KR20180023250A - Monoclonal antibody against immunoglobulin m of olive flounder and use thereof - Google Patents

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Abstract

The present invention provides a fusion cell line of Accession No. KCLRF-BP-00368 which produces a monoclonal antibody specific to immunoglobulin M of Paralichthys olivaceus, and a monoclonal antibody Anti-24B12 produced therefrom, and also provides a detection kit capable of detecting an antigen of fish by using the same, thereby being used for the diagnosis, treatment and prevention of infectious diseases of Paralichthys olivaceus, which has caused massive deaths in farms and caused enormous damage.

Description

넙치의 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체 및 이의 용도{MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST IMMUNOGLOBULIN M OF OLIVE FLOUNDER AND USE THEREOF}MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST IMMUNOGLOBULIN M OLIVE FLOUNDER AND USE THEREOF <br> <br> <br> Patents - stay tuned to the technology MONOCLONAL ANTIBODY AGAINST IMMUNOGLOBULIN M OLIVE FLOUNDER AND USE THEREOF

본 발명은 넙치(Paralichthys olivaceus)의 면역글로불린 (immunoglobulin, Ig) M에 특이적인 단클론항체 및 이의 용도에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 넙치의 IgM을 분리하고 이에 특이적인 단클론항체를 생산하는 융합세포주와 여기서 생산되는 단클론항체를 이용하여 넙치 혈청속에 들어 있는 항체를 검출할 수 있는 방법에 관한 것이다.
The present invention relates to a monoclonal antibody specific to immunoglobulin (Ig) M of a flounder ( Paralichthys olivaceus ) and a use thereof, and more particularly, to a fusion cell line which separates IgM of a flounder and produces a monoclonal antibody specific thereto The present invention relates to a method for detecting an antibody contained in a serum of a flounder using a monoclonal antibody produced herein.

전 세계적으로 어류 증양식 산업의 활성화와 더불어 어병 (魚病)에 의한 피해가 현저하게 증가하여 양식 산업에 주요 문제로 대두되고 있다. 특히 바이러스성 질병으로 인한 폐사율은 어류 생산량의 약 30% 이상을 차지하고 있을 것으로 추정되나 현재까지 효과적인 치료법이 없기 때문에 질병의 신속진단과 예방대책은 주요한 과제로 남아 있다.Along with the revitalization of the fish breeding industry worldwide, the damage caused by fish diseases has become a major problem in the aquaculture industry. In particular, the mortality rate due to viral diseases is expected to account for more than 30% of the fish production. However, as there is no effective treatment until now, the rapid diagnosis and preventive measures of the disease remain a major challenge.

우리나라에서는 수산생물전염병을 체계적으로 관리하고 질병에 의한 피해를 최소화하기 위하여, 2008년부터 수산생물질병관리법을 시행하여 21개의 전염병을 대상으로 방역과 검역을 실시하고 있으며, 이들 전염병은 위험도에 따라 중요도 리스트 및 질병 발생 상황별 방역지침을 구분하여 살처분, 격리, 이동제한의 단계적 방역조치를 수행하고 있다.In order to systematically manage marine infectious diseases and to minimize the damage caused by diseases, the Ministry of Agriculture, Forestry and Fisheries has enforced the Marine Biological Disease Control Act in 2008 and carried out quarantine and quarantine for 21 infectious diseases. The list is divided into preventive guideline for each disease occurrence situation, and stepwise prevention measures such as disposal, quarantine, and movement restriction are carried out.

이들 방역과 검역의 대상이 되는 수산생물질병 중, 바이러스 질병이 67%를 차지하고 있는데, 우리나라에서 검역과 방역에 사용되고 있는 바이러스전염병의 진단법은 주로 바이러스 게놈을 표적으로 한 PCR법을 중심으로 행하여지고 있다. 또한 어류주화세포를 이용한 분리배양법과 병리조직학적 방법을 병행하기도 하는데, 어류의 경우, 주로 PCR법을 사용하며, 패류나 갑각류는 PCR법과 병리조직학적 방법을 병용하고 있다. 그러나 면역학적 방법은 거의 사용하지 않고 있는데, 이는 아직 병원바이러스에 대한 특이항체를 보유하고 있지 않기 때문이다.Among these aquatic organisms that are subject to quarantine and quarantine, virus disease accounts for 67%. In Korea, the method of diagnosis of viral infectious diseases used in quarantine and prevention is mainly performed by PCR method targeting viral genome . In addition, the isolation culture method and the histopathological method using fish coin cells are performed in parallel. In case of fish, PCR method is mainly used, and shellfish and crustacean are combined with PCR method and histopathological method. However, immunological methods are rarely used because they do not yet have specific antibodies against the hospital virus.

PCR에 의한 진단법은 신속진단이 가능하므로 바이러스 검출방법으로 세계적으로 널리 사용되고 있으나, 외국으로부터 유입되는 수산물의 검역, 양식장에서의 역학조사, 병성감정 및 주기적으로 어체내에서 바이러스의 감염상태를 파악하는 등의 방역에서 사용하는데 부적합한 점이 많아 일반적으로 현장에서 적용하기에는 한계가 있다. 즉, PCR법은 병원체를 직접 검출하는 방법이기 때문에 비단잉어와 같이 상품가치가 높은 수산생물일지라도 죽여야만 검사가 가능하다. 또한 한번에 다수의 샘플처리가 어려우며, 다수의 샘플 검사에 많은 비용이 소요되는 단점을 갖고 있다. 또한 PCR 검사는 유전자를 표적으로 하기 때문에 병원체가 불활화 되어도 유전자가 검출되며, 양식어에 2개 이상의 바이러스가 혼합 감염되어 있을 경우, 정확한 진단이 어렵다.The PCR-based diagnosis method is widely used worldwide as a virus detection method because it can detect rapidly. However, it can be used for quarantine of aquatic products from foreign countries, epidemiological investigation in aquaculture field, pathological emotion, There is a limit to apply in general in the field. In other words, since the PCR method is a method of directly detecting a pathogen, it is possible to perform an inspection only by killing a marine organism having a high commercial value such as Nishikigoi. Also, it is difficult to process a large number of samples at once, and it is disadvantageous that a large number of samples are expensive to be inspected. In addition, since the PCR test targets the gene, the gene is detected even if the pathogen is inactivated, and it is difficult to accurately diagnose if the virus is mixed with two or more viruses.

이에 비하여 면역학적 진단법은 항체를 이용하여 병원체 감염을 진단하는 방법이다. 면역학적 진단법에는 병원체의 특이항체를 이용하여 병원체를 직접적으로 검출하는 방법과, 혈중에 존재하는 특이항체를 검출함으로써 병원체 감염을 진단하는 간접적 방법이 있다.In contrast, immunological diagnosis is a method of diagnosing pathogen infection using antibodies. Immunological diagnosis includes direct detection of pathogens using specific antibodies of pathogens and indirect detection of pathogen infection by detecting specific antibodies present in the blood.

