KR20190035444A - An anti-aging functional cosmetic composition comprising an Undaria pinnatifida extract, an Ecklonia cava extract and glycosaminoglycan - Google Patents

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Abstract

The present invention relates to an anti-aging functional cosmetic composition comprising an active ingredient of glycosaminoglycans (GAGs), an Ecklonia cava ethanol-extract (ECE), and an Undaria pinnatifida enzymatic-extract fucoidan (UPEF).

Description

미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 포함하는 항노화 기능성 화장료 조성물{An anti-aging functional cosmetic composition comprising an Undaria pinnatifida extract, an Ecklonia cava extract and glycosaminoglycan}An anti-aging functional cosmetic composition comprising an extract of Ganoderma lucidum, an extract of Ganoderma lucidum, and a glycosaminoglycan, and an anti-aging functional cosmetic composition comprising an extract of Ecklonia cava extract and glycosaminoglycan,

본 발명은 미역귀(Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan, UPEF), 감태 추출물(Ecklonia cava Ethanol-extracts, ECE) 및 글리코사미노글리칸(Glycosaminoglycans, GAGs)을 포함하는 피부 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 피부 보호효과 또는 피부 재생 효과를 갖는 항노화 기능성 화장료 조성물에 관한 것이다.The present invention relates to a skin whitening, wrinkle-improving, antioxidative, ultraviolet (UV) and anti-inflammatory effect including Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan (UPEF), Ecklonia cava Ethanol-extracts (ECE) and Glycosaminoglycans The present invention relates to an anti-aging functional cosmetic composition having a skin protection effect or a skin regeneration effect.

피부는 인체에서 가장 큰 기관으로서 그 면적이 약 1.6㎡에 이르는 큰 크기이며, 무게로도 체중의 16%나 되는 큰 기관으로서, 피부는 내부 장기를 보호하기 위하여 신체를 덮고 있는 가장 기본적인 외피로서의 역할 이외에도 많은 기능을 수행하고 있는 매우 중요한 기관이다. Skin is the largest organ in the human body and its area is about 1.6m2 in size. It is a large organ which weighs 16% of its weight. Skin acts as the most basic skin covering the body to protect the internal organs. It is also a very important institution that performs many functions.

그러나, 피부를 구성하는 세포 외부로부터 가해진 과도한 물리적, 화학적 자극 및 스트레스, 영양결핍, 자외선, 환경오염물질, 급격한 기온의 변화 등과 같은 세포를 손상시키는 세포손상자극들에 의하여 세포내의 다양한 생화학적 변화가 유도되면 피부 외관에 기미, 주근깨, 잡티, 탄력손실, 각질화, 주름생성과 같은 피부의 노화를 촉진시키게 된다.However, a variety of biochemical changes within the cell can be induced by cellular damage stimuli that damage cells such as excessive physical and chemical stimuli and stresses, nutritional deficiencies, ultraviolet rays, environmental contaminants, rapid temperature changes, Induction promotes aging of the skin such as stain, freckles, dullness, loss of elasticity, keratinization, and wrinkling in the appearance of the skin.

피부노화 현상 중 피부의 착색이나 얼룩 등의 색소 침착의 요인으로는 생체 내에서의 대사 장해 등의 내인적 요소와 자외선 등에 의한 외인적 요소를 들 수 있는데, 일반적으로 후자의 외인적 요소에 의한 것이 주를 이루며, 이와 같이 피부에 자외선이 조사되는 경우 자외선에 의하여 멜라노사이트(melanocyte)가 자극을 받고, 멜라노사이트가 활성화되면 티로시나아제(tyrosinase) 효소가 작용하여 피부가 타서 갈색이 되는데, 이것은 멜라닌이 생성되어 과잉광선을 흡수하여 생체를 보호하기 위한 것으로 추측된다. 그래서 화장품업계에서는 이러한 현상을 방지하기 위해서 멜라노사이트의 활성을 억제하고 티로시나아제 효소 및 멜라닌 색소의 생성을 억제함으로써 피부의 착색이나 얼룩 등의 색소 침착을 방지하는 미백제를 개발하는 것이 종래부터 중요한 이슈가 되고 있다.In skin aging, pigmentation such as pigmentation or staining of the skin can be caused by internal factors such as metabolic disturbances in the living body and external factors such as ultraviolet rays. Generally, the external factors When the ultraviolet rays are irradiated to the skin, the melanocytes are stimulated by the ultraviolet ray. When the melanocyte is activated, the tyrosinase enzyme acts and the skin becomes brown, which is melanin Is generated and absorbs excess light rays to preserve the living body. Therefore, in the cosmetics industry, in order to prevent such phenomenon, it has been necessary to develop a whitening agent which inhibits the activity of melanocyte and inhibits the formation of tyrosinase enzyme and melanin pigment, thereby preventing pigmentation such as skin coloring and unevenness .

또한, 피부노화 현상 중 주름이 형성되는 원인은 자연적 노화에 의한 주름의 생성과 자외선 노출(광노화)에 의한 주름의 생성으로 크게 나눌 수 있으며, 자연적 노화와 광노화에 의한 피부변화와 관련되어 발견되는 공통적인 현상에 관하여 지금까지의 연구결과에 의하면 진피 내 주 단백질인 콜라겐(collagen)과 엘라스틴(elastin)의 감소 및 변형이 주름의 생성 및 피부의 탄력저하에 직접적으로 관여하는 것으로 알려져 있다. 특히, 콜라겐은 피부의 섬유아세포에서 생성되는 주요 기질 단백질로서 콜라겐의 감소가 피부의 주름 형성과 밀접한 연관이 있다는 연구 결과가 보고되고 있다. 즉, 콜라겐 감소에 영향을 끼치는 자유 라디칼들은 피부 콜라겐 등의 결합조직 형성파괴, 세포막 기능 저해, DNA 변이 촉진, 단백질 작용 변형, 세포 간 에너지 전이, 신진 대사와 관련된 분자들의 변형을 유발하는 것으로 알려져 있으며, 이러한 피부 노화에 자유 라디칼이 관여한다는 사실은 자유 라디칼을 불활성화시키는 항산화제들을 사용하여 노화 과정을 지연시킬 수 있다는 것을 의미한다. 한편, 정상적인 세포에서도 대사과정 중 어느 정도의 자유 라디칼과 기타 활성 산소 및 과산화물이 생성되며, 이들에 대한 생체방어기구에 이상이 초래되거나 각종 물리적, 화학적 요인들에 의하여 활성산소의 생성이 생체 방어계의 용량을 초과하게 될 경우 산화적 스트레스가 야기된다. 따라서, 활성산소를 억제하는 것은 피부노화를 방지하는 화장물 조성료에 중요한 요소이다.The cause of wrinkles in skin aging is largely divided into the generation of wrinkles due to natural aging and the generation of wrinkles due to exposure to ultraviolet rays (photoaging). In addition, common wrinkles are found in association with skin aging caused by natural aging and photoaging Studies on the phosphorus phenomenon have shown that the reduction and modification of collagen and elastin, the main proteins in the dermis, are directly involved in the production of wrinkles and the reduction of elasticity of the skin. In particular, collagen is a major substrate protein produced in the fibroblasts of the skin, and a decrease in collagen is closely related to the formation of wrinkles in the skin. In other words, free radicals that affect collagen reduction are known to cause destruction of connective tissues such as skin collagen, inhibition of cell membrane function, promotion of DNA mutation, modification of protein action, intercellular energy transfer, and transformation of molecules involved in metabolism , The fact that free radicals are involved in such skin aging means that antioxidants that inactivate free radicals can be used to delay the aging process. On the other hand, even in normal cells, some free radicals and other active oxygen and peroxides are produced in the metabolic process, resulting in abnormality in bio-defense mechanisms against them, or generation of active oxygen by various physical and chemical factors, The oxidative stress is caused. Therefore, inhibiting active oxygen is an important factor in cosmetic composition to prevent skin aging.

대한민국 공개특허 제10-13038070000호Korean Patent Publication No. 10-13038070000

본 발명의 목적은 미역귀(Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan, UPEF), 감태 추출물(Ecklonia cava Ethanol-extracts, ECE) 및 글리코사미노글리칸(Glycosaminoglycan, GAGs)의 상호 상승효과로 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 또는 피부 재생용 항노화 화장료 조성물을 제공하는 것이다.An object of the present invention is miyeokgwi (Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan, UPEF), Ecklonia cava extract, skin whitening, anti-wrinkle mutually synergistic effect of (Ecklonia cava Ethanol-extracts, ECE) and glycosaminoglycans (Glycosaminoglycan, GAGs), Antioxidant, protection against ultraviolet rays, or skin regeneration.

상기 목적을 달성하기 위한 하나의 양태로, 본 발명은 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 유효성분으로 포함하는 항노화 화장료 조성물을 제공한다.In one aspect of the present invention, the present invention provides an anti-aging cosmetic composition comprising, as an active ingredient, an irregular extract, a gentian extract, and a glycosaminoglycan.

본 발명의 상기 화장료 조성물은 유효성분으로, 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 포함한다.The cosmetic composition of the present invention contains, as an active ingredient, a mugwort extract, a moss extract, and a glycosaminoglycan.

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 유효성분으로 포함하는 화장료 조성물은 항노화 효과를 가진다.The cosmetic composition comprising the asparagine extract, phlegm extract and glycosaminoglycan as an active ingredient has an anti-aging effect.

본 발명의 용어 “미역귀”는 바다에 서식하는 갈조류의 일종인 미역(Undaria pinnatifida)의 뿌리 부분에 위치하는 미역의 생식소로서 미역포자엽이라고 불리며, 알긴산과 후코이단 성분이 풍부한 것으로 알려져 있고, 항암기능, 항바이러스 기능, 면역 증강 기능 등 다양한 생리활성기능을 갖고 있는 것으로 알려져 있다.As used herein, the term " gypsum " is a gingival germ of the seaweed located at the root of undaria pinnatifida , a type of brown algae inhabiting the sea. It is known to be abundant in alginic acid and fucoidan components. Virus function, and immunity enhancement function.

본 발명의 용어 “추출물”이란 천연물로부터 그 안의 성분을 뽑아낸 물질로, 물, 유기용매 또는 이들의 혼합용매를 이용하여 추출과정으로 획득할 수 있으며, 추출액, 추출액의 희석액 또는 농축액, 추출액을 건조하여 얻어지는 건조물, 또는 이들 조정제물 또는 정제물을 모두 포함할 수 있다.The term " extract " of the present invention refers to a substance extracted from a natural product, which can be obtained by an extraction process using water, an organic solvent, or a mixed solvent thereof, and a diluent or concentrate or extract of the extract is dried , Or any of these regulated or refined products.

본 발명의 용어 “미역귀 추출물”은 미역귀의 효소 추출물을 의미한다. 상기 미역귀 추출물은 후코이단(fucoidan)을 유효성분으로 포함하며, 상기 효소는 셀루클라스트(Cellucalast)일 수 있다. The term " mugwort extract " of the present invention means an enzyme extract of mugwort. The soybean extract contains fucoidan as an active ingredient, and the enzyme may be Cellucalast.

상기 미역귀 추출물은 미역귀 분말을 물에 용해한 후 셀루클라스트를 첨가하여 가수분해하고, 이를 원심분리한 뒤 상층액을 여과하고, 농축시키며, 농축시킨 상층액을 에탄올로 당을 침전하고 염화칼슘을 이용하여 알긴산을 제거하여 추출될 수 있으나, 효소를 이용하고, 후코이단을 포함하며 알긴산을 제거하는 추출방법이라면 제한없이 이용될 수 있다.In the case of the non-dialyzed extract, the undilated solution was dissolved in water and then hydrolyzed by adding cellulose. After centrifugation, the supernatant was filtered, concentrated, and the concentrated supernatant was precipitated with ethanol and calcium chloride It can be extracted by removing alginic acid, but it can be used without limitation as long as it is an extraction method using an enzyme and containing fucoidan and removing alginic acid.

상기 후코이단(fucoidan)은 끈적끈적한 점질 구조의 황산염화한 다당류로 미역, 다시마 등의 갈조류에 함유되어 있으며, 항염, 항바이러스, 항알레르기 작용을 한다고 알려져 있다.The fucoidan is a sulfated polysaccharide having a sticky, viscous structure and is contained in brown algae such as seaweed and kelp, and is known to have anti-inflammatory, antiviral and antiallergic functions.

본 발명의 용어 “감태(Ecklonia cava)”는 미역과에 속하는 다년생 해조류로서 우리나라 동해 남부와 제주도를 포함한 남해안 일대에서 분포하여, 예로부터 식용으로 사용되어 왔다.The term " Ecklonia cava " of the present invention is a perennial seaweed belonging to the seaweed family, which is distributed in the southern part of Korea including the East Sea and Jeju Island.

본 발명의 용어 “감태 추출물”은 상기 감태를 에탄올 용매로 추출한 것이며, 폴리페놀과 디에콜를 포함할 수 있다.The term " phlegm extract " of the present invention is obtained by extracting the phloem with an ethanol solvent, and may include polyphenols and diacols.

본 발명의 실시예에서 감태 추출물은 총 폴리페놀 함량이 50% 이상이며, 디에콜을 5%이상 포함한다.In the examples of the present invention, the ginger extract has a total polyphenol content of 50% or more and contains 5% or more of dioecol.

본 발명의 용어 글리코사미노글리칸(Glycosaminoglycans, GAGs)은 피부를 구성하는 주요 성분중의 하나이며, 히알루론산(HA), 더마탄황산염, 콘드로이틴황산염, 케라탄황산염, 헤파란황산염, 헤파린 등이 이에 속한다. 글리코사미노글리칸은 주로 동물의 연골이나, 어류의 연골, 미더덕, 멍게껍질 등에서 추출 가능하다.The term Glycosaminoglycans (GAGs) of the present invention is one of the main components constituting the skin, and includes hyaluronic acid (HA), dermatan sulfate, chondroitin sulfate, keratan sulfate, heparan sulfate, It belongs to this. Glycosaminoglycan can be extracted mainly from animal cartilage, fish cartilage, thyroid gland, urchin skin, and the like.

본 발명의 글리코사미노글리칸은 멍게(Halocynthia roretzi)의 껍질에서 추출된 것일 수 있다.The glycosaminoglycan of the present invention may be one extracted from the bark of Halocynthia roretzi .

본 발명의 용어 “노화”는 시간의 흐름과 함께 진행되는 신체의 기능 및 상태 변화로 기미, 주근깨, 검버섯과 같은 색소 침착으로 인한 불균일한 피부 및 반점, 주름, 탄력저하 등의 증상이 있으며, 자외선 및 산화적 스트레스가 주된 원인으로 알려져 있다.The term " aging " of the present invention refers to changes in the function and condition of the body that accompany the passage of time, and there are symptoms such as uneven skin caused by pigmentation such as spots, freckles and blurred spots, And oxidative stress are known to be the main causes.

본 발명의 용어 “항노화”는 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 효과 또는 피부재생 효과를 통해 상기 노화 증상을 완화, 감소, 예방, 지연, 개선 또는 제거시키는 것을 의미한다.The term " anti-aging " of the present invention means alleviating, reducing, preventing, delaying, improving or eliminating the aging symptom through whitening, wrinkle improvement, antioxidation, protective effect against ultraviolet rays or skin regeneration effect.

본 발명의 화장료 조성물은 상기 유효성분 이외에 통상적으로 허용되는 성분들을 제한없이 포함할 수 있으며, 예컨대 항산화제, 안정화제, 용해화제, 비타민, 안료 및 향료와 같은 통상적인 보조제, 그리고 담체를 포함할 수 있다.The cosmetic composition of the present invention may include, without limitation, commonly accepted ingredients other than the above-mentioned effective ingredients, and may contain conventional additives such as antioxidants, stabilizers, solubilizers, vitamins, pigments and flavoring agents, have.

