KR20190126334A - 폴리아데닐화 신호의 압타머-매개된 접근성에 의한 유전자 발현의 조절 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 1 이상의 폴리아데닐화 신호의 접근성의 압타머-기반 조절에 의한 유전자 발현의 조절을 위한 폴리뉴클레오티드 구조체, 및 압타머에 결합하는 리간드의 존재 또는 부재에 반응하여 유전자 발현을 조절하기 위해 구조체를 사용하는 방법을 제공한다. 폴리뉴클레오티드 구조체는 압타머 및 이펙터 스템 루프를 포함하는 리보스위치를 함유하되, 이펙터 스템 루프가 폴리아데닐화 신호 서열을 포함한다.
Description
발명의 분야
본 발명은 1 이상의 폴리아데닐화 신호의 접근성의 압타머-기반 조절에 의한 유전자 발현의 조절을 위한 폴리뉴클레오티드 구조체, 및 압타머에 결합하는 리간드의 존재 또는 부재에 반응하여 유전자 발현을 조절하기 위해 폴리뉴클레오티드 구조체를 사용하는 방법을 제공한다. 폴리뉴클레오티드 구조체는 압타머 및 이펙터 스템 루프(effector stem loop)를 포함하는 리보스위치를 함유하되, 이펙터 스템 루프가 폴리아데닐화 신호 서열을 포함한다.
발명의 배경
진핵 세포의 메신저(messenger) RNA(mRNA)는 5' 말단 캡핑(capping), 스플라이싱에 의한 인트론의 제거, 및 3' 말단 절단 및 폴리아데닐화를 포함한 광범위한 전사-후 조절에 의해 pre-mRNA 전사물로부터 생산된다. 거의 모든 진핵 mRNA의 3' 말단은 poly(A) 꼬리(poly(A) tail) - 20 내지 250 개 아데노신 잔기의 호모폴리머를 포함한다. poly(A) 꼬리는 큰 단백질 복합체에 의해 촉매화된 과정인 절단 및 폴리아데닐화에 의해 핵에서 pre-mRNA에 첨가된다. poly(A) 꼬리의 첨가는 폴리아데닐화 부위의 업스트림에서 발견된 고도로 보존된 AATAAA(또는 이의 변형 ATTAAA) 폴리아데닐화 신호 서열, 및 다른 업스트림 요소(upstream element)("USE")뿐 아니라, T 또는 GT-풍부 다운스트림 요소(downstream element)("DSE")를 포함한 다중 요소의 존재에 의존한다. mRNA에 대한 poly(A) 꼬리의 첨가는 다른 기능 중에서도 메시지의 저하를 방지한다.
발명의 요약
일 양태에서, 본 발명은 리보스위치(riboswitch)를 포함하는 표적 유전자의 발현의 조절을 위한 폴리뉴클레오티드 카세트(cassette)를 제공하되, 리보스위치가 이펙터 스템-루프(effector stem-loop) 및 압타머를 포함하고, 이펙터 스템-루프가 폴리아데닐화 신호를 포함하며, 압타머 및 이펙터 스템-루프가 압타머 스템의 비공유 암(arm) 및 이펙터 스템 루프의 비공유 암에 대해 상보적인 서열을 포함하는 교번 공유 스템 암에 의해 연결된다. 일 실시양태에서, 압타머는 소분자 리간드에 결합한다.
실시양태에서, 압타머 스템의 서열 및 이펙터 스템 루프의 서열에 대해 상보적인 교번 공유 스템 암의 부위는 4 내지 8 개 뉴클레오티드, 5 내지 7 개 뉴클레오티드, 5 개 뉴클레오티드, 또는 6 개 뉴클레오티드이다. 실시양태에서, 압타머 스템은 6 내지 12 개 염기 쌍, 7 내지 10 개 염기 쌍, 8 개 염기 쌍, 또는 9 개 염기 쌍이다. 실시양태에서, 이펙터 스템 루프의 스템은 4 내지 24 개 염기 쌍, 5 내지 20 개 염기 쌍, 9 내지 14 개 염기 쌍, 9 개 염기 쌍, 10 개 염기 쌍, 11 개 염기 쌍 또는 12 개 염기 쌍이다.
일 실시양태에서, 이펙터 스템-루프는 압타머의 3'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 3' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 5' 암의 전부 또는 일부를 포함한다. 일 실시양태에서, 이펙터 스템-루프는 압타머의 5'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 5' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 3' 암의 전부 또는 일부를 포함한다. 일 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호는 AATAAA 또는 ATTAAA이다. 일 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호는 다운스트림 요소(DSE)이다. 일 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호는 업스트림 서열 요소(USE)이다.
일 실시양태에서, 폴리뉴클레오티드 카세트는 본 발명의 2 개의 리보스위치를 포함하되, 제1 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 폴리아데닐화 신호 AATAAA 또는 ATTAA의 전부 또는 일부를 포함하고 제2 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 다운스트림 요소(DSE)의 전부 또는 일부를 포함한다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 각각 동일한 리간드에 결합하는 압타머를 포함한다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 상이한 리간드에 결합하는 상이한 압타머를 포함한다.
일 양태에서, 본 발명은
(a) 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트 중 1 이상을 표적 유전자의 3' 비번역 영역(untranslated region) 내로 삽입하는 것,
(b) 폴리뉴클레오티드 카세트를 포함하는 표적 유전자를 세포 내로 도입하는 것, 및
(c) 표적 유전자의 발현을 증가시키는데 효과적인 양으로 압타머에 결합하는 리간드에 세포를 노출시키는 것을 포함하는, 표적 유전자의 발현을 조절하는 방법을 제공한다.
일 실시양태에서, 리간드는 소분자이다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 표적 유전자의 3' 비번역 영역("UTR") 내로 삽입되되, 제1 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 폴리아데닐화 신호 AATAAA 또는 ATTAA의 전부 또는 일부를 포함하고 제2 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 다운스트림 요소(DSE)의 전부 또는 일부를 포함한다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 각각 동일한 리간드에 결합하는 압타머를 포함한다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 상이한 리간드에 결합하는 상이한 압타머를 포함한다. 일 실시양태에서, 2 이상의 폴리뉴클레오티드 카세트는 동일한 압타머를 포함한다.
일 실시양태에서, 폴리뉴클레오티드 카세트를 포함하는 표적 유전자가 표적 유전자의 발현을 위한 벡터에 포함된다. 일 실시양태에서, 벡터는 바이러스 벡터이다. 일 실시양태에서, 바이러스 벡터는 아데노바이러스 벡터, 아데노-연관 바이러스 벡터, 및 렌티바이러스 벡터로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
일 양태에서, 본 발명은 본원에 기재된 폴리뉴클레오티드 카세트를 함유하는 표적 유전자를 포함하는 벡터를 제공한다. 일 실시양태에서, 벡터는 바이러스 벡터이다. 일 실시양태에서, 바이러스 벡터는 아데노바이러스 벡터, 아데노-연관 바이러스 벡터, 및 렌티바이러스 벡터로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
일 양태에서, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 표적 유전자의 발현의 조절을 위해 다른 메커니즘과 조합되어 사용된다. 일 실시양태에서, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 본원에 참고로 포함되는 WO 2016/126747호(PCT/US2016/016234)에 기재된 바와 같이 선택적 스플라이싱(alternative splicing)의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트와 조합되어 사용된다. 다른 실시양태에서, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 본원에 참고로 포함되는 PCT/US2017/016303에 기재된 바와 같이 자가-절단 리보자임의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트와 조합되어 사용된다. 다른 실시양태에서, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 본원에 참고로 포함되는 PCT/US2017/016279에 기재된 바와 같이 폴리아데닐화의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트와 조합되어 사용된다.
도면의 간단한 설명
도 1a. 압타머의 3' 스템 암이 교번 공유 스템 암(즉, 압타머 스템 또는 이펙터 스템과 스템 구조를 형성할 수 있지만, 둘 다 동시는 아닌 스템 암)을 통해 이펙터 스템-루프의 5' 스템 암에 연결되고, 폴리아데닐화 신호 서열(이 경우에, AATAAA)이 이펙터 스템-루프의 스템에 위치하는, 본 발명의 일 실시양태에 대한 도식.
도 1b. 폴리아데닐화 신호(이 경우에, AATAAA)의 접근성이 압타머 리간드의 존재 또는 부재에 의해 조절되는, 본 발명의 일 실시양태에 대한 도식. 이펙터 스템-루프(스템에 AATAAA 서열이 내장됨)에 연결된 압타머는 3' UTR에 삽입된다. 압타머 서열이 뒤따르는 스템-루프 구조의 5' 암의 상보적 서열은 스템-루프 구조의 5' 암에 연결된다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), AATAAA 서열은 이펙터 스템-루프에 의해 형성된 스템-루프 구조에 의해 차단되고, 이는 폴리아데닐화를 억제하여, 유전자 발현을 억제한다. 압타머 리간드의 존재시, 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 가능하게 하여, 이펙터 스템-루프 구조를 파괴하고 격리된 AATAAA의 방출을 야기한다. 스템-루프 구조의 스템과 압타머 P1 스템 사이에 공유되는 서열은 두꺼운 선으로서 나타내었다.
도 1c 및 도 1d. AATAAA 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 DMSO(도 1c) 또는 NaOH(도 1d) 또는 500 μM 구아노신(도 1c) 또는 구아닌(도 1d)으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수(induction fold)는 구아노신 또는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아노신 또는 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 1e. AATAAA의 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 EGFP 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 500 μM 구아닌으로 처치하였다. GFP 형광 강도는 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 구아닌의 존재시 얻어진 형광 강도를 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 2a. 압타머/리간드 결합에 의해 스템-루프에서 DSE의 접근성을 조절하는 도식. 스템에 DSE 서열이 내장된 스템-루프 형성 구조를 3' UTR에 삽입한다. 압타머 서열은 스템-루프 형성 구조의 3' 암에 연결되고 스템-루프 구조의 3' 암의 상보적 서열이 뒤따른다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), DSE 서열은 스템-루프 구조의 형성에 의해 차단되어, 폴리아데닐화를 억제하고 표적 유전자 발현을 억제한다. 압타머 리간드의 존재시(하부 패널), 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 가능하게 하여, 스템-루프 구조를 파괴하고 격리된 DSE 서열의 방출을 야기한다. 이펙터 스템-루프 구조의 스템과 압타머 P1 스템 사이에 공유되는 서열은 두꺼운 선으로서 나타내었다.
도 2b 및 2c. DSE 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 DMSO(도 2b) 또는 NaOH(도 2c) 또는 500 μM 구아노신(도 2b) 또는 구아닌(도 2c)으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 나타내었으며, 유도 배수는 구아노신 또는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아노신 또는 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 3. 합성 polyA 서열에 대한 접근의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절.
도 4. 스템-루프 구조에서의 루프 서열은 polyA-기반 리보스위치 활성에 영향을 준다. stbl_ATA_Gua_1은 더욱 안정적인 TTCG 루프를 갖고, ATA_Gua_1은 GAAA 루프를 가지며, gaat_ATA_Gua_1은 GAAT 루프를 갖는다.
도 5a. 압타머를 통해 AATAAA 및 DSE 서열 둘 다의 접근성을 동시에 조절하는 도식. 각각 AATAAA 또는 DSE 서열이 내장된 2 개의 스템-루프 구조를 표적 유전자의 3' UTR에 삽입하고, 압타머들을 도 1b 및 도 2a에 기재된 바와 같이 각각의 스템-루프 구조에 연결한다. 압타머 1 및 압타머 2는 동일하거나 상이한 리간드에 결합하는 동일하거나 상이한 압타머를 나타낸다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), AATAAA 및 DSE 둘 다는 스템-루프 구조에 격리되므로, 유전자 발현이 억제된다. 압타머 리간드의 존재시(하부 패널), 압타머 둘 다가 이들의 리간드에 결합할 때, AATAAA 및 DSE 서열 둘 다는 스템-루프 구조로부터 방출되어, 표적 유전자가 발현되게 한다.
도 5b. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 500 μM 구아닌으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다. polyA 서열의 AATAAA 및 DSE 서열 요소 둘 다를 동시에 격리시키는 것은 ATA_DSE_Gua 구조체에서 루시페라아제 발현의 기저 수준을 더 감소시킨다.
도 6a. ATA_Gua 리보스위치가 3'UTR 내에 있고 G15 리보스위치가 루시페라아제 코딩 서열 내에 삽입되는 이중 스위치 구조체의 도식.
도 6b. 지시된 구조체로 형질감염되고 500 uM 구아닌으로 처치되거나 처치되지 않은 HEK 293 세포로부터의 루시페라아제 활성. 2 개의 스위치를 갖는 구조체 pFLuc-G15_ATA_Gua는 단일 리보스위치를 갖는 구조체에 비해 높은 배수 유도를 생성하였다.
도 7. AATAAA의 접근성의 아데닌 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 1 mM 아데닌으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 아데닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 아데닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 8. 실시예에서 사용된 구조체의 3' UTR. 루시페라아제 유전자에 대한 코딩 서열은 대문자로 나타내었고; AATAAA 및 DSE는 회색 음영으로 강조하였으며; 압타머 서열은 밑줄로 나타내었고; 스템-루프 서열은 물결 밑줄로 나타내었으며; P1 압타머 스템 서열은 이탤릭체로 나타내었다.