직접법에 의한 면역학적 진단법은 병원체를 직접 검출하는 방법으로, 6시간 이내에 질병 검사가 가능한 신속성을 갖고 있다. 또한 민감도와 특이성이 매우 높으며, 어체 내 병원체 추적이 용이하며, 감염세포 및 감염정도의 확인도 가능하다. 병원체에 대한 특이 항체를 안정적으로 생산이 가능하게 되면, 진단 키트 제작을 통해 양식 현장에서도 간단히 질병을 진단할 수 있다.Immunological diagnosis by direct method is a method of directly detecting pathogens and has a rapidity to test disease within 6 hours. It is also highly sensitive and specific, and it is easy to trace pathogens in the fish body, and the infected cells and the degree of infection can be checked. Once a specific antibody against a pathogen is produced stably, diagnosis can be easily diagnosed at aquaculture site through the production of a diagnostic kit.

간접법에 의한 면역학적 진단법은 혈중에 존재하는 특이 항체를 검출하는 방법으로 저렴한 비용으로 다수의 샘플 처리가 가능하고 검출 감도 및 결과에 대한 신뢰성이 높아 사람이나 가축에서는 병원체의 감염 이력의 파악, 건강상태 모니터링, 백신의 효능 검증 등의 목적으로 널리 사용되고 있다.Indirect immunoassay is a method to detect specific antibodies in the blood. It can treat a large number of samples at low cost. It has high detection sensitivity and reliability of results. Therefore, in human and livestock, Monitoring, and verifying the efficacy of vaccines.

간접법에 의한 면역학적 진단법은 검사 대상 생물을 죽일 필요가 없으며, 단지 미량의 혈청채취로 진단이 가능하다. 또한 다수의 시료를 저렴한 비용으로 신속 진단이 가능하여 항체검출 ELISA법을 사용하면 한번에 300개 이상의 시료처리가 가능하고, PCR보다 약 100배 저렴한 비용으로 15배 이상의 시료처리가 가능해지게 된다. 뿐만 아니라, 불현성 감염어 진단 및 바이러스 감염 이력 파악이 가능하며, 백신 효능의 판정 및 방역 실시 후, 효능 판정에 유용하다.Immunological diagnosis by indirect method does not need to kill the organism to be tested, and it can be diagnosed only by a very small amount of serum. In addition, it is possible to rapidly diagnose a large number of samples at a low cost. By using the antibody detection ELISA method, more than 300 samples can be processed at once, and 15 times more samples can be processed at a cost about 100 times lower than that of PCR. In addition, it is possible to diagnose infectious infectious diseases and to detect the history of virus infection, and it is useful for determining efficacy after determination of vaccine efficacy and prevention.

이와 같은 간접법에 의한 면역학적 진단법을 사용하기 위하여는 어류의 IgM에 대한 특이항체가 필요하다. 하지만 어류의 항체는 포유류의 IgG와는 달리 친화력이 낮은 IgM으로 구성되어 있는 것으로 알려져 있으며, 어류를 대상으로 항체검출 ELISA를 적용 시, 어류 IgM과 블로킹제와의 비특이적 흡착에 의해 높은 백그라운드가 유발되는 등 포유류에서 나타나지 않는 문제점들이 보고되고 있다. 이때문에 국제수역사무국 (OIE)에서는 재현성이 낮다는 이유로 항체검출 ELISA를 진단법으로서 받아들이지 않고 있다.In order to use this indirect immunological assay, specific antibodies against fish IgM are required. However, fish antibodies are known to be composed of low affinity IgM, unlike mammalian IgG. In case of applying ELISA for detection of fish, high background is caused by nonspecific adsorption of fish IgM and blocking agent Problems that do not occur in mammals are reported. For this reason, the International Bureau of OIE (OIE) has not accepted antibody detection ELISA as a diagnostic method because of its low reproducibility.

그러나 최근 연구에서는 어류 IgM과 블로킹제와의 비특이적 흡착을 억제하는 방법이 제기되고 있다. 따라서 ELISA 상에서 블로킹제와의 비특이적 흡착이 낮고 어류 IgM에 대한 특이 항체를 생산, 분리하여 수산생물 병원감염 진단에 사용하는 연구가 시급하다.
However, in recent studies, a method for suppressing nonspecific adsorption of fish IgM and blocking agent has been proposed. Therefore, it is urgent to use low specific adsorption with blocking agent in ELISA, and to produce and isolate specific antibody against fish IgM for diagnosis of aquatic organism hospital infection.

국내 공개특허 제10-2008-0008802호에는 우럭 (Sebastes schlegeli)으로부터 분리/정제된 면역글로불린 (Ig) 및 이의 생성방법에 관한 것으로, 우럭 (Sebastes schlegeli)으로부터 분리/정제된 면역글로불린에 대한 단클론항체 및 이의 생성방법, 단클론항체의 감별키트를 제공하며, 백신 개발에 필요한 유용한 정보를 제공하는 우럭으로부터 정제된 면역글로불린에 대한 단클론항체 및 이의 생산방법을 개시하고 있다.In Korean Patent Laid-Open No. 10-2008-0008802, immunoglobulin (Ig) isolated and purified from Sebastes schlegeli and a method for producing the same are disclosed. The monoclonal antibody against immunoglobulin isolated / purified from Sebastes schlegeli And a method for producing the same, a monoclonal antibody against a purified immune globulin, and a method for producing the monoclonal antibody against immune globulin, which provides useful information necessary for vaccine development. 국내 등록특허 제10-1414009호에는 노다 바이러스 유래의 외피 단백질을 코딩하는 유전자를 포함하는 형질전환 식물체 또는 이의 추출물을 포함하는 어류 바이러스성 신경 괴사증의 예방용 백신 조성물, 상기 백신 조성물을 포함하는 어류 바이러스성 신경 괴사증의 예방용 사료 첨가제 및 상기 백신 조성물 또는 상기 사료 첨가제를 어류에 경구투여하는 것을 포함하는 어류 바이러스성 신경 괴사증을 예방하는 방법을 개시하고 있다.Korean Patent No. 10-1414009 discloses a vaccine composition for preventing fish viral neurotoxicity comprising a transgenic plant or an extract thereof containing a gene encoding a coat protein derived from Nodavirus, a fish virus comprising the vaccine composition A feed additive for preventing sexual neurotoxicity and a method for preventing fish viral neurotoxicity comprising orally administering the vaccine composition or the feed additive to fish. 국내 등록특허 제10-0257319호에는 하는 생쥐의 융합세포주 IP324 및 그의 제조방법은 IPNV가 숙주에 감염하는 것을 그 혈청형에 관계 없이 근본적으로 방지하여 대량 폐사로 인한 양식업의 막대한 경제적인 손실을 줄일 수 있고 해마다 계속되는 IPNV의 피해를 근본적으로 차단할 수 있을 뿐 아니라, IPNV의 수용체와 상기 바이러스를 중화하는 기작을 연구하기 위한 도구로 이용되는 등 기초과학 연구의 도구로 이용될 수 있는 어류의 전염성 췌장 괴저 바이러스의 항원단백질에 대한 단일클론 항체를 분비하는 융합세포주 및 그 제조방법이 개시되어 있다.Domestic Patent No. 10-0257319 discloses a fusion cell line IP324 of a mouse and a method for producing the same, which can fundamentally prevent IPNV from infecting a host, regardless of the serotype thereof, thereby reducing enormous economic loss of aquaculture caused by massive deaths And can be used as a tool for researching the mechanism of neutralizing IPNV receptors and viruses, as well as being able to fundamentally block the ongoing annual damage of IPNV. Infectious pancreatic necrosis virus A monoclonal antibody against an antigenic protein of the present invention and a preparation method thereof. 대한민국 등록특허 10-1273264호에서는 어류 노다바이러스 단백질의 에피토프를 포함하는 폴리펩타이드 및 이를 이용한 재조합 백신 및 이를 이용하여 어류를 면역시키는 방법, 어류 노다바이러스 질병의 진당방법을 개시하고 있다. 그러나 상기 발명들은 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체 및 이의 용도를 제공하는 본 발명과는 그 구성 및 효과에서 차이를 보인다.Korean Patent No. 10-1273264 discloses a polypeptide comprising an epitope of a fish nodavirus protein, a recombinant vaccine using the same, a method of immunizing a fish with the polypeptide, and a method of promoting fish nodavirus disease. However, the above-mentioned inventions are different from the present invention in providing the monoclonal antibody specific for immunoglobulin M and its use in its constitution and effect.