또한, 본 발명에 따른 화장료 조성물은 용액, 외용연고, 크림, 폼, 영양화장수, 유연화장수, 팩, 유연수, 유액, 메이크업베이스, 에센스, 비누, 액체세정료, 입욕제, 선 스크린크림, 선오일, 현탁액, 유탁액, 페이스트, 겔, 로션, 파우더, 비누, 계면활성제-함유 클렌징, 오일, 분말 파운데이션, 유탁액 파운데이션,왁스 파운데이션, 패치 및 스프레이로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 제형으로 제조할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In addition, the cosmetic composition according to the present invention can be used as a cosmetic composition in the form of a solution, an external ointment, a cream, a foam, a nutritional lotion, a softening water, a pack, It may be formulated into one or more formulations selected from the group consisting of suspensions, emulsions, pastes, gels, lotions, powders, soaps, surfactant-containing cleansing, oils, powder foundations, emulsion foundations, wax foundations, patches and sprays , But is not limited thereto.

또한, 본 발명의 화장료 조성물은 일반 피부 화장료에 배합되는 화장품학적으로 허용 가능한 담체를 1 종 이상 추가로 포함할 수 있으며, 통상의 성분으로 예를 들면 유분, 물, 계면활성제, 보습제, 저급 알콜, 증점제, 킬레이트제, 색소, 방부제, 향료 등을 적절히 배합할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.In addition, the cosmetic composition of the present invention may further comprise at least one cosmetically acceptable carrier to be incorporated in a general skin cosmetic composition, and examples thereof include oil, water, a surfactant, a moisturizer, A thickening agent, a chelating agent, a coloring matter, an antiseptic, a perfume, and the like may be appropriately compounded, but the present invention is not limited thereto.

본 발명의 화장료 조성물에 포함되는 화장품학적으로 허용 가능한 담체는 제형에 따라 다양하다.The cosmetically acceptable carrier to be contained in the cosmetic composition of the present invention varies depending on the formulations.

본 발명의 제형이 연고, 페이스트, 크림 또는 젤인 경우에는, 담체성분으로서 동물성 유, 식물성 유, 왁스, 파라핀, 전분, 트라칸트, 셀룰로오스 유도체, 폴리에틸렌글리콜, 실리콘, 벤토나이트, 실리카, 탈크, 산화아연 또는 이들의 혼합물이 이용될 수 있다.When the formulation of the present invention is an ointment, a paste, a cream or a gel, the carrier component may be an animal oil, a vegetable oil, a wax, a paraffin, a starch, a tracer, a cellulose derivative, polyethylene glycol, silicone, bentonite, silica, talc, zinc oxide Mixtures of these may be used.

본 발명의 제형이 파우더 또는 스프레이인 경우에는, 담체 성분으로서 락토스, 탈크, 실리카, 알루미늄 히드록사이드, 칼슘 실케이트, 폴리아미드 파우더 또는 이들의 혼합물이 이용될 수 있고, 특히 스프레이인 경우에는 추가적으로 클로로플루오로히드로카본, 프로판/부탄 또는 디메틸 에테르와 같은 추진제를 포함할 수 있다.When the formulation of the present invention is a powder or a spray, lactose, talc, silica, aluminum hydroxide, calcium silicate, polyamide powder or a mixture thereof may be used as the carrier component, Propellants such as fluorohydrocarbons, propane / butane or dimethyl ether.

발명의 제형이 용액 또는 유탁액인 경우에는, 담체 성분으로서 용매, 용해화제 또는 유탁화제가 이용되며, 예컨대 물, 에탄올, 이소프로판올, 에틸 카보네이트, 에틸 아세테이트, 벤질 알콜, 벤질 벤조에이트, 프로필렌글리콜, 1,3-부틸글리콜 오일이 이용될 수 있으며, 특히, 목화씨 오일, 땅콩 오일, 옥수수배종 오일, 올리브 오일, 피마자 오일 및 참깨 오일, 글리세롤 지방족 에스테르,폴리에틸렌 글리콜 또는 소르비탄의 지방산 에스테르가 이용될 수 있다.When the formulation of the invention is a solution or an emulsion, a solvent, a dissolving agent or an emulsifying agent is used as a carrier component, and examples thereof include water, ethanol, isopropanol, ethyl carbonate, ethyl acetate, benzyl alcohol, benzyl benzoate, , 3-butyl glycol oil may be used, and fatty acid esters of cottonseed oil, peanut oil, corn oil, olive oil, castor oil and sesame oil, glycerol aliphatic ester, polyethylene glycol or sorbitan may be used .

본 발명의 제형이 현탁액인 경우에는, 담체 성분으로서 물, 에탄올 또는 프로필렌글리콜과 같은 액상의 희석제, 에톡실화 이소스테아릴 알콜, 폴리옥시에틸렌 소르비톨 에스테르 및 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 같은 현탁제,미소결정성 셀룰로오스, 알루미늄 메타히드록시드, 벤토나이트, 아가 또는 트라칸 트 등이 이용될 수 있다.When the formulation of the present invention is a suspension, a carrier such as water, a liquid diluent such as ethanol or propylene glycol, a suspension such as ethoxylated isostearyl alcohol, polyoxyethylene sorbitol ester and polyoxyethylene sorbitan ester, Crystalline cellulose, aluminum metahydroxide, bentonite, agar or tracant, etc. may be used.

본 발명의 제형이 비누인 경우에는 담체 성분으로서 지방산의 알칼리 금속 염, 지방산 헤미에스테르 염, 지방산 단백질 히드롤리제이트, 이세티오네이트, 라놀린 유도체, 지방족 알콜, 식물성 유, 글리세롤, 당 등이 이용될 수 있다.When the formulation of the present invention is a soap, an alkali metal salt of a fatty acid, a fatty acid hemiester salt, a fatty acid protein hydrolizate, isethionate, a lanolin derivative, an aliphatic alcohol, a vegetable oil, glycerol, .

본 발명의 제형이 계면-활성제 함유 클렌징인 경우에는 담체 성분으로서 지방족 알코올 설페이트, 지방족 알코올 에테르 설페이트, 설포숙신산 모노에스테르, 이세티오네이트, 이미다졸리늄 유도체, 메틸타우레이트, 사르코시테이트, 지방산 아미드 에테르 설페이트, 알킬아미도베타인, 지방족 알코올, 지방산 글리세리드, 지방산 디에탄올아미드, 식물성 오일, 라놀린 유도체 또는 에톡실화 글리세롤 지방산 에스테르 등이 이용될 수 있다.When the formulation of the present invention is an interface-active agent-containing cleansing, the carrier component is selected from the group consisting of aliphatic alcohol sulfate, aliphatic alcohol ether sulfate, sulfosuccinic acid monoester, isethionate, imidazolinium derivative, methyltaurate, sarcosinate, Ether sulfates, alkylamidobetaines, aliphatic alcohols, fatty acid glycerides, fatty acid diethanolamides, vegetable oils, lanolin derivatives or ethoxylated glycerol fatty acid esters.

본 발명의 용어 “미백”은 멜라닌 등의 색소의 과다로 인하여 명도가 감소된 피부의 명도를 증가시키거나 또는 피부의 명도를 일정 수준으로 유지하는 방법, 상기 방법으로 형성된 명도가 증가된 피부들을 포괄하여 의미하는 것으로 구체적으로 피부 미백을 의미한다.The term " whitening " of the present invention refers to a method of increasing the brightness of skin with reduced brightness due to excessive pigment such as melanin or keeping the brightness of skin at a certain level, This means specifically skin whitening.

상기 멜라닌(melanin)은 피부, 머리카락, 눈동자 등 생물체에 널리 분포되어 있는 색소 성분으로 인체의 표피층의 멜라닌 세포 내의 멜라노좀(melanosome)이 합성되는데, 티로시나아제(tyrosinase)에 의해 티로신(tyrosine)을 시발 물질로 하여 DOPA(3,4-dihydroxy-phenylalanine) 또는 DOPA퀴논(dopaquinone)으로 변환되는 산화 및 중합 반응으로 멜라닌이 생합성 된다. 생합성된 멜라닌은 자외선과 같은 피부자극에 대해 저항력을 높여 주지만, 과도한 멜라닌의 합성을 기미, 주근깨, 검버섯과 같은 색소 침착을 일으키기 때문에 티로시나아제의 활성 측정은 피부 미백효과를 나타내는 하나의 중요한 지표로 받아들여지고 있다.The melanin is a pigment component widely distributed in organisms such as skin, hair, eyes and the like, melanosomes in the melanocytes of the skin of the human body are synthesized. Tyrosinase inhibits tyrosine Melanin is biosynthesized by oxidation and polymerization reactions which are converted to DOPA (3,4-dihydroxy-phenylalanine) or DOPA quinone (dopaquinone) as a starting material. Biosynthesized melanin increases resistance to skin irritation such as ultraviolet rays. However, since excessive melanin synthesis causes pigmentation such as spots, freckles, and black spots, tyrosinase activity measurement is an important indicator of skin whitening effect It is accepted.

본 발명의 일실시예에서 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율(w/v)에 따른 혼합시료의 미백 효과를 확인하고자, 티로시나아제 저해활성과 멜라닌 생성 저해 활성을 확인하였다.In one embodiment of the present invention, the whitening effect of the mixed sample according to the weight ratio (w / v) of the nematode extract, milt extract and glycosaminoglycan was examined to confirm tyrosinase inhibitory activity and melanin formation inhibitory activity Respectively.

티로시나아제 저해활성 측정 결과, 단일시료를 처리했을 때 보다 상승효능을 혼합시료를 확인하였으며, 중량비율(w/v)을 UPEF:ECE:GAGs와 같이 표기할 때, 티로시나아제 저해 활성의 상승 효능이 있는 2:6:2, 2:7:1, 3:5:2, 3:6:1, 4:3:3, 4:5:1, 7:2:1의 비율의 혼합시료를 흑색종 세포(B16F10)에 처리하여 멜라닌 생성 저해 효과를 측정하였으며, 모든 혼합시료에서 멜라닌 생성이 억제되는 것을 확인하였다. 그중 유의적 차이가 있는 중량비율 3:5:2, 3:6:1 및 4:5:1인 혼합시료를 제브라피쉬 모델에서 멜라닌 생성 저해활성을 확인하였고 그 결과, 4:5:1의 비율의 혼합시료에서 멜라닌 저해효능이 가장 우수함을 확인하였다. As a result of the measurement of tyrosinase inhibitory activity, a mixed sample showing ascorbic acid effect was confirmed when a single sample was treated. When the weight ratio (w / v) was expressed as UPEF: ECE: GAGs, the increase in tyrosinase inhibitory activity A mixed sample in the ratio of 2: 6: 2, 2: 7: 1, 3: 5: 2, 3: 6: 1, 4: 3: 3, 4: 5: 1, 7: 2: Melanogenesis inhibition was measured by treatment with melanoma cells (B16F10), and melanogenesis was inhibited in all the mixed samples. The melanogenesis inhibitory activity of zebrafish model was confirmed by mixing samples with weight ratios of 3: 5: 2, 3: 6: 1 and 4: 5: 1 with significant differences. As a result, a ratio of 4: 5: 1 Was found to be the most effective for inhibiting melanin.

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 혼합시료가 티로시나아제 활성을 저해시키고, 흑색종 세포 및 제브라피쉬 모델에서 멜라닌 생성을 감소시키는 것을 확인하여, 미백효능을 확인하였으며, 중량비율(w/v)에 따라 미백효능이 차이가 있음을 확인하였고, 그중 4:5:1의 중량비율에서 미백효능이 가장 우수함을 확인하였다.The whitening effect was confirmed by confirming that a mixed sample of the non-mitochondrial extract, phlegm extract and glycosaminoglycan inhibited tyrosinase activity and reduced melanin production in melanoma cells and zebrafish models. w / v), and it was confirmed that the whitening effect was the best in a weight ratio of 4: 5: 1.

본 발명의 용어 “주름개선”은 콜라겐 또는 엘라스틴을 분해하는 효소를 저해하거나, 콜라겐의 합성을 촉진시켜 주름을 개선시키는 것을 의미한다. 상기 콜라겐 및 엘라스틴은 피부 진피층을 구성하여, 상기 콜라겐 및 엘라스틴의 감소 또는 변형이 주름 생성과 피부탄력 저하에 관여하는 것으로 알려져 있다.The term " wrinkle improvement " of the present invention means to inhibit collagen or elastin degrading enzyme, or to promote the synthesis of collagen to improve wrinkles. The collagen and elastin constitute the dermal layer of the skin, and the reduction or deformation of collagen and elastin is known to be involved in wrinkle formation and skin elasticity reduction.

본 발명의 일실시예에서 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율(w/v)에 따른 혼합시료의 주름개선 효과를 확인하고자, 콜라게나아제 및 엘라스타아제의 저해 활성을 확인하였다. In order to confirm the wrinkle-improving effect of the mixed sample according to the weight ratio (w / v) of the nematode extract, moxibustion extract and glycosaminoglycan in an embodiment of the present invention, the inhibitory activity of collagenase and elastase was evaluated Respectively.

콜라게나아제 및 엘라스타아제 저해활성 측정결과, 단일시료보다 상승효능 가지는 혼합시료들을 확인하였으며, 상승효능을 가지는 혼합시료를 처리한 인간 섬유아세포에서 프로 콜라겐(pro-collagen)의 함량을 측정한 결과 중량비율이 3:5:2, 3:6:1, 4:5:1, 7:2:1인 혼합시료 처리한 세포에서 프로 콜라겐의 함량이 유의하게 증가하는 것을 확인하였다. As a result of measurement of collagenase and elastase inhibiting activity, mixed samples having elevated activity than single samples were identified, and the content of pro-collagen was measured in human fibroblasts treated with a synergistic mixture sample It was confirmed that the content of procollagen was significantly increased in the mixed sample of cells in the weight ratio of 3: 5: 2, 3: 6: 1, 4: 5: 1, and 7: 2:

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 혼합시료가 콜라게나아제 및 엘라스타아제를 저해시키고, 프로 콜라겐을 증가시키는 것을 확인하여, 주름개선 효능을 확인하였으며, 중량비율에 따라 주름개선의 효능의 차이가 있음을 확인하였고, 그 중 중량비율이 3:5:2, 3:6:1, 4:5:1, 7:2:1인 혼합시료가 주름개선 효과가 우수함을 확인하였다.It was confirmed that a mixed sample of the nonylpiperidine extract, menthaea extract and glycosaminoglycan inhibited collagenase and elastase and increased the amount of procollagen, confirming the effect of improving wrinkles. It was confirmed that there was a difference in efficacy. Among them, a mixed sample having weight ratios of 3: 5: 2, 3: 6: 1, 4: 5: 1, and 7: 2: 1 showed excellent wrinkle improving effect.