도 1a. 압타머의 3' 스템 암이 교번 공유 스템 암(즉, 압타머 스템 또는 이펙터 스템과 스템 구조를 형성할 수 있지만, 둘 다 동시는 아닌 스템 암)을 통해 이펙터 스템-루프의 5' 스템 암에 연결되고, 폴리아데닐화 신호 서열(이 경우에, AATAAA)이 이펙터 스템-루프의 스템에 위치하는, 본 발명의 일 실시양태에 대한 도식.
도 1b. 폴리아데닐화 신호(이 경우에, AATAAA)의 접근성이 압타머 리간드의 존재 또는 부재에 의해 조절되는, 본 발명의 일 실시양태에 대한 도식. 이펙터 스템-루프(스템에 AATAAA 서열이 내장됨)에 연결된 압타머는 3' UTR에 삽입된다. 압타머 서열이 뒤따르는 스템-루프 구조의 5' 암의 상보적 서열은 스템-루프 구조의 5' 암에 연결된다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), AATAAA 서열은 이펙터 스템-루프에 의해 형성된 스템-루프 구조에 의해 차단되고, 이는 폴리아데닐화를 억제하여, 유전자 발현을 억제한다. 압타머 리간드의 존재시, 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 가능하게 하여, 이펙터 스템-루프 구조를 파괴하고 격리된 AATAAA의 방출을 야기한다. 스템-루프 구조의 스템과 압타머 P1 스템 사이에 공유되는 서열은 두꺼운 선으로서 나타내었다.
도 1c 및 도 1d. AATAAA 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 DMSO(도 1c) 또는 NaOH(도 1d) 또는 500 μM 구아노신(도 1c) 또는 구아닌(도 1d)으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수(induction fold)는 구아노신 또는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아노신 또는 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 1e. AATAAA의 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 EGFP 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 500 μM 구아닌으로 처치하였다. GFP 형광 강도는 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 구아닌의 존재시 얻어진 형광 강도를 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 2a. 압타머/리간드 결합에 의해 스템-루프에서 DSE의 접근성을 조절하는 도식. 스템에 DSE 서열이 내장된 스템-루프 형성 구조를 3' UTR에 삽입한다. 압타머 서열은 스템-루프 형성 구조의 3' 암에 연결되고 스템-루프 구조의 3' 암의 상보적 서열이 뒤따른다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), DSE 서열은 스템-루프 구조의 형성에 의해 차단되어, 폴리아데닐화를 억제하고 표적 유전자 발현을 억제한다. 압타머 리간드의 존재시(하부 패널), 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 가능하게 하여, 스템-루프 구조를 파괴하고 격리된 DSE 서열의 방출을 야기한다. 이펙터 스템-루프 구조의 스템과 압타머 P1 스템 사이에 공유되는 서열은 두꺼운 선으로서 나타내었다.
도 2b 및 2c. DSE 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 DMSO(도 2b) 또는 NaOH(도 2c) 또는 500 μM 구아노신(도 2b) 또는 구아닌(도 2c)으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 나타내었으며, 유도 배수는 구아노신 또는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아노신 또는 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 3. 합성 polyA 서열에 대한 접근의 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절.
도 4. 스템-루프 구조에서의 루프 서열은 polyA-기반 리보스위치 활성에 영향을 준다. stbl_ATA_Gua_1은 더욱 안정적인 TTCG 루프를 갖고, ATA_Gua_1은 GAAA 루프를 가지며, gaat_ATA_Gua_1은 GAAT 루프를 갖는다.
도 5a. 압타머를 통해 AATAAA 및 DSE 서열 둘 다의 접근성을 동시에 조절하는 도식. 각각 AATAAA 또는 DSE 서열이 내장된 2 개의 스템-루프 구조를 표적 유전자의 3' UTR에 삽입하고, 압타머들을 도 1b 및 도 2a에 기재된 바와 같이 각각의 스템-루프 구조에 연결한다. 압타머 1 및 압타머 2는 동일하거나 상이한 리간드에 결합하는 동일하거나 상이한 압타머를 나타낸다. 압타머 리간드의 부재시(상부 패널), AATAAA 및 DSE 둘 다는 스템-루프 구조에 격리되므로, 유전자 발현이 억제된다. 압타머 리간드의 존재시(하부 패널), 압타머 둘 다가 이들의 리간드에 결합할 때, AATAAA 및 DSE 서열 둘 다는 스템-루프 구조로부터 방출되어, 표적 유전자가 발현되게 한다.
도 5b. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 500 μM 구아닌으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 구아닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 구아닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다. polyA 서열의 AATAAA 및 DSE 서열 요소 둘 다를 동시에 격리시키는 것은 ATA_DSE_Gua 구조체에서 루시페라아제 발현의 기저 수준을 더 감소시킨다.
도 6a. ATA_Gua 리보스위치가 3'UTR 내에 있고 G15 리보스위치가 루시페라아제 코딩 서열 내에 삽입되는 이중 스위치 구조체의 도식.
도 6b. 지시된 구조체로 형질감염되고 500 uM 구아닌으로 처치되거나 처치되지 않은 HEK 293 세포로부터의 루시페라아제 활성. 2 개의 스위치를 갖는 구조체 pFLuc-G15_ATA_Gua는 단일 리보스위치를 갖는 구조체에 비해 높은 배수 유도를 생성하였다.
도 7. AATAAA의 접근성의 아데닌 압타머-매개된 조절을 통한 루시페라아제 발현의 조절. HEK 293 세포를 지시된 구조체로 형질감염시키고 용매 대조군으로서 NaOH 또는 1 mM 아데닌으로 처치하였다. 루시페라아제 활성은 평균±S.D. (n=3)로서 표현하였으며, 유도 배수는 아데닌의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 아데닌의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
도 8. 실시예에서 사용된 구조체의 3' UTR. 루시페라아제 유전자에 대한 코딩 서열은 대문자로 나타내었고; AATAAA 및 DSE는 회색 음영으로 강조하였으며; 압타머 서열은 밑줄로 나타내었고; 스템-루프 서열은 물결 밑줄로 나타내었으며; P1 압타머 스템 서열은 이탤릭체로 나타내었다.
발명의 상세한 설명
본 출원은 2017년 2월 21일자로 출원된 미국 가특허 출원 제62/461,689호의 우선권을 주장하며, 이는 그 전체가 본원에 포함된다. 본 출원은 하기 열거된 서열번호를 제공하는 서열 목록을 원용하며, 이는 전자 문서로서 본원에 제공되며 그 전체가 본원에 참고로 포함된다.
표적 유전자(예를 들어, 치료 전이유전자)의 발현의 조절은 다양한 상황에서 유용하거나 필요하다. 유전자의 치료적 발현의 맥락에서, 전이유전자의 조절된 발현을 가능하게 하는 기술은 발현의 수준 및 이의 타이밍을 조절하는 것에 의해 안전성을 향상시킬 수 있는 가능성을 갖는다. 단백질 발현을 제어하기 위해 조절된 시스템은 안전하고 효과적인 치료 적용을 위해 실용적이고, 일부 경우에 필수적인 역할을 갖는다. 본 발명은 압타머에 연결되는 스템-루프 구조(이펙터 스템-루프)에서 1 이상의 폴리아데닐화 신호를 격리시키는 것에 의한 폴리아데닐화의 압타머-기반 조절에 의한 유전자 발현의 조절을 위한 폴리뉴클레오티드 구조체, 및 압타머에 결합하는 리간드의 존재 또는 부재에 반응하여 유전자 발현을 조절하기 위해 구조체를 사용하는 방법을 제공한다.
폴리뉴클레오티드 구조체는 이펙터 스템-루프 및 압타머를 포함하는 적어도 하나의 리보스위치를 함유하되, 이펙터 스템-루프가 폴리아데닐화 신호 서열을 포함한다. 압타머 및 이펙터 스템-루프는 압타머 리간드의 존재에 따라 압타머 스템 또는 이펙터 스템을 갖는 스템을 교대로 형성할 수 있는 공유 스템 암에 의해 연결된다. 압타머 리간드가 존재하고 압타머에 결합될 때, 압타머 스템(압타머 P1 스템)은 안정화되고 교번 공유 스템 암을 갖는 스템을 형성한다. 따라서, 리간드의 존재시, 이펙터 스템-루프에 의해 형성된 스템-루프 구조는 비선호되고 폴리아데닐화 신호가 접근가능해지며, 이는 폴리아데닐화가 발생하게 하여 표적 유전자 발현을 향상시킨다. 리간드의 부재시, 이펙터 스템-루프는 교번 공유 스템 암을 갖는 스템 구조를 형성하여, 폴리아데닐화 신호 서열을 격리시키며, 폴리아데닐화를 막고 표적 유전자 발현을 감소시킨다.
일 실시양태에서, 이펙터 스템 루프는 압타머의 3'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 3' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템 루프의 5' 암의 전부 또는 일부를 포함한다(예를 들어, 도 1 a 및 1b 참고). 일 실시양태에서, 이펙터 스템 루프는 압타머의 5'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 5' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템 루프의 3' 암의 전부 또는 일부를 포함한다(예를 들어, 도 3 참고).
유전자 조절 폴리뉴클레오티드 카세트는, 3' UTR에서의 표적 유전자의 DNA 내로 포함될 때, 폴리아데닐화의 압타머/리간드 매개된 조절에 의해 표적 유전자의 발현을 조절하는 능력을 제공하는 재조합 DNA 구조체를 지칭한다. 본원에 사용된 바와 같이, 폴리뉴클레오티드 카세트 또는 구조체는 상이한 공급원(예를 들어, 상이한 유기체, 동일한 유기체로부터의 상이한 유전자 등)으로부터 유래된 요소를 포함하는 핵산(예를 들어, DNA 또는 RNA)이다.
리보스위치
폴리뉴클레오티드 카세트는 리보스위치를 포함한다. 본원에 사용된 바와 같은 용어 "리보스위치"는 RNA 폴리뉴클레오티드(또는 리보스위치를 코딩하는 DNA)의 조절 세그먼트를 지칭한다. 본 발명의 맥락에서 리보스위치는, 리간드(예를 들어, 소분자)의 존재를 감지하는 것 및 이펙터 스템-루프에 위치한 폴리아데닐화 서열의 접근성을 조절하는 것을 함께 담당하는 센서 영역(예를 들어, 압타머) 및 이펙터 스템-루프를 함유한다. 일 실시양태에서, 리보스위치는 2 이상의 공급원으로부터의 폴리뉴클레오티드를 이용한 재조합체이다. 리보스위치의 맥락에서 본원에 사용된 바와 같은 용어 "합성"은 자연적으로 발생하지 않는 리보스위치를 지칭한다.
이펙터 스템-루프
리보스위치의 이펙터 스템-루프는, 센서 영역(예를 들어, 압타머)에 결합하는 리간드의 부재시, 폴리아데닐화 신호 서열의 접근성을 감소시키는 스템 구조(즉, 이중-가닥 영역)를 형성하는 RNA 서열(또는 RNA 서열을 코딩하는 DNA)을 포함한다. 일 실시양태에서, 이펙터 스템-루프는 폴리아데닐화 신호 서열 및 폴리아데닐화 신호 서열에 상보적인 서열을 포함한다. 일부 실시양태에서, 이펙터 스템-루프의 스템 부위는 폴리아데닐화 신호 서열의 부위만을 포함한다. 일부 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호 서열의 전부 또는 일부는 이펙터 스템-루프의 루프 부위에 위치한다.
폴리아데닐화 신호 서열은 AATAAA(또는 관련 서열), 다운스트림 서열 요소(DSE)(예를 들어, T 또는 GT-풍부 풍부 서열), 또는 업스트림 서열 요소(USE)를 포함한 표적 유전자로부터 전사된 mRNA의 효율적인 폴리아데닐화에 관련된 표적 유전자의 3' UTR에서의 임의의 서열일 수 있다. 일부 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호 서열은 표적 유전자의 3' UTR로부터의 내인성 서열이다. 다른 실시양태에서, 폴리아데닐화 신호 서열은 외인성 서열(예를 들어, 상이한 유전자 또는 상이한 유기체로부터의 서열) 또는 합성 폴리아데닐화 신호 서열이다.
이펙터 스템-루프의 스템 암 중 하나는 압타머의 스템을 통해 압타머에 연결된다(예를 들어, 도 1a, 1b, 및 2a 참고). 압타머가 이의 리간드에 결합되지 않을 때, 이펙터 스템-루프는 폴리아데닐화 신호 서열에 대한 접근을 억제하는 맥락에서, 폴리아데닐화를 억제하고 메시지의 저하를 야기한다. 압타머가 이의 리간드에 결합될 때, 이펙터 스템-루프는 폴리아데닐화 신호 서열에 대한 접근을 억제하지 않는 입체 구조로, 메시지의 폴리아데닐화 및 표적 유전자 발현 증가를 허용한다.