본 발명은 우리나라의 대표적인 양식어인 넙치의 감염성 질병의 진단과 치료 및 예방을 용이하게 수행하기 위하여 필요한 IgM에 대한 단클론항체를 개발하여 이를 생산하는 융합세포주 및 이에 의하여 생산되는 넙치 IgM의 단클론항체를 제공하기 위한 것이다.
The present invention relates to a fusion cell line which produces a monoclonal antibody against IgM for the purpose of easily diagnosing, treating and preventing an infectious disease of a flounder, a typical cultured fish of Korea, and a monoclonal antibody of the flounder IgM produced thereby .

본 발명은 넙치의 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체를 생산하는 기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주 24B12와 이로부터 생산되는 단클론항체 Anti-24B12를 제공하며, 이를 이용하여 넙치의 면역글로불린을 진단할 수 있는 검출키트 및 검출방법을 제공한다. 상기 어류 항원은 어류 신경괴사 바이러스, 어류 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스, 넙치 랍도바이러스, 림포시스티스, 연쇄구균, 에드워드균, 비브리오균, 스쿠치카충, 아메바충 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 분리된 항원, 약독화병원체, 불활화병원체, 재조합 단백질, 에피토프인 병원체 (항원)을 인식하는 넙치의 특이항체 검출키트를 제공한다.The present invention provides a fusion cell line 24B12 of Accession No. KCLRF-BP-00368, which produces a monoclonal antibody specific for the immunoglobulin M of flounder, and the monoclonal antibody Anti-24B12 produced therefrom, and uses this to diagnose the immunoglobulin of the flounder The present invention provides a detection kit and a detection method that can be used. Wherein the fish antigen is selected from the group consisting of fish nerve necrosis virus, fish viral hemorrhagic septicemia virus, flounder lavovirus, lymphocystis, streptococcus, Edwards bacterium, Vibrio sp. An antigen, an attenuated pathogen, an inactivation pathogen, a recombinant protein, and an epitope that is an epitope (antigen).

상기 어류 항원을 인식하는 넙치의 특이항체 검출키트는 항원-항체 복합체를 색채입자결합법으로 검출하는 어류 항원에 대한 넙치의 특이항체 검출키트이고, 상기 검출키트는 기질과 반응하여 발색하는 표지체와 축합된 항체; 및 발색기질을 포함하며, 상기 표지체는 HRP(Horse-radish peroxidase)이며, 상기 발색기질은 TMB(3,3',5,5'-tetramethyl-benzidine)인 것을 특징으로 하는 어류 항원에 대한 넙치의 특이항체 검출키트이다.The detection kit of the flounder that recognizes the fish antigen is a kit for detecting a specific antibody of a flounder against a fish antigen that detects an antigen-antibody complex by a color particle binding method, and the detection kit comprises a marker which reacts with a substrate, Conjugated antibodies; And a chromogenic substrate, wherein the marker is Horse-radish peroxidase (HRP) and the chromogenic substrate is TMB (3,3 ', 5,5'-tetramethyl-benzidine) Specific antibody detection kit.

또한 어류 항원을 코팅완충용액으로 희석하고 플레이트에 분주하여 플레이트를 코팅시키는 단계(1); 상기 (1)의 플레이트에 검사하고자하는 피검어 혈청을 반응시키는 단계(2); 상기 (2)의 플레이트를 인산완충용액으로 세척하는 단계(3); 상기 (3)의 플레이트에 기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주에 의해 생산되는 넙치 면역글로불린 M에 특이적인 단클론 항체 Anti-24B12와 효소의 결합체를 반응시키는 단계(4); 상기 (4)의 발색기질을 첨가하여 발색시키는 단계(5); 상기 (5)의 발색반응이 끝나면 황산으로 효소반응을 정지시키는 단계(6); 및 상기 (6)의 발색정도를 405 nm에서 흡광도를 측정하는 단계(7)로 이루어진 넙치의 면역글로불린 단클론항체를 이용한 항원검출방법을 제공한다.
(1) diluting the fish antigen with a coating buffer solution and dispensing the same on a plate to coat the plate; (2) a step of allowing the plate of (1) to react with the serum of the serum to be examined; (3) washing the plate of (2) with a phosphate buffer solution; A step (4) of reacting a conjugate of an enzyme with a monoclonal antibody Anti-24B12 specific to a flounder immunoglobulin M produced by a fusion cell line of Accession No. KCLRF-BP-00368 on the plate of the above (3); Adding (5) the coloring substrate of (4) to color; (6) stopping the enzyme reaction with sulfuric acid when the coloring reaction of (5) is over; And (7) measuring the absorbance at 405 nm of the color development degree of (6). The present invention also provides a method for detecting an antigen using the immunoglobulin monoclonal antibody of flounder.

본 발명은 넙치의 IgM에 특이적인 단클론항체를 생산하는 융합세포주와 여기에서 생산되는 넙치의 IgM에 특이적인 단클론 항체를 제공함으로써, 넙치의 감염성 질병의 진단과 치료 및 예방에 효과적인 진단키트, 백신 개발에 유용한 정보를 제공할 수 있어 효율적이고 안정적인 수산양식에 기여할 수 있다.
The present invention provides a diagnostic kit and a vaccine effective for diagnosis, treatment and prevention of infectious diseases of flounder by providing a fusion cell line producing a monoclonal antibody specific for the flounder's IgM and a monoclonal antibody specific for the IgM of the flounder produced thereby And thus contribute to efficient and stable aquaculture.

