checked to reveal that it was possible to easily distinguish between Baek Shou and Iyeop cattle using primers prepared based on the Indel sequence.

따라서, 본 발명의 주된 목적은 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 Indel 마커에 기반한 프라이머 세트를 제공하는 데 있다.Accordingly, the main object of the present invention is to provide a primer set based on Indel markers for species discrimination of Baek Shou and Leeyeop.

본 발명의 다른 목적은 상기 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 Indel 마커에 기반한 프라이머 세트를 이용하여 백수오와 이엽우피소를 판별하는 방법을 제공하기 위한 것이다.Another object of the present invention is to provide a method of discriminating between Baekshou and Leeup cattle by using a primer set based on Indel markers for species identification of Baekshou and Leeupe cattle.

본 발명의 또 다른 목적은 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 Indel 마커에 기반한 프라이머 세트를 포함하는 백수오와 이엽우피소를 판별하기 위한 키트를 제공하기 위한 것이다.Another object of the present invention is to provide a kit for discriminating Baekshou and Iyeop cattle, including a primer set based on an Indel marker for determining the species of Baek Shou and Iyeop cattle.

본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 보다 명확하게 된다.Other objects and advantages of the present invention will become more apparent by the following detailed description, claims and drawings.

본 발명의 한 양태에 따르면, 본 발명은 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 및 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트;로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 프라이머 세트를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트를 제공한다.According to one aspect of the present invention, the present invention provides a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16; And a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18; Provides a primer set for discriminating Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum including one or more primer sets selected from the group consisting of do.

본 발명자들은 백미꽃 속 식물체의 표준유전체를 작성하고 이를 백수오, 이엽우피소, 절관우피소 등의 개체에서 분석된 단서열 유전체 정보와 비교 분석하여 백수오와 이엽우피소의 상 염색체 상에 존재하는 SNP 부위를 확보한 후, 다시 백수오와 이엽우피소의 상 염색체 상에 존재하는 9개의 Indel 부위를 발굴하였고, 상기 SNP와 Indel 부위를 크로스 체크하여 동 Indel 서열을 기반으로 제작한 프라이머들을 이용하여 백수오와 이엽우피소를 손쉽게 구분할 수 있는 Indel 마커를 발굴하였다.The present inventors prepared a standard genome of a plant in the genus White Rice, and compared and analyzed it with the single sequence genome information analyzed in individuals such as Baek Soo-O, Lee Leaf Cow, and Jeol-Gwan Cow Cow. After securing the SNP site, nine Indel sites present on the autosomes of Baeksu-oh and Iyeoppiso were again discovered, and the SNP and Indel sites were cross-checked and primers prepared based on the same Indel sequence were used. Indel markers that can easily distinguish between Baeksu-oh and Lee-yeop cattle were discovered.

본 발명의 상기 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 유전자 마커는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum)의 상 염색체에 존재하는 해당 유전자에 상호 보완적으로 결합 가능하므로, 그 자체로 백수오와 이엽우피소의 종 판별을 위한 마커, 또는 마커 조성물로 사용될 수 있다. The genetic markers for discriminating the Baek Su-o (Cynanchum wilfordii) and the Cynanchum auriculatum of the present invention are complementary to the corresponding genes present in the autosomal of the Baek Su-O (Cynanchum wilfordii) and the Cynanchum auriculatum. Since it can be combined, it can be used as a marker or a marker composition for discriminating the species of Baekshou and Leeyeoppiso by themselves.

본 발명에서 용어, "프라이머(primer)"는 짧은 자유 3' 말단 수산화기(free 3' hydroxyl group)를 가지는 핵산 서열로 상보적인 주형(template)와 염기쌍(base pair)을 형성할 수 있고 주형의 복사를 위한 시작 지점으로 기능을 하는 짧은 핵산 서열을 의미한다. 상기 프라이머의 길이 및 서열은 연장 산물의 합성을 시작하도록 허용해야 하며, 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 요구되는 DNA 또는 RNA 표적의 복합도(complexity)뿐만 아니라, 온도 및 이온 강도와 같은 이용 조건에 의존할 것이다. 구체적 예로, 프라이머의 구체적인 길이 및 서열은 구아닌 및 시토신의 함량(GC contents), GC 배열, 어닐링(annealing) 온도 및 이온 강도 등 여러 조건을 고려하여 결정해야 한다. 프라이머는 적절한 완충용액 및 온도에서 중합반응(즉, DNA 중합효소 또는 역전사효소)을 위한 시약 및 상이한 4가지 뉴클레오사이드 트리포스페이트(dNTPs)의 존재 하에서 DNA 합성을 개시할 수 있다.In the present invention, the term "primer" is a nucleic acid sequence having a short free 3'terminal hydroxyl group, which can form a complementary template and a base pair, and copy the template. It refers to a short nucleic acid sequence that functions as a starting point for. The length and sequence of the primers should allow the synthesis of the extension product to start, and the specific length and sequence of the primers depend on the conditions of use such as temperature and ionic strength, as well as the complexity of the required DNA or RNA target. something to do. As a specific example, the specific length and sequence of the primer should be determined in consideration of various conditions such as guanine and cytosine content (GC contents), GC sequence, annealing temperature and ionic strength. Primers can initiate DNA synthesis in the presence of reagents for polymerization (ie, DNA polymerase or reverse transcriptase) and four different nucleoside triphosphates (dNTPs) at an appropriate buffer and temperature.

본 발명에서 "정방향(forward) 프라이머" 및 "역방향(reverse) 프라이머"는 유전자 증폭반응에 의해 증폭되는 유전자의 특정 부위의 3'-말단 및 5'-말단에 각각 결합하여 DNA 합성의 개시점으로 작용하는 프라이머를 의미한다.In the present invention, the "forward primer" and the "reverse primer" are each bound to the 3'-end and the 5'-end of a specific site of a gene amplified by a gene amplification reaction to serve as the starting point of DNA synthesis. It refers to a primer that works.

본 발명에서 "마커"란 백미꽃 속 식물체의 종 특이성을 분석할 수 있는 물질로, 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum)의 종 판별과 관련된 핵산(예: DNA, mRNA 등), 등과 같은 유기 생체 분자 등을 포함한다.In the present invention, the term "marker" is a substance capable of analyzing the species specificity of plants in the genus white rice, and nucleic acids (eg, DNA, mRNA, etc.) related to the species identification of Baeksu-o (Cynanchum wilfordii) and Cynanchum auriculatum, Organic biomolecules, such as, and the like.