이펙터 스템-루프의 스템 부위는 스템-루프 구조 형성을 촉진하여 압타머 리간드가 충분한 양으로 존재하지 않을 때 폴리아데닐화 신호 서열에 대한 접근성을 억제하기에 충분한 길이(및 GC 함량)여야 한다. 본 발명의 실시양태에서, 이펙터 스템-루프의 스템 부위는 폴리아데닐화 신호 서열 및 이의 상보적 서열 이외의 스템 서열을 포함한다. 스템 부위의 길이 및 서열은 어떠한 리간드도 존재하지 않을 때 표적 유전자의 허용 가능한 배경 발현 및 리간드가 존재할 때 표적 유전자의 허용 가능한 발현 수준을 허용하는 스템을 확인하기 위해 알려진 기술을 사용하여 변형될 수 있다. 스템이 예를 들어, 지나치게 긴 경우에, 이는 리간드의 존재 또는 부재시 폴리아데닐화 신호 서열에 대한 접근을 숨길 수 있다. 스템이 지나치게 짧은 경우에, 이는 폴리아데닐화 신호 서열을 격리시킬 수 있는 안정적인 스템-루프 구조를 형성할 수 없으며, 이러한 경우에 메시지의 폴리아데닐화(표적 유전자의 발현을 야기함)는 리간드의 존재 또는 부재시 발생할 것이다. 일 실시양태에서, 이펙터 스템(즉, 이펙터 스템-루프의 스템-형성 부위)의 총 길이는 4 내지 24 개 염기 쌍, 5 내지 20 개 염기 쌍, 9 내지 14 개 염기 쌍, 9 개 염기 쌍, 10 개 염기 쌍, 11 개 염기 쌍 또는 12 개 염기 쌍이다. 스템의 길이 이외에, 스템의 GC 염기 쌍 함량이 변경되어 스템의 안정성을 변형시킬 수 있다. 일부 실시양태에서, 이펙터 영역 스템은 이펙터 영역 스템의 상보적 부위와 염기 쌍을 형성하지 않는 1 이상의 미스매치된(mismatched) 뉴클레오티드를 함유한다.
교번 공유 스템 암
이펙터 스템-루프 및 압타머는 이펙터 스템-루프의 비-공유 암 및 압타머 스템의 비-공유 암 둘 다에 대해 상보적인 서열을 포함하는 교번 공유 스템 암을 통해 연결된다. 비공유 암 상의 압타머 및 이펙터 스템 둘 다에 대해 상보적인 서열로 인해, 공유 스템 암은 압타머 리간드의 존재에 따라 압타머 스템 또는 이펙터 스템과 스템을 교대로(그러나 둘다 동시는 아님) 형성할 수 있다. 실시양태에서, 압타머 스템의 서열 및 이펙터 스템 루프의 서열에 대해 상보적인 교번 공유 스템 암의 부위(즉, 교번 공유 서열)는 4 내지 8 개 뉴클레오티드, 5 내지 7 개 뉴클레오티드, 5 개 뉴클레오티드, 또는 6 개 뉴클레오티드이다. 일부 실시양태에서, 교번 공유 스템 암은 비공유 이펙터 스템 또는 압타머 스템 중 하나에 대해서만 상보적인 추가 서열을 포함한다. 일부 실시양태에서, 교번 공유 서열 이외에, 교번 공유 스템 암은 (a) 비공유 이펙터 스템 암에 대해 상보적이지만, 비공유 압타머 스템 암에 대해 상보적이지 않은 서열; (b) 비공유 압타머 스템 암에 대해 상보적이지만, 비공유 이펙터 스템 암에 대해 상보적이지 않은 서열; 또는 (c) 둘 다를 포함한다.
압타머/리간드
일 실시양태에서, 센서 영역은 압타머를 포함한다. 본원에 사용된 바와 같은 용어 "압타머"는 리간드에 특이적으로 결합하는 RNA 폴리뉴클레오티드를 지칭한다. 압타머는 압타머 스템을 통해 이펙터 스템-루프에 연결된다. 압타머 스템은 통상적으로 압타머의 일부인 서열(예를 들어, 야생형 압타머 스템 서열)을 포함하거나 포함하지 않을 수 있다. 이와 같이, 압타머 스템에 대한 참고는 압타머 스템이 임의의 특별한 서열을 포함한다는 것을 의미하지 않는다. 따라서, 압타머 스템은 압타머로부터의 서열 및/또는 리간드/압타머 결합시 스템을 형성할 수 있는 추가 서열을 포함할 수 있다.
상기 논의된 이펙터 스템-루프의 스템과 마찬가지로, 압타머 스템 루프는 압타머 리간드의 존재시 압타머가 압타머 스템을 형성하고 리간드가 존재하지 않을 때 이펙터 스템-루프가 스템을 형성하기에 충분한 길이(및 GC 함량)여야 한다. 압타머 스템의 길이 및 서열은 어떠한 리간드도 존재하지 않을 때 표적 유전자의 허용 가능한 배경 발현 및 리간드가 존재할 때 표적 유전자의 허용 가능한 발현 수준을 허용하는 스템을 확인하기 위해 알려진 기술을 사용하여 변형될 수 있다. 실시양태에서, 압타머 스템은 6 내지 12 개 염기 쌍, 7 내지 10 개 염기 쌍, 8 개 염기 쌍, 또는 9 개 염기 쌍이다.
용어 "리간드"는 압타머에 의해 특이적으로 결합되는 분자를 지칭한다. 일 실시양태에서, 리간드는 예를 들어, 지질, 단당류, 2 차 메신저, 보조-인자, 금속 이온, 다른 천연 생성물 및 대사물질, 핵산뿐 아니라, 대부분의 치료 약물을 포함한 소분자량(약 1,000 달톤 미만) 분자이다. 일 실시양태에서, 리간드는 2 이상의 뉴클레오티드 염기를 갖는 폴리뉴클레오티드이다.
일 실시양태에서, 리간드는 8-아자구아닌, 아데노신 5'-모노포스페이트 모노하이드레이트, 암포테리신 B, 아버멕틴 B1, 아자티오프린, 클로르마디논 아세테이트, 메르캅토퓨린, 모리시진 하이드로클로라이드, N6-메틸아데노신, 나디드(nadide), 프로게스테론, 프로마진 하이드로클로라이드, 피르비늄 파모에이트, 설파구아니딘, 테스토스테론 프로피오네이트, 티오구아노신, 틸록사폴 및 보리노스타트로 이루어진 그룹으로부터 선택된다.
압타머 리간드는 또한 특정 생리학적/병리학적 조건 하에서, 예컨대 종양발생 형질전환을 유의하게 증가시키는 세포 내인성 성분일 수 있으며 - 이들은 2 차 메신저 분자, 예컨대 GTP 또는 GDP, 칼슘; 지방산, 또는 잘못 대사작용된 지방산, 예컨대 유방암에서의 13-HODE(본원에 참고로 포함되는 Flaherty, JT et al., Plos One, Vol. 8, e63076, 2013); 아미노산 또는 아미노산 대사물질; 대사 질환의 암 세포 또는 정상 세포에서 보통 높은 수준을 갖는 해당과정에서의 대사물질; 및 암-연관 분자, 예컨대 Ras 또는 돌연변이 Ras 단백질, 폐암에서의 돌연변이 EGFR, 많은 유형의 암에서의 인돌레아민-2,3-디옥시게나아제(IDO)를 포함할 수 있다. 내인성 리간드는 JP Wiebe(본원에 참고로 포함되는 Endocrine-Related Cancer (2006) 13:717-738)에 의해 개시된 바와 같이 유방암에서의 프로게스테론 대사물질을 포함한다. 내인성 리간드는 또한 Minton, DR 및 Nanus, DM(본원에 참고로 포함되는 Nature Reviews, Urology, Vol. 12, 2005)에 의해 개시된 바와 같이 락테이트, 글루타티온, 카이뉴레닌과 같은 신장암에서의 핵심 대사 효소에서의 돌연변이로부터 야기된 증가된 수준을 갖는 대사물질을 포함한다.
압타머는 의도된 표적 분자(즉, 리간드)와 복합체를 형성할 수 있는 결합 영역을 갖는다. 결합의 특이성은 비관련 분자에 대한 압타머의 해리 상수(Kd)와 비교한 이의 리간드에 대한 압타머의 상대적 해리 상수의 측면에서 정의될 수 있다. 따라서, 리간드는 비관련 물질에 비해 큰 친화도로 압타머에 결합하는 분자이다. 통상적으로, 이의 리간드에 대한 압타머의 Kd는 비관련 분자에 대한 압타머의 Kd에 비해 적어도 약 10 배 작을 것이다. 다른 실시양태에서, Kd는 적어도 약 20 배, 적어도 약 50 배, 적어도 약 100 배, 및 적어도 약 200 배 작을 것이다. 압타머는 통상적으로 약 15 내지 약 200 개 뉴클레오티드 길이일 것이다. 더욱 일반적으로, 압타머는 약 30 내지 약 100 개 폴리뉴클레오티드 길이일 것이다.
리보스위치의 일부로서 포함될 수 있는 압타머는 자연 발생 압타머, 또는 이의 변형, 또는 새롭게 설계되고/되거나 지수 증식에 의한 리간드의 계통적 진화(systemic evolution of ligands by exponential enrichment)(SELEX) 또는 다른 스크리닝 방법을 통해 스크리닝된 압타머일 수 있다. 소분자 리간드에 결합하는 압타머의 예는, 비제한적으로, 테오필린, 도파민, 설포로다민 B, 셀로비오스, 카나마이신 A, 리비도마이신, 토브라마이신, 네오마이신 B, 비오마이신, 클로람페니콜, 스트렙토마이신, 사이토카인, 세포 표면 분자, 및 대사물질을 포함한다. 소분자를 인식하는 압타머의 검토에 대해 예를 들어, Famulok, Science 9:324-9 (1999) 및 McKeague, M. & DeRosa, M.C. J. Nuc. Aci. 2012(둘 다 본원에 참고로 포함됨)를 참고한다. 다른 실시양태에서, 압타머는 상보적 폴리뉴클레오티드이다.
압타머/리간드를 확인하기 위한 방법
일 실시양태에서, 압타머는 특별한 소분자 리간드에 결합하도록 설계된다. 특별한 리간드에 결합하는 압타머를 설계 및 선택하기 위한 방법은 본원에 참고로 포함되는 WO/2018/025085호에 개시되어 있다. 압타머를 스크리닝하기 위한 다른 방법은 예를 들어, SELEX를 포함한다. SELEX를 사용하여 소분자에 선택적으로 결합하는 압타머를 설계하기 위한 방법은 예를 들어, 본원에 참고로 포함되는 미국 특허 제5,475,096호, 제5,270,163호, 및 Abdullah Ozer, et al. Nuc. Aci. 2014에 개시되어 있다. SELEX 과정의 변형은 본원에 참고로 포함되는 미국 특허 제5,580,737호 및 제5,567,588호에 기재되어 있다.
압타머를 확인하기 위한 선택 기술은 일반적으로 무작위화되거나 돌연변이 생성되는 영역을 함유하는 소망하는 길이의 DNA 또는 RNA 분자의 큰 풀(pool)을 제작하는 것을 포함한다. 예를 들어, 압타머 선택을 위한 올리고뉴클레오티드 풀은, 약 15-25 개 뉴클레오티드 길이이고 PCR 프라이머의 결합을 위해 유용한 정의된 서열의 영역이 측면배치된 20-100 개의 무작위화된 뉴클레오티드의 영역을 함유할 수 있다. 올리고뉴클레오티드 풀은 표준 PCR 기술, 또는 선택된 핵산 서열의 증폭을 허용하는 다른 수단을 사용하여 증폭된다. DNA 풀은 시험관내(in vitro)에서 전사되어, RNA 압타머를 소망할 때 RNA 전사물의 풀을 생산할 수 있다. RNA 또는 DNA 올리고뉴클레오티드의 풀은 그 다음에 소망하는 리간드에 특이적으로 결합하는 이들의 능력에 기초하여 선택된다. 선택 기술은 예를 들어, 친화도 크로마토그래피를 포함하나, 다른 분자에 특이적으로 결합하는 이들의 능력에 기초한 핵산의 선택을 허용할 임의의 프로토콜이 사용될 수 있다. 소분자에 결합하는 압타머 및 세포 내에서의 기능을 확인하기 위한 선택 기술은 세포 기반 스크리닝 방법을 포함할 수 있다. 친화도 크로마토그래피의 경우에, 올리고뉴클레오티드는 칼럼 내 기질 상에 또는 자성 비드 상에 고정된 표적 리간드와 접촉된다. 올리고뉴클레오티드는 바람직하게는 정상 생리학적 조건을 모방한 염 농도, 온도, 및 다른 조건의 존재시 리간드 결합에 대해 선택된다. 리간드에 결합하는 풀에서의 올리고뉴클레오티드는 칼럼 또는 비드 상에 함유되며, 비결합 서열은 유실된다. 리간드에 결합하는 올리고뉴클레오티드는 그 다음에 PCR에 의해(보통 용출 후) 증폭된다(RNA 전사물이 이용되는 경우 역전사 후). 선택 과정은 총 약 3 내지 10 반복 라운드의 선택 절차 동안 선택된 서열에 대해 반복된다. 그 결과 얻어진 올리고뉴클레오티드는 그 다음에 표적 리간드에 결합할 수 있는 올리고뉴클레오티드의 서열을 확인하기 위해, 표준 절차를 사용하여 증폭, 클로닝, 및 시퀀싱된다. 일단 압타머 서열이 확인되면, 압타머는 돌연변이화 생성된 압타머 서열을 포함하는 올리고뉴클레오티드의 풀로부터 출발하는 선택의 추가 라운드를 수행하는 것에 의해 추가로 최적화될 수 있다.
생체내(in vivo) 압타머 스크리닝은 1 회 이상 라운드의 시험관내 선택(예를 들어, SELEX) 후에 사용될 수 있다. 예를 들어, Konig, J. et al.(본원에 참고로 포함되는 RNA. 2007, 13(4):614-622)은 압타머의 생체내 선택을 위해 SELEX 및 효모 3-하이브리드 시스템을 조합하는 것을 기재한다.