본 발명의 용어, "항산화"는 산화를 억제하는 작용을 의미하는 것으로, 인체는 산화촉진물질(prooxidant)과 산화억제물질(antioxidant)이 균형을 이루고 있으나 여러 가지 요인들에 의하여 이런 균형상태가 불균형을 이루게 되고 산화촉진 쪽으로 기울게 되면, 산화적 스트레스(oxidative stress)가 유발되어 잠재적인 세포손상 및 병리적 질환을 일으키게 된다. 이러한 산화적 스트레스의 직접적 원인이 되는 활성 산소종(reactive oxygen species, ROS)은 불안정하고 반응성이 높아 여러 생체물질과 쉽게 반응하고, 체내 고분자들을 공격하여 세포와 조직에 비가역적인 손상을 일으키거나 돌연변이, 세포독성 및 발암 등을 초래하게 된다. 상기와 같은 활성산소는 체내에서 세포를 산화시켜 파괴시키며, 그에 따라 각종 질환에 노출되게 된다. 또한 상기 항산화는 세포 내 대사 또는 자외선의 영향으로 인한 산화적 스트레스에 따라 반응성이 높은 자유 라디칼 또는 활성산소종에 의한 세포산화를 억제하는 기능을 의미하여, 자유 라디칼 또는 활성 산소종을 제거하여 이로 인한 세포의 손상이 감소되는 것을 포함한다.The term "antioxidant" of the present invention means an antioxidant action. The human body has a balance of prooxidant and antioxidant. However, due to various factors, And leaning toward oxidation promotes oxidative stress leading to potential cellular damage and pathological disease. Reactive oxygen species (ROS), which is a direct cause of oxidative stress, is unstable and highly reactive. It reacts easily with various bio-materials, attacks irreversible damage to cells and tissues, Cytotoxicity and carcinogenesis. Such active oxygen oxidizes and destroys cells in the body, thereby exposing them to various diseases. In addition, the antioxidant refers to a function of inhibiting cell oxidation by highly reactive free radicals or reactive oxygen species depending on the oxidative stress due to intracellular metabolism or ultraviolet rays, thereby eliminating free radicals or reactive oxygen species Lt; RTI ID = 0.0 > damage. ≪ / RTI >

본 발명의 일실시예에서 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율에 따른 혼합시료의 항산화 효과를 확인하고자, 제브라피쉬 모델에 과산화수소를 처리하고 혼합비율에 따른 생존률과 활성산소 억제 활성을 확인하였다. 중량비율이 3:5:2, 4:5:1인 혼합시료에서 농도 의존적으로 생존율이 증가하는 것을 확인하였으며, 중량비율이 4:5:1인 혼합시료를 처리하였을 때 과산화수소로 인해 증가한 활성산소가 감소하는 것을 확인하였다. In one embodiment of the present invention, in order to examine the antioxidative effect of the mixed sample according to the weight ratio of the nonylphenol extract, phytonutrient extract and glycosaminoglycan, the zebrafish model was treated with hydrogen peroxide and the survival rate and active oxygen inhibition Activity was confirmed. The survival rate was increased in a concentration ratio of 3: 5: 2 and 4: 5: 1 in a concentration-dependent manner. When a mixed sample having a weight ratio of 4: 5: 1 was treated with hydrogen peroxide, .

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 특정 비율의 혼합시료가 과산화수소 처리한 제브라피쉬의 생존율을 증가시키고, 활성산소를 감소시키는 것을 확인하여, 항산화 효과가 있음을 확인하였고, 중량비율이 4:5:1인 혼합시료가 항산화 효과가 우수함을 확인하였다.It was confirmed that the mixed sample of specific fractions of the non-mitochondrial extract, manganese extract and glycosaminoglycan increased the survival rate and decreased the active oxygen of the zephyrate treated with hydrogen peroxide, 4: 5: 1 mixed sample showed excellent antioxidative effect.

본 발명의 용어 “자외선에 대한 보호”는 자외선에 의해 세포에 유발된 스트레스에 대해 세포를 보호하는 것으로, 상기 자외선은 자외선 B일 수 있다.The term " protection against ultraviolet rays " of the present invention is intended to protect cells against stress induced by ultraviolet rays. Ultraviolet rays may be ultraviolet rays B.

본 발명의 일실시예에서 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율에 따른 혼합시료의 자외선 B의 보호효과를 확인하고자 제브라피쉬 모델에서 자외선 B로 조사 후 생존율과 자외선 B로 발생한 일산화질소(NO)에 대한 소거 효과를 확인하였다.In one embodiment of the present invention, in order to examine the protective effect of the ultraviolet B of the mixed sample according to the weight ratio of the nematode extract, the moxibustion extract and the glycosaminoglycan, the survival rate after irradiation with the ultraviolet B in the zebrafish model, The elimination effect on nitrogen (NO) was confirmed.

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율이 3:5:2, 3:6:1, 4:5:1인 혼합시료를 처리한 제브라피쉬 모델에서 생존율이 증가함을 확인하였으며, 생존율이 증가한 혼합시료 처리한 제브라피쉬 모델에서 일산화질소 소거활성을 측정한 결과, 중량비율 4:5:1인 혼합시료를 처리한 제브라피쉬에서 일산화질소가 감소하는 것을 확인하였다. It was confirmed that the survival rate was increased in the zebrafish model treated with the mixed sample having weight ratios of 3: 5: 2, 3: 6: 1, and 4: 5: 1 by weight of the nematode extract, menthol extract and glycosaminoglycan , The nitrogen monoxide scavenging activity was measured in a mixed sample treated zebrafish model with increased survival rate. As a result, it was confirmed that nitrogen monoxide was reduced in zebrafish treated with a mixed sample having a weight ratio of 4: 5: 1.

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 혼합시료가 자외선 처리한 제브라피쉬의 생존율을 증가시키고, 일산화질소를 감소시킴을 확인하여, 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸이 자외선 보호효과를 가짐을 확인하였으며, 중량비율이 4:5:1인 혼합시료가 자외선보호 효능이 우수함을 확인하였다.It was confirmed that the mixture of the non-mitochondrial extract, mesophyll extract and glycosaminoglycan increased the survival rate of the zebrafish treated with ultraviolet rays and decreased the nitrogen monoxide. Thus, the nematode extract, the moth extract and the glycosaminoglycan were irradiated with ultraviolet And it was confirmed that a mixed sample having a weight ratio of 4: 5: 1 has excellent UV protection effect.

본 발명의 용어 “피부재생”은 피부세포의 증식을 향상시키거나, 손상된 피부의 회복을 촉진하는 것을 의미한다.The term " skin regeneration " of the present invention means improving the proliferation of skin cells or promoting the recovery of damaged skin.

본 발명의 일실시예에서 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 중량비율에 따른 혼합시료의 피부재생 효능을 확인하고자, 피부섬유아세포(NIH3T3)에서 세포증식능(cell proliferation)과 세포이동(cell migration)을 확인하고, 제브라피시 모델에서 상처를 낸 뒤 재생되는 것을 확인하여 피부재생 효과를 확인하였다.In an embodiment of the present invention, in order to examine the skin regeneration efficiency of the mixed sample according to the weight ratio of the nematode extract, the moxibustion extract and the glycosaminoglycan, cell proliferation and cell migration in the skin fibroblast (NIH3T3) cell migration, and confirmed the regeneration after wounding in the zebrafish model.

혼합시료의 세포증식능 측정결과 글루코사미노글리칸의 비율이 증가할수록 세포증식능이 증가함을 확인하였으며, 단일시료를 처리했을 때 보다 혼합시료에서 상승효과를 가지는 시료들을 확인하였다. 상승효과를 가지는 시료 중 7개를 선별하여 표피생장인자를 양성 대조군으로 세포 증식능을 확인한 결과 중량비율 3:5:2, 3:6:1, 4:3:3, 4:5:1, 7:2:1인 혼합시료에서 유의적으로 세포증식이 향상됨을 확인하였고, 특히 4:5:1인 혼합시료에서 세포증식이 가장 우수함을 확인하였으며, 증식이 향상된 시료 중 미백 및 주름개선 효능이 좋은 중량비율 3:5:2, 3:6:1, 4:5:1인 혼합시료를 제브라피쉬 모델에서 상처재생(피부재생)을 확인한 결과, 아무것도 처리하지 않은 대조군을 제외한 모든 그룹에서 시료처리 2일 뒤에 상처가 회복되는 것을 확인하였다. 또한 중량비율 4:5:1인 혼합시료에서 세포이동을 확인한 결과 대조군에 비해 세포이동이 증가하는 것을 확인하였다. As a result of measuring the cell proliferation ability of the mixed sample, it was confirmed that the cell proliferating ability was increased as the ratio of glucosaminoglycan was increased, and the samples having synergistic effect were confirmed in the mixed sample than in the single sample treatment. Seven of the samples with synergistic effect were selected and their cell proliferative capacity was checked with the epidermal growth factor as a positive control. As a result, the weight ratio of 3: 5: 2, 3: 6: 1, 4: 3: 3, 4: 5: 1, 7 : 2: 1, the cell proliferation was significantly improved. Especially, in the mixed sample of 4: 5: 1, it was confirmed that the cell proliferation was the best, and the whitening and wrinkle improving effect (Skin regeneration) in the zebrafish model was confirmed as a result of mixing samples in the weight ratios of 3: 5: 2, 3: 6: 1 and 4: 5: 1 in all the groups except the control group The wound was recovered after work. In addition, cell migration was observed in a mixed sample having a weight ratio of 4: 5: 1, indicating that the cell migration was increased as compared with the control group.

상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 혼합시료가 피부 섬유아세포의 증식을 향상시키고 제브라피쉬 모델의 상처재생(피부재생)을 촉진하는 것을 확인하여, 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸이 피부재생 효능을 가짐을 확인하였으며, 특히 중량비율이 4:5:1인 혼합시료가 피부재생 효과가 우수함을 확인하였다. It was confirmed that the mixture of the non-wild type extract, the gentian extract and the glycosaminoglycan enhanced the proliferation of the skin fibroblast and promoted wound regeneration (skin regeneration) of the zebrafish model. Thus, the non-wild type extract, Minoglycan showed skin regeneration efficacy. In particular, it was confirmed that a mixed sample having a weight ratio of 4: 5: 1 has excellent skin regeneration effect.

본 발명의 일실시예에서, 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 효과 및 피부재생 효과를 비교하여 혼합시료에서의 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 효과 및 피부재생 등의 항노화 효과를 확인한 바, 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 항노화 화장료 조성물로 이용할 수 있다.In one embodiment of the present invention, whitening, wrinkle improvement, antioxidation, antioxidation, anti-oxidative effect and skin regeneration effect of whitening, wrinkle reduction, antioxidation, As a result of confirming the anti-aging effect such as protecting effect against ultraviolet rays and skin regeneration, the non-ginseng extract, ginseng extract and glycosaminoglycan can be used as an anti-aging cosmetic composition.

상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)이 2~7:3~7:1~3의 중량비(w/v)이거나 또는, 미역귀 추출물이 1을 기준으로 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)이 1:0.1~4:0.1~1의 중량비(w/v)로 혼합된 시료에서 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 효과 및 피부재생의 상승효과를 확인하였으며, 4:5:1의 중량비(w/v)로 혼합된 시료에서 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 효과 및 피부재생 효과가 가장 우수하였다. 따라서 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)은 1:0.1~4:0.1~1의 중량비(w/v)로 혼합될 수 있으며, 구체적으로 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸은 4:5:1의 중량비(w/v)로 혼합될 것일 수 있다.(W / v) of 2 to 7: 3 to 7: 1 to 3, or the ratio of the unmodified extract (UPEF), the bitter extract (ECE) and the glycosaminoglycan Wrinkles, wrinkles, antioxidant activity, and antioxidative activity were observed in a sample mixed with a weight ratio (w / v) of 1: 0.1 to 4: 0.1 to 1 of the above Nameless Extract (UPEF), Phytophthora exudate (ECE), and Glycosaminoglycan The effect of protection against ultraviolet rays and the synergy of skin regeneration were confirmed, and whitening, wrinkle reduction, antioxidation, ultraviolet protection effect and skin regeneration effect were observed in a sample mixed at a weight ratio (w / v) of 4: 5: 1 . Therefore, the above-mentioned non-mitotic extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) can be mixed at a weight ratio (w / v) of 1: 0.1 to 4: 0.1 to 1, , Ganoderma lucidum extract and glycosaminoglycan may be mixed at a weight ratio (w / v) of 4: 5: 1.

또한, 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)의 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 보호 및 피부재생의 상승효과를 확인한 바, 상기 화장료 조성물은 피부 미백, 주름개선, 항산화, 자외선에 대한 피부 보호 또는 피부 재생용으로 이용할 수 있다.Further, as a result of confirming the synergistic effects of whitening, wrinkle reduction, antioxidation, protection against ultraviolet rays, and skin regeneration of the above-mentioned non-ginseng extract (UPEF), ginseng extract (ECE) and glycosaminoglycans (GAGs) It can be used for whitening, wrinkle improvement, antioxidation, skin protection against ultraviolet rays, or skin regeneration.

본 발명에 의한 화장료 조성물은 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)을 조성물 총 중량에 대하여 0.01~20 중량%로 함유할 수 있다.The cosmetic composition according to the present invention may contain, in an amount of 0.01 to 20% by weight based on the total weight of the composition, the apical extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs).

본 발명의 다른 양태로서 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)을 유효성분으로 포함하는, 항노화 의약외품 조성물을 제공한다.As another aspect of the present invention, there is provided an anti-aging quasi-product composition comprising, as an active ingredient, a ginseng extract (UPEF), a ginger extract (ECE) and a glycosaminoglycan (GAGs).

본 발명에서 상기 의약외품 조성물은 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생용인 것인, 의약외품 조성물일 수도 있다. In the present invention, the quasi-drug composition may be a quasi-drug composition for skin whitening, wrinkle reduction, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration.

상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs), 항노화, 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생에 대해서는 상기에서 설명한 바와 같다.As described above, the above-mentioned Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE), glycosaminoglycan (GAGs), anti-aging, skin whitening, wrinkle improvement, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration are as described above.

본 발명에서 사용되는 용어 "의약외품"은 사람이나 동물의 질병을 진단, 치료, 개선, 경감, 처치 또는 예방할 목적으로 사용되는 물품들 중 의약품보다 작용이 경미한 물품들을 의미하는 것으로, 예를 들어 약사법에 따르면 의약외품이란 의약품의 용도로 사용되는 물품을 제외한 것으로, 사람ㆍ동물의 질병 치료나 예방에 쓰이는 섬유ㆍ고무 제품, 인체에 대한 작용이 경미하거나 직접 작용하지 않으며, 기구 또는 기계가 아닌 것과 이와 유사한 것, 감염병을 막기 위한 살균ㆍ살충제 등이 이에 포함된다.The term "quasi-drug product" used in the present invention means products that are less active than drugs, among the products used for diagnosing, treating, improving, alleviating, treating or preventing diseases of human or animal. For example, The quasi-quasi-drug means a product that is used for the treatment of diseases of humans and animals, except for the products used for medicines, which are slightly or not directly acting on the human body, , And sterilization and insecticides to prevent infectious diseases.

본 발명의 의약외품 조성물의 종류나 제형은 특별히 제한되지 아니하나, 바람직하게는 소독 청결제, 샤워폼, 가그린, 물티슈, 세제 비누, 핸드 워시, 가습기 충진제, 마스크, 연고제 또는 필터 충진제 등일 수 있다.The type and formulations of the quasi-drug composition of the present invention are not particularly limited, but may be disinfectant cleaner, shower foam, gagrin, wet tissue, detergent soap, hand wash, humidifier filler, mask, ointment or filter filler.

본 발명의 조성물을 항노화 용도로 의약외품에 포함시킬 경우, 상기 조성물을 그대로 포함하여 사용하거나 다른 의약외품 성분과 함께 사용할 수 있고, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용할 수 있다. 유효 성분의 혼합량은 사용 목적에 따라 적합하게 결정할 수 있으며, 본 발명에 의한 의약외품 조성물은 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)을 조성물 총 중량에 대하여 0.01~20 중량%로 함유할 수 있다.When the composition of the present invention is contained in a quasi-drug for anti-aging purposes, the composition may be used as it is or may be used together with other quasi-drugs, and may be suitably used according to a conventional method. The amount of the active ingredient in the quasi-drug composition may be suitably determined according to the purpose of use. The quasi-drug extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) By weight to 20% by weight.

본 발명의 다른 양태로서, 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)을 유효성분으로 포함하는, 항노화 피부외용제 조성물을 제공한다.As another aspect of the present invention, there is provided an anti-aging dermatologic external composition comprising an ungulate extract (UPEF), a gangue extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) as an active ingredient.

본 발명에서 상기 피부외용제 조성물은 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선에 대한 피부 보호 또는 피부 재생용인 것인, 피부외용제 조성물일 수도 있다.In the present invention, the composition for external application for skin may be a skin external composition for skin whitening, wrinkle reduction, antioxidation, skin protection against ultraviolet rays, or skin regeneration.

상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs), 항노화, 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생에 대해서는 상기에서 설명한 바와 같다.As described above, the above-mentioned Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE), glycosaminoglycan (GAGs), anti-aging, skin whitening, wrinkle improvement, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration are as described above.