도 1은 정제된 넙치 IgM의 SDS-PAGE 사진이다.
도 2는 Protein L affinty column을 사용하여 정제한 넙치 IgM (PL IgM)에 대한 단클론 항체 (24B12)의 isotyping 결과를 나타낸 표이다.
도 3은 PL IgM과 MBP IgM 대한 단클론 항체의 반응을 나타낸 ELISA 결과이다.
도 4는 단클론 항체를 이용한 BSA 에 대한 특이 넙치 항체 검출 결과를 나타낸 그래프이다.
도 5는 본 발명의 단클론항체의 수탁증을 나타낸다.
Figure 1 is an SDS-PAGE photograph of purified flounder IgM.
FIG. 2 is a table showing the results of isotyping of the monoclonal antibody (24B12) against a flounder IgM (PL IgM) purified using a Protein L affinty column.
Figure 3 shows ELISA results showing the reaction of monoclonal antibodies against PL IgM and MBP IgM.
4 is a graph showing the results of detection of a specific flounder antibody against BSA using a monoclonal antibody.
Figure 5 shows the haze of a monoclonal antibody of the present invention.

본 발명은 넙치의 면역단백질인 Immunoglubulin M (IgM)을 분리하고 이에 특이성이 우수한 단클론항체를 제작하여 어류의 병원성 질병 진단과 치료 및 예방에 사용하는 방법을 제공하기 위한 넙치의 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체 및 이의 용도에 관한 것이다. 이하 본 발명을 구체적인 실시예를 들어 자세히 설명한다.
The present invention relates to a method of isolating and isolating Immunoglubulin M (IgM), an immunological protein of flounder, and producing a monoclonal antibody having specificity thereto, to provide a method for diagnosis and treatment and prevention of pathogenic diseases in fish, Monoclonal antibodies and uses thereof. Hereinafter, the present invention will be described in detail with reference to specific examples.

<실시예 1> 넙치의 혈청 분리Example 1 Serum Separation of Flounder

실험에 사용한 넙치 혈청은 전남대학교 수산과학연구소에서 사육중인 넙치 (체중: 1-1.5 kg)와 여수시에 위치한 수산물 도매상으로 구입한 넙치 (500-800 g)의 미부정맥으로부터 채혈한 후, 상온에서 30분-1시간 동안 혈액을 응고시킨 후, 6,000 rpm에서 20분간 원심 분리하여 혈청을 분리하였다. 혈청은 실험에 사용하기 전까지 -80℃에 보관하였다.
The flounder serum used in the experiment was collected from the arrhythmia of the flounder (weight: 1-1.5 kg) and the flounder (500-800 g) purchased from the fishery wholesaler located in Yeosu city at the fisheries science institute of Chonnam National University. Min for 1 hour, and the serum was separated by centrifugation at 6,000 rpm for 20 minutes. Serum was stored at -80 ° C until use in the experiment.

<실시예 2> 넙치 IgM 정제 Example 2: Flounder IgM purification

1) Protein L affinity column1) Protein L affinity column

Protein L bead (GE Healthcare, UK)을 이용하여 넙치의 IgM을 정제하였다. Protein L column에 PBS (pH7.4)를 넣어준 후, 넙치 혈청을 넣고 binding 시킨다. PBS로 수세 후, 0.1M citric acid (pH 2.5 - 3.0)을 첨가하여 넙치 IgM을 수집한 후, 1M Tris (pH 9.0)로 중화시켰다. 정제된 넙치 IgM (PL IgM)은 실험에 사용하기 전까지 -80℃에 보관하였다.
The IgM of the flounder was purified using Protein L bead (GE Healthcare, UK). Add PBS (pH 7.4) to the Protein L column, and add the serum to the plate. After washing with PBS, the flounder IgM was collected by adding 0.1 M citric acid (pH 2.5 - 3.0) and then neutralized with 1M Tris (pH 9.0). Purified flounder IgM (PL IgM) was stored at -80 ° C until used in the experiment.

2) Mannan binding protein (MBP) affinity column2) Mannan binding protein (MBP) affinity column

MBP affinity column (ImmunoPure IgM Purification Kit, Pierce, USA)을 이용하여 넙치 혈청에 들어 있는 IgM을 정제하였다. ImmunoPure MBP column을 preparation buffer 5 ml로 수세한 후 ImmunoPure IgM binding buffer 20 ml로 column을 equilibration 하였다. 넙치 혈청과 ImmunoPure IgM binding Buffer를 1:1 혼합한 후 column 넣고 4℃에서 30분간 반응시킨다. Unbinding한 protein을 제거하기 위해, ImmunoPure IgM binding Buffer 42 ml을 column에 넣고 수세하였다. ImmunoPure IgM elution buffer 3 ml을 column에 넣고 3시간 동안 실온에서 반응시킨 후 넙치 IgM을 수집하였다. 정제된 넙치 IgM (MBP IgM)은 실험에 사용하기 전까지 -80℃에 보관하였다.
IgM in the serum of the flounder was purified using MBP affinity column (ImmunoPure IgM Purification Kit, Pierce, USA). ImmunoPure MBP column was washed with 5 ml of preparation buffer and equilibrated with 20 ml of ImmunoPure IgM binding buffer. Flounder serum and ImmunoPure IgM binding buffer are mixed 1: 1 and then incubated at 4 ℃ for 30 minutes. To remove the unbound protein, 42 ml of ImmunoPure IgM binding buffer was added to the column and washed with water. ImmunoPure IgM elution buffer (3 ml) was added to the column and reacted at room temperature for 3 hours. Then, flounder IgM was collected. Purified flounder IgM (MBP IgM) was stored at -80 ° C until used in the experiment.

<실시예 3> 넙치 IgM의 구조단백질 분석<Example 3> Structural protein analysis of flounder IgM

정제한 넙치 IgM의 구조단백질을 분석하기 위해 SDS-PAGE를 실시하였다. 정제된 넙치 IgM에 동량의 SDS-sample buffer를 첨가하여 100℃에서 3분간 열처리한 후 SDS-PAGE (12% acrylamide separating gel, 4% acrylamide stacking gel)를 실시하였다. 전기영동 후, 겔은 coomassie brilliant blue로 염색하였다. SDS-PAGE was performed to analyze the structural proteins of the purified flounder IgM. SDS-PAGE (12% acrylamide separating gel, 4% acrylamide stacking gel) was applied to the purified flounder IgM by the same amount of SDS-sample buffer and heat-treated at 100 ° C for 3 minutes. After electrophoresis, the gel was stained with coomassie brilliant blue.