본 발명의 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트에서, 상기 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 321bp이고, 상기 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 350bp이며, 상기 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 333bp이고, 상기 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 303bp이며, 상기 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 339bp이고, 상기 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 305bp이며, 상기 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 301bp이고, 상기 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 357bp이며, 상기 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 350bp인 것을 특징으로 한다. In the primer set for discrimination of Baekshou (Cynanchum wilfordii) and Cynanchum auriculatum of the present invention, the PCR amplification product of Baekshou species amplified with a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 321 bp, the PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 is 350 bp, and the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 The amplified PCR amplification product of Baekshou species is 333bp, and the PCR amplification product of Baekshou species amplified with a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 is 303bp, and SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: The PCR amplification product of Baekshou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of 10 is 339 bp, and the PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 is 305bp, the PCR amplification product of Baeksuo species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14 is 301 bp, and the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16 The PCR amplification product of the amplified Baekshou species is 357bp, and the PCR amplification product of Baekshou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18 is 350bp.

본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 키트를 제공한다.According to another aspect of the present invention, the present invention includes a kit for discriminating Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum, including a primer set for discriminating Baek Soo Oh (Cynanchum wilfordii) and Cynanchum auriculatum. to provide.

본 발명의 "키트"는 분석하고자 하는 시료로부터 유래된 게놈 DNA, 본 발명의 상기 프라이머 세트, 적당량의 DNA 중합 효소(예를 들면, Thermus aquaticus(Taq), Thermus thermophilus(Tth), Thermusfiliformis, Thermisflavus, Thermococcus literalis 또는 Pyrococcus furiosus(Pfu)로부터 수득한 열 안정성 DNA 중합효소), dNTP 혼합물, PCR 완충용액 및 물을 포함할 수 있다. 상기 PCR 완충용액은 KCl, Tris-HCl 및 MgCl2를 함유할 수 있다. 이외에 PCR 산물의 증폭 여부를 확인할 수 있는 전기영동 수행에 필요한 구성 성분들이 본 발명의 키트에 추가로 포함될 수 있다. 이 때 MgCl2 농도는 증폭의 특이성과 수량에 크게 영향을 준다. 일반적으로 Mg2 + 이온이 과량인 경우는 비특이적인 PCR 증폭 산물이 증가하고, Mg2 + 이온이 부족한 경우 PCR 산물의 산출률이 감소한다. 상기 PCR 완충용액에는 적당량의 BSA이 추가로 포함될 수도 있다.The "kit" of the present invention includes genomic DNA derived from a sample to be analyzed, the primer set of the present invention, an appropriate amount of DNA polymerase (eg, Thermus aquaticus (Taq), Thermus thermophilus (Tth), Thermusfiliformis, Thermisflavus, Thermostable DNA polymerase obtained from Thermococcus literalis or Pyrococcus furiosus (Pfu)), dNTP mixture, PCR buffer and water. The PCR buffer solution may contain KCl, Tris-HCl and MgCl 2 . In addition, constituents necessary for electrophoresis that can confirm whether a PCR product is amplified may be additionally included in the kit of the present invention. At this time, the concentration of MgCl 2 greatly affects the specificity and quantity of amplification. In general, when Mg 2 + ions are excessive, non-specific PCR amplification products increase, and when Mg 2 + ions are insufficient, the yield of PCR products decreases. An appropriate amount of BSA may be additionally included in the PCR buffer solution.

본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 (a) 대상 백수오(Cynanchum wilfordii) 시료에서 DNA를 분리하는 단계; (b) 상기 (a) 단계에서 분리된 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 및 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트;로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 프라이머 세트를 이용하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및 (c) 상기 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 321bp이고, 상기 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 350bp이며, 상기 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 333bp이고, 상기 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 303bp이며, 상기 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 339bp이고, 상기 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 305bp이며, 상기 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 301bp이고, 상기 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 357bp이며, 상기 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 350bp인 경우 백수오(Cynanchum wilfordii) 종으로 판정하는 단계;를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii) 종 판별 방법을 제공한다.According to another aspect of the present invention, the present invention comprises the steps of: (a) separating DNA from a sample of Baek Suo (Cynanchum wilfordii); (b) a primer set using the DNA isolated in step (a) as a template and represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16; And a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18; amplifying the target sequence using one or more primer sets selected from the group consisting of; And (c) a PCR amplified product amplified with a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 is 321 bp, and a PCR amplified with a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 The amplification product is 350 bp, and the PCR amplification product amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 is 333 bp, and amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 The resulting PCR amplification product is 303 bp, and the amplified PCR amplification product is 339 bp with a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10, and the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 The PCR amplification product amplified by is 305 bp, and the PCR amplification product amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14 is 301 bp, and is represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16. If the PCR amplification product amplified with the primer set is 357 bp, and the PCR amplification product amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18 is 350 bp, determining that it is a species of Cynanchum wilfordii; It provides a method for determining the species Baek Shou (Cynanchum wilfordii) containing.

본 발명의 실시예에서는 본 발명의 상기 9종 프라이머 세트로 유전자 서열을 증폭하는 경우, 백수오와 이엽우피소에서 증폭되는 서열이 뚜렷하게 구분되어 백수오 종 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였다. In the embodiment of the present invention, when amplifying the gene sequence with the 9 kinds of primer sets of the present invention, it was confirmed that the sequence amplified in Baekshou and Yiyeop cattle were clearly distinguished, so that Baekshou species-specific bands were amplified.

따라서, 백미꽃 속 식물체에 특이적인 Indel 부위의 유전자 서열에 기반한 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 유전자 마커를 이용하여 백수오와 이엽우피소를 용이하게 판별할 수 있으며, PCR 증폭 산물의 길이의 차이를 통해 다른 백미꽃 속 식물체들과 백수오를 용이하게 구분이 가능함을 확인할 수 있었다.Therefore, it is possible to easily discriminate between Baekshou and Baekshui cattle, based on the gene sequence of the Indel region specific to the plant in the genus Baekshui, and the length of the PCR amplification product. Through the difference, it was confirmed that it was possible to easily distinguish between the plants of the white rice flower and the white water.

본 발명의 특징 및 이점을 요약하면 다음과 같다:The features and advantages of the present invention are summarized as follows:

(a) 본 발명은 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 프라이머 세트, 이를 포함하는 키트 조성물 및 이를 이용한 백수오와 이엽우피소의 판별 방법을 제공한다.(a) The present invention provides a primer set for species identification of Baekshou and Leeyeop cattle, a kit composition including the same, and a method for determining Baekshou and Leeyeop cattle using the same.

(b) 본 발명의 백수오와 이엽우피소의 종 판별용 Indel 마커 및 상기 마커를 증폭하는 프라이머를 이용하는 경우, 백수오를 이엽우피소 등 백미꽃 속 다른 식물체들과 손쉽게 구분할 수 있으며, 보다 신속하고 정확하며 경제적인 방법으로 백수오의 종 분류가 가능하다.(b) In the case of using the Indel marker for species identification of Baekshou and difoliate cattle of the present invention and a primer to amplify the marker, Baekshou may be easily distinguished from other plants in the white rice flower such as Baekshui cattle and more quickly and accurately. It is possible to classify the species of Baekshou in an economical way.