본 발명에 의한 피부외용제 조성물은, 예를 들어, 연고, 로션, 가용화상, 현탁액, 에멀젼, 크림, 젤, 스프레이, 파프제, 경고제, 패치제 또는 물파스 등을 들 수 있지만, 이들에만 한정되지 않고, 당업계에 주지된 어떠한 기제에도 배합될 수 있다. 본 발명에 의한 피부 외용제 조성물은 상기 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)을 조성물 총 중량에 대하여 0.01~20 중량%로 함유할 수 있다.The composition for external application for skin according to the present invention includes, for example, ointments, lotions, soluble images, suspensions, emulsions, creams, gels, sprays, papermaking agents, And may be incorporated into any of the bases known in the art. The composition for external application for skin according to the present invention may contain 0.01 to 20% by weight, based on the total weight of the composition, of the prepuce extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs).

이상에서 설명한 바와 같이, 본 발명에 따른 미역귀(Undiaria pinnatifida) 추출물, 감태(Ecklonia cava)의 추출물 및 글리코사미노클리칸(Glycosaminoglycans, GAGs)을 함유하는 화장료 조성물은 항산화, 미백, 주름개선, 자외선에 대한 보호 효과 또는 피부재생 효과가 있다.As described above, the cosmetic composition containing Undiaria pinnatifida extract, extract of Ecklonia cava and glycosaminoglycans (GAGs) according to the present invention can be used for antioxidant, whitening, wrinkle improvement, There is protective effect or skin regeneration effect.

도 1은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)단일시료를 각 25, 50, 100㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 티로시나아제 저해 활성을 측정한 것이다. 대조군으로 알부틴을 350μM을 사용하였다.
도 2는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50, 100㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 멜라닌 생성저해 활성을 측정한 것이다. 대조군으로 알부틴을 350μM을 사용하였다(좌측부터 각 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE),글리코사미노글리칸(GAGs)).
도 3은 제브라피쉬 배아에 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 생존율을 측정한 것이다.
도 4는 제브라피쉬 모델에서 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 미백 활성을 측정한 것이다.
도 5는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 50㎍/㎖ 농도 처리한 후 콜라게나아제 저해 및 엘라스타아제 저해 활성을 측정한 것이다.
도 6은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 섬유아세포 증식능을 측정한 것이다.
도 7은 제브라피쉬 모델에서 상처재생(피부재생) 실험 모델을 도식화 한 것이다.
도 8은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 한 제브라피쉬 모델에서 상처재생(피부재생) 효능을 확인한 것이다
도 9는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 혼합시료의 티로시나아제 저해 활성을 측정한 것이다.
도 10은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 중 선택된 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 멜라닌 생성저해 활성을 측정한 것이다.
도 11은 제브라피쉬 배아에 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 352, 361, 451을 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 생존율을 측정한 것이다.
도 12는 제브라피쉬 배아에 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 352, 361, 451을 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 미백 활성을 측정한 것이다.
도 13은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 혼합시료의 콜라게나아제 저해 활성을 측정한 것이다.
도 14는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 혼합시료의 엘라스타아제 저해 활성을 측정한 것이다.
도 15는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 중 선택된 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 콜라게나아제 생성저해 활성을 측정한 것이다.
도 16은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 중 선택된 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 엘라스타아제 생성저해 활성을 측정한 것이다.
도 17은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 중 선택된 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 프로 콜라겐 합성 촉진 활성을 측정한 것이다.
도 18은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 혼합시료의 섬유아세포 증식능을 측정한 것이다.
도 19는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 중 선택된 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 섬유아세포 증식능을 측정한 것이다.
도 20은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 352, 361, 451의 제브라피쉬 모델에서 상처, 피부 재생 효능을 확인한 것이다.
도 21은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 451의 세포이동(cell migration) 효능을 측정한 것이다.
도 22는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 451의 세포재생 메커니즘을 확인한 것이다.
도 23은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 352, 361, 451의 제브라피쉬의 생존율을 확인한 것이다(과산화수소 5mM 처리시).
도 24는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 352, 361, 451의 활성산소 소거활성을 측정한 것이다(과산화수소 5mM 처리시).
도 25는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료 352, 361, 451의 제브라피쉬 생존율을 확인한 것이다(UV 50mJ/㎠ 조사).
도 26은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)혼합시료의 352, 361, 451의 활성산소(ROS) 소거활성을 측정한 것이다(UV 50mJ/㎠조사).
도 27은 미역귀 추출물(UPEF)의 제조방법이다.
FIG. 1 is a graph showing the activity of tyrosinase inhibitory activity after treatment of single samples of Japanese apricot extract (UPEF), ginseng extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) at 25, 50 and 100 μg / As a control group, 350 μM arbutin was used.
FIG. 2 is a graph showing the activity of inhibiting the production of melanin by treating single samples of Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) at 25, 50 and 100 μg / As a control, arbutin (350 μM) was used (UPE, APE, GAGS from left to right).
FIG. 3 is a graph showing the survival rates of zebrafish embryos treated with single 25 μg / ml concentrations of a single sample of Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs).
FIG. 4 is a graph showing the whitening activity after treatment of single samples of Japanese apricot extract (UPEF), gentle extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) at 25 and 50 μg / ml concentrations in a zebrafish model.
FIG. 5 is a graph showing the results of collagenase inhibition and elastase inhibition activity after treatment with a single sample of Umbelliferae Extract (UPEF), Gingko Extract (ECE) and Glycosaminoglycan (GAGs) at a concentration of 50 μg / ml.
FIG. 6 is a graph showing the fibroblast proliferative activity after treatment of single samples of Umbelliferae extract (UPEF), menthol extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) at a concentration of 25 and 50 μg / ml, respectively.
7 is a schematic representation of an experimental model of wound regeneration (skin regeneration) in a zebra fish model.
8 is a graph showing the effect of wound regeneration (skin regeneration) on a single zebrafish model treated with a single sample of a non-digested extract (UPEF), a gangrene extract (ECE) and a glycosaminoglycan (GAGs) I checked
FIG. 9 is a graph showing the tyrosinase inhibitory activity of the mixed sample according to the mixing ratio of the unmodified extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs).
10 shows the melanogenesis inhibitory activities of seven samples selected from 262, 271, 352, 361, 433, 451 and 721 selected from the mixed samples of the unmodified extract (UPEF), menthol extract (ECE) and glycosaminoglycan Respectively.
FIG. 11 shows the survival rates of zebrafish embryos treated with 25, 50, and 50 μg / ml of each of 352, 361, and 451 of a mixture of the unmodified extract (UPEF), the menthol extract (ECE), and the glycosaminoglycan Respectively.
FIG. 12 shows the result of treating the zebrafish embryo with UPE, UPE, ECE, and GGS mixed samples 352, 361, and 451 at a concentration of 25 and 50 μg / ml, respectively, Respectively.
FIG. 13 is a graph showing a collagenase inhibitory activity of a mixed sample according to the mixing ratio of a supernatant extract (UPEF), a gentian extract (ECE), and a glycosaminoglycan (GAGs).
FIG. 14 is a graph showing the elastase inhibitory activity of a mixed sample according to the mixing ratio of a sumum extract (UPEF), a ginger extract (ECE), and a glycosaminoglycan (GAGs).
FIG. 15 shows the results of collagenase production of 7 samples selected from 262, 271, 352, 361, 433, 451, and 721 selected from among the mixed samples of Japanese apricot extract (UPEF), ginseng extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) Inhibitory activity.
FIG. 16 shows the results of ELASA production of 7 samples selected from 262, 271, 352, 361, 433, 451, and 721 selected from among the mixed samples of the nematode extract (UPEF), the ginger extract (ECE), and the glycosaminoglycan (GAGs) Inhibitory activity.
17 shows the results of promoting the synthesis of procollagen from 7 samples selected from 262, 271, 352, 361, 433, 451, and 721 selected from among the mixed samples of the umami extract (UPEF), the ginger extract (ECE), and the glycosaminoglycan Activity.
FIG. 18 is a graph showing the fibroblast proliferative capacity of a mixed sample according to the mixing ratio of the supernatant extract (UPEF), the ginger extract (ECE), and the glycosaminoglycan (GAGs).
19 shows the fibroblast proliferative activity of seven samples selected from 262, 271, 352, 361, 433, 451, and 721 selected from the group consisting of the sumate extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs) Respectively.
FIG. 20 shows the scratch and skin regeneration efficacy in the zebrafish model of the mixture of the supernatant extract (UPEF), the menthol extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs) mixed samples 352, 361 and 451.
FIG. 21 shows the cell migration effect of 451 of a mixture of a supernatant extract (UPEF), a phlegm extract (ECE), and a glycosaminoglycan (GAGs) sample.
FIG. 22 shows the cell regeneration mechanism of the sample 451 mixed with the unmodified extract (UPEF), the moxibustion extract (ECE), and the glycosaminoglycan (GAGs).
FIG. 23 shows the survival rate of zebrafish of the mixed samples 352, 361 and 451 of the unmodified extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs) (when 5 mM of hydrogen peroxide was treated).
FIG. 24 is a graph showing the activity of the active oxygen scavenging activity of a mixture of the supernatant extract (UPEF), menthol extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) 352, 361 and 451 (when 5 mM of hydrogen peroxide was treated).
FIG. 25 shows the zebrafish survival rate (UV 50 mJ / cm 2 irradiation) of a mixture of the supernatant extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs) mixed samples 352, 361 and 451.
FIG. 26 is a graph showing the activity (ROS) scavenging activity (UV 50 mJ / cm 2) of 352, 361 and 451 of a mixture of a supernatant extract (UPEF), a sensory extract (ECE) and a glycosaminoglycan (GAGs) .
Fig. 27 shows a method for producing an unsalted extract (UPEF).

이하, 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있도록 본 발명의 실시예에 대하여 첨부한 도면을 참고로 하여 상세히 설명한다. 그러나 본 발명은 여러 가지 상이한 형태로 구현될 수 있으며 여기에서 설명하는 실시예에 한정되지 않는다.Hereinafter, embodiments of the present invention will be described in detail with reference to the accompanying drawings so that those skilled in the art can easily carry out the present invention. The present invention may, however, be embodied in many different forms and should not be construed as limited to the embodiments set forth herein.

A. 실험방법A. Experimental Method

<실시예 1> In vitro 미백 효능 평가<Example 1> In vitro whitening efficacy evaluation

1) 티로시나아제(tyrosinase) 저해 활성 측정1) Measurement of inhibitory activity of tyrosinase

티로시나아제 저해 검정법은 존스 등에 의해 보고된 방법을 사용하였고(Jones et al. (2002) Pigment. Cell Res. 15:335), 티로시나아제의 기질인 L-Dopa의 도파크롬(dopachrome)으로의 전환은 450㎚에서 흡수 모니터링에 의해 수행하였다.The tyrosinase inhibition assay uses the method reported by Jones et al. (2002) Pigment. Cell Res. 15: 335), and to tyrosinase substrate L-Dopa dopachrome Conversion was carried out by absorption monitoring at 450 nm.

티로시나아제는 200U/㎖의 pH 6.8(검정 완충액), 50mM 포타슘 포스페이트 완충액으로 제조하였다. 기질인 L-DOPA의 2mM 모액(working solution)은 각 검정법을 위한 검정 완충액으로 제조, 시료들은 10%의 다이메틸 설폭사이드(dimethyl sulfoxide, DMSO) 0.5㎖에 용해하고 5㎖의 검정 완충액으로 희석하였다. 반응 혼합물은 0.050㎖의 2mM L-DOPA, 0.050㎖ 200U/㎖ 머쉬룸 티로시나아제 및 0.050㎖ 저해제로 이루어진다. 반응 부피는 200μL의 검정 완충액으로 조정하였고, 검정은 96 웰 플레이트(well plate)에서 수행하였다. 테스트 시료에 의한 티로시나아제 저해 퍼센트는 대조군에 대한 시료의 흡광도의 비교에 의해 측정하였다.Tyrosinase was prepared with 200 U / ml of pH 6.8 (assay buffer), 50 mM potassium phosphate buffer. A 2 mM working solution of substrate L-DOPA was prepared with assay buffer for each assay, samples were dissolved in 0.5 ml of 10% dimethyl sulfoxide (DMSO) and diluted with 5 ml of assay buffer . The reaction mixture consisted of 0.050 ml of 2 mM L-DOPA, 0.050 ml of 200 U / ml of mushroom tyrosinase and 0.050 ml of inhibitor. The reaction volume was adjusted with 200 [mu] L of assay buffer and assay was performed in a 96 well plate. The percentage of tyrosinase inhibition by the test sample was determined by comparing the absorbance of the sample with respect to the control.

(음성 대조군 흡광도 - 시료 흡광도) / 음성 대조군 흡광도 X 100(Negative control absorbance - sample absorbance) / negative control absorbance X 100

2) 멜라닌 생성 저해 활성2) Melanin formation inhibitory activity

멜라닌 생성의 저해는 알파-멜라노사이트 자극 호르몬(α-melanocyte stimulation hormone, α-MSH) 유도하에 측정되었다. 흑색종 세포주(B16F10)가 완전히 차게(confluency) 자란 후 well 당 40,000 세포로 분주하고, 세포가 자랄 수 있도록 5% 이산화탄소(CO2)를 포함한 습한 환경의 37℃에서 하룻밤 동안 인큐베이션(incubation) 하였다. 다음날 저해제를 50nM 농도로 세포에 첨가하고 시료를 처리한 후 총 4일간 배양하였다. 색깔의 발색은 매 아침마다 육안으로 관찰하며, 색깔의 발색 후에, 200μL의 세포 상층액을 각 웰(well)로부터 제거하고 흡광도를 450㎚에서 측정하였다. Inhibition of melanin production was measured under the induction of α-melanocyte stimulating hormone (α-MSH). Melanoma cell line (B16F10) is fully chilled (confluency) and incubated (incubation) overnight at 37 ℃ in a humid environment containing 5% carbon dioxide (CO 2) divided by 40,000 per well cells, so the cells can grow and then grown. The next day, the inhibitor was added to the cells at a concentration of 50 nM, treated with the sample, and cultured for a total of 4 days. Color development was observed with the naked eye every morning. After color development, 200 μL of cell supernatant was removed from each well and absorbance was measured at 450 nm.

<실시예 2> In vitro 주름개선 효능 평가&Lt; Example 2 > Evaluation of efficacy in wrinkle in vitro

1) 콜라게나아제 저해 활성 측정1) Measurement of collagenase inhibitory activity

피부 노화 억제 효과를 확인하기 위하여 콜라게나아제 저해활성 측정은 아래와 같이 측정하였다. 0.1M Tris-HCI buffer(pH 7.5)에 4mM 염화칼슘(CaCl2)를 가하여, 4-phenyl azobenzy loxycarbonyl-Pro-Leu-Gly-Pro-Arg (0.3㎎/㎖)를 녹인 기질액 0.25㎖ 및 시료용액 0.1㎖의 혼합액에 0.2mg/㎖ 농도의 콜라게나아제 0.15㎖를 첨가하여 실온에서 20분간 방치한 후 6% 시트르산(citric acid) 0.5㎖를 넣어 반응을 정지시킨 후, 에틸아세테이트(ethylacetate) 1.5㎖을 첨가하여 상등액을 320㎚에서 흡광도를 측정하였다. 콜라게나아제 저해활성은 시료용액의 첨가구와 무첨가구의 흡광도 감소율로 나타냈다.In order to confirm the skin aging inhibitory effect, the collagenase inhibitory activity was measured as follows. 0.25 ml of a substrate solution obtained by adding 4 mM calcium chloride (CaCl 2 ) to 0.1 M Tris-HCI buffer (pH 7.5) and dissolving 4-phenyl azobenzyl loxycarbonyl-Pro-Leu-Gly-Pro-Arg (0.3 mg / 0.15 ml of collagenase at a concentration of 0.2 mg / ml was added to the mixed solution, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 20 minutes. Then, 0.5 ml of 6% citric acid was added to quench the reaction and 1.5 ml of ethylacetate Was added and the supernatant was measured for absorbance at 320 nm. The collagenase inhibitory activity was shown by the absorbance reduction ratio of the sample solution and the non-additive solution.