표적 유전자
본 발명의 유전자 조절 카세트는 표적 세포, 조직 또는 유기체에서 발현될 수 있는 임의의 표적 유전자의 발현을 폴리아데닐화되는 mRNA로 조절하기 위해 사용될 수 있는 플랫폼이다. 용어 "표적 유전자"는 세포 내로 도입되고 RNA 내로 전사될 수 있으며 적절한 조건 하에서 번역 및/또는 발현되는 폴리뉴클레오티드를 지칭한다. 대안적으로, 표적 유전자는 표적 세포에 대해 내인성이고, 본 발명의 유전자 조절 카세트는 표적 유전자의 3' UTR 내에 위치한다. 표적 유전자의 예는 치료 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드이다. 일 실시양태에서, 표적 유전자는 재조합 DNA 구조체가 전사될 세포에 대해 외인성이다. 다른 실시양태에서, 표적 유전자는 재조합 DNA 구조체가 전사될 세포에 대해 내인성이다.
본 발명에 따른 표적 유전자는 단백질을 코딩하는 유전자일 수 있다. 표적 유전자는 예를 들어, 구조적 단백질, 효소, 세포 시그널링 단백질, 미토콘드리아 단백질, 징크 핑거 단백질, 호르몬, 수송 단백질, 성장 인자, 사이토카인, 세포내 단백질, 세포외 단백질, 막관통 단백질, 세포질 단백질, 핵 단백질, 수용체 분자, RNA 결합 단백질, DNA 결합 단백질, 전사 인자, 번역 기구, 통로 단백질, 운동 단백질, 세포 접착 분자, 미토콘드리아 단백질, 대사 효소, 키나아제, 포스파타아제, 교환 인자, 샤페론 단백질, 및 이들 중 임의의 것의 조절인자를 코딩하는 유전자일 수 있다. 실시양태에서, 표적 유전자는 에리스로포이에틴(Epo), 인간 성장 호르몬(hGH), 전사 활성인자-유사 이펙터 뉴클레아제(TALEN), 인간 인슐린, CRISPR 연관 단백질 9(cas9), 또는 예를 들어, 치료 항체를 포함한 면역글로불린(또는 이의 부위)을 코딩한다.
발현 구조체
본 발명은 표적 유전자를 코딩하고 본원에 기재된 유전자 조절 카세트를 함유하는 폴리뉴클레오티드의 표적 세포 내로의 도입을 위한 재조합 벡터의 사용을 고려한다. 많은 실시양태에서, 본 발명의 재조합 DNA 구조체는 숙주 세포에서 DNA의 복제 및 상기 세포에서 적절한 수준으로의 표적 유전자의 발현을 위해 제공되는 DNA 세그먼트를 포함하는 추가 DNA 요소를 포함한다. 당업자는 발현 대조군 서열(프로모터, 인핸서 등)이 표적 세포에서 표적 유전자의 발현을 촉진시키는 이들의 능력에 기초하여 선택된다는 것을 인식한다. "벡터"는 시험관내 또는 생체내에서 숙주 세포 내로 전달될 폴리뉴클레오티드를 포함하는 재조합 플라스미드, 효모 인공 염색체(yeast artificial chromosome)(YAC), 소형 염색체, DNA 소형-고리 또는 바이러스(바이러스 유래 서열을 포함함)를 의미한다. 일 실시양태에서, 재조합 벡터는 바이러스 벡터 또는 다중 바이러스 벡터의 조합이다.
표적 세포, 조직, 또는 유기체에서 표적 유전자의 압타머-매개된 발현을 위한 바이러스 벡터는 당업계에 알려져 있으며 아데노바이러스(AV) 벡터, 아데노-연관 바이러스(AAV) 벡터, 레트로바이러스 및 렌티바이러스 벡터, 및 단순포진 1 형(Herpes simplex type 1)(HSV1) 벡터를 포함한다.
아데노바이러스 벡터는 예를 들어, E1 및 E3 영역에서의 결실을 통해 결함적인 복제가 이루어진 인간 아데노바이러스 2 형 및 인간 아데노바이러스 5 형을 기본으로 하는 것들을 포함한다. 전사 카세트는 E1 영역 내로 삽입되어, 재조합 E1/E3-결실된 AV 벡터를 산출할 수 있다. 아데노바이러스 벡터는 또한 바이러스 코딩 서열을 함유하지 않는 헬퍼-의존성 고-성능 아데노바이러스 벡터(고-성능 "거틀리스(gutless)" 또는 "거티드(gutted)" 벡터로서도 알려짐)를 포함한다. 이들 벡터는 바이러스 DNA 복제 및 패키징을 위해 필요한 cis-작용성 요소, 주로 역전 말단 반복 서열(inverted terminal repeat sequence)(ITR) 및 패키징 신호(ψ)를 함유한다. 이들 헬퍼-의존성 AV 벡터 게놈은 수백 개의 염기 쌍에서 최대 대략 36 kb의 외래 DNA를 운반할 가능성을 갖는다.
재조합 아데노-연관 바이러스 "rAAV" 벡터는, 비제한적으로, AAV-1, AAV-2, AAV-3, AAV-4, AAV-5, AAV-7 및 AAV-8, AAV-9, AAV-10 등을 포함한 임의의 아데노-연관 바이러스 혈청형으로부터 유래된 임의의 벡터를 포함한다. rAAV 벡터는 전체적으로 또는 부분적으로 결실된 1 이상의 AAV 야생형 유전자, 바람직하게는 Rep 및/또는 Cap 유전자를 가질 수 있지만, 기능적 측면배치된 ITR 서열을 함유할 수 있다. 기능적 ITR 서열은 AAV 게놈의 구조(rescue), 복제, 패키징 및 잠재적 염색체 통합을 위해 함유된다. ITR은 야생형 뉴클레오티드 서열일 필요가 없으며, 서열이 기능적 구조, 복제 및 패키징을 제공하는 한 변경될 수 있다(예를 들어, 뉴클레오티드의 삽입, 결실 또는 치환에 의함).
대안적으로, 다른 시스템, 예컨대 렌티바이러스 벡터가 본 발명의 실시양태에서 사용될 수 있다. 렌티바이러스-기반 시스템은 비-분열뿐 아니라 분열 세포를 형질도입하여, 이들이 예를 들어 CNS의 비-분열 세포를 표적화하는 적용을 위해 유용하도록 할 수 있다. 렌티바이러스 벡터는 인간 면역결핍 바이러스로부터 유래되며, 상기 바이러스와 마찬가지로 장기(long-term) 유전자 발현에 대한 가능성을 제공하는 숙주 세포 내로 통합된다.
유전자 조절 카세트를 함유하는 표적 유전자를 운반하는 플라스미드, YAC, 소형염색체 및 소형고리를 포함한 폴리뉴클레오티드는 또한 예를 들어, 담체로서 양이온 지질, 중합체, 또는 둘 다를 사용한 비바이러스 벡터 시스템에 의해 세포 또는 유기체 내로 도입될 수 있다. 콘쥬게이트된 폴리-L-라이신(PLL) 중합체 및 폴리에틸렌이민(PEI) 중합체 시스템이 또한 벡터를 세포로 전달하기 위해 사용될 수 있다. 세포 배양액 및 유기체 둘 다의 경우에서, 벡터를 세포로 전달하기 위한 다른 방법은 유체역학적 주입(hydrodynamic injection) 및 전기천공법 및 초음파의 사용을 포함한다. 유전자 전달을 위한 바이러스 및 비-바이러스 전달 시스템의 검토에 대해서는 Nayerossadat, N. et al.(본원에 참고로 포함되는 Adv Biomed Res. 2012; 1:27)을 참고한다.
표적 유전자의 발현을 조절하는 방법
일 양태에서, 본 발명은 (a) 본 발명의 1 이상의 유전자 조절 폴리뉴클레오티드 카세트를 표적 유전자의 3' UTR 내로 삽입하는 것; (b) 유전자 조절 카세트를 포함하는 표적 유전자를 세포 내로 도입하는 것; 및 (c) 세포를 압타머에 결합하는 리간드에 노출시키는 것에 의해 표적 유전자(예를 들어, 치료 유전자)의 발현을 조절하는 방법을 제공한다. 일 실시양태에서, 리간드는 소분자이다. 양태에서, 표적 세포에서 표적 유전자의 발현은 그것이 도입된 세포에게 소망하는 특성을 부여하거나, 이와 달리 소망하는 치료 결과를 야기한다. 표적 유전자는 진핵 세포, 예를 들어 포유동물 세포이다. 실시양태에서, 표적 세포는 예를 들어, 지방, 중추신경계(CNS), 근육, 심장, 눈, 간 등을 포함한 표적 조직으로부터의 인간 세포이다.
일 실시양태에서, 1 이상의 유전자 조절 카세트는 표적 유전자의 3' 비번역 영역 내로 삽입된다. 일 실시양태에서, 단일 유전자 조절 카세트는 표적 유전자의 3' UTR 내로 삽입된다. 일 실시양태에서, 2 개의 리보스위치는 표적 유전자의 3' 비번역 영역 내로 삽입되되, 제1 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 폴리아데닐화 신호 AATAAA(또는 ATTAA)의 전부 또는 일부를 포함하고 제2 리보스위치의 이펙터 스템 루프는 다운스트림 요소(DSE)의 전부 또는 일부를 포함한다.
일 실시양태에서, 다중 유전자 조절 카세트가 표적 유전자 내로 삽입될 때, 이들은 각각 동일한 압타머를 함유하여 단일 리간드가 표적 유전자의 발현을 조절하기 위해 사용될 수 있다. 다른 실시양태에서, 다중 유전자 조절 카세트가 표적 유전자 내로 삽입될 때, 각각은 상이한 압타머를 함유하여 다수의 상이한 소분자 리간드에 대한 노출이 표적 유전자 발현을 조절할 수 있다.
본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 표적 유전자의 발현의 조절을 위해 다른 메커니즘과 조합되어 사용될 수 있다. 일 실시양태에서, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 카세트는 본원에 참고로 포함되는 WO 2016/126747호에 기재된 바와 같이 선택적 스플라이싱의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트와 조합되어 사용된다. 본 발명은 또한 본원에 참고로 포함되는 PCT/US2017/016303 및 PCT/US1207/016279에 기재된 폴리뉴클레오티드 구조체 및 방법과 조합되어 사용될 수 있다.
치료 방법 및 약학 조성물
본 발명의 일 양태는 유전자 요법에 의해 전달된 치료 단백질의 수준을 조절하는 방법을 제공한다. 본 실시양태에서, "표적 유전자"는 치료 단백질을 코딩할 수 있다. "표적 유전자"는 세포에 대해 내인성 또는 외인성인 단백질을 코딩할 수 있다.
압타머-구동된 리보스위치를 갖는 조절 카세트를 함유하는 치료 유전자 서열은 예를 들어, 벡터에 의해 시험관내 또는 생체외(ex vivo)에서 표적 유전자에게 전달된다. "표적 유전자"의 세포 특이성은 프로모터 또는 벡터 내의 다른 요소에 의해 제어될 수 있다. 표적 유전자 및 폴리뉴클레오티드 카세트를 함유하는 벡터 구조체의 전달, 및 조절된 표적 유전자의 안정적인 형질감염을 야기하는 표적 조직의 형질감염은 보통 치료 단백질을 생산하는 것에서 제1 단계이다.
그러나, 표적 유전자 서열 내의 조절 카세트의 존재로 인해, 표적 유전자는 상당한 수준으로 발현되지 않으며(또는 낮은 수준으로 발현되며), 즉 이는 조절 카세트 리보스위치 내에 함유된 압타머에 결합하는 특이적 리간드의 부재시 "오프 상태(off state)"에 있다. 압타머 특이적 리간드가 투여될(또는 이와 달리, 충분한 양으로 존재할) 때에만, 표적 유전자 발현이 활성화되거나 증가된다.
폴리뉴클레오티드 카세트를 갖는 표적 유전자를 함유하는 벡터 구조체의 전달 및 활성화 리간드의 전달은 일반적으로 시간이 분리된다. 활성화 리간드의 전달은 표적 유전자가 발현될 시기뿐 아니라 단백질 발현의 수준을 제어할 것이다. 리간드는, 비제한적으로, 경구, 근육내(IM), 정맥내(IV), 안내, 또는 국소를 포함한 다수의 경로에 의해 전달될 수 있다.
리간드의 전달의 타이밍은 표적 유전자의 활성화에 대한 요구에 의존할 것이다. 예를 들어, 표적 유전자에 의해 코딩된 치료 단백질이 지속적으로 필요한 경우에, 경구 소분자 리간드가 매일, 또는 매일 다수회 투여되어, 표적 유전자의 연속적인 활성을 보장할 수 있으므로, 치료 단백질의 연속적인 발현을 보장할 수 있다. 표적 유전자가 장기 작용 효과를 갖는 경우, 유도 리간드는 덜 자주 투여될 수 있다.
본 발명은 치료 전이유전자의 발현이 조절 폴리뉴클레오티드 카세트의 리보스위치 내의 압타머에 대해 특이적인 리간드의 일시적 투여에 의해 결정되는 방식으로 일시적으로 제어되게 한다. 리간드를 투여할 때 만의 치료 전이유전자의 발현 증가는 표적 유전자가 리간드의 부재시 오프되게 하여 유전자 요법 치료의 안전성을 증가시킨다.