도 1은 백미꽃 속 식물체들의 SNP 변이량를 분석하여 나타낸 그래프이다(Class Ⅰ: 백수오, Class Ⅱ:일부 이엽우피소 표현형을 보이는 백수오, Class Ⅲ: 절관우피소, Class Ⅳ: 이엽우피소, Class Ⅴ: genotype이 백수오로 나오는 이엽우피소).
도 2는 백수오 및 이엽우피소를 포함한 백미꽃 속 식물체의 유전자형을 PCA 분석을 통하여 classification 한 결과를 나타내는 모식도이다.
도 3은 백미꽃 속 식물체에 대한 SNP chip 생산과정에서 원인별로 필터링된 SNP 개수를 나타난 모식도이다.
도 4는 Group I에 속하는 백수오 개체들 모두에서 인델 부위가 발굴되지 않은 유전자좌 중에서, Group IV에 속하는 이엽우피소 개체에서 homozygous 하며 동일한 유전자형을 가진 유전자좌를 선정한 결과 선택된 113개의 유전자좌에 대한 매트릭스에 대한 예시이다.
도 5는 본 발명의 서열번호 1 및 2의 프라이머 세트, 서열번호 3 및 4의 프라이머 세트, 그리고 서열번호 5 및 6의 프라이머 세트로 백수오와 이엽우피소의 DNA를 PCR 분석한 결과를 촬영한 사진이다.
도 6은 본 발명의 서열번호 7 및 8의 프라이머 세트, 서열번호 9 및 10의 프라이머 세트, 그리고 서열번호 11 및 12의 프라이머 세트로 백수오와 이엽우피소의 DNA를 PCR 분석한 결과를 촬영한 사진이다.
도 7은 본 발명의 서열번호 13 및 14의 프라이머 세트, 서열번호 15 및 16의 프라이머 세트, 그리고 서열번호 17 및 18의 프라이머 세트로 백수오와 이엽우피소의 DNA를 PCR 분석한 결과를 촬영한 사진이다.
1 is a graph showing the analysis of SNP mutations of plants in the white rice flower (Class Ⅰ: Baek Soo-oh, Class Ⅱ: Baek Soo-oh showing the phenotype of some leaf cows, Class Ⅲ: Bestowed cow, Class Ⅳ: Lee leaf cow, Class V : The genotype is Baeksuoh, Leeyeopwoofiso).
Figure 2 is a schematic diagram showing the result of classification through PCA analysis of the genotype of plants in the genus White rice flower, including Baeksu-oh and Epiphyllum.
3 is a schematic diagram showing the number of SNPs filtered by cause in the process of producing SNP chips for plants in white rice flowers.
FIG. 4 shows a matrix for 113 loci selected as a result of selecting a locus homozygous in a bilobed right cow subject belonging to Group IV and having the same genotype among loci for which indel sites were not found in all of the Baek Shou subjects belonging to Group I. FIG. This is an example.
Figure 5 is a photograph of the results of PCR analysis of the DNA of Baek Shou and Leeyeop cattle with a primer set of SEQ ID NOs: 1 and 2, a primer set of SEQ ID NOs: 3 and 4, and a primer set of SEQ ID NOs: 5 and 6 of the present invention. It's a picture.
Figure 6 is a photograph of the results of PCR analysis of the DNA of Baek Shou and Leeyeop cattle with a primer set of SEQ ID NOs: 7 and 8, a primer set of SEQ ID NOs: 9 and 10, and a primer set of SEQ ID NOs: 11 and 12 of the present invention. It's a picture.
Figure 7 is a photograph of the results of PCR analysis of the DNA of Baek Shou and Leeyeop cattle with a primer set of SEQ ID NOs: 13 and 14, a primer set of SEQ ID NOs: 15 and 16, and a primer set of SEQ ID NOs: 17 and 18 of the present invention. It's a picture.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 이들 실시예는 단지 본 발명을 예시하기 위한 것이므로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는다.Hereinafter, the present invention will be described in more detail through examples. Since these examples are for illustrative purposes only, the scope of the present invention is not to be construed as being limited by these examples.

실시예 1. 백수오 및 이엽우피소의 표준 유전체 서열 결정Example 1. Determination of the standard genome sequence of Baek Soo-oh and Leeyeop cattle

1-1. PromethION read 생산1-1. PromethION read production

백미꽃 속 2종 식물체인 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum)의 전장 유전체를 분석하기 위하여 Oxford Nanopore(ONT)社의 promethION 플랫폼을 이용하여 백수오 및 이엽우피소의 전장 유전체 서열을 해독하였다. 상기 해독과정에서 promethION 플랫폼을 2차례 이용하여 백수오 및 이엽우피소 유전체에서 평균 5Kb 이상의 장서열을 생산하였고, 전체 해독 길이, 평균 read 길이, 및 최장 read 길이는 아래 [표 1]에 정리하였다. 분석 서열의 평균 ‘quality score(Q=-10log10P)’는 모두 11로 90% 이상의 정확성을 갖는 것으로 분석되었다.Two kinds of plants in the genus White Rice, Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum ) in order to analyze the full-length genome of Oxford Nanopore (ONT) using the promethION platform of Baek Soo-Oh and Lee Yeop Soo. In the decoding process, the promethION platform was used twice to produce a long sequence of more than an average of 5Kb in the genome of Baeksu-oh and Leeyeopso, and the total decoding length, average read length, and longest read length are summarized in [Table 1] below. The average'quality score (Q=-10log 10 P)' of the analyzed sequence was 11, which was analyzed to have an accuracy of 90% or more.

[표 1][Table 1]

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1-2. 백미꽃 속 2종 식물체의 표준유전체 어셈블리 제작1-2. Production of standard genome assembly of two kinds of plants in the genus White Rice

긴 서열의 염기서열 결정(base calling)은 Minknow 프로그램과 Filp-Flop 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)을 이용하여 수행하였고, NanoPlop 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)으로 결정된 서열들의 퀄리티(quality)를 확인하였다. 또한, Porechop 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)으로 어댑터(adaptor) 서열들을 제거하였다.Base calling of long sequences was performed using the Minknow program and the Filp-Flop program (Oxford Nanopore Technologies, UK), and the quality of the sequences determined by the NanoPlop program (Oxford Nanopore Technologies, UK) was confirmed. I did. In addition, the adapter (adaptor) sequences were removed with the Porechop program (Oxford Nanopore Technologies, UK).

또한, 백미꽃 속 식물체인 백수오와 이엽우피소 유전체를 어셈블리하기 위하여 Wtdbg2(V2.4) 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)을 사용하였고, Racon(v.1.4.3) 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)으로 긴 서열의 에러 교정(error correction)을 4회 수행하였다. 그리고, Medaka(v.0.8.1) 프로그램(Oxford Nanopore Technologies, UK)의 r941_prom_high 모델을 이용하여 에러 교정(error correction)을 추가적으로 수행하였다. 마지막으로 Pilon 프로그램과 단서열(short-read)을 이용하여 폴리싱(polishing)을 수행하여 최종 어셈블리(assembly)를 생성하였다.In addition, the Wtdbg2 (V2.4) program (Oxford Nanopore Technologies, UK) was used to assemble the genomes of the white rice flower genus Baeksu-oh and bileaflet (Oxford Nanopore Technologies, UK), and the Racon (v.1.4.3) program (Oxford Nanopore Technologies, UK). ), error correction of the long sequence was performed 4 times. In addition, error correction was additionally performed using the r941_prom_high model of Medaka (v.0.8.1) program (Oxford Nanopore Technologies, UK). Finally, polishing was performed using the Pilon program and short-read to create a final assembly.