2) 엘라스타아제(elastase) 저해 활성 측정2) Measurement of elastase inhibitory activity

피부 주름 개선효과를 확인하기 위하여 기질로서 N-succinyl-(L-Ala)3-p-nitroanilide를 사용하여 37℃에서 30분간 p-nitroanilide의 생성량을 측정함으로서 돼지의 췌장 엘라스타아제(elastase) 저해 활성을 조사하였다. 각 시험용액을 일정 농도가 되도록 조제하여 0.1㎖ 씩 시험관에 취하고 50mM Tris-HCl buffer(pH 8.6)에 녹인 엘라스타아제(elastase) 용액(Type I: From Porcine Pancreas 유래, 0.6 units/㎖) 0.05㎖를 가한 후 기질로 50mM Tris-HCl buffer(pH 8.6)에 녹인 N-succinyl-(L-Ala)3-p-nitroanilide (1mg/㎖)을 0.1㎖를 첨가하여 30분간 반응시키고 마이크로플레이트 리더(microplate reader)를 이용하여 410㎚에서 흡광도를 측정하였다. 엘라스타아제(elastase) 저해활성은 시료용액의 첨가구와 무첨가구의 흡광도 감소율로 나타냈다.To evaluate the effect of p-nitroanilide production at 37 ° C for 30 minutes, N-succinyl- (L-Ala) 3-p-nitroanilide was used as a substrate to confirm the effect of pancreatic elastase Activity. Each test solution was prepared to have a constant concentration, and 0.1 ml of each test solution was taken in a test tube, and 0.05 ml of an elastase solution (Type I: derived from porcine pancreas, 0.6 units / ml) dissolved in 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.6) (L-Ala) 3-p-nitroanilide (1 mg / ml) was dissolved in 50 mM Tris-HCl buffer (pH 8.6) as a substrate and reacted for 30 minutes. A microplate reader absorbance at 410 nm was measured using a reader. The elastase inhibitory activity was expressed as the absorbance reduction rate of the sample solution added and the non-added sample.

3) 세포배양3) Cell culture

인간 섬유아세포주인 HDFn 세포와 인간 각질형성 세포주인 HaCaT세포는 DMEM에 100U/㎖ 페니실린(penicillin) 및 100㎍/㎖ 스트렙토마이신(streptomycin)을 혼합한 배지를 사용하여, 37℃, 5% 이산화탄소(CO2) 조건의 배양기(incubator)에서 배양하였다. 세포배양 배지는 2일마다 새로운 배지로 갈아준 후, 실험을 위하여 4×104개/300㎕의 세포를 48well 및 2×106개/2㎖의 세포를 6well plate에 접종하여 24시간 뒤 세포가 안정적으로 부착된 후에 실험에 사용하였다.HDFn cells as human fibroblast cells and HaCaT cells as human keratinocyte cell lines were cultured in DMEM supplemented with 5% CO 2 (CO 2) at 37 ° C using medium containing 100 U / ml penicillin and 100 μg / ml streptomycin 2 ) conditioner incubator. The cell culture medium was changed into a new medium every 2 days. Then, 4 × 10 4 cells / 300 μl cells were inoculated into a 6- well plate at 48 wells and 2 × 10 6 cells / Were stably attached and used in the experiment.

4) 콜라겐 합성능 시험4) Collagen aggregation performance test

48 well plate에 HDFn 세포를 5×104개로 접종한 후 5% CO2 37℃하에서 24시간 배양하였다. 이후 소태아혈청(fetal bovine serum, FBS)이 포함되지 않은 DMEM 배지로 교체하고, 시료를 첨가하여 24시간 동안 배양 후, 배양액을 모아서 프로콜라겐 타입 원 단백질 합성 키트(procollagen type Ⅰ protein synthesis kit)를 이용하여 콜라겐 전구체의 C-말단의 양을 측정하였다. HDFn cells were inoculated into 48 well plates at 5 × 10 4 cells and cultured for 24 hours at 37 ° C in 5% CO 2 . Subsequently, the medium was replaced with a DMEM medium containing no fetal bovine serum (FBS), and the sample was added thereto. After culturing for 24 hours, the culture broth was collected and procollagen type protein synthesis kit Was used to measure the amount of C-terminus of the collagen precursor.

<실시예 3> 자외선 보호 효과 평가&Lt; Example 3 > Evaluation of ultraviolet protection effect

1) 자외선 조사1) UV irradiation

자외선 B 조사로 인한 세포독성 및 산화적 세포사멸에 대한 시료의 보호효과를 확인하기 위해서 자외선 B를 하기와 같은 조건으로 처리하였다. HDFn 세포를 80% 밀도가 되도록 배양한 뒤 배지를 걷어내고 인산완충용액으로 1회 세척한 다음 자외선 조사장치를 사용하여 50mJ/㎠의 자외선 B를 조사하였다. 자외선 조사 후 다양한 농도의 시료를 처리하여 24시간 배양하였다.Ultraviolet B was treated under the following conditions in order to confirm the protective effect of the sample against cytotoxicity and oxidative apoptosis caused by ultraviolet B irradiation. HDFn cells were cultured to a density of 80%, the medium was removed, washed once with phosphate buffer solution, and irradiated with ultraviolet B of 50 mJ / cm 2 using an ultraviolet irradiation device. After irradiating ultraviolet rays, various concentrations of samples were treated and cultured for 24 hours.

2) 세포생존율 평가2) Evaluation of cell survival rate

HDFn 세포를 48well plate에 4×104cells/well로 분주한 다음 24시간 후에 serum을 포함하지 않는 배지로 교환하여 24시간 동안 배양하였다. 시료를 처리한 다음 12시간 후에 배지를 제거하고 PBS로 세척 후, 인산완충생리식염수(phosphate buffer saline, PBS) 200㎕를 well에 분주 후 자외선 B를 50mJ/㎠로 조사하였다. 자외선 B 조사 후에 PBS를 제거하고 배지로 교환한 후 시료를 처리한 다음 24시간 후에 배지를 제거하고 MTT solution을 제거하고 생성된 formazan crystal을 DMSO에 녹여 450㎚에서 흡광도를 측정하였다.HDFn cells were plated on a 48-well plate at 4 × 10 4 cells / well. After 24 hours, the medium was replaced with a medium containing no serum and cultured for 24 hours. After 12 hours, the medium was removed and washed with PBS. 200 μl of phosphate buffer saline (PBS) was dispensed into wells, and ultraviolet B was irradiated at 50 mJ / cm 2. After UV irradiation, the PBS was removed, and the medium was replaced with the medium. After 24 hours, the medium was removed, the MTT solution was removed, and the formazan crystal was dissolved in DMSO to measure the absorbance at 450 nm.

3) 자외선 조사에 의한 주름 억제 활성 측정3) Measurement of anti-wrinkle activity by ultraviolet irradiation

HDFn 세포는 48 well plate에 4×104cells/well로 분주한 다음 24시간 후에 세럼(serum)을 포함하지 않는 배지로 교환하여 24시간 동안 배양하였다. 시료를 처리한 다음 12시간 후에 배지를 제거하고 PBS로 세척 후, PBS 200㎕를 well에 분주 후 자외선 B를 50mJ/㎠로 조사하였다. 자외선 B 조사 후에 PBS를 제거하고 배지로 교환한 후 시료를 처리한 다음 24시간 후에 배지를 제거하고 세포를 얻었다. 그 후에 HDFn 세포에서 자외선 B를 조사하였을 때 발현하는 콜라겐 분해 효소(Matrix metalloproteinase-1, MMP-1)가 시료를 처리하였을 때 어떤 영향을 미치는지 확인하기 위해 웨스턴 블랏(western blot)을 수행하여 단백질 발현량을 확인하였다. HDFn cells were seeded at 4 × 10 4 cells / well in a 48-well plate, and then cultured for 24 hours in a medium containing no serum after 24 hours. After 12 hours, the medium was removed and washed with PBS. 200 μl of PBS was dispensed into wells, and ultraviolet B was irradiated at 50 mJ / cm 2. After irradiation with ultraviolet light B, PBS was removed and replaced with the medium. After 24 hours, the medium was removed and cells were obtained. After that, western blotting was performed to examine the effect of collagenase (Matrix metalloproteinase-1, MMP-1) expressed on irradiated ultraviolet B in HDFn cells when the sample was treated, Respectively.

<실시예 4> 세포재생 효능 평가Example 4 Evaluation of Cell Regeneration Efficiency

1) 세포증식(Cell proliferation) 측정1) Cell proliferation measurement

NIH3T3 세포를 96 well plate에 5×104cells/well로 분주한 다음 24시간 후에 serum을 포함하지 않는 배지로 교환하여 24시간 동안 배양하였다. 시료를 처리한 다음 24시간 종료 2시간 전에 미리 브로모데옥시우리딘(bromodeoxyuridine, BrdU)시약을 처리 후 고정시약을 상온에서 30분간 반응 후 plate를 세척 후 BrdU 항체를 붙여 증식된 정도를 확인하였다.NIH3T3 cells were plated at 5 × 10 4 cells / well in a 96-well plate, and then cultured for 24 hours after 24 hours in a medium containing no serum. After the sample was treated with bromodeoxyuridine (BrdU) reagent 2 hours before the end of 24 hours, the fixed reagent was reacted at room temperature for 30 minutes. After washing the plate, BrdU antibody was attached to confirm the degree of proliferation.

2) 세포이주(Cell migration) 측정2) Cell migration measurement

NIH3T3 세포를 6well plate에 1×105cells/well로 분주한 다음 24시간 후에 serum을 포함하지 않는 배지로 교환하여 24시간 동안 배양하고, 시료를 처리하기 전 세포의 표면에 스크래치를 낸 후, 시료를 처리하고 24시간 후에, 스크래치 난 부분이 얼마나 채워졌는지 측정하여 상처의 재생을 확인하였다.After the busy NIH3T3 cells to 1 × 10 5 cells / well in 6well plate and then replaced with a culture medium that contains no serum 24 hours after the culture for 24 hours, and to process the samples to embellish the scratch on the surface of the whole cell sample And 24 hours later, the extent of scratching was measured to confirm the regeneration of the wound.

<실시예 5> 제브라피쉬를 이용한 미백효능 평가<Example 5> Evaluation of whitening efficacy using zebrafish

1) 제브라피쉬 배아의 미백 활성 측정1) Measurement of whitening activity of zebrafish embryos

24 well plate에 well당 15-20개의 난을 넣은 후 아워 포스트 펄티리제이션(hour post fertilization, hpf)이 지난 제브라피쉬 배아를 넣고, 배아 배지(media)를 0.95㎖을 채워준 후 시료를 농도별로 처리하였다. 3dpf에 깨어난 제브라피쉬 larva 상태에서 현미경을 통하여 미백 활성 정도를 측정하고, 데이터는 3중으로 3회 반복하고 이를 평균 백분율로 표현하였다.Add 15-20 eggs per well to a 24-well plate, add zebrafish embryo that has passed the hour post fertilization (hpf), fill the embryo media with 0.95 ml, Respectively. The degree of whitening activity was measured through a microscope in the state of awakened zebrafish larva in 3dpf, and the data was repeated three times in triplicate and expressed as an average percentage.

2) 제브라피쉬 배아의 멜라닌 함량2) Melanin content of zebrafish embryos

멜라닌 함량을 측정하기 위해 간단하게 9-48hpf까지 대략 제브라피쉬 배아 100마리에 멜라노제닉(melanogenic) 억제제를 처리한 그룹과 처리하지 않은 그룹으로 나누어 처리하여 Pro-Prep 단백질 추출 용액(Intron)에서 초음파 처리를 하였다. 원심분리 후, 펠릿을 1N 수산화나트륨(NaOH)를 1㎖에 녹여 100℃에서 30분 동안 반응시키고, 멜라닌 색소를 가용화하기 위해 혼합물을 강하게 볼텍스(vortex) 하였다. 상층액은 490㎚에서 흡광도를 측정하고 처리하지 않은 그룹은 100%로 나타내며 데이터는 3중으로 3회 반복하고 이를 평균 백분율로 표현하였다.In order to measure the melanin content, 100 melanogenic inhibitor-treated groups and untreated groups were treated in a pro-prep protein extraction solution (Intron) with ultrasonic treatment in an intron of about 100 mg of zebrafish embryo up to 9-48 hpf Respectively. After centrifugation, the pellet was dissolved in 1 mL of 1N sodium hydroxide (NaOH), reacted at 100 DEG C for 30 minutes, and the mixture vortexed vigorously to solubilize the melanin pigment. Absorbance was measured at 490 nm in the supernatant and 100% in the untreated group. The data were repeated three times in triplicate and expressed as an average percentage.

3) 제브라피쉬 배아에서 티로시나아제 저해 활성3) Tyrosinase inhibitory activity in zebrafish embryo

티로시나아제 억제 활성은 티로시나아제 방법을 따라 수행하였다. 9-48hpf까지 대략 제브라피쉬 배아 100마리에 melanogenic 억제제(시료)를 처리한 그룹과 처리하지 않은 그룹으로 나누어 처리하여 Pro-Prep 단백질 추출 용액(Intron)에서 초음파 처리를 하고, 용해물은 5분동안 10,000g에서 원심분리 후 정화하였다. Lysis buffer 100㎕에 있는 전체 단백질 250㎍를 96-well plate에 옮긴 후 1.5mM L-티로시나아제 100㎕를 첨가하였다. 처리하지 않은 그룹 well에는 100㎕ lysis buffer와 1.5mM L-티로시나아제 100㎕가 존재하게 된다. 28℃에서 60분 동안 반응 후 475㎚에서 micro-reader(Packard Spectrocount)로 흡광도를 측정하였다. 페닐티오우레아(phenylthiourea, PTU)와 알부틴(arbutin)은 대조군로서 사용하였으며, 처리하지 않은 그룹은 100%로 나타내며 데이터는 3중으로 3회 반복하고 이를 평균 백분율로 표현하였다.Tyrosinase inhibitory activity was performed according to the tyrosinase method. 100 embryos of approximately zebrafish embryos up to 9-48 hpf were divided into groups treated with melanogenic inhibitor (samples) and untreated groups. Ultrasonic treatment was performed in the Pro-Prep protein extract solution (Intron) And centrifuged at 10,000 g for purification. 250 μg of total protein in 100 μl of lysis buffer was transferred to a 96-well plate and 100 μl of 1.5 mM L-tyrosinase was added. 100 μl of lysis buffer and 100 μl of 1.5 mM L-tyrosinase were present in untreated group wells. After incubation at 28 ° C for 60 minutes, the absorbance was measured at 475 nm using a micro-reader (Packard Spectrocount). Phenylthiourea (PTU) and arbutin were used as controls, and the untreated group was expressed as 100%. The data were repeated three times in triplicate and expressed as an average percentage.

<실시예 6> 제브라피쉬를 이용한 항산화 효능 평가<Example 6> Evaluation of antioxidant efficacy using zebrafish

1) 제브라피쉬에서 활성산소(Reactive oxygen species,ROS) 측정1) Measurement of reactive oxygen species (ROS) in zebrafish

항산화 효능을 갖는지 확인하기 위해 제브라피쉬 유생(larva) 상태에서 자극제인 과산화수소를 처리하였다. 노출 후 96시간에 활성산소를 측정하고, 형광측정을 위해 각 well의 제브라피쉬 유생(larva)를 96well plate에 옮겨 새로운 제브라피쉬 배아 medium을 채워 넣어 수행하였다. 활성산소 생성량을 측정하기 위해 활성산소와 반응하여 형광물질을 만들어내는 2,7-dichlorofluorescein diacetate(DCFH-DA, Sigma)를 사용하였다. DCFH-DA 용액 20㎍/㎖를 각각의 well에 넣어 28.5±1°C 온도에서 1시간 동안 반응시킨 후, 제브라피쉬 larva를 제브라피쉬 배아 medium으로 2차례 세척하여 0.01% MS-222로 마취시켜 CoolSNAP-Pro dolor digital camera(Olympus, Japan)를 이용하여 활성산소 생성량을 측정하고, 각각의 제브라피쉬 larva의 형광강도는 image J program을 이용하여 정량화하였다.Hydrogen peroxide, a stimulant, was treated in zebrafish larvae to determine if it had antioxidant efficacy. The active oxygen was measured 96 hours after the exposure, and the zebrafish larvae of each well were transferred to a 96-well plate for fluorescence measurement and filled with new zebrafish embryo medium. To measure the amount of reactive oxygen species, 2,7-dichlorofluorescein diacetate (DCFH-DA, Sigma), which reacts with active oxygen to produce a fluorescent substance, was used. After incubation at 28.5 ± 1 ° C for 1 hour, the zebrafish larva was washed twice with zebrafish embryo medium and anesthetized with 0.01% MS-222 to obtain CoolSNAP -Pro dolor digital camera (Olympus, Japan) was used to measure the amount of active oxygen generated, and the fluorescence intensity of each zebrafish larva was quantified using an image J program.