상이한 리간드가 표적 유전자를 활성화시키게 하기 위해 상이한 압타머가 사용될 수 있다. 본 발명의 특정 실시양태에서, 조절 카세트를 함유하는 각각의 치료 유전자는 특이적 소분자에 의해 활성화될 카세트 내의 특이적 압타머를 가질 것이다. 이는 각각의 치료 유전자가 그 내부에 하우징된(housed) 압타머에 대해 특이적인 리간드에 의해서만 활성화될 수 있다는 것을 의미한다. 이들 실시양태에서, 각각의 리간드는 하나의 치료 유전자만을 활성화시킬 것이다. 이는 몇몇의 상이한 "표적 유전자"가 하나의 개체에게 전달될 수 있고, 각각이 각각의 표적 유전자에 하우징된 조절 카세트 내에 함유된 압타머에 대해 특이적 리간드의 전달시 활성화될 것이라는 가능성을 허용한다.
본 발명은 유전자가 신체에 전달될 수 있는 임의의 치료 단백질(예컨대 에리스로포이에틴(EPO) 또는 치료 항체)이 활성화 리간드가 전달될 때 신체에 의해 생산되게 한다. 이 치료 단백질 전달 방법은, 그 다음에 주입되거나 투입되는 이러한 치료 단백질, 예를 들어 암에서 또는 염증성이나 자가면역성 질환을 차단하기 위해서 사용되는 항체의 신체 외부에서의 제조를 대체할 수 있다. 조절된 표적 유전자를 함유하는 신체는 생물제제 제조 공장이 되며, 이는 유전자-특이적 리간드가 투여될 때 스위치가 켜진다.
치료 단백질의 투여 수준 및 투여 타이밍은 치료 효과에 중요할 수 있다. 예를 들어, 암에 대한 AVASTIN(항-VEGF 항체)의 전달에서. 본 발명은 치료 단백질 수준 및 효과에 대한 모니터링에 반응하여 투여의 용이성을 증가시킨다.
일 실시양태에서, 표적 유전자는 특별한 DNA 서열을 표적화하고 편집할 수 있는 뉴클레아제를 코딩할 수 있다. 이러한 뉴클레아제는 Cas9, 뉴클레아제를 함유한 징크 핑거, 또는 TALEN을 포함한다. 이들 뉴클레아제의 경우에, 뉴클레아제 단백질은 표적 내인성 유전자를 편집하기 위해 충분한 짧은 기간 동안만 필요할 수 있다. 그러나, 비조절된 뉴클레아제 유전자가 신체에 전달되는 경우, 이 단백질은 세포의 나머지 수명 동안 존재할 수 있다. 뉴클레아제의 경우에, 긴 뉴클레아제가 존재할수록 표적-외 편집의 위험이 증가한다. 이러한 단백질의 발현의 조절은 상당한 안전성 이점을 갖는다. 이 경우에, 조절 카세트를 함유하는 뉴클레아제 표적 유전자를 함유하는 벡터는 신체에서 적절한 세포에게 전달될 수 있다. 표적 유전자는 카세트-특이적 리간드의 부재시 "오프" 상태에 있어, 어떠한 뉴클레아제도 생산되지 않는다. 활성화 리간드가 투여될 때에만, 뉴클레아제가 생산된다. 충분한 편집이 발생하게 하는 충분한 시간이 흐른 때, 리간드는 중단되고 다시 투여되지 않을 것이다. 따라서, 뉴클레아제 유전자는 그 후에 "오프" 상태로 있으며 어떠한 추가 뉴클레아제도 생산되지 않고 편집이 중지된다. 이 접근법은 다수의 유전성 망막병증, 예컨대 CEP290에서의 돌연변이에 의해 야기된 LCA10 및 ABCA4에서의 돌연변이에 의해 야기된 스타르가르트병(Stargardt's Disease)을 포함한 유전적 병태를 바로잡기 위해 사용될 수 있다.
특이적 리간드 투여시에만 활성화되는 치료 단백질을 코딩하는 조절된 표적 유전자의 투여는 치료 유전자를 조절하여 많은 상이한 유형의 질환, 예를 들어 치료 항체를 이용한 암, 면역 조절 단백질 또는 항체를 이용한 면역 장애, 대사 질환, 조절된 유전자로서 항-C5 항체 또는 항체 단편을 이용한 희귀 질환, 예컨대 PNH, 또는 치료 항체를 이용한 눈 혈관신생, 및 면역 조절 단백질을 이용한 건성 AMD를 치료하기 위해 사용될 수 있다.
광범위한 특이적 질환 및 병태의 치료를 허용하는 광범위한 특이적 표적 유전자가 본 발명에서의 사용을 위해 적합하다. 예를 들어, 인슐린 또는 인슐린 유사체(바람직하게는, 인간 인슐린 또는 인간 인슐린의 유사체)가 I 형 당뇨병, II 형 당뇨병, 또는 대사 증후군을 치료하기 위한 표적 유전자로서 사용될 수 있고; 인간 성장 호르몬이 성장 장애를 갖는 아동 또는 성장 호르몬-결핍 성인을 치료하기 위한 표적 유전자로서 사용될 수 있으며; 에리스로포이에틴(바람직하게는, 인간 에리스로포이에틴)이 만성 신장 질환으로 인한 빈혈, 골수이형성증으로 인한 빈혈, 또는 암 화학요법으로 인한 빈혈을 치료하기 위한 표적 유전자로서 사용될 수 있다.
본 발명은 단일 유전자 결함에 의해 야기된 질환, 예컨대 낭성 섬유증, 혈우병, 근위축증, 지중해빈혈, 또는 겸상 적혈구 빈혈을 치료하기 위해 특히 적합할 수 있다. 따라서, 인간 β-, γ-, δ-, 또는 ξ-글로빈은 β-지중해빈혈 또는 겸상 적혈구 빈혈을 치료하기 위한 표적 유전자로서 사용될 수 있고; 인간 인자 VIII 또는 인자 IX는 혈우병 A 또는 혈우병 B를 치료하기 위한 표적 유전자로서 사용될 수 있다.
본 발명에서 사용된 리간드는 일반적으로 1 이상의 약학적 허용 담체와 조합되어, 환자에 대한 투여를 위해 적합한 약학 조성물을 형성한다. 약학적 허용 담체는 제약 업계에서 일반적으로 사용되는 용매, 바인더, 희석제, 붕괴제, 윤활제, 분산매, 코팅제, 항균제 및 항진균제, 등장제 및 흡수 지연제 등을 포함한다. 약학 조성물은 정제, 알약, 캡슐, 트로키(troch) 등의 형태일 수 있으며, 이들의 의도된 투여 경로와 양립 가능하도록 제형화된다. 투여 경로의 예는 비경구, 예를 들어 정맥내, 피내, 비강내, 피하, 경구, 흡입, 경피(국소), 점막경유, 및 직장을 포함한다.
리간드를 포함하는 약학 조성물은 표적 유전자를 바람직하게 조절하기에 충분한 리간드의 양이 환자에게 전달되도록 하는 투여 스케쥴로 환자에게 투여된다. 리간드가 소분자이고 투여량 형태가 정제, 캡슐 등일 때, 바람직하게는 약학 조성물은 0.1 mg 내지 10 g의 리간드; 0.5 mg 내지 5 g의 리간드; 1 mg 내지 1 g의 리간드; 2 mg 내지 750 mg의 리간드; 5 mg 내지 500 mg의 리간드; 또는 10 mg 내지 250 mg의 리간드를 포함한다.
약학 조성물은 매일 1 회 또는 매일 다수회(예를 들어, 매일 2, 3, 4, 5 회 이상) 투여될 수 있다. 대안적으로, 약학 조성물은 매일 1 회에 비해 덜 자주, 예를 들어 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 또는 14 일마다 1 회, 또는 매달 1 회 또는 수개월마다 1 회 투여될 수 있다. 본 발명의 일부 실시양태에서, 약학 조성물은 적은 횟수, 예를 들어 1 회, 2 회, 3 회 등으로만 환자에게 투여될 수 있다.
본 발명은 표적 유전자에 의해 코딩된 치료 단백질의 발현 조절이 필요한 환자를 치료하는 방법을 제공한다. 방법은 환자에게 압타머에 대한 리간드를 포함하는 약학 조성물을 투여하는 것을 포함하되, 환자는 이전에 표적 유전자를 포함하는 재조합 벡터를 투여받았으며, 표적 유전자는 1 이상의 폴리아데닐화 신호의 접근성을 통한 압타머의 리간드에 의해 표적 유전자의 발현을 조절하는 능력을 제공하는 본 발명의 유전자 조절 카세트를 함유한다. 리간드의 투여는 치료 단백질의 발현을 증가시킨다.
제조 물품 및 키트
또한, 본원에 기재된 방법에서 사용하기 위한 제조 키트 또는 물품이 제공된다. 양태에서, 키트는 적합한 패키징 내에 본원에 기재된 조성물(예를 들어, 유전자 조절 카세트를 함유하는 표적 유전자를 포함하는 벡터의 전달을 위한 조성물에 대한 것)을 포함한다. 본원에 기재된 조성물(예컨대, 주입용 눈 조성물)을 위해 적합한 패키징은 당업계에 알려져 있으며, 예를 들어 바이알(vial)(예컨대, 실링된 바이알), 관, 앰플, 병, 단지, 유동성 패키징(예를 들어, 실링된 마일라(Mylar) 또는 비닐 봉지) 등을 포함한다. 이들 제조 물품은 추가로 멸균 및/또는 실링될 수 있다.
본 발명은 또한 본원에 기재된 조성물을 포함하는 키트를 제공하며 조성물을 사용하는 방법, 예컨대 본원에 기재된 사용에 대한 설명서(들)를 추가로 포함할 수 있다. 본원에 기재된 키트는 다른 완충액, 희석제, 필터, 바늘, 시린지, 및 예를 들어, 본원에 기재된 방법을 포함한 투여를 수행하기 위한 설명서를 갖는 패키지 삽입물을 포함하여, 상업적 및 사용자 관점에서 바람직한 다른 물질을 추가로 포함할 수 있다. 예를 들어, 일부 실시양태에서, 키트는 본 발명의 유전자 조절 카세트를 포함하는 표적 유전자의 발현을 위한 rAAV, 주입을 위해 적합한 약학적 허용 담체, 및 다음 중 1 이상을 포함한다: 완충액, 희석제, 필터, 바늘, 시린지, 및 주입을 수행하기 위한 설명서를 갖는 패키지 삽입물. 일부 실시양태에서, 키트는 안내 주입, 근육내 주입, 정맥내 주입 등을 위해 적합하다.
본원에 사용된 바와 같은 "상동" 또는 "상동성"은 2 개의 폴리뉴클레오티드 서열 사이 또는 2 개의 폴리펩티드 서열 사이의 동일성의 퍼센트를 지칭한다. 하나의 서열 대 다른 것 사이의 상응성은 당업계에 알려진 기술에 의해 결정될 수 있다. 예를 들어, 상동은 서열 정보를 정렬하는 것 및 용이하게 이용 가능한 컴퓨터 프로그램을 사용하는 것에 의한 2 개의 폴리펩티드 분자의 직접 비교에 의해 결정될 수 있다. 2 개의 폴리뉴클레오티드 또는 2 개의 폴리펩티드 서열은 적절한 삽입 또는 결실로 최적으로 정렬된 후에, 적어도 약 80%, 적어도 약 85%, 적어도 약 90%, 및 적어도 약 95%의 뉴클레오티드 또는 아미노산이 각각 상기 방법을 사용하여 결정된 바와 같은 특정 길이의 분자를 초과하여 매칭될 때 서로 "실질적으로 상동성"이다.
기준 폴리펩티드 또는 핵산 서열에 대한 "퍼센트 서열 동일성"은, 서열을 정렬시키는 것 및 필요한 경우 최대 퍼센트 서열 동일성을 달성하기 위해 갭을 도입하는 것 후에, 기준 폴리펩티드 또는 핵산 서열에서의 아미노산 잔기 또는 뉴클레오티드와 동일한 후보 서열에서의 아미노산 잔기 또는 뉴클레오티드의 퍼센트로서 정의된다. 퍼센트 아미노산 또는 핵산 서열 동일성을 결정하는 목적을 위한 정렬은 당업자에게 알려진 방식으로, 예를 들어 BLAST, BLAST-2, ALIGN 또는 Megalign(DNASTAR) 소프트웨어를 포함하여 공개적으로 이용 가능한 컴퓨터 소프트웨어 프로그램을 사용하여 달성될 수 있다.
본원에 사용된 바와 같은 용어 "폴리뉴클레오티드" 또는 "핵산"은 임의의 길이의 뉴클레오티드의 중합 형태인 리보뉴클레오티드 또는 데옥시리보뉴클레오티드를 지칭한다. 따라서, 이 용어는, 비제한적으로, 단일-, 이중- 또는 다중-가닥 DNA 또는 RNA, 게놈 DNA, cDNA, DNA-RNA 하이브리드, 또는 퓨린 및 피리미딘 염기, 또는 다른 천연, 화학적 또는 생화학적 변형된, 비-천연, 또는 유도체 합성된(derivatized) 뉴클레오티드 염기를 포함하는 중합체를 포함한다.
"이종성" 또는 "외인성"은 그것이 비교되거나 그것이 도입되거나 포함되는 나머지 개체의 것과 유전자형으로 별개인 개체로부터 유래된 것을 의미한다. 예를 들어, 유전자 조작 기술에 의해 상이한 세포 유형 내로 도입된 폴리뉴클레오티드는 이종성 폴리뉴클레오티드이다(또한, 발현될 때 이종성 폴리펩티드를 코딩할 수 있음). 유사하게는, 바이러스 벡터 내로 포함되는 세포 서열(예를 들어, 유전자 또는 이의 부위)은 벡터에 대해 이종성 뉴클레오티드 서열이다.