어셈블리 결과, 백수오는 총 6,365개의 콘티그(contig)로부터 229Mbp 길이의 백수오 전장 유전체를 어셈블리(assembly)하였고, 이엽우피소는 총 5,524개의 콘티그로 250Mbp 길이의 전장 유전체를 어셈블리하였다. As a result of the assembly, Baek Soo-o assembled a 229 Mbp-long Baek Soo-Oh full-length genome from a total of 6,365 contigs, and a 250 Mbp-long full-length genome was assembled for a total of 5,524 contigs.

[표 2][Table 2]

Figure pat00002
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상기 제작된 백수오 및 이엽우피소의 전장 유전체 분석 결과를 백수오와 이엽우피소를 구별하기 위한 마커 개발에 활용하였다.The results of full-length genomic analysis of the prepared Baek Soo and Lee Yeop cattle were used to develop a marker for distinguishing Baek Soo and Lee Yeop cattle.

실시예 2. 백수오 및 이엽우피소 샘플 선정 및 서열분석Example 2. Selection and sequencing of Baek Shou and Leeyeop cattle samples

백수오 및 이엽우피소의 2종 식물체를 포함하는 백미꽃 속 유전자원의 종 구별을 위한 SNP chip을 생산하기 위해서, 백수오 및 이엽우피소의 유전자원을 충북 농업기술원에서 공여받았다. 백수오 및 이엽우피소의 변이체(표준유전체와 다른 뉴클레오타이드 염기의 총합) 분석을 위하여, 일루미나(Illumina) 社에서 개발한 “차세대 유전체 서열 플랫폼(NGS, Next generation sequencing)” 방법을 이용하여 백수오 유전체 서열의 30배수 내지 50배수로 해독하였고, 하기 [표 3]에 해독 결과를 요약하였다. In order to produce the SNP chip for differentiating the species of genetic resources in the genus of white rice, including two kinds of plants, Baeksuo and Leeupe cattle, genetic resources of Baeksuo and Leeupe cattle were donated from Chungbuk Agricultural Technology Institute. Baeksuo genome using the “next generation sequencing platform (NGS)” method developed by Illumina for analysis of variants of Baeksuo and dileaf cattle (the sum of nucleotide bases different from the standard genome). It was decoded in 30 to 50 times of the sequence, and the decoding results are summarized in the following [Table 3].

[표 3][Table 3]

Figure pat00003
Figure pat00003

실시예 3. 백미꽃 속 식물의 단서열 정렬 및 SNP 분석Example 3. Sequence alignment and SNP analysis of plants of the genus White rice flower

백미꽃 속 개체의 단서열 유전체 정보를 약 300Mbp 길이의 백수오 표준유전체 서열과 비교하여 SNV(Single nucleotide variation) 변이를 동정하기 위한 변이체 분석을 다음과 같이 수행하였다.Mutant analysis to identify single nucleotide variation (SNV) mutations was performed as follows by comparing the genome information of a single sequence of an individual in the white rice flower with a standard genome sequence of about 300 Mbp in length.

먼저, 백미꽃 속 식물 16개체에서 생산한 단서열을 229Mbp 길이의 백수오 표준유전체 서열에 BWA-MEM(ver. 0.7.17) 프로그램으로 정렬(align)하였고, Picard (ver. 2.9.2) 프로그램의 MarkDuplicate tool을 이용하여 실험 과정에서 중복(duplication)된 리드(read)를 마스킹(masking)하였다. Indel 영역의 얼라인먼트(alignment)를 보정하기 위하여 GATK(Genome Analysis Tool Kit, ver. 3.8, Broad Institute)의 realignerTarget Creator(Category Sequence Data Processing Tools) 모듈과 IndelRealigner 모듈을 이용하였다.First, the single sequence produced by 16 plants of the genus White rice was aligned to the 229 Mbp-long Baeksuo standard genome sequence with the BWA-MEM (ver. 0.7.17) program, and the Picard (ver. 2.9.2) program Using the MarkDuplicate tool, duplicated reads during the experiment were masked. In order to correct the alignment of the indel area, the realignerTarget Creator (Category Sequence Data Processing Tools) module and IndelRealigner module of GATK (Genome Analysis Tool Kit, ver. 3.8, Broad Institute) were used.

Samtools(ver. 1.9) 프로그램의 mappingQScoreFilter 모듈을 이용하여 퀄리티 스코어 30(quality score 30) 이하를 제거한 후, GATK(ver. 3.8)의 Unifiedgenotyper 모듈을 이용하여 각 개체별 SNV(Single nucleotide variation)를 예측하였다. 하기 [표 4]에서 Group Ⅰ은 백수오, Group Ⅱ는 일부 이엽우피소의 표현형을 보이는 백수오, Group Ⅲ은 절관우피소, Group Ⅳ는 이엽우피소, Group Ⅴ는 genotype이 실제는 이엽우피소이나 백수오로 나오는 이엽우피소로 구분된다. After removing the quality score 30 or less using the mappingQScoreFilter module of the Samtools (ver. 1.9) program, single nucleotide variation (SNV) for each individual was predicted using the Unified Genotyper module of GATK (ver. 3.8). . In the following [Table 4], Group Ⅰ is Baek Soo-oh, Group Ⅱ is Baek Soo-oh, which shows the phenotype of some two-leaf cows, Group Ⅲ is a perfect cow, Group Ⅳ is two-leaf cows, and Group V is a genotype is actually two-leaf cows. It is divided into two types of cows, such as or Baeksu-oh.

예측 결과, 백미꽃 속 식물들의 단서열 맵핑(mapping) 비율은 평균 40.58%로 나타났다.As a result of prediction, the ratio of single sequence mapping of plants in the genus White rice flower was found to be 40.58% on average.