<실시예 4> 넙치 IgM 면역 및 Hybridoma 제작<Example 4> Immunization and Hybridoma production of flounder IgM

면역은 protein L affinity column으로 정제한 넙치 IgM (100 ug)과 complete freunds adjuvant를 1:1 비율로 혼합하여 BALB/c 마우스의 복강에 1차 면역하였다. 2주 후 마우스의 꼬리로부터 채혈한 후 ELISA를 실시하여 항체가를 측정하였으며, IgM과 PBS를 혼합하여 2차 면역하였다. 3일 후 마우스의 비장 조직을 분리한 후 PEG를 이용하여 myeloma cell과 융합시킨 후 HT 배지를 사용하여 96 well plate 에 분주하여 CO2배양기에서 37℃로 배양하였다.
Immunity was first immunized with BALB / c mouse peritoneal fluids by mixing 1: 1 ratio of flounder IgM (100 ug) purified with protein L affinity column and complete freunds adjuvant. After 2 weeks, blood was drawn from the tail of the mouse, ELISA was performed to measure antibody titer, and IgM and PBS were mixed to perform secondary immunization. Three days later, the mouse spleen was isolated and fused with myeloma cells using PEG. The cells were divided into 96-well plates using HT medium and cultured at 37 ° C in a CO 2 incubator.

<실시예 5> Hybridoma의 screeningExample 5 Screening of Hybridoma

넙치 IgM에 대하여 특이적으로 반응하는 항체를 생산하는 hybridoma를 screening하기 위하여 ELISA를 실시하였다. 항원은 정제된 넙치 IgM을 96 well plate에 well 당 각각 50 ㎕ (250 ng/well)씩 분주하여 4℃에서 overnight 또는 37℃에서 2시간 coating하였다. 2% skim milk 200 ㎕를 분주하여 blocking 한 후, TBST로 1회 세정하고 1차 항체로서 hybridoma 배양 상등액을 well 당 50 ㎕씩 분주하여 25℃에서 2시간 반응하였다. TBST로 3회 세정한 후 2차 항체로는 HRP가 표식되어 있는 goat anti-mouse IgG를 2% skim milk로 5,000배 희석하여 well 당 50 ㎕씩 분주하여 25℃에서 1시간 반응하였다. TBST로 5회 세정한 후 발색액 (TMB, color reagents)을 well 당 50 ㎕ 분주하여 발색하였다. 각 well에 1N H2SO4를 50 ㎕씩 넣어 발색 반응을 중지시킨 후, microplate photometer로 450 ㎚에서 흡광도를 측정하였다.
ELISA was performed to screen hybridomas producing antibodies that specifically react to flounder IgM. Antigens were coated with 50 μl (250 ng / well) of purified flounder IgM in a 96-well plate at 4 ° C overnight or 37 ° C for 2 hours. 2% skim milk (200 μl) was blocked, washed once with TBST, and 50 μl of the hybridoma culture supernatant as the primary antibody was dispensed at a rate of 25 ° C for 2 hours. After washing 3 times with TBST, goat anti-mouse IgG labeled with HRP was diluted 5,000 times with 2% skim milk and 50 ㎕ per well was reacted at 25 ℃ for 1 hour. After washing 5 times with TBST, coloring solution (TMB, color reagents) was added at a rate of 50 μl per well. 50 μl of 1N H 2 SO 4 was added to each well to discontinue the color reaction and the absorbance was measured at 450 nm using a microplate photometer.

<실시예 6> 단클론항체의 IsotypingExample 6 Isotyping of Monoclonal Antibodies

제작된 단클론 항체의 heavy 및 light chain의 subtype을 확인하기 위하여 Rapid ELISA mouse mAb isotyping kit (Pierce, USA)를 사용하여 ELISA를 매뉴얼에 따라 실시하였다.
ELISA was performed using a Rapid ELISA mouse mAb isotyping kit (Pierce, USA) to confirm the heavy and light chain subtypes of the prepared monoclonal antibodies.

<실시예 7> ELISA를 이용한 단클론 항체의 반응 조사 <Example 7> Examination of monoclonal antibody response using ELISA

PL IgM과 MBP IgM 대한 단클론 항체의 반응을 확인하기 위하여 ELISA를 실시하였다. 약 300 ng의 PL IgM과 MBP IgM를 96 well ELISA microplates (Greiner-bio-one, Germany)에 각각 50 ㎕씩 분주한 후 37℃에서 overnight하여 항원을 코팅하였다. T-PBS (0.05% Tween-20/PBS (v/v))로 3회 세정하였고 5% skim milk를 380 ㎕씩 분주하여 25℃에서 1시간 동안 blocking하였다. T-PBS로 3회 세정한 후 1차 항체로는 본 연구에서 제작한 단클론 항체를 시료당 2개의 well에 50 ㎕씩 분주하여 25℃에서 1시간 반응하였다. T-PBS로 3회 세정한 후 horseradish peroxidase (HRP)가 표식되어 있는 goat anti-mouse IgG (Youngin, Korea)를 5% skim milk로 1,000배 희석하여 well 당 50 ㎕씩 분주하였으며, 25℃에서 1시간 반응하였다. T-PBS로 5회 세정한 후 ELISA 발색액 (100mM Na2HPO4,50mMcitricacid,1㎎/㎖ o-phenylen diamine, 0.1% H2O2)을 well 당 50 ㎕ 분주하여 발색하였다. 각 well에 1N H2SO4를 50 ㎕씩 넣어 발색 반응을 중지시킨 후, 490 ㎚에서 흡광도를 측정하였다.
ELISA was performed to confirm the reactivity of monoclonal antibodies against PL IgM and MBP IgM. Approximately 300 ng of PL IgM and MBP IgM were dispensed into each well of 96 well ELISA microplates (Greiner-bio-one, Germany) at 50 μl each, and then coated with antigen at 37 ° C overnight. The cells were washed 3 times with T-PBS (0.05% Tween-20 / PBS (v / v)) and blocked with 5% skim milk at 38 ° C for 1 hour at 25 ° C. After washing three times with T-PBS, 50 μl of the monoclonal antibody prepared in this study was dispensed into two wells per sample and reacted at 25 ° C for 1 hour. After washing three times with T-PBS, goat anti-mouse IgG (HRP) labeled horseradish peroxidase (HRP) was diluted 1,000 times with 5% skim milk and 50 ㎕ per well was dispensed. Time reaction. After washing 5 times with T-PBS, 50 μl of ELISA color development solution (100 mM Na 2 HPO 4 , 50 mM citric acid, 1 mg / ml o-phenylen diamine, 0.1% H 2 O 2 ) was added to each well. 50 μl of 1N H 2 SO 4 was added to each well to discontinue the color reaction, and the absorbance was measured at 490 nm.