2) 제브라피쉬에서 일산화질소(Nitric oxide, NO) 측정2) Nitric oxide (NO) measurement in zebrafish

자외선 조사로 인한 스트레스로 생성된 일산화질소를 시료가 얼마나 감소시키는지 알아보기 위해 제브라피쉬 larva 상태에서 최대한 물을 제거한 후 자외선 조사를 하였다. 노출 후 96시간에 일산화질소(NO)를 측정하였다. 형광측정을 위해 각 well의 제브라피쉬 larva를 96well plate에 옮겨 새로운 제브라피쉬 배아 medium을 채워넣어 수행하고, 일산화질소는 형광시약인 2′,7′-difluorofluorescein diacetate(DAF-FM DA, Sigma)를 사용하였다. 5mM DAF-FM DA 용액을 각각의 well에 넣어 28.5±1°C 온도에서 2시간 동안 반응 후 수행하고, 반응시킨 제브라피쉬 larva를 제브라피쉬 배아 medium으로 2차례 세척하여 0.01% MS-222로 마취시켜 CoolSNAP-Pro dolor digital camera(Olympus, Japan)를 이용하여 일산화질소 생성량을 측정하였다. 각각의 제브라피쉬 larva의 형광강도는 image J program을 이용하여 정량하였다.Ultraviolet irradiation was performed after water was removed from the zebrafish larva as much as possible in order to investigate how much the sample was reduced by the stress caused by ultraviolet irradiation. Nitrogen monoxide (NO) was measured 96 hours after exposure. For the fluorescence measurement, zebrafish larva of each well was transferred to a 96-well plate and filled with new zebrafish embryo medium. Nitric oxide was used as a fluorescent reagent 2 ', 7'-difluorofluorescein diacetate (DAF-FM DA, Sigma) Respectively. 5 mM DAF-FMDA solution was added to each well and incubated at 28.5 ± 1 ° C for 2 hours. The reacted zebrafish larva was washed twice with zebrafish embryo medium and anesthetized with 0.01% MS-222. The amount of nitrogen monoxide was measured using a CoolSNAP-Pro dolor digital camera (Olympus, Japan). Fluorescence intensity of each zebrafish larva was quantified using image J program.

<실시예 7> 제브라피쉬를 이용한 피부재생 효능 평가<Example 7> Evaluation of skin regeneration efficiency using zebrafish

제브라피쉬 larva 상태에서 꼬리지느러미를 일정하게 자른 후 시료 처리 후 3일간 꼬리 부분이 얼마나 회복되었는지 측정하였다. In the zebrafish larva state, the tail fin was cut uniformly and the recovery of the tail portion was measured for 3 days after the sample treatment.

<실시예 8> 혼합시료의 제조&Lt; Example 8 > Preparation of mixed sample

본 실시예에서는 대량생산 된 미역귀 추출물(Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan, UPEF) 및 멍게(Halocynthia roretzi)의 껍질에서 분리된 글리코사미노글리칸(Glycosaminoglycans, GAGs)을 사용하였다. 또한, 감태의 에탄올 추출물(Ecklonia cava Ethanol-extracts, ECE)은 아쿠아그린텍(주)에서 구입하였으며, 총 폴리페놀 함량이 50% 이상이며, 디에콜 함량이 5% 이상인 제품을 사용하였다(제품명: 감태 디에콜).In this example, massively-produced Undaria pinnatifida enzymatic-extracts fucoidan (UPEF) and Glycosaminoglycans (GAGs) isolated from the shell of Halocynthia roretzi were used. In addition, Ecklonia cava Ethanol-extracts (ECE) were purchased from AquaGreenTec Co., Ltd., and products having a total polyphenol content of 50% or more and a diecor content of 5% or more were used (Product name: Kantai diecol).

1) 미역귀 추출물의 제조방법1) Preparation method of non-gingival extract

증류수 1L에 미역귀 분말 50g, 셀루클라스트(Celluclast) 500㎕를 첨가하여 50℃에서 24시간 교반을 하며 가수분해를 시켰으며, 가수분해 반응이 끝나는 시점에 효소를 불활성화 시키기 위하여 100℃에서 10분간 끓여주었다. 3,000rpm에서 20분간 원심분리한 뒤, 상층액만을 여과한 후 1/10로 농축시킨 후 3배수 에탄올을 첨가하여 5℃에서 24시간 동안 당을 침전시켰다. 침전된 당을 회수하기 위하여 10,000rpm에서 20분간 원심분리하여 당을 얻고, 당에 포함되어 있는 알긴산을 제거하기 위하여 3배수에 달하는 4M 염화칼슘을 첨가하여 5℃에서 6시간 반응하여 알긴산을 침전시킨 후, 원심분리(10,000rpm, 20분)하여 알긴산을 제거하였다. To 1 L of distilled water was added 50 g of a groundnut powder and 500 Cell of Celluclast. The mixture was stirred at 50 캜 for 24 hours for hydrolysis. At the end of the hydrolysis reaction, the mixture was incubated at 100 캜 for 10 minutes I boiled it. After centrifugation at 3,000 rpm for 20 minutes, only the supernatant was filtered and concentrated to 1/10, followed by the addition of 3-fold volume of ethanol to precipitate the sugar at 5 ° C for 24 hours. To recover the precipitated sugar, the sugar was centrifuged at 10,000 rpm for 20 minutes to obtain a saccharide. To remove the alginic acid contained in the saccharide, 3-fold amount of 4M calcium chloride was added and reacted at 5 캜 for 6 hours to precipitate alginic acid , And alginic acid was removed by centrifugation (10,000 rpm, 20 minutes).

상층액에 다시 3배수 에탄올을 첨가하여 5℃에서 24시간 동안 반응하여 당을 얻고, 원심분리(10,000rpm, 20분)하여 얻어진 당을 동결건조하여 실험에 사용하였다.To the supernatant was added 3-fold ethanol again and reacted at 5 ° C for 24 hours to obtain a saccharide. The saccharide obtained by centrifugation (10,000 rpm, 20 minutes) was lyophilized and used in the experiment.

2) 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸의 혼합방법2) Mixing of Nasiridium extract, Ganoderma lucidum extract and Glycosaminoglycan

미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 표 1에 기재된 중량비(w/v)로 혼합하여 표 1의 혼합 시료를 제조하였다. 혼합비율에 따른 항노화 기능의 상승효과를 확인하기 위하여 총 36개의 혼합시료를 만들었다. And the glycosaminoglycan were mixed at a weight ratio (w / v) shown in Table 1 to prepare a mixed sample of Table 1. A total of 36 mixed samples were made to confirm the synergistic effect of antiaging function according to mixing ratio.

미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합시료 혼합비율(중량비율w/v)Mixed sample mixing ratios (weight ratio w / v) of primate extract (UPEF), menthol extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs) 혼합 시료명칭Mixed sample designation 미역귀 추출물
(UPEF)
Exudate extract
(UPEF)
감태 추출물
(ECE)
Moth extract
(ECE)
글리코사미노글리칸
(GAGs)
Glycosaminoglycan
(GAGs)
118118 1One 1One 88 127127 1One 22 77 136136 1One 33 66 145145 1One 44 55 154154 1One 55 44 163163 1One 66 33 172172 1One 77 22 181181 1One 88 1One 217217 22 1One 77 226226 22 22 66 235235 22 33 55 244244 22 44 44 253253 22 55 33 262262 22 66 22 271271 22 77 1One 316316 33 1One 66 325325 33 22 55 334334 33 33 44 343343 33 44 33 352352 33 55 22 361361 33 66 1One 415415 44 1One 55 424424 44 22 44 433433 44 33 33 442442 44 44 22 451451 44 55 1One 514514 55 1One 44 523523 55 22 33 532532 55 33 22 541541 55 44 1One 613613 66 1One 33 622622 66 22 22 631631 66 33 1One 712712 77 1One 22 721721 77 22 1One 811811 88 1One 1One

B. 실험결과B. Experimental Results

<비교실험예 1> 단일시료의 미백 효능 평가&Lt; Comparative Experimental Example 1 > Evaluation of whitening efficacy of a single sample

도 1은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)이 갖고 있는 미백 활성을 알아보고자 단일시료의 티로시나아제(tyrosinase) 저해 활성을 측정한 것으로, 티로시나아제 저해 활성은 티로시나아제에 의해 생성되는 DOPA chrome을 비색법에 의해 측정하였다. 각 시료들을 농도별 (25, 50 및 100㎍/㎖)로 처리하여 티로시나아제 저해 활성을 측정한 결과, 감태 추출물(ECE) 농도 50 및 100㎍/㎖의 농도에서 양성 대조군(positive control)인 알부틴(arbutin)보다도 저해활성이 더 우수함을 확인하였다. FIG. 1 shows the activity of inhibiting the tyrosinase activity of a single sample in order to examine the whitening activity of the whitening activity of the whitening activity of the whitish extracts (UPEF), phytotoxic extract (ECE) and glycosaminoglycans (GAGs) Inhibitory activity was measured by colorimetric assay of DOPA chrome produced by tyrosinase. Each sample was treated with concentrations of 25, 50 and 100 μg / ml to determine tyrosinase inhibitory activity. As a result, positive control (positive control) concentrations of 50 and 100 μg / It was confirmed that the inhibitory activity was better than that of arbutin.

도 2는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료의 멜라닌 생성 억제 활성 효과를 측정한 것이다. 각 시료들의 멜라닌 생성 억제 활성을 확인하고자 농도별 (25, 50 및 100㎍/㎖)로 처리하여 멜라닌 함량을 확인한 결과 감태 추출물(ECE) 시료에서 농도의존적으로 멜라닌 함량이 줄어드는 것을 확인할 수 있었다. 또한 미역귀 추출물(UPEF) 및 글리코사미노글리칸(GAGs)의 100㎍/㎖ 농도에서 멜라닌 함량이 유의적으로 줄었음을 확인하였다. FIG. 2 is a graph showing the effect of inhibiting the activity of inhibiting the production of melanin in a single sample of the primate extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs). The melanin content of each sample was examined by using 25, 50, and 100 μg / ㎖ concentration to confirm the melanogenesis inhibitory activity. As a result, it was confirmed that the content of melanin was decreased in the ECE sample. In addition, it was confirmed that the content of melanin was significantly reduced at a concentration of 100 μg / ml of the ginseng extract (UPEF) and glycosaminoglycan (GAGs).

또한, 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 제브라피쉬 모델에서의 미백 효과를 확인하였다. 제브라피쉬는 인간과 매우 유사한 유전자를 가지고 있어 최근 각광받고 있는 동물모델이다. 기존의 마우스 모델과 비교하였을 시 좁은 공간에서도 사육이 가능하며 비교적 관리가 편하고, 마우스에 비해 가격이 싸며, 생애 주기가 짧아 실험하기에 매우 용이하기 때문에 제브라피쉬를 활용하여 미백 활성을 측정하였다.In addition, the whitening effect of zebra extract (UPEF), ginger extract (ECE), and glycosaminoglycan (GAGs) in the zebrafish model was confirmed. Zebrafish is a recent animal model that has very similar genes to humans. Compared with conventional mouse models, it is possible to breed in a narrow space, it is relatively easy to manage, cheaper than mice, and life cycle is short, so it is very easy to experiment, so we measured whitening activity using zebrafish.

도 3은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료의 미백 활성을 제브라피쉬 모델에서 측정하기 위해 먼저 독성을 확인한 것이다. 산란된 후 8시간이 되는 제브라피쉬 배아에 각 시료들을 농도별(25, 50㎍/㎖)로 부화가 되기까지 계속 처리하였으며 부화되는 숫자를 세어 생존율을 측정하였다. 그 결과, 미역귀 추출물(UPEF) 50㎍/㎖ 농도에서 90%으로 생존율이 약간 떨어지는 것을 확인하였으나 유의적인 차이는 없어 모든 시료에서 독성이 없음을 확인하여 동일한 농도로 미백 활성 실험을 진행하였다. FIG. 3 shows the toxicity of a single sample of Umbelliferae Extract (UPEF), Gentian Extract (ECE), and Glycosaminoglycan (GAGs) in order to measure the whitening activity in a zebrafish model. The zebrafish embryos, which had been spawning for 8 hours, were continuously treated with each concentration (25, 50 ㎍ / ㎖) until hatching and the survival rate was measured by counting the number of hatching. As a result, it was confirmed that the survival rate was slightly lowered to 90% at the concentration of 50 ㎍ / ㎖ of the nematode extract (UPEF), but there was no significant difference, and the whitening activity experiment was carried out at the same concentration.

도 4는 제브라피쉬 모델에서 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료를 각 25, 50㎍/㎖ 농도별로 처리한 후 미백 활성을 비교한 것이다. 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 미백 활성을 측정하기 위해 산란된 후 8시간이 되는 제브라피쉬 배아에 각 시료들을 농도별(25, 50㎍/㎖)로 35시간까지 처리한 후 부화가 되었을 때 멜라닌 함량을 확인하였다. 제브라피쉬 larva 이미지 및 멜라닌 함량을 모두 측정하였으며, 그 결과를 살펴보면 아무것도 처리하지 않은 대조군에 비해 시료들을 처리하였을 시 농도 의존적으로 멜라닌 함량이 감소함을 확인할 수 있었으며, 감태 추출물(ECE) 및 글리코사미노글리칸(GAGs) 50㎍/㎖ 농도에서 미백 효능이 우수하였다.FIG. 4 is a graph comparing the whitening activity of a single sample of Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE), and glycosaminoglycan (GAGs) at 25 and 50 μg / ml concentrations in a zebrafish model. To determine the whitening activity of the whitening activity of the whitening extracts (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycans (GAGs), each sample was added to the zebrafish embryos which had been scattered for 8 hours at 25, 50 μg / ) For up to 35 hours and then melanin content was confirmed when hatching occurred. The results showed that the melanin content of the zebrafish larva was decreased and the melanin content of the zebrafish larva image was decreased when the samples were treated as compared to the control group without any treatment. The whitening effect was excellent at a concentration of 50 / / ml of glycan (GAGs).

<비교실험예 2> 단일시료의 주름개선 효능 평가&Lt; Comparative Experimental Example 2 > Evaluation of wrinkle improving effect of single sample

도 5는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 단일시료의 콜라게나아제(collagenase) 및 엘라스타아제(elastase) 저해활성 효능을 측정한 것이다. 양성대조군(Positive control)으로 주름개선 효능이 있다고 알려져 있는 에피갈로칼테킨 갈레이트(Epigallocatechin gallate, EGCG)를 사용하였으며 콜라게나아제(collaganase) 저해 활성의 경우 에피갈로칼테킨 갈레이트보다도 감태 추출물에서 저해 활성이 80%로 유의적으로 높은 활성을 나타냄을 확인하였다. 엘라스타아제(elastase) 저해 활성 또한 미역귀 추출물(UPEF)와 감태 추출물(ECE)에서 유의적으로 높은 저해활성을 가짐을 확인하였다. FIG. 5 is a graph showing the effect of collagenase and elastase inhibitory activity of a single sample of Umbelliferae extract (UPEF), menthol extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs). Epigallocatechin gallate (EGCG), known to be a positive control for improving wrinkles, was used. In the case of collagenase inhibitory activity, epigallocatechin gallate inhibited And the activity was 80%. Elastase inhibitory activity was also significantly inhibited by the non-sperm extract (UPEF) and the mite extract (ECE).