본원에 개시된 발명의 원리에서의 변형이 당업자에 의해 이루어질 수 있음이 이해 및 예상되어야 하며 이러한 변형은 본 발명의 범위 내에 포함되는 것으로 의도된다. 다음 실시예는 본 발명을 추가로 예시하지만, 임의의 방식으로 본 발명의 범위를 제한하는 것으로 이해되어서는 안된다. 본원에 언급된 모든 참고문헌은 그 전체가 본원에 참고로 포함된다.
실시예
실시예 1. polyA 신호 요소 AATAAA의 접근성의 압타머-매개된 조절에 의한 표적 유전자 발현의 조절
실험 절차:
플라스미드 구조체: pEGFP-C1 벡터(Clontech)에서 EGFP 유전자를 반딧불이 루시페라아제 유전자 코딩 서열로 치환하여 SV40 초기 폴리아데닐화 신호 서열을 함유하는 pFLuc-SV40 벡터를 생성하였다. xpt-구아닌 압타머의 서열, 이펙터 스템 루프 구조 및 SV40 초기 polyA 서열을 함유하는 DNA 세그먼트를 합성하였다(IDT). 합성된 DNA 단편을 HpaI 및 MluI 제한 효소로 분해하고 HpaI 및 MluI로 분해된 pFLuc-SV40 내로 클로닝하였다. 구조체 서열을 DNA 시퀀싱(Genewiz)에 의해 확인하였다.
형질감염 및 압타머 리간드 처치: 3.5 x104 HEK 293 세포를 형질감염 전날에 96-웰 넓적 바닥 플레이트에 위치시켰다. 플라스미드 DNA(500 ng)를 튜브 또는 96-웰 U-바닥 플레이트에 첨가하였다. 별도로, TransIT-293 시약(Mirus; 1.4 μL)을 50 μL opti-mem I 배지(Life Technologies)에 첨가하고, 5 분 동안 실온("RT")에 두었다. 그 다음에 50 μL의 이 희석된 형질감염 시약을 DNA에 첨가하고, 혼합하였으며, RT에서 20 분 동안 항온처리하였다. 마지막으로, 7 μL의 이 용액을 96-웰 플레이트에서의 세포의 웰에 첨가하였다. 형질감염 4 시간 후에, 배지를 흡입하고, (i) DMSO(0.5%) 또는 500 μM 구아노신; 또는 (ii) 용매 대조군으로서 NaOH(2mM) 또는 500 μM 구아닌을 갖는 새로운 배지를 첨가하였다. 유도 배수는 압타머 리간드의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 압타머 리간드의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
배양된 세포의 반딧불이 루시페라아제 에세이: 배지 교환 24 시간 후, 플레이트를 인큐베이터에서 제거하고, RT까지 수분 동안 랩 벤치 상에서 평형시킨 다음에, 흡입하였다. Glo-용해 완충액(Promega, 100 μL, RT)을 첨가하고, 플레이트를 RT에서 적어도 5 분 동안 유지시켰다. 그 다음에, 웰 내용물을 50 μL 분쇄물에 의해 혼합하고, 20 μL의 각각의 샘플을 glo-용해 완충액 중 10%까지 희석된 20 μL의 브라이트(bright)-glo 시약(Promega)과 혼합하였다. 96 웰을 불투명한 백색 384-웰 플레이트 상에 위치시켰다. RT에서 5-분 항온처리 후, 500 mSec 판독 시간으로 Tecan 기구를 사용하여 발광을 측정하였다. 루시페라아제 활성은 평균 상대적 광 단위(relative light unit)(RLU)±S.D로서 표현하였다.
형질감염 및 GFP 형광의 측정: 3.5 x10^4 HEK 293 세포를 형질감염 전날에 96-웰 넓적 바닥 플레이트에 위치시켰다. 플라스미드 DNA(500 ng)를 튜브 또는 96-웰 U-바닥 플레이트에 첨가하였다. 별도로, TransIT-293 시약(Mirus; 1.4 μL)을 50 μL Opti-mem I 배지(Life Technologies)에 첨가하고, 5 분 동안 RT에 두었다. 그 다음에 50 μL의 이 희석된 형질감염 시약을 DNA에 첨가하고, 혼합하였으며, RT에서 20 분 동안 항온처리하였다. 마지막으로, 7 μL의 이 용액을 96-웰 플레이트에서의 세포의 웰에 첨가하였다. GFP 형광 강도를 484 nm의 여기 파장, 510 nm의 방출 파장 및 5 nm의 여기 대역폭을 사용하여, Tecan 플레이트 판독기에 의해 측정하였다. GFP 형광 강도는 형질감염 없이 세포에 의해 생성된 값에 의해 감산된 GFP 구조체에 의해 생성된 값으로서 표현하였다.
결과:
mRNA의 3' 말단의 폴리아데닐화된 꼬리는 mRNA 안정성, 핵외수송 및 번역 효율에서 중요한 역할을 수행한다. pre-mRNA 폴리아데닐화의 과정을 조절하여 표적 유전자 발현을 조절하기 위해, 폴리아데닐화 서열 요소 AATAAA(또는 이의 근접한 변형) 또는 T 또는 GT-풍부 다운스트림 서열 요소(DSE)의 접근성을 조절하는 전략을 개발하였다.
일 전략(전략 1)에서, 도 1a 및 1b에 예시된 바와 같이, 스템-루프 구조(이펙터 스템 루프)는 AATAAA 폴리아데닐화 신호 서열 요소가 스템-루프 형성 구조(이펙터 스템-루프)의 스템에 내장된다. 압타머의 3' 말단을, 5' 압타머 스템 암의 부위에 대해 상보적이고 이펙터 스템-루프의 3' 스템 암의 부위에 대해 상보적인 서열을 함유하는 공유 스템 암에 의해 이 스템 루프 형성 구조의 5' 말단에 연결하였다(예를 들어, 도 1a 및 도 1b 참고). 이 구성에서, 압타머 리간드의 부재시, 스템-루프 구조는 AATAAA 요소를 격리시켜, 폴리아데닐화 및 유전자 발현을 억제한다. 그러나, 압타머 리간드의 존재시, 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 야기하여, 스템-루프 구조를 파괴하고, 이는 격리된 AATAAA 요소의 방출 및 후속 유전자 발현을 야기한다. 따라서, 유전자 요소의 이 구성은 압타머 리간드-반응성 온(on)-리보스위치를 생성한다.
이 전략을 SV40 초기 polyA 서열을 갖는 xpt-구아닌 압타머를 사용하여 시험하였으며, SV40 3' UTR에서 AATAAA 요소의 서열 업스트림은 폴리아데닐화를 위해 필수적인 것으로 나타났다. 이 전략을 사용하여, 각각 스템-루프 구조의 5' 말단에 연결된 동일한 xpt-구아닌 압타머 서열 및 스템-루프 구조의 스템에 내장된 AATAAA 서열 요소를 갖는 4 개의 구조체 ATA_Gua_1 내지 4(서열번호: 1-4)를 생성하였다. 본 발명자들은 스템-루프 구조의 스템에 대한 길이 및 서열 조성이 스템-루프 구조의 안정성에 영향을 미치므로, 유전자 발현을 위해 격리된 AATAAA 요소의 이용 가능성에 영향을 미칠 수 있다는 것을 합리화하였다. 따라서, 각각의 구조체에서 각각 9, 10, 12 및 14 개 염기 쌍(bp) 스템을 생성하였다. 압타머 P1 스템은 8 bp였다. 도 1c에 나타낸 바와 같이, 압타머 리간드 구아노신의 부재시, 루시페라아제 활성은 대략 모든 구조체에서 유사하였으며, 대조군 구조체 pFLuc-SV40(데이터는 나타내지 않음)에 비해 낮았고, 이는 AATAAA 요소가 스템-루프 구조에 의해 격리되었음을 나타낸다. 구아노신 처치시, 각각의 구조체는 DMSO 처치된 (대조군) 샘플과 비교하여 루시페라아제 활성 향상을 나타내었으며, ATA_Gua_1은 6.7-배 유도를 생성하였다.
이들 구조체를 압타머 리간드로서 구아닌을 사용하여 추가로 시험하였다. 도 1d에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치의 부재시, 구조체 ATA_Gua_1 내지 4의 기저 수준 발현은 감소하였으며, ATA_Gua_4는 최저 기저 발현(pFLuc 대조군 벡터의 16%)을 가졌다. 구아닌 처치시, 루시페라아제 발현은 구아닌 없는 샘플과 비교하여 향상되었으며, 모든 구조체에 대해 대략 2.5-배 유도를 생성하였다.
이들 리보스위치 구조체(전략 1)를 또한 GFP 발현을 조절하기 위해 사용하였다. 루시페라아제 유전자에서 상대적으로 낮은 기저 수준을 갖는 ATA_Gua_2 및 4 구조체(도 1c, 1d)를 사용하여 pEGFP_ATA_Gua_2 및 4 구조체를 생성하였다. 도 1e에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치의 부재시, GFP 발현은 pEGFP-C1 구조체와 비교하였을 때 감소된다. 구아닌 처치는 GFP 발현에서 1.5 및 1.6-배 증가(각각 ATA_Gua_2 및 ATA_Gua_4 구조체의 경우)를 생산하였다. 그러나, 대조군 구조체는 구아닌 처치에 반응하여 GFP 발현에서 증가를 갖지 않았다.
이 데이터는 리간드-반응성 포유동물 온-리보스위치가 인접한 압타머를 통한 스템-루프 구조에서의 폴리아데닐화 신호 서열의 접근성을 조절하는 것에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 것에 효과적이라는 것을 나타낸다. 배수 유도는 압타머 P1 스템 및 이펙터 스템-루프 구조에서의 스템의 길이 및 서열을 최적화하는 것을 통해 기저 발현 수준을 감소시키고 구조체의 유도된 표적 유전자 발현을 증가시키는 것에 의해 개선될 수 있다. 유전자 요소의 이 시험된 구성에서, 구아닌 압타머 및 SV40 초기 polyA 서열을 사용하였다. 유사한 전략이 합성 polyA 서열을 포함한 다양한 polyA 서열을 조절하는데 다양한 압타머를 사용하여 리보스위치를 생성하기 위해 사용될 수 있다.
실시예 2. 다운스트림 서열 요소의 접근성을 통한 압타머/리간드 매개된 폴리아데닐화에 의한 표적 유전자 발현의 조절.
실험 절차: 실시예 1에 기재된 바와 같음.
결과:
T 또는 GT-풍부 다운스트림 서열 요소(DSE)의 접근성을 조절하는 것을 통해 폴리아데닐화를 조절하기 위한 다른 전략(전략 2)을 개발하였다. 이 전략에서, 도 2a에 예시된 바와 같이, DSE 서열이 스템-루프 구조의 스템에 내장된 스템-루프 구조를 생성하였다. 압타머 서열을 스템-루프 구조의 3' 암의 상보적 서열이 뒤따르는 이 스템-루프 구조의 3' 말단에 연결하였다. 이 구성에서, 압타머 리간드의 부재시, 스템-루프 구조는 DSE 서열을 격리시키고, 폴리아데닐화를 억제하여, 유전자 발현을 억제한다. 그러나, 압타머 리간드의 존재시, 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 야기하며, 이펙터 스템-루프 구조를 파괴하고, 격리된 DSE 서열을 방출시키며, 유전자 발현을 허용한다. 따라서, 실시예 1에 나타낸 전략과 유사하게, 유전자 요소의 이 구성은 압타머 리간드-반응성 온-리보스위치를 생성한다.
이 전략을 SV40 초기 polyA 서열을 갖는 xpt-구아닌 압타머를 사용하여 시험하였으며, DSE 서열은 SV40 3' UTR에서 AATAAA 요소와 함께 pre-mRNA 폴리아데닐화를 담당하는 것으로 나타났다. 이 전략을 사용하여, 각각 스템-루프 구조의 스템에 내장된 DSE 서열을 갖는 스템-루프 구조의 3' 말단에 연결된 동일한 xpt-구아닌 압타머 서열을 갖는 4 개의 구조체 DSE_Gua_1 내지 4(서열번호: 5-8)를 생성하였다. 본 발명자들은 스템-루프 구조의 스템에 대한 길이 및 서열 조성이 스템-루프 구조의 안정성에 영향을 미치므로, 유전자 발현을 위해 격리된 DSE 서열의 이용 가능성에 영향을 미칠 수 있다는 것을 합리화하였다. 따라서, 각각의 이들 구조체에서 각각 9, 10, 12 및 14 개 염기 쌍(bp) 스템을 생성하였다. 8 bp 또는 9 bp의 압타머 P1 스템을 이들 구조체에서 사용하였다. 도 2b에 나타낸 바와 같이, 압타머 리간드 구아노신의 부재시, 루시페라아제 활성은 구조체 DSE_Gua_1 내지 3에서 대략 유사하였으며, DSE_Gua_4는 최소이고, 대조군 구조체 pFLuc-SV40(데이터는 나타내지 않음)에 비해 낮았으며, 이는 DSE 요소가 압타머 리간드의 부재시 스템-루프 구조에 의해 격리되었음을 나타낸다. 반면에, 구아노신 처치시, 각각의 구조체는 DMSO 처치된 샘플과 비교하였을 때, 루시페라아제 활성 향상을 나타내었으며, DSE_Gua_2는 예를 들어, 3.7-배 유도를 생성하였다.