[표 4][Table 4]

Figure pat00004
Figure pat00004

구체적으로 6개체의 백수오 품종(CBM0134, CBM0134-2, CBM0144, CBM0103, CBM0110, CBM0111, CBM0221)과 3개체의 이엽우피소 품종(CBM0212, CBM0212-2, CBM0212-3) 사이에 맵핑 비율(mapping rate)에 대한 차이는 없었다. 또한, 정렬된 리드(read)는 전체 조립된 백수오 표준유전체 서열의 72.34%를 커버하는 것으로 나타났다. 그리고, 충북 농업기술원에서 종 동정된 백수오 개체의 SNV(Single nucleotide variation)는 약 1.4Mbp로 어셈블(assemble)된 백수오 유전체 서열의 약 0.61% 영역에서 발굴되었고, 이엽우피소 개체의 SNV는 약 3.7Mbp로 어셈블(assemble)된 백수오 유전체의 약 1.61% 영역에서 발굴되었다. Specifically, the mapping ratio between the six Baek Shou varieties (CBM0134, CBM0134-2, CBM0144, CBM0103, CBM0110, CBM0111, CBM0221) and the three species (CBM0212, CBM0212-2, CBM0212-3) There was no difference in rate). In addition, the aligned reads were found to cover 72.34% of the entire assembled Baekshou standard genome sequence. In addition, the single nucleotide variation (SNV) of Baeksuo individuals identified by the Chungbuk Agricultural Technology Institute was found in about 0.61% of the assembled Baeksuo genome sequence at about 1.4Mbp, and the SNV of the Leeyeop cattle was about It was discovered in about 1.61% of the Baeksuo genome assembled at 3.7Mbp.

따라서, 백수오 표준유전체와 비교한 이엽우피소의 변이체는 백수오 개체 사이의 변이체보다 2.6배 높게 나타나는 것으로 확인되었고, 절관우피소의 SNV도 약 3.6M로 이엽우피소와 백수오 간의 유전적 차이와 유사하게 나타남을 확인할 수 있었다(도 1 참조). Therefore, it was confirmed that the mutant of the bileaf cattle compared to the standard genome of Baeksuoh was found to be 2.6 times higher than that of the mutant between the Baeksuo cattle, and the SNV of the Baeksuo cattle was also about 3.6M, which is the genetic difference between the bileaflet and Baeksuoh. It was confirmed that the appearance was similar to (see FIG. 1).

각 개체의 이형접합성(heteryzygosity)를 분석한 결과, 레퍼런스 어셈블리(reference assembly)에 사용된 백수오 CBM0134 개체는 이형접합형(heterzygous) SNV의 비율이 가장 높게 나타났고, CBM0111 개체는 5.47로 다음으로 높게 나타났다. 반면, 이엽우피소의 이형접합형 SNV 비율은 0.88~1.69로 상대적으로 낮고 비슷한 비율로 나타났다.As a result of analyzing the heterozygosity of each individual, Baek Suo CBM0134 used in the reference assembly showed the highest proportion of heterozygous SNV, and CBM0111 was the next highest with 5.47. appear. On the other hand, the ratio of heterozygous SNV in bileaflet cattle was relatively low and similar, 0.88 to 1.69.

실시예 4. 백수오 종 동정을 위한 SNP 마커 개발Example 4. Development of SNP Marker for Identification of Baek Shou Species

백수오와 이엽우피소의 종 구별을 위한 SNP 마커를 개발하기 위하여, 실시예3에서 동정된 SNP를 유전자좌 별로 머징(merging)하여 매트릭스(matrix)를 작성한 결과, 총 8,508,402개의 유전자좌에서 SNP를 발굴하였다. In order to develop a SNP marker for differentiating the species of Baeksu-oh and bileaflete, the SNPs identified in Example 3 were merged for each locus to create a matrix.As a result, SNPs were discovered in a total of 8,508,402 loci. .

상기 8.5Mbp의 SNP를 기반으로 백수오 및 이엽우피소를 포함한 백미꽃 속 식물의 유전자형을 PCA 분석을 통하여 classification 하였다. 그 결과, 이엽우피소의 표현형을 일부 보이는 백수오 (Group II)나, 백수오의 유전형(genotype)을 가지는 이엽우피소 (Group V)의 경우, 백수오 (Group I) 또는 이엽우피소 (Group IV)와는 유전적으로 떨어져 있음을 확인할 수 있었다. 특히, Group V에 속한 개체는 PCA(principal components analysis) 그래프 상에서 백수오와 이엽우피소 사이에 위치함을 확인할 수 있었다(도 2 참조). Based on the 8.5 Mbp SNP, genotypes of plants in the genus White Rice, including Baekshou and Epiphyllum, were classified through PCA analysis. As a result, in the case of Baek Soo-o (Group II) showing some phenotype of Baek Soo-Oh (Group II) or Baek Soo-Oh (Group V) having a genotype of Baek Soo-Oh, Baek Soo-O (Group I) or Di-Leoped Cow (Group) IV). In particular, it was confirmed that the individual belonging to Group V was located between Baek Su-oh and Lee Yeop Shelter on the PCA (principal components analysis) graph (see FIG. 2).

종 동정을 위한 SNP Chip을 제작하기 위하여 먼저 SNP Chip 생산 효율을 저해할 수 있는 아래의 3가지 요인을 선별하여 필터링 과정을 거쳤다.In order to manufacture the SNP Chip for species identification, first, the following three factors that can hinder the SNP Chip production efficiency were selected and filtered.

1) 타겟 SNP의 양방향 200 염기서열 내에 다른 SNP가 나타나는 경우 1) If another SNP appears within the bidirectional 200 nucleotide sequence of the target SNP

2) 타겟 SNP 및 양방향 200 염기서열이 백수오의 repeat 서열과 겹치는 경우 2) When the target SNP and the bidirectional 200 nucleotide sequence overlap with the repeat sequence of Baek Shou

3) 타겟 SNP 및 양방향 200 염기서열 내에 삽입/결손 변이(insertion/deletion, InDel variant)가 동정 된 경우3) When an insertion/deletion mutation (insertion/deletion, InDel variant) is identified within the target SNP and 200 nucleotide sequences in both directions

상기 3가지 요인에 해당하는 경우에는 프라이머 맵핑(primer mapping) 및 유전형(genotyping)에 에러(error)를 유발할 수 있으므로 필터링하였고, 필터링 결과 전체 유전자좌의 0.92%에 해당하는 7,865개의 유전자좌에서 감도 높은 SNP Chip을 생산 가능할 것으로 판단하였다(도 3 참조).In the case of the above three factors, since it may cause an error in primer mapping and genotyping, it was filtered. As a result of filtering, SNP chip with high sensitivity at 7,865 loci, which is 0.92% of the total loci. It was determined that it could be produced (see FIG. 3).

다음으로, 6개체의 백수오의 유전좌형이 표준유전체로 어셈블리 된 유전체서열과 모두 동일하고, 3개체의 이엽우피소의 유전자형이 발굴된 SNP 유전좌형과 모두 동일하면서 동형접합체(homozygous)인 유전자좌만을 추가로 선별하였다. 그 결과, 약 4%에 해당하는 319개의 유전자좌가 선별되었다. Next, the genetic loci of 6 individuals are the same as the genome sequence assembled with the standard genome, and all the genotypes of the two lobes are identical to the discovered SNP loci, and only the loci that are homozygous. It was further screened. As a result, about 4% of 319 loci were selected.