<비교실험예 3> 단일시료의 세포재생 효능 평가&Lt; Comparative Experimental Example 3 > Evaluation of Cell Regeneration Efficiency of Single Samples

도 6은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 섬유아세포 증식능을 확인한 것이다. 마우스 섬유아세포인 NIH3T3 세포를 96well plate에 5×104 cells/well로 분주한 다음 24시간 후에 세럼(serum)을 포함하지 않는 배지로 교환하여 24시간 동안 배양 후, 시료를 처리한 다음 24시간 종료 2시간 전에 미리 BrdU 시약를 처리하였다. 처리 후 고정시약을 상온에서 30분간 반응 후 plate를 세척 후 BrdU 항체를 붙여 증식된 정도를 확인하였다. Fig. 6 shows the fibroblast proliferative potency of the non-digested extract (UPEF), the gangue extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs). Mouse fibroblast NIH3T3 cells were seeded at a density of 5 × 10 4 cells / well on a 96-well plate. After 24 hours, the cells were cultured for 24 hours in a medium containing no serum. After 24 hours, The BrdU reagent was previously treated 2 hours before. After the reaction, the immobilized reagent was reacted at room temperature for 30 minutes. After washing the plate, BrdU antibody was attached to confirm the degree of proliferation.

양성 대조군(Positive control)로 표피생장인자(Epidermal Growth Factor, EGF)를 사용하였으며, 미역귀 추출물(UPEF) 및 감태 추출물(ECE)에서 유의적으로 positive control보다 세포증식능이 우수함을 확인하였다. Epidermal growth factor (EGF) was used as a positive control and UPE and ECE were superior to positive control in cell proliferation.

도 7은 제브라피쉬 모델에서 상처, 피부재생 효능을 확인 실험을 도식화한 것이다.FIG. 7 is a graphical representation of an experiment to confirm wound and skin regeneration efficacy in a zebrafish model.

도 8은 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 제브라피쉬 모델에서의 상처, 피부재생 효능 확인한 것이다. 제브라피쉬 larva 상태에서 꼬리 부분을 일정하게 자른 후 시료 처리 후 2일 간격으로 총 4일간 꼬리 부분이 얼마나 회복되었는지를 관찰하였다.FIG. 8 shows the scratching and skin regeneration efficacy in the zebra fish model of Japanese apricot extract (UPEF), ginger extract (ECE) and glycosaminoglycan (GAGs). In the zebrafish larva state, the tail part was cut uniformly, and then the tail part was restored for 4 days at the interval of 2 days after the sample treatment.

꼬리 부분을 자르고 시료 처리 후 2일째 되는 날(5 days)을 살펴보면 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 50㎍/㎖ 농도에서 완전히 회복되는 것을 확인할 수 있었으며, 4일째 되는 날(7 days)에는 25㎍/㎖ 농도에서도 회복되는 것을 확인하였다. 하지만 아무것도 처리하지 않은 control 그룹에서는 4일째에도 회복이 다 되지 않았음을 확인하였다.(5 days) after cutting off the tail, it was confirmed that it was fully recovered at a concentration of 50 μg / ml of the non-digested extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs) . On the fourth day (7 days), it was confirmed that the cells recovered even at a concentration of 25 μg / ml. However, in the control group that did not process anything, it was confirmed that the recovery was not completed even on the fourth day.

<실험예 1> 혼합시료의 미백 효능 평가<Experimental Example 1> Evaluation of whitening efficacy of a mixed sample

도 9는 혼합시료의 미백 효능을 평가하기 위해 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 티로시나아제 저해 활성 효과를 측정한 것이다. 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 상승효능이 있는지를 확인하기 위하여 총 36개의 혼합비율을 만들어 티로시나아제 저해 활성을 측정하였다(실시예 8의 표 1 참조).FIG. 9 is a graph showing the effect of tyrosinase inhibitory activity on the whitening effect of the mixed samples according to the mixing ratio of the whitish extract (UPEF), the gentle extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs). In order to ascertain whether there is a rising effect according to the mixing ratio of UPG, UPE, ECE and GAGS, tyrosinase inhibitory activity was measured by making a total of 36 mixing ratios See Table 1 in Example 8).

혼합비율에 따른 시료의 티로시나아제 저해 활성 측정 결과, 감태 추출물(ECE)의 비율이 증가할수록 또는, 글리코사미노글리칸(GAGs)의 비율이 감소할수록 미백 활성이 증가함을 확인하였으며, 단일 시료를 처리하였을 때 보다 혼합 비율에 따라 상승효능을 갖는 시료들을 확인할 수 있었다. 따라서 상승효능을 갖는 혼합비율 중 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개를 선정하여 세포에서의 멜라닌 억제 활성을 확인하기로 하였다. As a result of measuring the tyrosinase inhibitory activity of the sample according to the mixing ratio, it was confirmed that the whitening activity was increased with the increase of the proportion of gangrene extract (ECE) or the ratio of glycosaminoglycan (GAGs) The samples with ascending effect were confirmed by mixing ratio. Therefore, seven melanin inhibitory activities of 262, 271, 352, 361, 433, 451 and 721 were investigated.

도 10은 티로시나아제 저해 활성을 통해 상승효능을 가지는 중 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개의 시료의 멜라닌 억제 활성을 비교한 것이다. 멜라닌 함량을 확인한 결과 모든 혼합비율에서 α-MSH 처리그룹보다 멜라닌 함량이 감소함을 확인하였고, 특히 352, 361, 451이 다른 혼합비율보다 유의적인 차이가 있음을 확인하였다. 따라서 유의적인 차이가 있었던 352, 361, 451 혼합비율 시료를 이용하여, 제브라피쉬 모델에서의 미백 활성을 확인하였다. FIG. 10 compares the melanin inhibitory activities of seven samples, 262, 271, 352, 361, 433, 451 and 721, which have an elevating effect on tyrosinase inhibitory activity. Melanin content of melanin was lower than that of α-MSH, and 352, 361, and 451 were significantly different from other blend ratios. Therefore, the whitening activity in the zebrafish model was confirmed using 352, 361, and 451 mixed ratio samples, which were significantly different from each other.

가장 활성이 좋았던 352, 361, 451 혼합시료의 미백 활성을 제브라피쉬 모델에서 측정하기 위해 먼저 독성이 있는지를 확인하였다. 단일 시료 실험방법과 동일하게 진행하였다. 도 11은 상기 혼합시료의 독성을 확인한 결과이며, 모든 시료에서 독성이 없음을 확인하였다. In order to measure the whitening activity of 352, 361, and 451 mixed samples with the highest activity, it was first confirmed to be toxic in the zebrafish model. The procedure was the same as the single sample test method. FIG. 11 shows the result of confirming the toxicity of the mixed sample, and it was confirmed that all the samples were free of toxicity.

352, 361, 451 혼합비율 시료의 미백 활성을 단일 시료 실험방법과 동일하게 진행하였다. 도 12는 제브라피쉬 larva 이미지 및 멜라닌 함량을 모두 측정한 결과이며, 아무것도 처리하지 않은 control 그룹에 비해 시료들을 처리하였을 시 농도 의존적으로 멜라닌 함량이 감소함을 확인할 수 있었으며, 그 중 451 혼합비율 시료의 50㎍/㎖ 농도에서 유의적으로 가장 활성이 우수함을 확인할 수 있었다.352, 361, and 451 mixed ratios were tested in the same manner as the single sample test method. FIG. 12 shows that the melanin content of the zebrafish larva and melanin content were decreased when the samples were treated as compared to the control group without any treatment, It was confirmed that the activity was most excellent at a concentration of 50 / / ml.

<실험예 2> 혼합시료의 주름개선 효능 평가&Lt; Experimental Example 2 > Evaluation of wrinkle improving effect of mixed samples

1) 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 콜라게나아제(Collagenase) 및 엘라스타아제(elastase) 저해 활성 효과1) Collagenase and elastase inhibitory activity according to the mixing ratio of UPG, UPE, ECE, and GAGS

도 13과 14는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 상승효능이 있는지를 확인하기 위하여 총 36개의 혼합비율 시료의 콜라게나아제(collaganase) 및 엘라스타아제(elastase) 저해 활성을 측정한 것이다. 혼합비율에 따른 시료의 콜라게나아제(collaganase) 저해 활성 측정 결과, 글리코사미노글리칸(GAGs)의 비율이 증가할수록 저해활성이 증가함을 확인할 수 있었고, 엘라스타아제(elastase) 저해활성에서는 미역귀 추출물(UPEF) 및 감태 추출물(ECE)의 함량이 증가할수록, 글리코사미노글리칸(GAGs)의 함량이 감소할수록 저해활성이 증가함을 확인하였다. 또한 단일 시료를 처리하였을 때보다 혼합 비율에 따라 상승효능을 갖는 시료들을 확인할 수 있었다.Figures 13 and 14 show the effect of increasing the amount of collagenase (collaganase) in 36 total mixed samples in order to ascertain whether there is a rising effect according to the mixing ratio of UPG, UPE, ECE, and GAGS. ) And elastase inhibitory activity were measured. As a result of measurement of the collaganase inhibitory activity of the sample according to the mixing ratio, it was confirmed that the inhibitory activity was increased as the ratio of glycosaminoglycan (GAGs) was increased. In the elastase inhibitory activity, It was found that as the content of extracts (UPEF) and gangrene extract (ECE) increases, the inhibitory activity increases as the content of glycosaminoglycan (GAGs) decreases. In addition, samples with ascending efficacy were identified by mixing ratio than when single samples were treated.

도 15와 16은 상승효능을 갖는 혼합비율 262, 271, 352, 361, 433, 451, 721 총 7개를 선정하고, 상기 혼합시료의 콜라게나아제(collaganase)와 엘라스타아제(elastase) 저해 활성들을 양성대조군(positive control)과 함께 다시 측정한 것이다. positive control로 에피갈로칼테킨 갈레이트(Epigallocatechin gallate, EGCG) 및 우르솔산(Ursolic acid, UA)을 사용하였다. 효소들의 저해 활성들을 확인한 결과 모든 혼합비율에서 positive control보다 유의적으로 저해활성이 높았으며, 그 중 433, 721 혼합비율의 시료에서 높은 활성을 나타내었다.15 and 16, seven of the mixing ratios 262, 271, 352, 361, 433, 451 and 721 having ascending effect were selected and the collagenase and elastase inhibitory activity Were again measured with a positive control. Epigallocatechin gallate (EGCG) and urosolic acid (UA) were used as positive controls. The inhibitory activity of the enzyme was significantly higher than that of the positive control at all mixing ratios.

도 17은 상기 7개의 혼합 시료를 처리한 세포에서의 프로 콜라겐(pro-collagen) 합성 촉진 효과를 측정한 것이다FIG. 17 shows the effect of promoting pro-collagen synthesis in cells treated with the above seven mixed samples

세포외기질의 주요 구성 성분인 콜라겐(collagen)은 피부의 섬유아세포에서 생성되는 주요 기질 단백질로 피부의 기계적 견고성, 결합 조직의 저항력과 조직의 결합력, 세포 접착의 지탱, 세포 분할과 분화의 유도 등의 기능을 가지고 있다. 콜라겐(type I, II, III, IV, V)들은 프로 콜라겐(pro-collagen)이라는 전구물질의 형태로 합성이 되며, 콜라겐 중합 반응이 일어날 때 콜라겐 분자로부터 절단, 분리되는 기능을 가진 것으로 알려져 있다. 따라서 프로 콜라겐의 양을 측정함으로써 세포 내에서의 콜라겐 생합성 정도를 파악할 수 있다. Collagen, a major constituent of extracellular matrix, is a major substrate protein produced by the fibroblasts of the skin. It is composed of the mechanical rigidity of the skin, the connective tissue resistance and the binding force of tissue, the support of cell adhesion, the induction of cell division and differentiation Function. It is known that collagen (type I, II, III, IV, V) is synthesized in the form of a pro-collagen precursor and has a function of cleaving and separating from collagen molecules when collagen polymerization occurs . Therefore, by measuring the amount of procollagen, the degree of collagen biosynthesis in the cell can be grasped.

상승효능을 가지는 7개의 시료들의 프로 콜라겐(pro-collagen) 함량을 확인한 결과 352, 361, 451, 721 혼합비율에서 유의적으로 프로 콜라겐(pro-collagen) 함량이 증가하는 것을 확인할 수 있었다. The pro-collagen content of seven samples with elevated efficacy was confirmed, and the pro-collagen content was significantly increased at a mixing ratio of 352, 361, 451, and 721.

<실험예 3> 혼합시료의 세포재생 효능 평가&Lt; Experimental Example 3 > Evaluation of Cell Regeneration Efficiency of Mixed Samples

도 18에서는 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 세포재생 효능을 확인한 것이다. 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 상승효능이 있는지를 확인하기 위하여 총 36개의 혼합비율 시료의 섬유아세포 증식능을 확인하였다. 혼합비율에 따른 시료의 섬유아세포 증식능 측정 결과, 글리코사미노글리칸(GAGs)의 비율이 증가할수록 세포증식능이 증가함을 확인할 수 있었고, 세포증식능 또한 단일 시료를 처리하였을 때 보다 혼합 비율에 따라 상승효능을 갖는 시료들을 확인하였으며, 상승효능을 갖는 혼합비율 총 7개를 선정하였다. In FIG. 18, cell regeneration efficacy was confirmed by the mixing ratio of the unmodified extract (UPEF), the ginger extract (ECE) and the glycosaminoglycan (GAGs). Fibroblast proliferative activity of 36 mixed ratio samples was confirmed in order to ascertain whether there was a rising effect according to the mixing ratio of UPG, UPE, ECE, and GAGS. As a result of the measurement of the fibroblast proliferative capacity of the sample according to the mixing ratio, it was confirmed that the cell proliferative capacity was increased as the ratio of glycosaminoglycans (GAGs) was increased, and the cell proliferating ability was also increased Samples with efficacy were identified and a total of seven mixing ratios with elevated efficacy were selected.

섬유아세포 증식능을 측정결과를 통해 상승효능을 가지는 7개의 시료를 선택하였으며, 도 19에서는 상기 7개의 시료들의 세포재생 효능을 양성대조군(positive control)과 함께 다시 확인하였으며, positve control로 표피생장인자(Epidermal Growth Factor, EGF)를 사용하였다. 세포재생 활성을 확인한 결과 352, 361, 433, 451, 721 혼합비율에서 positive control 보다 유의적으로 활성이 높았으며, 그 중 451 혼합비율의 시료에서 가장 높은 활성을 나타내었다. Seven samples with elevated efficacy were selected from the results of the measurement of fibroblast proliferative activity. In FIG. 19, the cell regeneration efficiency of the seven samples was confirmed again with positive control, and as a positive control, Epidermal Growth Factor, EGF) was used. As a result of the cell regeneration activity, the activity was significantly higher at 352, 361, 433, 451, and 721 than the positive control, and the highest activity was observed at the 451 mixture ratio.

도 20에서는 섬유아세포 증식능에서 유의적으로 효능이 좋았던 352, 361, 433, 451, 721 혼합비율 시료 중에서 미백 및 주름개선에서 공통적으로 활성이 좋았던 352, 361, 451 혼합비율의 시료들로 제브라피쉬 모델에서 상처 재생 효능을 확인하였다. 실험방법은 단일 시료 실험방법과 동일하게 진행되었으며 시료의 상처 재생 효능을 확인한 결과 아무것도 처리하지 않은 control 그룹을 제외한 모든 그룹에서 시료 처리 후 2일째 되는 날(5days)에 완벽하게 회복되는 것을 관찰할 수 있었다.Figure 20 shows that the 352, 361, 433, 451, and 721 mixed ratios of 352, 361, and 451, which were commonly used for whitening and wrinkle improvement, had a significant effect on fibroblast proliferative activity. The wound regeneration efficiency was confirmed. The experimental method was the same as that of the single-sample method. As a result of examining the wound regeneration efficiency of the sample, it was observed that all the groups except the control group completely recovered on the second day (5days) after the sample treatment there was.