이들 구조체를 또한 압타머 리간드로서 구아닌을 사용하여 시험하였다. 도 2c에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치의 부재시, 루시페라아제 활성은 대조군 구조체 pFLuc와 비교하였을 때, 대략 구조체 DSE_Gua_1 내지 3의 경우 68%, 및 구조체 DSE_Gua_4의 경우 80%까지 감소하였다. 구아닌의 존재시, 루시페라아제 발현은 구아닌 처치 없는 샘플과 비교하였을 때 모든 구조체에서 대략 2.4-배 증가하였다. 배수 유도는 압타머 P1 스템뿐 아니라, 스템-루프 구조에서의 스템의 길이 및 서열을 최적화하는 것을 통해 기저 발현 수준을 감소시키고 구조체의 유도된 유전자 발현을 증가시키는 것에 의해 추가로 개선될 수 있다. 이들 데이터는 압타머를 통해 폴리아데닐화 서열 요소의 접근성을 조절하는 것을 통한 유전자 발현을 조절하는 압타머 리간드-반응성 포유동물 온-리보스위치의 생성을 추가로 나타낸다. 유전자 요소의 이 시험된 구성에서, 구아닌 압타머 및 SV40 초기 polyA 서열을 사용하였다. 유사한 전략이 합성 polyA 서열을 포함한 다양한 polyA 서열을 조절하는데 다양한 압타머를 함유하는 리보스위치를 생성하기 위해 사용될 수 있다.
실시예 3. 3'UTR에서 합성 polyA 서열 요소의 접근성을 조절하기 위한 구아닌 압타머의 사용
실험 절차:
플라스미드 구축: 합성 polyA(SPA)(본원에 참고로 포함되는 Levitt, N. et al., Definition of an efficient synthetic poly(A) site, Genes & Development. 1989; 3:1019-1025)에 대한 서열, 또는 본원에서 mtSPA로서 명명된 pGLuc-Basic_2 (NEB)로부터의 SPA, 또는 xpt-구아닌 압타머, 스템 루프 구조 및 합성 polyA 서열을 함유하는 DNA 단편을 합성하였다(IDT). 합성된 DNA 단편을 XhoI 및 NheI 제한 효소로 분해하고 XhoI 및 XbaI로 분해된 Con8 구조체 내로 클로닝하여, Con8-SPA(서열번호 9), SPA_ATA_Gua(서열번호 10), SPA_DSE_Gua(서열번호 11), mtCon8-SPA(서열번호 12) 및 mtSPA_ATA_Gua(서열번호 13)를 생성하였다. 구조체 서열을 DNA 시퀀싱(Genewiz)에 의해 확인하였다.
배양된 세포의 형질감염, 압타머 리간드 처치 및 루시페라아제 에세이: 실시예 1에 기재된 바와 같음.
결과:
SV40 polyA 서열의 접근성의 압타머-매개된 조절을 통한 표적 유전자 발현의 조절을 실시예 1 및 2에 나타내었다. 압타머-조절된 폴리아데닐화를 또한 합성 polyA 서열(SPA)을 사용하여 시험하였다. 실시예 1에 나타낸 바와 동일한 전략을 사용하여, xpt-구아닌 압타머 서열이 스템-루프 구조의 5' 말단에 연결되고 합성 polyA 서열의 AATAAA 서열 요소가 스템-루프 구조의 스템에 내장된 구조체 SPA_ATA_Gua를 생성하였다. 구조체 SPA_DSE_Gua를 또한 실시예 2에 나타낸 바와 동일한 전략을 사용하여 생성하였다. 도 3에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치의 부재시, 스템-루프 구조와 xpt-구아닌 압타머의 연결은 SPA_ATA_Gua 구조체에서 루시페라아제 활성 감소를 야기하지 않았으며, 이는 합성 polyA 서열의 AATAAA 서열 요소의 스템-루프에서 비효율적인 격리를 암시한다. 이를 해결하기 위해, Con8-SPA와 비교하였을 때 2 nt 차이를 갖지만, 유사한 기능성을 나타내는 다른 SPA 서열(mtSPA)을 사용하였다. 스템을 강화하기 위해, 2 GC 염기 쌍을 7 nt의 polyA 서열 및 이의 상보적 서열과 함께 스템에 첨가하고, 9bp 스템을 생성하였다. 이 mtSPA_ATA_Gua 구조체에 대해, 루시페라아제 활성의 기저 수준 발현은 구아닌 처치의 부재시 mtCon8-SPA와 비교하였을 때 감소되었다. 반면에, 구아닌 처치의 존재시, 루시페라아제 활성은 구아닌 처치가 없는 샘플과 비교하였을 때 1.7 배까지 약간 상향조절되었다. 구조체 SPA_DSE_Gua에 대해, xpt-구아닌 압타머 서열을 스템-루프 구조의 스템에 내장된 DSE 서열을 갖는 스템-루프 구조의 3' 말단에 연결하였다. 도 3에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치는 SPA_DSE_Gua 구조체의 루시페라아제 활성을 구아닌 처치가 없는 샘플과 비교하였을 때 1.9 배까지 상향조절하였다. 이들 결과는 polyA 서열 요소의 접근성을 조절하는 것에 의한 표적 유전자 발현의 조절성을 나타낸다.
실시예 4. polyA-기반 리보스위치의 조절성을 향상시키기 위한 스템-루프 구조체의 루프 서열 조절
실험 절차: 실시예 1에 기재된 바와 같음.
결과:
실시예 1 및 2에서 polyA 서열에 연결된 압타머 및 스템 루프 구조를 갖는 모든 구조체에 대해, 루시페라아제의 기저 수준 발현은 대조군 벡터의 20 내지 45%까지 감소하였다. 표적 유전자 발현의 유도 수준이 대조군 구조체의 최대 80%에 도달하는 것을 통해, 기저 수준 발현은 배수 유도가 감소되도록 야기한다. 기저 발현을 감소시키기 위해, 스템-루프 구조를 강화하거나 안정화시켜, 압타머/리간드 결합의 부재시 AATAAA 또는 DSE 서열 요소를 효율적으로 격리시키거나 차단할 수 있다. 스템-루프 구조의 안정성을 강화하기 위해, 루시페라아제 유전자의 기저 수준 발현에 대한 스템-루프 구조의 루프의 서열 조성의 효과를 시험하였다. ATA_Gua_1에서의 GAAA 루프 서열을 더욱 안정적인 루프 서열인 TTCG로 치환하여(V.P. Antao, S. Y. Lai and I. Tinoco, A thermodynamic study of unusually stable RNA and DNA hairpins. Nucleic Acids Research. 1991; 19(21):5901-5905), 구조체 Stbl_ATA_Gua_1(서열번호 14)을 생성하였다. 도 4에 나타낸 바와 같이, ATA_Gua_1과 비교하여, Stbl_ATA_Gua_1은 구아닌 처치의 부재시 더 낮은 루시페라아제 활성을 발현하였으며, 이는 AATAAA 신호의 개선된 격리를 암시한다. 반면에, 구아닌 처치의 존재시, Stbl_ATA_Gua_1에 대해 유도된 루시페라아제 활성은 ATA_Gua_1과 유사하였으며, 높은 유도 배수를 생성하였다. 반대로, GAAT 루프를 함유하는 구조체, gaat_ATA_Gua_1(서열번호 15)은 ATA_Gua_1 또는 stbl_ATA_Gua_1에 비해 높은 기저 수준 루시페라아제를 발현하였으며, 이들 2 개의 구조체에 비해 약간 낮은 배수 유도를 생성하였다. 이들 결과는 더욱 엄격한 표적 유전자 조절이 스템-루프 구조 변형을 통해 달성될 수 있다는 것을 나타낸다.
실시예 5. 3' UTR에서 polyA 서열의 AATAAA 및 DSE 둘 다의 접근성의 동시 조절.
실험 절차:
ATA_Gua_1 및 DSE_Gua_1 스위치를 함유하는 서열을 합성하고 HpaI 및 MluI 분해된 pFLuc 벡터 내로 클로닝하여 ATA_DSE_Gua 구조체(서열번호 16)를 생성하였다.
배양된 세포의 형질감염 및 루시페라아제 에세이: 실시예 1에 기재된 바와 같음.
결과:
도 5a에 예시된 바와 같은 표적 유전자 발현을 조절하기 위한 제3 전략(전략 3)을 전략 1 및 전략 2를 조합하여 AATAAA 및 DSE 서열 둘 다의 접근성을 동시에 조절하는 것에 의해 개발하였다. 이 구성에서, 압타머 리간드의 부재시, AATAAA 및 DSE 서열 둘 다를 스템-루프 구조에 의해 격리시키므로, 유전자 발현이 억제된다. 각각의 스템-루프 구조를 동일하거나 상이한 리간드 분자에 대해 반응할 수 있는 압타머 서열에 연결한다. 필수 polyA 서열 요소 둘 다를 차단하는 것은 리간드(들)의 부재시 유전자 발현의 기저 수준을 감소시킬 수 있다. 압타머 리간드의 존재시, 압타머/리간드 결합은 압타머 P1 스템의 형성을 가능하게 하여, 스템-루프 구조를 파괴하고 격리된 AATAAA 및 DSE 서열 둘 다를 방출한다. 이 구성에서, 유전자는 압타머 둘 다에 대한 리간드가 존재할 때에만 효율적으로 발현할 수 있으며, 이는 잠재적으로 표적 유전자 발현의 더욱 엄격한 조절을 허용한다.
사실, 도 5b에 나타낸 바와 같이, 구아닌 처치의 부재시, 스템-루프 구조(ATA_DSE_Gua)를 통해 AATAAA 및 DSE 서열 둘 다를 격리시키는 것은 루시페라아제 발현을 대조군 구조체 pFLuc의 20%까지 추가로 감소시킨 한편, ATA_Gua_1 및 DSE_Gua_1은 각각 45% 및 35% 감소하였다. 구아닌 처치의 존재시, 루시페라아제 활성은 미처치된 샘플과 비교하였을 때 ATA_DSE_Gua 샘플에서 대략 2.1 배 회복되었으며, 이는 더욱 엄격한 유전자 조절을 나타낸다.
실시예 6. 표적 유전자 조절성을 향상시키기 위한 polyA-기반 리보스위치 및 제2 리보스위치의 조합된 사용
실험 절차:
Golden Gate 클로닝 전략을 사용하여, G15 리보스위치 카세트(본원에 참고로 포함되는 WO 2016/126747호의 실시예 5 및 8 및 서열번호 46 참고) 또는 압타머가 없는 대조군 카세트를 pFLuc 내로 클로닝하여 pFLuc-G15 또는 pFLuc-Con1을 생성하였다. 구조체 pFLuc-G15_ATA_Gua를 생성하기 위해, 구아닌 압타머, 스템 루프 구조 및 SV40 polyA 서열을 함유하는 단편을 HpaI 및 MluI 분해에 의해 ATA_Gua_1 구조체로부터 방출시키고 동일한 제한 효소로 분해된 pFLuc-G15 구조체 내로 클로닝하였다.
배양된 세포의 형질감염 및 루시페라아제 에세이: 도 1에 기재된 바와 같음.
결과:
ATA_Gua 및 DSE_Gua 리보스위치를 함유하는 발현 구조체는 표적 유전자의 기저 발현 정도를 갖는다. 이들 스위치와 제2 스위치의 동시의(in tandem) 조합된 사용은 기저 발현을 엄격하게 할 수 있으므로, 유전자 조절성을 향상시킬 수 있다.
이를 입증하기 위해, G15 리보스위치를 polyA-기반 리보스위치와 조합하였다. G15 리보스위치는 xpt-구아닌 압타머-조절된 선택적 스플라이싱 메커니즘을 기본으로 하며 동일한 기저 수준 발현을 갖고, 이는 압타머 리간드 구아닌 처치에 반응하여 배수 유도를 감소시킨다. pFLuc-G15 구조체로부터의 기저 수준 발현을 감소시키기 위해, polyA 서열을 ATA_Gua_1로 치환하여, pFLuc-G15-ATA_Gua 구조체(도 6a)를 생성하였다. 도 6b에 나타낸 바와 같이, 압타머 리간드(구아닌)의 부재시, pFLuc-G15의 루시페라아제의 기저 수준 발현은 pFLuc-Con1 대조군 구조체와 비교하였을 때 상당히 감소하였다. 이중 스위치를 갖는 구조체인 pFLuc-G15-ATA_Gua는 pFLuc-G15와 비교하였을 때 추가로 감소된 기저 수준 발현을 갖는다. 구아닌 처치의 존재시, 루시페라아제 활성의 유도된 수준은 pFLuc-G15에 비해 약간 낮았으나, ATA_Gua_1 구조체로부터의 유도된 루시페라아제 활성과 동일하였으며, ATA_Gua_1 및 pFLuc-G15 구조체 둘 다에 비해 높은 배수 유도를 생성하였다(도 6b).
이들 결과는 더욱 엄격한 스위치가 높은 기저 수준 발현을 갖는 2 개의 스위치를 동시에 조합하는 것에 의해 생성될 수 있다는 것을 나타낸다. 이 이중 스위치에서의 압타머는 본원에 나타낸 바와 같이 동일하거나 상이한 리간드에 결합하는 동일하거나 상이한 압타머, 또는 상이한 리간드에 반응하는 압타머일 수 있다.