<실시예 8> Bovine serum albumin (BSA)에 대한 특이 넙치 항체 검출 <Example 8> Detection of specific flounder antibody against bovine serum albumin (BSA)

여수시에 위치한 수산물 도매상으로 구입한 넙치 (800 - 1,000g)에 BSA를 1 mg/200 ㎕ 씩 복강에 주사한 후, 300 L 수조에 수용하여 (수온: 17-20℃) 21일간 사육하였다. BSA 접종 후, 0, 7, 14, 21일째 넙치의 미부정맥으로부터 혈액을 약 1 ml씩 채혈한 후, 원심분리 (6,000 rpm, 4℃, 20분)하여 혈청을 분리하였다. 분리된 혈청은 실험에 사용하기 전까지 -20℃에 보관하였다.BSA (1 mg / 200 μl) was injected intraperitoneally into flounder (800-1,000 g) purchased from a marine wholesaler located in Yeosu City and housed in a 300 L water tank (water temperature: 17-20 ° C) for 21 days. After BSA inoculation, approximately 1 ml of blood was collected from the arrhythmia of flounder on days 0, 7, 14, and 21, and serum was separated by centrifugation (6,000 rpm, 4 ° C, 20 minutes). Separated serum was stored at -20 ° C until used in the experiment.

BSA에 대한 특이 넙치 항체를 검출하기 위해, 위에서 얻은 혈청을 사용하여 ELSIA를 실시하였다. ELISA plates에 5 μg BSA/ 50 ㎕를 각 well에 분주한 후, 37℃에서 overnight하여 항원을 코팅하였다. T-PBS (0.05% Tween-20/PBS (v/v))로 3회 세정하였고 5% skim milk를 380 ㎕씩 분주하여 25℃에서 1시간 동안 blocking 하였다. T-PBS로 3회 세정한 후 1차 항체로는 위에서 채혈한 넙치 혈청을 5% skim milk로 40배 희석하여 1시간 반응시킨 후, 시료당 2개의 well에 50 ㎕씩 분주하였고, 2차 항체로는 본 연구에서 제작한 단클론항체를 사용하여 50 ㎕씩 분주하였으며, 3차 항체로는 5% skim milk로 1,000배 희석된 horseradish peroxidase (HRP)가 표식되어 있는 goat anti-mouse IgG (Youngin, Korea)를 50 ㎕씩 분주하였다. 각각의 항체 반응은 25℃에서 1시간 동안 반응하였다. T-PBS로 5번 수세하였고, ELISA 발색액 (100 mM Na2HPO4, 50 mM citric acid, 1 mg/ 1 ㎖ o-phenylenediamine, 0.03% H2O2)을 각 well에 50 ㎕씩 분주한 후 25℃에서 발색하였다. 각 well에 2N H2SO4를 50 ㎕씩 넣어 발색 반응을 중지시킨 후, 490 ㎚에서 흡광도를 측정하였다.
In order to detect specific flounder antibodies against BSA, ELSIA was performed using the serum obtained above. 5 μg of BSA / 50 μl was dispensed into each well of the ELISA plates, and the antigen was coated overnight at 37 ° C. The cells were washed 3 times with T-PBS (0.05% Tween-20 / PBS (v / v)) and blocked with 5% skim milk at 38 ° C for 1 hour at 25 ° C. After washing three times with T-PBS, the flounder serum collected from the above was diluted 40 times with 5% skim milk and reacted for 1 hour. Then, 50 μl of each antibody was dispensed into two wells per sample. 50 μl of each of the monoclonal antibodies prepared in this study was used. As a tertiary antibody, goat anti-mouse IgG labeled with horseradish peroxidase (HRP) diluted 1,000-fold with 5% skim milk (Youngin, Korea ) Were dispensed in 50 μl aliquots. Each antibody reaction was reacted at 25 ° C for 1 hour. The cells were washed 5 times with T-PBS, and 50 ㎕ of each ELISA coloring solution (100 mM Na 2 HPO 4 , 50 mM citric acid, 1 mg / 1 o- phenylenediamine, 0.03% H 2 O 2 ) And then developed at 25 ° C. 50 ㎕ of 2N H 2 SO 4 was added to each well to discontinue the color reaction, and the absorbance was measured at 490 nm.

<실시예 9> 넙치의 면역글로불린 M의 단클론항체를 이용한 넙치 혈청내 항원(병원체)에 대한 특이항체 검출키트Example 9 Detection kit for a specific antibody against an antigen (pathogen) in a flounder serum using a monoclonal antibody of an immunoglobulin M of a flounder

본 발명은 본 발명의 단클론항체를 포함하는, 넙치의 면역글로불린 M을 이용한 넙치 혈청내 항원에 대한 특이항체 검출키트를 제공한다. 특히 본 발명은 이미 알려져 있는 각종 병원성 바이러스, 세균, 기생충 등의 항원 검출키트에 이용할 수 있으며, 상기 검출키트는 항원-항체 복합체를 색체입자결합법으로 검출하는 검출키트일 수 있다. 상기 알려진 항원은 어류 신경괴사 바이러스, 어류 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스, 넙치 랍도바이러스, 림포시스티스, 연쇄구균, 에드워드균, 비브리오균, 스쿠치카충, 아메바충 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 분리된 항원, 약독화병원체, 불활화병원체, 재조합 단백질, 에피토프일 수 있다.The present invention provides a specific antibody detection kit for an antigen in a flounder serum using an immunoglobulin M of a flounder including a monoclonal antibody of the present invention. In particular, the present invention can be used for an antigen detection kit of various known pathogenic viruses, bacteria, parasites and the like, and the detection kit can be a detection kit for detecting an antigen-antibody complex by a color particle binding method. Wherein said known antigen is selected from the group consisting of fish nerve necrosis virus, fish viral hemorrhagic sepsis virus, flounder virus, limpocystis, streptococcus, Edwards fungi, Vibrio fungi, An antigen, an attenuated pathogen, an inactivated pathogen, a recombinant protein, or an epitope.

본 발명의 검출키트는 이미 알려진 항원, 본 발명의 단클론항체, 기질과 반응하여 발색하는 표지체와 축합된 항체 및 발색기질을 포함한다. 상세하게는, 상기 검출키트는 검출하고자 하는 NNV, VHSV 등의 항원을 최종농도가 10 ㎍/㎖로 희석하여 코팅한 플레이트에 항원 감염 의심어 또는 양식장에서 무작위 추출한 피검어 넙치로부터 채취한 혈청을 반응시킨 다음, 본 발명에 따른 넙치 면역글로불린 M에 대한 단클론항체를 반응시켜 결합여부를 관찰함으로써 피검어 혈청 내의 특정 항원에 대한 면역글로불린의 유무를 판단한다.The detection kit of the present invention includes a known antigen, a monoclonal antibody of the present invention, an antibody condensed with a marker that reacts with a substrate, and a chromogenic substrate. Specifically, the detection kit was prepared by diluting sera from NNV, VHSV, etc., diluted at a final concentration of 10 占 퐂 / ml, onto serum-coated plates, , And the presence or absence of immunoglobulin for the specific antigen in the serum of the black fish is determined by reacting the monoclonal antibody against the flounder immunoglobulin M according to the present invention.

본 발명의 검출키트는 특정 항원 희석액으로 코팅된 플레이트, 1:2,000배로 희석된 HRP(Horse-radish peroxidase)-축합 넙치의 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체, 인산완충용액, TMB 및 1N H2SO4 로 구성된다.The detection kit of the present invention comprises a plate coated with a specific antigen dilution solution, a monoclonal antibody specific for immunoglobulin M of horse-radish peroxidase (HRP) -conjugated flounder diluted 1: 2000, phosphate buffer solution, TMB and 1N H 2 SO 4 .