SNP 예측의 정확도가 높은 영역을 SNP Chip으로 만들기 위하여, 백수오 및 이엽우피소에서 SNP 분석에 이용된 리드(read)의 심도(depth)가 모두 10 이하인 영역을 제거한 결과 182(57.10%) 개의 SNP 유전자좌 영역을 확보하였고, 리드(read)의 심도(depth)가 100 이상인 영역을 다시 제거한 결과, 총 143 SNP 유전자좌 영역을 확보하였다. In order to make the region with high accuracy of SNP prediction into the SNP Chip, 182 (57.10%) SNPs as a result of removing regions with all depths of 10 or less used for SNP analysis in Baek Su-Oh and Lee Yeop Shelter were removed, and as a result, 182 (57.10%) SNPs were SNPs. The locus region was secured, and as a result of removing the region having a read depth of 100 or more, a total of 143 SNP loci regions were secured.

실시예 5. 백수오 및 이엽우피소의 In-Del 마커 분석Example 5. Analysis of In-Del Markers of Baek Soo-Oh and Lee Yeop Sopi

실시예 2의 차세대염기서열의 맵핑(mapping) 결과로부터 백수오 및 이엽우피소의 상염색체 상의 인델(indel; insertion and deletion) 부위를 찾아내기 위해 GATK(Genome Analysis Tool Kit, ver. 3.8, Broad Institute)의 Unifiedgenotyper 모듈을 이용하여 분석하였다. 총 16개체의 백미꽃 속 식물의 indel 부위를 CBM0134의 표준유전체와 비교한 결과, 각 개체별로 발굴된 Indel 부위의 개수는 130,213개에서 666,406개로 발굴되었다.GATK (Genome Analysis Tool Kit, ver. 3.8, Broad Institute) to find the indel (insertion and deletion) sites on the autosomal of Baek Soo-Oh and Lee B. cow from the mapping result of the next-generation nucleotide sequence of Example 2 ) Was analyzed using the Unifiedgenotyper module. As a result of comparing the indel sites of 16 white rice plants with the standard genome of CBM0134, the number of indel sites discovered for each individual was from 130,213 to 666,406.

[표 5][Table 5]

Figure pat00005
Figure pat00005

Group I에 속한 백수오 개체들의 평균 indel 변이량(274,707)은 Group IV에 속한 이엽우피소의 평균 indel 변이량(504,363)보다 적은 것으로 나타났다. It was found that the average indel variance (274,707) of Baeksu-oh individuals belonging to Group I was less than the average indel variance (504,363) of bileaflet cattle belonging to Group IV.

상기 [표 5]의 백미꽃 속 변이체의 indel 유전자좌를 머징(merging)하여 매트릭스를 만든 결과 총 3,230,257개의 영역에서 1bp 이상의 삽입/결실이 예측되었다. 이렇게 작성한 매트릭스를 이후 백수오와 이엽우피소의 유전적 차이를 밝히기 위한 기초 데이터로 활용하였다.As a result of creating a matrix by merging the indel loci of the mutant in the genus white rice in [Table 5], insertions/deletions of 1 bp or more were predicted in a total of 3,230,257 regions. The matrix prepared in this way was later used as basic data to clarify the genetic difference between Baek Su-oh and Lee Yeop cattle.

실시예 6. 백수오 및 이엽우피소의 In-Del 마커 선정Example 6. Selection of In-Del Markers for Baek Soo-Oh and Lee Yeop Cow

백수오와 이엽우피소를 구별하기 위하여 전체 인델 변이체 매트릭스로부터 리드 심도(read depth)가 10 이하인 유전자좌는 모두 제거하여 인델 예측률이 높은 영역만 확보하였다. 이후, Group I에 속하는 백수오 개체들 모두에서 인델 부위가 발굴되지 않은 유전자좌 중에서, Group IV에 속하는 이엽우피소 개체에서 homozygous 하며 동일한 유전자형을 가진 유전자좌를 선정함으로써 113개의 유전자좌만을 확보하였다(도 4). 도 4을 참조하면, 파랑색 백그라운드는 백수오 개체들이 속한 Group I이고, 초록색 백그라운드는 이엽우피소가 속한 Group IV이다. 나머지 그룹들은 백수오와 이엽우피소의 hybrid로 구분된다.In order to distinguish between Baek Soo-oh and bileaflet, all loci with a read depth of 10 or less were removed from the entire indel variant matrix to secure only regions with a high indel prediction rate. Thereafter, among the loci for which indel sites were not found in all of the Baeksu-Oh individuals belonging to Group I, only 113 loci were obtained by selecting a locus homozygous in the bilobed right cattle individuals belonging to Group IV and having the same genotype (Fig. 4). . Referring to FIG. 4, a blue background is a group I to which Baek Shou individuals belong, and a green background is a group IV to which a cow shelter belongs. The rest of the groups are divided into hybrids of Baek Su-oh and Lee Yeop cattle.

상기와 같이 선정된 113개의 유전좌 중에서 반복(repeat) 서열과 겹치는 부분을 제거하고, 9개의 Indel 영역으로부터 primer 3 프로그램을 이용하여 9 세트의 PCR 증폭 프라이머를 제작하였다(표 6).Of the 113 loci selected as described above, a portion overlapping with a repeat sequence was removed, and 9 sets of PCR amplification primers were prepared from 9 Indel regions using the primer 3 program (Table 6).

[표 6][Table 6]

Figure pat00006
Figure pat00006

실시예 7. 백수오 및 이엽우피소의 In-Del 마커 실증Example 7. In-Del Marker Demonstration of Baek Soo-Oh and Lee Yeop Cow

상기 실시예 6에서 선별한 미토콘드리아 유전체의 Indel 마커를 이용하여 백수오 종을 판별할 수 있는지 알아보기 위하여, 백수오의 게놈 DNA(genomic DNA)를 분리하고 상기 [표 6]의 Indel 마커 기반의 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하였다.In order to determine whether Baekshou species can be identified using the Indel marker of the mitochondrial genome selected in Example 6, genomic DNA of Baekshou was isolated and primers based on the Indel marker of [Table 6]. PCR was performed using the set.