도 21은 451 혼합비율 시료의 세포이동(cell migration) 효능을 확인한 것이다. 그 결과 대조군에 비해 451 혼합비율 시료에서 세포이동이 증가한 것을 확인하였다.21 shows the cell migration effect of the 451 mixture ratio sample. As a result, it was confirmed that the cell migration was increased in the 451 mixture ratio compared to the control group.

도 22는 어떤 경로를 통해 세포재생이 일어나는지를 확인하기 위하여 p-EGFR과 p-AKT의 단백질 발현 정도를 western blot을 측정한 결과이다. 정량된 단백질 (40㎍)을 4×sample buffer을 사용하여 샘플링한 후 95℃에서 10분간 끓였다. 끓인 시료를 10% SDS-PAGE gel에 130V로 90분간 전기영동 하였다. 전기영동 후, 0.45㎛ 나이트로셀룰로오스 멤브레인(Nitrocellulose membrane)를 이용하여 단백질을 300 mA에 70분간 이동시켰다. 1×TBST에 5% 탈지유(skim milk)를 제조한 다음 1시간 실온에서 블락킹(blocking)하였고, 프라이머리 항체(primary anti-body)를 이용하여 4℃에서 24시간 동안 인큐베이션(incubation)을 하였다. 모든 primary anti-body는 1% skim milk에 희석시켰다. 4℃에서 incubation 시킨 후, 상온에서 1×TBST로 10분간 3번, 총 30분 동안 washing 후, 1% skim milk에 1:3000으로 희석시킨 이차항체(secondary anti-body)를 이용하여 상온에서 1시간 동안 incubation 시켰다. Secondary anti-body를 상온에서 부착 시킨 후, 1×TBST로 10분간 3번, 총 30분 동안 washing 후, ECL solution을 충분히 멤브레인(membarane)에 반응 시킨 뒤 Vilber Fusion solo 시스템으로 분석하였다.22 shows the results of western blot analysis of the degree of protein expression of p-EGFR and p-AKT in order to confirm the pathway through which cell regeneration occurs. The quantified protein (40 μg) was sampled using a 4 × sample buffer and boiled at 95 ° C. for 10 minutes. The boiled samples were electrophoresed on a 10% SDS-PAGE gel at 130 V for 90 minutes. After electrophoresis, proteins were transferred to 300 mA for 70 minutes using a 0.45 mu m nitrocellulose membrane. 5% skim milk was prepared in 1 x TBST and then blocked for 1 hour at room temperature and incubated for 24 hours at 4 ° C using a primary anti-body . All primary anti-bodies were diluted in 1% skim milk. After incubation at 4 ° C, the cells were washed 3 times for 10 minutes at room temperature with 1 × TBST for 30 minutes, and then incubated at room temperature with a secondary antibody diluted 1: 3000 in 1% skim milk. Lt; / RTI &gt; After attaching the secondary anti-body at room temperature, the plate was washed with 1 × TBST for 3 minutes for 30 minutes, and the ECL solution was reacted to the membrane (membarane) and analyzed with the Vilber Fusion solo system.

분석결과, 양성대조군(positive control)인 표피생장인자(Epidermal Growth Factor, EGF)의 경우는 표피생장인자 수용체(Epidermal Growth Factor Receptor, EGFR)와 결합하여 phosphor-AKT를 통해 세포증식이 일어나는 것을 확인하였지만, 451 혼합비율 시료의 경우는 EGFR 결합이 아닌 다른 수용체와 결합 후 하위기전인 phosphor-AKT를 통해 세포증식이 일어남을 확인하였다. As a result of the analysis, it was confirmed that a positive control Epidermal Growth Factor (EGF) binds to Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) and cell proliferation occurs through phosphor-AKT , 451 in the mixed ratio sample, the cell proliferation was observed through phosphor-AKT, which is a sub-mechanism after binding to other receptors other than EGFR binding.

<실험예 4> 항산화 효능 평가<Experimental Example 4> Evaluation of Antioxidant Efficacy

상기에서 선별된 7개의 시료 중 미백, 주름개선, 세포재생 활성을 종합적으로 평가했을 시 352, 361, 451 혼합비율 시료들이 가장 활성이 우수하였다.When the whitening, wrinkle improvement, and cell regeneration activities of the 7 samples selected above were evaluated comprehensively, the 352, 361 and 451 mixed ratio samples showed the highest activity.

도 23에서는 상기 352, 361, 451 시료의 제브라피쉬에서의 항산화 효능을 평가하기 위하여 5mM H2O2를 처리하였을 때, 생존율과 ROS 억제 활성을 측정한 것이다. 산란된 후 8시간이 되는 난에 352, 361, 451 혼합비율 시료를 25㎍/㎖에서 50㎍/㎖의 농도까지 처리한 후 1시간 뒤에 5mM H2O2를 처리하였다. 그리고 37℃에서 3일간 배양한 후 숫자를 세어 생존율을 측정하였다. FIG. 23 shows the survival rate and the ROS inhibitory activity of the 352, 361, and 451 samples when 5 mM H 2 O 2 was treated to evaluate the antioxidant activity of the 352, 361, and 451 samples in the zebrafish. For the 8-hour egg laying, 352, 361 and 451 mixed ratios were treated from 25 ㎍ / ㎖ to 50 ㎍ / ㎖ and treated with 5 mM H 2 O 2 after 1 hour. After incubation at 37 ° C for 3 days, the survival rate was determined by counting the number.

Control 그룹의 생존율이 약 96% 정도로 나타났고 5mM 과산화수소(H2O2)를 처리한 그룹의 생존율은 60% 이하로 나타났다. 352 및 451 혼합비율 시료를 처리한 그룹은 농도가 증가할수록 생존율이 증가하여, 50㎍/㎖에서는 약 70%까지 증가하는 것을 확인 할 수 있었다. 따라서 과산화수소(H2O2)로 인한 산화적 스트레스에 대한 보호효과가 있음을 확인하였다.The survival rate of the control group was about 96% and the survival rate of the group treated with 5 mM hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) was less than 60%. The survival rate of the group treated with the 352 and 451 mixture ratios increased with increasing concentration and increased to 70% at 50 ㎍ / ㎖. Therefore, it has been confirmed that there is a protective effect against oxidative stress caused by hydrogen peroxide (H 2 O 2 ).

도 24는 혼합비율 시료들의 제브라피쉬에서의 활성산소(reactive oxigen species, ROS) 소거활성을 확인한 것이다. 혼합비율 시료 및 H2O2를 처리하는 과정은 앞의 생존율 측정 실험과 동일하며, 3일 후 DCF-DA 시약으로 생성된 ROS를 염색하여 소거활성을 측정하였다. FIG. 24 shows the reactive oxygen species (ROS) scavenging activity in the zebrafish of the mixing ratio samples. The procedure for treating the mixed ratio sample and H 2 O 2 was the same as the above-mentioned survival rate measurement, and the scavenging activity was measured after 3 days by staining the ROS generated with the DCF-DA reagent.

제브라피쉬의 형광사진을 보면 아무것도 처리하지 않은 control 그룹에 비해 H2O2를 처리한 그룹이 더 밝은 형광을 띄고 있음을 확인할 수 있다. DCF-DA 시약은 ROS와 결합하여 녹색 빛의 형광을 발현해주는 시약이기 때문에 H2O2를 처리함으로써 제브라피쉬에서 ROS가 생성되었음을 확인 할 수 있다. H2O2를 처리함으로써 ROS의 양이 증가하였지만 451 혼합비율 시료 50㎍/㎖를 처리하였을 때 37% 가량 감소하는 것을 확인 하였다. 이로 인해 451 혼합비율 시료는 H2O2로 인하여 발생한 ROS에 대한 소거 활성이 있음을 확인할 수 있었다.Fluorescence photographs of zebrafish showed that the group treated with H 2 O 2 had a brighter fluorescence than the control group that did nothing. Since DCF-DA reagent is a reagent that expresses green fluorescence in combination with ROS, it can be confirmed that ROS was generated in zebrafish by treating H 2 O 2 . The amount of ROS was increased by treatment with H 2 O 2 , but it decreased by 37% when treated with 50 μg / ml of 451 mixing ratio sample. As a result, it was confirmed that the 451 mixture ratio sample had scavenging activity for ROS caused by H 2 O 2 .

<실험예 5> 미역귀 추출물(UPEF), 감태 추출물(ECE), 글리코사미노글리칸(GAGs)의 혼합비율에 따른 352, 361, 451의 제브라피쉬 모델에서의 자외선 보호 효능Experimental Example 5 UV Protection Effect in Zebrafish Model of 352, 361 and 451 according to Mixing Ratios of Sweet Potato Extract (UPEF), Ginseng Extract (ECE) and Glycosaminoglycan (GAGs)

1) 혼합비율 시료들의 제브라피쉬 생존율 측정1) Measurement of zebrafish survival rate of mixed ratio samples

도 25는 352, 361, 451 혼합비율 시료들의 제브라피쉬에서의 자외선(ultraviolet, UV) 보호 효능을 평가하기 위하여 자외선 B 50mJ/㎠을 조사하였을 때, 생존율과 NO 억제 활성을 측정한 것이다. 제브라피쉬 larva에 352, 361, 451 혼합비율 시료들을 25㎍/㎖에서 50㎍/㎖의 농도까지 처리한 후 1시간 뒤에 자외선 B 50mJ/㎠을 조사하였다. 그리고 37℃에서 3일간 배양한 후 숫자를 세어 생존율을 측정하였다. FIG. 25 is a graph showing the survival rate and the NO inhibitory activity when irradiated with 50 mJ / cm 2 of ultraviolet ray B to evaluate ultraviolet (UV) protection efficacy of 352, 361, and 451 mixed ratio samples in zebrafish. The zebrafish larva was treated with 352, 361, and 451 mixed ratios from 25 ㎍ / ㎖ to 50 ㎍ / ㎖ and irradiated with ultraviolet B 50mJ / ㎠ after 1 hour. After incubation at 37 ° C for 3 days, the survival rate was determined by counting the number.

Control 그룹의 생존율이 약 98% 정도로 나타났고 자외선 B를 조사한 그룹의 생존율은 85% 이하로 나타났다. 352, 361 및 451 혼합비율 시료들을 처리한 그룹들에서 50㎍/㎖ 농도일 때 약 95%까지 증가하는 것을 확인할 수 있었고, 자외선 B로 인한 스트레스에 대한 보호효과가 있음을 확인하였다.The survival rate of the control group was about 98% and the survival rate of the UVB group was 85% or less. In the groups treated with 352, 361, and 451 mixed ratios, it was confirmed that the concentration increased to about 95% at the concentration of 50 μg / ml, and it was confirmed that the protective effect against the stress due to ultraviolet B was confirmed.

2) 혼합비율 시료들의 제브라피쉬에서의 NO 소거활성2) NO scavenging activity in zebrafish of mixed ratio samples

도 26은 혼합비율 시료 및 자외선 B 50mJ/㎠를 조사하고 3일 후 DAF-FM-DA 시약으로 생성된 NO를 염색하여 소거활성을 측정한 것이다.FIG. 26 shows the results of measuring the scavenging activity by staining the NO generated with the DAF-FM-DA reagent three days after irradiating the mixed ratio sample and ultraviolet ray B at 50 mJ / cm 2.

제브라피쉬의 형광사진을 보면 아무것도 처리하지 않은 control 그룹에 비해 자외선 B 50mJ/㎠를 조사한 그룹이 더 밝은 형광을 띄고 있음을 확인 할 수 있다. DAF-FM-DA 시약은 NO와 결합하여 녹색 빛의 형광을 발현해주는 시약이기 때문에 자외선 B를 조사함으로써 제브라피쉬에서 NO가 생성되었음을 확인 할 수 있다. 자외선 B를 조사함으로써 NO의 양이 증가하였지만 451 혼합비율 시료 50㎍/㎖를 처리하였을 때 26% 가량 감소하는 것을 확인하여, 451 혼합비율 시료는 자외선 B로 인하여 발생한 NO에 대한 소거 활성이 있음을 확인할 수 있었다.Fluorescence photographs of the zebrafish showed that the group irradiated with ultraviolet ray B 50 mJ / cm 2 had brighter fluorescence than the control group which did nothing. Since DAF-FM-DA reagent is a reagent that binds to NO and expresses green fluorescence, it can be confirmed that NO is generated in zebrafish by irradiating ultraviolet ray B. The amount of NO was increased by irradiating ultraviolet ray B, but when it was treated with 50 μg / ml of 451 mixing ratio sample, it was confirmed that the amount of NO decreased by 26%, and the 451 mixing ratio sample showed an elimination activity against NO generated due to ultraviolet ray B I could confirm.

이상에서 본 발명의 바람직한 실시예에 대하여 상세하게 설명하였지만 본 발명의 권리범위는 이에 한정되는 것은 아니고 다음의 청구범위에서 정의하고 있는 본 발명의 기본 개념을 이용한 당업자의 여러 변형 및 개량 형태 또한 본 발명의 권리범위에 속하는 것이다.While the present invention has been particularly shown and described with reference to exemplary embodiments thereof, it is to be understood that the invention is not limited to the disclosed exemplary embodiments, Of the right.

Claims (12)

미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 유효성분으로 포함하는, 항노화 화장료 조성물.An anti-aging cosmetic composition comprising, as an active ingredient, an irregular extract, a gentian extract, and a glycosaminoglycan. 제1항에 있어서, 상기 미역귀 추출물은 미역귀의 셀루클라스트(Celluclast) 효소 추출물인 것인 화장료 조성물.2. The cosmetic composition according to claim 1, wherein the apricot extract is a Celluclast enzyme extract. 제1항에 있어서, 상기 미역귀 추출물은 후코이단을 포함하는 것인 화장료 조성물.2. The cosmetic composition according to claim 1, wherein the apricot extract comprises fucoidan. 제1항에 있어서, 상기 글리코사미노글리칸은 멍게껍질에서 분리된 것인 화장료 조성물.2. The cosmetic composition according to claim 1, wherein the glycosaminoglycan is separated from the skins. 제1항에 있어서, 상기 감태 추출물은 폴리페놀과 디에콜을 포함하는 감태 에탄올의 추출물인 것인, 화장료 조성물.2. The cosmetic composition according to claim 1, wherein the phlegm extract is an extract of phytotoxic ethanol containing polyphenol and diegol. 제1항에 있어서, 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸은 1:0.1~4:0.1~1의 중량비(w/v)로 혼합된 것인, 화장료 조성물.[Claim 2] The cosmetic composition according to claim 1, wherein the apricot extract, gentian extract and glycosaminoglycan are mixed at a weight ratio (w / v) of 1: 0.1-4: 0.1-1. 제1항에 있어서, 상기 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸은 4:5:1의 중량비(w/v)로 혼합된 것인, 화장료 조성물.2. The cosmetic composition according to claim 1, wherein the non-ginseng extract, ginseng extract and glycosaminoglycan are mixed at a weight ratio (w / v) of 4: 5: 1. 제1항에 있어서, 상기 화장료 조성물은 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생용인 것인, 화장료 조성물.The cosmetic composition according to claim 1, wherein the cosmetic composition is for skin whitening, wrinkle reduction, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration. 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 유효성분으로 포함하는, 항노화 의약외품 조성물.An anti-aging quasi-drug composition comprising, as an active ingredient, an irregular extract, a phlegm extract and a glycosaminoglycan. 제9항에 있어서, 상기 의약외품 조성물은 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생용인 것인, 의약외품 조성물.The quasi-drug composition according to claim 9, wherein the quasi-drug composition is for skin whitening, wrinkle reduction, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration. 미역귀 추출물, 감태 추출물 및 글리코사미노글리칸을 유효성분으로 포함하는, 항노화 피부외용제 조성물.An anti-aging dermatological external preparation composition comprising, as an active ingredient, an irregular extract, a gentian extract, and a glycosaminoglycan. 제11항에 있어서, 상기 피부외용제 조성물은 피부 미백, 주름 개선, 항산화, 자외선 차단 또는 피부 재생용인 것인, 피부외용제 조성물.12. The composition for external application for skin according to claim 11, wherein the composition for external application for skin is for skin whitening, wrinkle reduction, antioxidation, ultraviolet screening or skin regeneration.
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