본 발명의 검출키트를 이용하여, 넙치의 면역글로불린을 검출하는 방법은 다음과 같다. 항원이 코팅된 플레이트에 피검어 넙치로부터 채취한 혈청을 각 웰 당 100 ㎕ 씩 첨가하고 실온에서 60분 동안 반응시킨 다음, 인산완충용액으로 플레이트를 3회 세척한다. HRP-축합 넙치의 면역글로불린 M에 특이적인 단클론항체를 플레이트의 각 웰 당 100 ㎕씩 첨가하고 20℃에서 60분 동안 반응시킨 다음 인산완충용액으로 플레이트를 3회 세척한다. 그 다음, HRP의 기질인 TMB(3,3',5,5'-tetramethyl-benzidine)를 플레이트의 각 웰 당 100 ㎕ 씩 첨가하고 암소에서 30분 동안 반응시켜 발색반응을 유도한다. 그런 다음, 1N H2SO4를 플레이트의 각 웰 당 100 ㎕ 씩 첨가하여 효소반응을 정지시킨다. 본 발명의 검출키트를 이용하여 이렇게 처리한 플레이트를 ELISA 리더 (reader)를 사용하여 405 nm에서 흡광도를 측정한다. 측정 결과, 흡광도가 0.2 이상인 경우 양성으로 판정한다.
A method for detecting immunoglobulin of a flounder using the detection kit of the present invention is as follows. To the plate coated with the antigen, 100 μl of the serum collected from the black flounder is added to each well, reacted at room temperature for 60 minutes, and the plate is washed three times with phosphate buffer solution. Add 100 μl of the monoclonal antibody specific for the immunoglobulin M of the HRP-condensed flounder to each well of the plate, incubate at 20 ° C for 60 minutes, and wash the plate three times with phosphate buffer solution. Next, 100 μl of TMB (3,3 ', 5,5'-tetramethyl-benzidine), which is a substrate of HRP, is added to each well of the plate and reacted in a dark place for 30 minutes to induce a color reaction. Then, 1N H 2 SO 4 is added to each well of the plate at 100 μl to stop the enzyme reaction. The plate thus treated with the detection kit of the present invention is measured for its absorbance at 405 nm using an ELISA reader. When the absorbance is 0.2 or more, it is determined to be positive.

<시험예 1> 넙치 IgM 정제Test Example 1: Flounder IgM purification

도 1은 정제된 넙치 IgM의 SDS-PAGE 사진이다. Protein L affinity column과 MBP affinty column을 사용하여 넙치 IgM을 정제한 후 SDS-PAGE를 실시한 결과, 두 column 모두 heavy chain (76 kDa)과 light chain (26.5 kDa)이 관찰되었다.Figure 1 is an SDS-PAGE photograph of purified flounder IgM. Both the heavy chain (76 kDa) and the light chain (26.5 kDa) were detected by SDS-PAGE after purification of the flounder IgM using Protein L affinity column and MBP affinty column.

<시험예 2> Hybridoma 제작 및 단클론 항체의 screening<Test Example 2> Hybridoma preparation and screening of monoclonal antibodies

Protein L affinity column으로 정제한 넙치 IgM (PL IgM)을 면역시킨 마우스의 비장 조직과 Sp2/0Ag14 myeloma 세포를 PEG로 융합시켜 hybridoma를 제작하였다. Hybridoma로부터 생성되는 항체를 ELISA와 western blot으로 스크린 한 결과, 6개 시료에서 양성 반응을 나타내었다. 6개의 시료를 대상으로 ELISA로 3회 클로링을 실시한 결과, 최종적으로 1개의 clone (24B12)을 선별할 수 있었다. 이후의 실험에서는 1개의 clone으로부터 생산된 항체를 사용하여 (항체의 이름 : clone의 이름과 동일하게 사용) 특이성 조사를 실시하였다.
Hybridoma was prepared by fusing Sp2 / 0Ag14 myeloma cells with PEG in mouse immunized with flounder IgM (PL IgM) purified with Protein L affinity column. Antibodies generated from Hybridoma were screened by ELISA and western blot, and the results were positive in 6 samples. Six clones were cloned three times by ELISA and finally one clone (24B12) was selected. In subsequent experiments, we performed a specificity study using antibodies produced from one clone (using the same name as the antibody name: clone).

<시험예 3> 단클론 항체의 isotype &Lt; Test Example 3 > Isotype of monoclonal antibody

도 2는 PL IgM에 대한 단클론 항체 (24B12)의 isotyping 결과를 나타낸 표이다. PL IgM으로 제작된 단클론 항체를 대상으로 rapid ELISA mouse mAb isotyping kit를 사용하여 IgG의 heavy 및 light chain의 subtype을 조사한 결과, H-chain은 IgG1로, L-chain은 κ로 확인되었다.
2 is a table showing the results of isotyping of the monoclonal antibody (24B12) against PL IgM. The heavy and light chain subtypes of IgG were examined by immunoblotting with a rapid ELISA mouse mAb isotyping kit. The H-chain was identified as IgG1 and the L-chain as κ.

<시험예 4> 단클론 항체의 넙치 IgM 반응&Lt; Test Example 4 > IgM response of a monoclonal antibody to a flounder

도 3은 PL IgM과 MBP IgM 대한 단클론 항체의 반응을 나타낸 ELISA 결과이다. 두 항원 (PL IgM과 MBP IgM) 모두 약 1.8 정도의 OD값이 관찰되었다. 대조구 (항원: skim milk)에서는 OD값이 관찰되지 않았다.
Figure 3 shows ELISA results showing the reaction of monoclonal antibodies against PL IgM and MBP IgM. Both ODs (PL IgM and MBP IgM) showed an OD value of about 1.8. No OD value was observed in the control (antigen: skim milk).

<시험예 5> BSA에 대한 특이 넙치 항체 검출Test Example 5 Detection of specific flounder antibody against BSA

도 4는 단클론 항체를 이용한 BSA 에 대한 특이 넙치 항체 검출 결과를 나타낸 그래프이다. 본 발명에서 제작한 단클론 항체의 특이성을 조사하기 위해, 넙치에 BSA를 면역시킨 후 0, 7, 14, 21일째 혈청을 분리하여 BSA에 대한 항체가를 측정하였다. BSA 면역된 넙치의 혈청은 시간이 지날수록 항체가가 상승하는 것으로 나타났다. 즉, 넙치 1 (BSA 1)의 경우, 14일과 21일째 항체가가 측정되었으며, 넙치 2 (BSA 2)는 21일째 항체가가 측정되었다. 대조구의 넙치에서는 항체가의 상승이 관찰되지 않았다.
4 is a graph showing the results of detection of a specific flounder antibody against BSA using a monoclonal antibody. In order to investigate the specificity of the monoclonal antibody produced in the present invention, sera were isolated at 0, 7, 14, and 21 days after immunization with BSA in flounder, and antibody titers to BSA were measured. Serum of BSA immunized flounder was found to increase with time. That is, in the case of flounder 1 (BSA 1), antibody titer was measured at 14 days and 21 days, and that of flounder 2 (BSA 2) was measured at 21 days. No elevation of antibody titer was observed in the control flounder.