구체적으로, 유전형 분석(genotyping)을 위한 게놈 DNA 분리를 위하여, 백수오를 분쇄한 후, 액체 질소를 처리하여 동결하고 분말화하였다. 상기 백수오 분말에 700㎕의 마이크로프렙 버퍼(microprep buffer)를 첨가하고 65℃에 15분간 배양하면서 5분 간격으로 혼합하였다. 그 다음, 700㎕의 클로로포름:이소아밀알코올(chloroform:isoamylalcohol = 24:1)을 첨가하고 1분간 혼합한 후 11,000rpm으로 15분간 원심분리하여 상층액을 획득하였다. 분리한 상측액에 약 60% 부피의 이소프로판올(isopropanol)을 첨가하고 DNA가 응축될 때까지 혼합한 후, 13,000rpm에서 5분간 원심분리하고 상층액을 제거하여 DNA 펠렛(pellet)를 획득하였다. 상기 획득한 DNA 펠렛을 70% 에탄올로 세척 및 건조한 후, RNaseA가 50 mg/L 첨가된 1xTE 버퍼 50㎕를 첨가하고 37℃에서 120분간 두어 DNA 펠렛 내 포함된 RNA를 제거하여 백수오의 DNA를 획득하였다. 그 후, 증폭 반응에 주형(template)으로 사용하기 위하여 상기 백수오 DNA의 농도를 측정하고 약 100ng/㎕가 되도록 희석하였다.Specifically, for separating genomic DNA for genotyping, Baekshou was pulverized and then frozen and pulverized by treatment with liquid nitrogen. 700 µl of microprep buffer was added to the white water powder, followed by incubation at 65° C. for 15 minutes, followed by mixing at intervals of 5 minutes. Then, 700 µl of chloroform:isoamyl alcohol (chloroform:isoamylalcohol = 24:1) was added, mixed for 1 minute, and centrifuged at 11,000 rpm for 15 minutes to obtain a supernatant. About 60% volume of isopropanol was added to the separated supernatant and mixed until the DNA was condensed, followed by centrifugation at 13,000 rpm for 5 minutes, and the supernatant was removed to obtain a DNA pellet. After washing and drying the obtained DNA pellet with 70% ethanol, 50 μl of 1xTE buffer to which 50 mg/L of RNaseA was added was added and left at 37° C. for 120 minutes to remove RNA contained in the DNA pellet to remove the DNA of Baek Shou. Obtained. Thereafter, the concentration of the Baeksuo DNA was measured and diluted to about 100 ng/µl for use as a template in the amplification reaction.

그 다음, 상기 실시예 6에서 9세트의 PCR 증폭 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하였다. Then, PCR was performed using 9 sets of PCR amplification primer sets in Example 6.

비교 실험을 위하여, 상기 DNA 추출방식과 동일한 방식을 사용하여 추출한 이엽우피소를 대조군으로 사용하였다. For the comparative experiment, dileaf cattle extracted using the same method as the DNA extraction method was used as a control.

PCR을 위하여 하기 [표 7]에 기재된 반응물 조성으로 PCR 반응물을 구성하였고, 하기 [표 8]의 조건으로 PCR을 수행하여 증폭된 마커 산물을 획득하였다. For PCR, a PCR reaction product was constructed with the reaction product composition shown in the following [Table 7], and PCR was performed under the conditions of the following [Table 8] to obtain an amplified marker product.

[표 7][Table 7]

Figure pat00007
Figure pat00007

[표 8][Table 8]

Figure pat00008
Figure pat00008

그 다음, 상기 증폭된 Indel 마커 산물은 2.5% 아가로오스 겔(agarose gel)에 로딩하고, 100V에서 50-60분간 전기영동하여 증폭 밴드를 확인하였다.Then, the amplified Indel marker product was loaded on a 2.5% agarose gel and subjected to electrophoresis at 100V for 50-60 minutes to confirm the amplification band.

그 결과, 도 4 내지 6에 나타낸 바와 같이, 실시예 6에서 발굴한 Indel 마커를 증폭하기 위해 제작한 상기 [표 6]의 프라이머 세트를 이용하여 증폭하는 경우, 서열번호 1 및 2의 프라이머 세트의 경우 백수오는 321bp, 이엽우피소는 298bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였고, 서열번호 3 및 4의 프라이머 세트의 경우 백수오는 350bp, 이엽우피소는 312bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였으며, 서열번호 5 및 6의 프라이머 세트의 경우 백수오는 333bp, 이엽우피소는 311bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였고, 서열번호 7 및 8의 프라이머 세트의 경우 백수오는 303bp, 이엽우피소는 274bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였으며, 서열번호 9 및 10의 프라이머 세트의 경우 백수오는 339bp, 이엽우피소는 312bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였고, 서열번호 11 및 12의 프라이머 세트의 경우 백수오는 305bp, 이엽우피소는 274bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였으며, 서열번호 13 및 14의 프라이머 세트의 경우 백수오는 301bp, 이엽우피소는 281bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였고, 서열번호 15 및 16의 프라이머 세트의 경우 백수오는 357bp, 이엽우피소는 306bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였으며, 서열번호 17 및 18의 프라이머 세트의 경우 백수오는 350bp, 이엽우피소는 315bp 길이의 특이적인 밴드가 증폭되는 것을 확인하였다. As a result, as shown in Figs. 4 to 6, in the case of amplification using the primer set of [Table 6] prepared to amplify the Indel marker discovered in Example 6, the primer sets of SEQ ID NOs: 1 and 2 In the case of Baeksuo, it was confirmed that a specific band of 321bp in length and 298bp in Baeksuo was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 3 and 4, a specific band of 350bp in Baeksuo, and 312bp in Baeksupiso was amplified. It was confirmed that, in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 5 and 6, a specific band of 333 bp in Baeksuo and 311 bp in Baeksuo was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 7 and 8, Baeksuo was 303bp, and Yeopwoo Lee. It was confirmed that a specific band of length 274 bp was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 9 and 10, it was confirmed that a specific band of length 339 bp and 312 bp in the case of SEQ ID NO: 11 and In the case of the primer set of 12, it was confirmed that a specific band of 305 bp in Baeksuo and 274bp in Baeksuo was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 13 and 14 Baeksuo was 301bp, and Baeksuo was 281bp in length. It was confirmed that the band was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 15 and 16, it was confirmed that a specific band of 357 bp in length and 306 bp in the bileaflet was amplified, and in the case of the primer sets of SEQ ID NOs: 17 and 18 It was confirmed that a specific band of 350 bp and 315 bp in length was amplified.

따라서, 본 발명의 백미꽃 속 식물의 유전체 Indel 부위의 유전자 서열에 기반한 백수오 종 판별용 유전자 마커를 이용하여 백수오와 이엽우피소를 용이하게 판별할 수 있으며, 밴드 사이즈의 확인을 통해 다른 백미꽃 속 식물체들과 백수오를 용이하게 구분이 가능함을 확인할 수 있었다.Therefore, it is possible to easily discriminate between Baekshou and Epiphytes using the genetic marker for discriminating Baekshui species based on the gene sequence of the genome Indel region of the genus Indel plant of the genus Baeksui flower of the present invention. It was confirmed that it was possible to easily distinguish between plants and white water.

또한, 상기 백미꽃 속 식물의 유전체 InDel 부위를 기반으로 한 마커들은 모계 유전되는 엽록체 유전자를 기반으로 하는 마커들과는 달리, 꽃가루에 의해 발생하는 hybrid 식물체[본 발명에서는 이엽우피소의 표현형을 일부 보이는 백수오 (Group II)나, 백수오의 유전형(genotype)을 가지는 이엽우피소 (Group V)에 해당]를 원천적으로 구별이 가능함을 확인할 수 있었다.In addition, the markers based on the genomic InDel site of the genus white rice flower are hybrid plants generated by pollen unlike markers based on the chloroplast gene inherited from the maternal line It could be confirmed that (Group II) or (corresponding to Group V) having a genotype of Baek Suo] can be distinguished at the source.