실시예 7. 3'UTR에서 polyA 서열 요소 AATAAA의 접근성을 조절하기 위한 아데닌 압타머의 사용
실험 절차:
플라스미드 구축: 아데닌 압타머 ydhl-A(본원에 참고로 포함되는 M. Mandal and R.R. Breaker, Adenine riboswitches and gene activation by disruption of a transcription terminator. Nature Structural & Molecular Biology. 2004; 11: 29-35)에 대한 서열, 스템 루프 구조 및 SV40 초기 polyA 서열을 함유하는 DNA 단편을 합성하였다(IDT). 합성된 DNA 단편을 HpaI 및 MluI 제한 효소로 분해하고 HpaI 및 MluI로 분해된 pFLuc-SV40 내로 클로닝하였다. 구조체 서열을 DNA 시퀀싱(Gnenewiz)에 의해 확인하였다.
배양된 세포의 형질감염 및 루시페라아제 에세이: 실시예 1에 기재된 바와 같음.
형질감염 4 시간 후에, 배지를 흡입하고, NaOH(1 mM) 또는 1 mM 아데닌을 갖는 새로운 배지(Calbiochem)를 첨가하였다. 유도 배수는 압타머 리간드의 존재시 얻어진 루시페라아제 활성을 압타머 리간드의 부재시 얻어진 값으로 나눈 몫으로서 표현하였다.
결과:
표적 유전자 발현을 제어하기 위한 추가 압타머/리간드 쌍의 사용을 연구하였다. 실시예 1에 나타낸 바와 동일한 전략으로, 스템-루프(SL) 구조(안정적인 TTCG 루프)를 삽입하였으며, AATAAA 서열 요소는 SL 구조의 9bp 스템에 내장된다. 이 SL 구조의 5' 말단에 대해, 아데닌 압타머 ydhl-A 서열이 뒤따르는 SL 구조의 5' 암의 상보적 서열을 3' UTR 내에 삽입하였으며, 이는 구조체 ATA_Ydhl(서열번호 17)을 생성하였다. 이 구조체에서, ydhl 압타머 P1 스템의 길이는 10 bp이다. 도 7에 나타낸 바와 같이, 아데닌 처치의 부재시, ATA_Ydhl 구조체는 아마도 AATAAA 서열 요소의 접근성의 차단을 통해 루시페라아제의 수준을 대조군 pFLuc 구조체의 대략 52%까지 감소시켰다. 아데닌의 존재시, 루시페라아제 발현은 아데닌 처치가 없는 샘플과 비교하였을 때, 아데닌 처치의 존재시 대조군 pFLuc 구조체의 대략 82%까지 향상되었다. 아데닌 처치는 압타머-비관련 메커니즘을 통해 루시페라아제 활성을 대조군 구조체에서 2.5-배 증가시켰다. 그러나, ATA_ydhl 구조체는 루시페라아제 발현에서 4.0-배 증가를 생성하였으며, 이는 아데닌/압타머 특이적 효과를 나타낸다.
SEQUENCE LISTING
<110> MeiraGTx UK II Limited
Guo, Xuecui
Han, Joonhee
Zhong, Zhaojing
<120> REGULATION OF GENE EXPRESSION BY APTAMER-MEDIATED ACCESSIBILITY
OF POLYADENYLATION SIGNALS
<130> 162027.48676
<150> US 62/461,689
<151> 2017-02-21
<160> 17
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 332
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic construct
<400> 1
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ttgctttaaa aaacctccca cacctccccc tgaacctgaa acataaaatg aatgcaattg 120
ttgttgttaa cttgtttatt gcagcttata atggttacaa ataaagcaat agcatcacaa 180
atttctaaag gtataatcgc gtggatatgg cacgcaagtt tctaccgggc accgtaaatg 240
tccgactacc tttatttcga aagaaataaa gcattttttt cactgcattc tagttgtggt 300
ttgtccaaac tcatcaatgt atcttaacgc gt 332
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<212> DNA
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<220>
<223> Synthetic Construct
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atttcacata aagcataatc gcgtggatat ggcacgcaag tttctaccgg gcaccgtaaa 240
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tttgtccaaa ctcatcaatg tatcttaacg cgt 333
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<212> DNA
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<220>
<223> Synthetic construct
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<212> DNA
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taccgggcac cgtaaatgtc cgactattgt gtggaaataa ttcttact 228
<210> 12
<211> 153
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic construct
<400> 12
aaggccaaga agggcggaaa gatcgccgtg taaggatcca agcttatcga taccgtcgac 60
ctcgagggcc cagatctgcg gccgcaataa aatatcttta ttttcattac atctgtgtgt 120
tggttttttg tgtgtctaga aataattctt act 153
<210> 13
<211> 229
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic construct
<400> 13
aaggccaaga agggcggaaa gatcgccgtg taaggatcca agcttatcga taccgtcgac 60
ctcgagggcc cagatctgcg gaaaaggtat aatcgcgtgg atatggcacg caagtttcta 120
ccgggcaccg taaatgtccg actacctttt attgcgaaag caataaaata tctttatttt 180
cattacatct gtgtgttggt tttttgtgtg tctagaaata attcttact 229
<210> 14
<211> 332
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic construct
<400> 14
aaggccaaga agggcggaaa gatcgccgtg taagccatac cacatttgta gaggttttac 60
ttgctttaaa aaacctccca cacctccccc tgaacctgaa acataaaatg aatgcaattg 120
ttgttgttaa cttgtttatt gcagcttata atggttacaa ataaagcaat agcatcacaa 180
atttctaaag gtataatcgc gtggatatgg cacgcaagtt tctaccgggc accgtaaatg 240
tccgactacc tttatttctt cggaaataaa gcattttttt cactgcattc tagttgtggt 300
ttgtccaaac tcatcaatgt atcttaacgc gt 332
<210> 15
<211> 332
<212> DNA
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<220>
<223> Synthetic construct
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ttgctttaaa aaacctccca cacctccccc tgaacctgaa acataaaatg aatgcaattg 120
ttgttgttaa cttgtttatt gcagcttata atggttacaa ataaagcaat agcatcacaa 180
atttctaaag gtataatcgc gtggatatgg cacgcaagtt tctaccgggc accgtaaatg 240
tccgactacc tttatttcga atgaaataaa gcattttttt cactgcattc tagttgtggt 300
ttgtccaaac tcatcaatgt atcttaacgc gt 332
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aaggccaaga agggcggaaa gatcgccgtg taagccatac cacatttgta gaggttttac 60
ttgctttaaa aaacctccca cacctccccc tgaacctgaa acataaaatg aatgcaattg 120
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atttctaaag gtataatcgc gtggatatgg cacgcaagtt tctaccgggc accgtaaatg 240
tccgactacc tttatttcga aagaaataaa gcattttttt cactgcattc tagttgtggt 300
ttgtccgaaa ggacaaacca taatcgcgtg gatatggcac gcaagtttct accgggcacc 360
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aaggccaaga agggcggaaa gatcgccgtg taagccatac cacatttgta gaggttttac 60
ttgctttaaa aaacctccca cacctccccc tgaacctgaa acataaaatg aatgcaattg 120
ttgttgttaa cttgtttatt gcagcttata atggttacaa ataaagcaat agcatcacaa 180
atttcaataa aggtataacc tcaataatat ggtttgaggg tgtctaccag gaaccgtaaa 240
atcctgatta cctttatttc ttcggaaata aagcattttt ttcactgcat tctagttgtg 300
gtttgtccaa actcatcaat gtatcttaac gcgt 334
Claims (30)
- 리보스위치(riboswitch)를 포함하는 표적 유전자의 발현의 조절을 위한 폴리뉴클레오티드 카세트로서, 리보스위치가 이펙터 스템 루프(effector stem loop) 및 압타머를 포함하고, 이펙터 스템이 폴리아데닐화 신호를 포함하며, 압타머 및 이펙터 스템 루프가 압타머 스템의 비공유 암(arm) 및 이펙터 스템 루프의 비공유 암에 대해 상보적인 서열을 포함하는 교번 공유 스템 암에 의해 연결되는, 폴리뉴클레오티드 카세트.
- 제1항에 있어서,
압타머가 소분자 리간드에 결합하는 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항에 있어서,
압타머 스템의 서열 및 이펙터 스템 루프의 서열에 대해 상보적인 교번 공유 스템 암의 부위가 4 내지 8 개 뉴클레오티드, 5 내지 7 개 뉴클레오티드, 5 개 뉴클레오티드, 또는 6 개 뉴클레오티드인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항에 있어서,
압타머 스템이 6 내지 12 개 염기 쌍, 7 내지 10 개 염기 쌍, 8 개 염기 쌍, 또는 9 개 염기 쌍인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항에 있어서,
이펙터 스템 루프의 스템이 4 내지 24 개 염기 쌍, 5 내지 20 개 염기 쌍, 9 내지 14 개 염기 쌍, 9 개 염기 쌍, 10 개 염기 쌍, 11 개 염기 쌍 또는 12 개 염기 쌍인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서,
이펙터 스템 루프가 압타머의 3'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 3' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 5' 암의 전부 또는 일부를 포함하는 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제6항에 있어서,
폴리아데닐화 신호가 AATAAA 또는 ATTAAA인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서,
이펙터 스템 루프가 압타머의 5'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 5' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 3' 암의 전부 또는 일부를 포함하는 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제8항에 있어서,
폴리아데닐화 신호가 다운스트림 요소(downstream element)(DSE)인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서, 2 개의 리보스위치를 포함하되, 제1 리보스위치의 이펙터 스템 루프가 폴리아데닐화 신호 AATAAA 또는 ATTAAA의 전부 또는 일부를 포함하고 제2 리보스위치의 이펙터 스템 루프가 다운스트림 요소(DSE)의 전부 또는 일부를 포함하는 폴리뉴클레오티드 카세트.
- 제10항에 있어서,
2 개의 리보스위치가 각각 동일한 리간드에 결합하는 압타머를 포함하는 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제10항에 있어서,
2 개의 리보스위치가 상이한 리간드에 결합하는 상이한 압타머를 포함하는 폴리뉴클레오티드 카세트. - a. 제1항 내지 제5항의 폴리뉴클레오티드 카세트 중 1 이상을 표적 유전자의 3' 비번역 영역(untranslated region) 내로 삽입하는 것,
b. 폴리뉴클레오티드 카세트를 포함하는 표적 유전자를 세포 내로 도입하는 것, 및
c. 표적 유전자의 발현을 증가시키는데 효과적인 양으로 압타머에 결합하는 리간드에 세포를 노출시키는 것을 포함하는, 표적 유전자의 발현을 조절하는 방법. - 제13항에 있어서,
리간드가 소분자인 방법. - 제13항에 있어서,
이펙터 스템 루프가 압타머의 3'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 3' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 5' 암의 전부 또는 일부를 포함하는 방법. - 제15항에 있어서,
폴리아데닐화 신호가 AATAAA 또는 ATTAAA인 방법. - 제13항에 있어서,
이펙터 스템 루프가 압타머의 5'에 위치하여, 교번 공유 스템 암이 5' 압타머 스템 암의 전부 또는 일부 및 이펙터 스템의 3' 암의 전부 또는 일부를 포함하는 방법. - 제17항에 있어서,
폴리아데닐화 신호가 다운스트림 요소(DSE)인 폴리뉴클레오티드 카세트. - 제13항 또는 제14항에 있어서,
2 개의 리보스위치가 표적 유전자의 3' UTR 내로 삽입되되, 제1 리보스위치의 이펙터 스템 루프가 폴리아데닐화 신호 AATAAA 또는 ATTAAA의 전부 또는 일부를 포함하고 제2 리보스위치의 이펙터 스템 루프가 다운스트림 요소(DSE)의 전부 또는 일부를 포함하는 방법. - 제19항에 있어서,
2 개의 리보스위치가 각각 동일한 리간드에 결합하는 압타머를 포함하는 방법. - 제19항에 있어서,
2 개의 리보스위치가 상이한 리간드에 결합하는 상이한 압타머를 포함하는 방법. - 제19항에 있어서,
2 이상의 폴리뉴클레오티드 카세트가 동일한 압타머를 포함하는 방법. - 제13항 내지 제22항 중 어느 한 항에 있어서,
폴리뉴클레오티드 카세트를 포함하는 표적 유전자가 표적 유전자의 발현을 위한 벡터에 포함되는 방법. - 제13항 내지 제22항 중 어느 한 항에 있어서,
표적 유전자가 선택적 스플라이싱(alternative splicing)의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트를 추가로 포함하는 방법. - 제23항에 있어서,
벡터가 바이러스 벡터인 방법. - 제25항에 있어서,
바이러스 벡터가 아데노바이러스 벡터, 아데노-연관 바이러스 벡터, 및 렌티바이러스 벡터로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 방법. - 제1항 내지 제12항의 폴리뉴클레오티드 카세트를 함유하는 표적 유전자를 포함하는 벡터.
- 제27항에 있어서,
벡터가 바이러스 벡터인 벡터. - 제28항에 있어서,
바이러스 벡터가 아데노바이러스 벡터, 아데노-연관 바이러스 벡터, 및 렌티바이러스 벡터로 이루어진 그룹으로부터 선택되는 벡터. - 제27항에 있어서,
표적 유전자가 선택적 스플라이싱의 압타머-매개된 조절에 의해 표적 유전자 발현을 조절하는 유전자 조절 카세트를 추가로 포함하는 벡터.
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