본 발명은 넙치의 IgM에 특이적인 단클론항체를 생산하는 융합세포주와 여기에서 생산되는 넙치의 IgM에 특이적인 단클론 항체를 제공함으로써, 넙치의 감염성 질병의 진단과 치료 및 예방에 효과적인 진단키트, 백신 개발에 유용한 정보를 제공할 수 있어 효율적이고 안정적인 수산양식에 기여할 수 있으므로 수산양식 산업과, 진단키트 및 예방백신 등에 활용할 수 있어 산업상 이용가능성이 있다.The present invention provides a diagnostic kit and a vaccine effective for diagnosis, treatment and prevention of infectious diseases of flounder by providing a fusion cell line producing a monoclonal antibody specific for the flounder's IgM and a monoclonal antibody specific for the IgM of the flounder produced thereby Therefore, it can be utilized in aquaculture industry, diagnostic kits, and preventive vaccines. Therefore, there is a possibility of industrial application.

<수탁번호><Access number>

기탁기관명 : 한국세포주연구재단Depositor Name: Korea Cell Line Research Foundation

수탁번호 : KCLRFBP00368Accession number: KCLRFBP00368

수탁일자 : 2016816Funding Date: 2016816

Claims (8)

기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주에 의해 생산되는 넙치 면역글로불린 M에 특이적인 단클론 항체 Anti-24B12을 포함하는 어류 항원 검출키트.
A fish antigen detection kit comprising a monoclonal antibody Anti-24B12 specific for a flounder immunoglobulin M produced by a fusion cell line of Accession No. KCLRF-BP-00368.
제1항에 있어서 상기 어류 항원은 어류 신경괴사 바이러스, 어류 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스, 넙치 랍도바이러스, 림포시스티스, 연쇄구균, 에드워드균, 비브리오균, 스쿠치카충, 아메바충 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 분리된 항원, 약독화병원체, 불활화병원체, 재조합 단백질, 에피토프인 병원체 (항원)을 인식하는 넙치의 특이항체 검출키트.
The method according to claim 1, wherein the fish antigen is selected from the group consisting of fish nerve necrosis virus, fish viral hemorrhagic septic virus, flounder virus, lymphocystis, streptococcus, Edwards fungus, Vibrio fungus, A kit for detecting a specific antibody of a flounder recognizing a selected one or more isolated antigens, attenuated pathogens, inactivation pathogens, recombinant proteins, epitopes which are epitopes (antigens).
제1항 또는 제2항에 있어서, 상기 어류 항원을 인식하는 넙치의 특이항체검출키트는 항원-항체 복합체를 색채입자결합법으로 검출하는 어류 항원에 대한 넙치의 특이항체검출키트.
The kit for detecting a specific antibody of a flounder according to claim 1 or 2, wherein the specific antibody detecting kit for detecting the fish antigen is a kit for detecting a specific antigen of a flounder against a fish antigen by detecting an antigen-antibody complex by a color particle binding method.
제3항에 있어서, 상기 검출키트는 기질과 반응하여 발색하는 표지체와 축합된 항체; 및 발색기질을 포함하며, 상기 표지체는 HRP(Horse-radish peroxidase)이며, 상기 발색기질은 TMB(3,3',5,5'-tetramethyl-benzidine)인 것을 특징으로 하는 어류 항원에 대한 넙치의 특이항체 검출키트.
[Claim 4] The method according to claim 3, wherein the detection kit comprises: an antibody condensed with a labeling substance that reacts with a substrate; And a chromogenic substrate, wherein the marker is Horse-radish peroxidase (HRP) and the chromogenic substrate is TMB (3,3 ', 5,5'-tetramethyl-benzidine) Specific antibody detection kit.
어류 항원을 코팅완충용액으로 희석하고 플레이트에 분주하여 플레이트를 코팅시키는 단계(1);
상기 (1)의 플레이트에 검사하고자하는 피검어 혈청을 반응시키는 단계(2);
상기 (2)의 플레이트를 인산완충용액으로 세척하는 단계(3);
상기 (3)의 플레이트에 기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주에 의해 생산되는 넙치 면역글로불린 M에 특이적인 단클론 항체 Anti-24B12와 효소의 결합체를 반응시키는 단계(4);
상기 (4)의 발색기질을 첨가하여 발색시키는 단계(5);
상기 (5)의 발색반응이 끝나면 황산으로 효소반응을 정지시키는 단계(6); 및
상기 (6)의 발색정도를 405 nm에서 흡광도를 측정하는 단계(7)로 이루어진 넙치의 면역글로불린 단클론항체를 이용한 항원검출방법.
Diluting the fish antigen with a coating buffer solution and dispensing it on the plate to coat the plate (1);
(2) a step of allowing the plate of (1) to react with the serum of the serum to be examined;
(3) washing the plate of (2) with a phosphate buffer solution;
A step (4) of reacting a conjugate of an enzyme with a monoclonal antibody Anti-24B12 specific to a flounder immunoglobulin M produced by a fusion cell line of Accession No. KCLRF-BP-00368 on the plate of the above (3);
Adding (5) the coloring substrate of (4) to color;
(6) stopping the enzyme reaction with sulfuric acid when the coloring reaction of (5) is over; And
(7) measuring the absorbance at 405 nm of the color development degree of (6), and detecting the absorbance of the oligonucleotide using the immunoglobulin monoclonal antibody of flounder.
제5항에 있어서 상기 어류 항원은 어류 신경괴사 바이러스, 어류 바이러스성 출혈성 패혈증 바이러스, 넙치 랍도바이러스, 림포시스티스, 연쇄구균, 에드워드균, 비브리오균, 스쿠치카충, 아메바충 등으로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상의 분리된 항원, 약독화병원체, 불활화병원체, 재조합 단백질, 에피토프인 병원체 (항원)을 인식하는 넙치의 특이항체 검출키트.
The method according to claim 5, wherein the fish antigen is selected from the group consisting of fish nerve necrosis virus, fish viral hemorrhagic septic virus, flounder virus, lymphocystis, streptococcus, Edwards fungus, Vibrio fungus, A kit for detecting a specific antibody of a flounder recognizing a selected one or more isolated antigens, attenuated pathogens, inactivation pathogens, recombinant proteins, epitopes which are epitopes (antigens).
기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주에서 생산되는 단클론 항체 Anti-24B12.
Monoclonal antibody Anti-24B12 produced in the fusion cell line of accession number KCLRF-BP-00368.
기탁번호 KCLRF-BP-00368의 융합세포주.Fusion cell line of accession number KCLRF-BP-00368.
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