이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.As described above, specific parts of the present invention have been described in detail, and it is obvious that these specific techniques are only preferred embodiments, and the scope of the present invention is not limited thereto for those of ordinary skill in the art. Accordingly, it will be said that the substantial scope of the present invention is defined by the appended claims and their equivalents.

<110> Semyung University Division of Industry-Academy Cooperation <120> InDel Markers for Discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and Method for Use thereof <130> PN190082AN <160> 18 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 1 gccggtggct ggtatttaac 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 2 aggcatcggc atgttctcaa 20 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 3 tctacgatat caccagcacg g 21 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 4 cagtcacatg ggagcttggt 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 5 caccagtgac acctgcagaa 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 6 aggctgttcc attgctaggc 20 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 7 cggccacacc tttgacaaag 20 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 8 tccttccgcc gcacattatt 20 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 9 tgctgccaca ggagtttgta 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 10 ctcagatcca ttgcctcccg 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 11 tgcatgaggg agaagttgga 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 12 ccagccacag ccagagttaa 20 <210> 13 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 13 cccttgagag cacccgaatt 20 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 14 tctcaggcga gggttatgga 20 <210> 15 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 15 tccagggtcc tccttccaat 20 <210> 16 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 16 aaaaacacca ccggaccagt 20 <210> 17 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 17 gggtacgggt ctggcattag 20 <210> 18 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 18 aagaaggggg gtgtgagagt 20 <110> Semyung University Division of Industry-Academy Cooperation <120> InDel Markers for Discrimination of Cynanchum wilfordii and Cynanchum auriculatum and Method for Use thereof <130> PN190082AN <160> 18 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 1 gccggtggct ggtatttaac 20 <210> 2 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 2 aggcatcggc atgttctcaa 20 <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 3 tctacgatat caccagcacg g 21 <210> 4 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 4 cagtcacatg ggagcttggt 20 <210> 5 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 5 caccagtgac acctgcagaa 20 <210> 6 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 6 aggctgttcc attgctaggc 20 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 7 cggccacacc tttgacaaag 20 <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 8 tccttccgcc gcacattatt 20 <210> 9 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 9 tgctgccaca ggagtttgta 20 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 10 ctcagatcca ttgcctcccg 20 <210> 11 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 11 tgcatgaggg agaagttgga 20 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 12 ccagccacag ccagagttaa 20 <210> 13 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 13 cccttgagag cacccgaatt 20 <210> 14 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 14 tctcaggcga gggttatgga 20 <210> 15 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 15 tccagggtcc tccttccaat 20 <210> 16 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 16 aaaaacacca ccggaccagt 20 <210> 17 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward Primer Sequence <400> 17 gggtacgggt ctggcattag 20 <210> 18 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse Primer Sequence <400> 18 aagaaggggg gtgtgagagt 20

Claims (4)

서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 및 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트;로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 프라이머 세트를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트.A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16; And a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18; Baeksuo (Cynanchum wilfordii) and a primer set for discrimination including one or more primer sets selected from the group consisting of. 제1항에 있어서,
상기 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 321bp이고, 상기 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 350bp이며, 상기 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 333bp이고, 상기 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 303bp이며, 상기 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 339bp이고, 상기 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 305bp이며, 상기 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 301bp이고, 상기 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 357bp이며, 상기 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 백수오 종의 PCR 증폭 산물은 350bp인 것을 특징으로 하는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트.
The method of claim 1,
The PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 is 321 bp, and the number of white numbers amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 The five kinds of PCR amplification products are 350bp, and the PCR amplification products of Baekshou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 are 333 bp, and the bases of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 The PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the sequence is 303 bp, and the PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10 is 339 bp, The PCR amplification product of Baeksuo species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12 is 305 bp, and the number of white numbers amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14 The five kinds of PCR amplification products are 301 bp, and the PCR amplification product of Baek Shou species amplified with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16 is 357 bp, and the bases of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18 The PCR amplification product of Baekshou species amplified by the primer set represented by the sequence is 350bp, characterized in that Baekshou (Cynanchum wilfordii) and Yiyeopiso (Cynanchum auriculatum) a set of primers for discrimination.
제1항 또는 제2항의 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 프라이머 세트를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii)와 이엽우피소(Cynanchum auriculatum) 판별용 키트.Claim 1 or claim 2 Baeksu-o (Cynanchum wilfordii) and yiyeop cow (Cynanchum auriculatum) containing a primer set for identification of Baeksu-o (Cynanchum wilfordii) and yiyeopso (Cynanchum auriculatum) discrimination kit. (a) 대상 백수오(Cynanchum wilfordii) 시료에서 DNA를 분리하는 단계;
(b) 상기 (a) 단계에서 분리된 DNA를 주형으로 하고, 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트; 및 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트;로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 프라이머 세트를 이용하여 표적 서열을 증폭하는 단계; 및
(c) 상기 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 321bp이고, 상기 서열번호 3 및 서열번호 4의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 350bp이며, 상기 서열번호 5 및 서열번호 6의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 333bp이고, 상기 서열번호 7 및 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 303bp이며, 상기 서열번호 9 및 서열번호 10의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 339bp이고, 상기 서열번호 11 및 서열번호 12의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 305bp이며, 상기 서열번호 13 및 서열번호 14의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 301bp이고, 상기 서열번호 15 및 서열번호 16의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 357bp이며, 상기 서열번호 17 및 서열번호 18의 염기서열로 표시되는 프라이머 세트로 증폭된 PCR 증폭 산물이 350bp인 경우 백수오(Cynanchum wilfordii) 종으로 판정하는 단계;를 포함하는 백수오(Cynanchum wilfordii) 종 판별 방법.
(a) separating DNA from a sample of the subject Baeksu-o (Cynanchum wilfordii);
(b) a primer set using the DNA isolated in step (a) as a template, and represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14; A primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16; And a primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18; amplifying the target sequence using one or more primer sets selected from the group consisting of; And
(c) PCR amplification product amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 is 321 bp, and PCR amplification amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4 The product is 350bp, and the PCR amplification product amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 is 333bp, and amplified with the primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 The PCR amplification product is 303 bp, and the amplified PCR amplification product is 339 bp with a primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 9 and SEQ ID NO: 10, and a primer set represented by the nucleotide sequences of SEQ ID NO: 11 and SEQ ID NO: 12. The amplified PCR amplification product is 305 bp, the amplified PCR amplification product is 301 bp with the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 13 and SEQ ID NO: 14, and the primer represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16 If the PCR amplification product amplified by the set is 357 bp, and the PCR amplification product amplified by the primer set represented by the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 17 and SEQ ID NO: 18 is 350 bp, determining that it is a species of Cynanchum wilfordii; Baeksu-o (Cynanchum wilfordii) species identification method containing.
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