KR20170091040A - ｐ２２ｐｈｏｘ 유래 Ｎ 말단의 8개 아미노산인 Ｎ８ 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드를 세포 및 동물 모델에 처리한 경우 사망률 감소, 폐 염증 감소, ROS 생성, 염증성 사이토카인 생산에 영향을 주는 바, p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다.
본 발명에 따른 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물은 루비콘(Rubicon)-p22phox의 상호작용을 차단하여 ROS 과잉 생성, NOX 조립(assembly) 및 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해하므로, 패혈증과 같은 ROS와 관련된 치명적인 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 또는 건강 기능 식품 조성물로 유용하게 사용될 수 있다.

Description

ｐ２２ｐｈｏｘ 유래 Ｎ 말단의 8개 아미노산인 Ｎ８ 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물{Composition for preventing or treating inflammatory diseases comprising mimetic compounds of N8 peptide, an N-terminal 8-amino acid peptide derived from p22phox as an active ingredient}
본 발명은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드를 세포 및 동물 모델에 처리한 경우 사망률 감소, 폐 염증 감소, ROS 생성, 염증성 사이토카인 생산에 영향을 주는 바, p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다.
패혈증(sepsis)은 과도한 염증(hyperinflammation), 산화적 손상(oxidative damage), 과응고(hypercoagulation), 조직 저관류(tissue hypoperfusion), 저산소증(hypoxia), 면역 억제(immune suppression) 및 다기관 기능 장애(multiorgan dysfunction)로 특징지어지는 복합 증후군(complex syndrome)이다. 패혈증은 연간 약 20만 명의 사망자가 발생하며, 많은 노력에도 불구하고 패혈증의 사망률은 30~50 % 정도로 높은 수준이다(Cohen J., Nature., 420(6917):885-891, 2002; Balk RA., Critical care clinics., 16(2):179-192, 2000; Dombrovskiy VY. et.al., Critical care medicine., 35(5):1244-1250, 2007; Martin GS. et.al., The New England journal of medicine., 348(16):1546-1554, 2003; Padkin A. et.al., Critical care medicine., 31(9):2332-2338, 2003). 패혈증의 발생 빈도는 지난 수십 년 동안 상당히 증가 되었는데, 이는 인구 고령화, 임상수술(clinical procedures) 및 면역억제제(immunosuppressant)의 사용, 감염성 질환을 치료하기 위한 항생제의 남용과 그 결과로 인해 발생한 약물 내성균(drug-resistant bacteria)의 조합 때문일 것이다(Vincent JL. et.al., Jama ., 274(8):639-644, 1995). 패혈증의 주요 원인인 박테리아 감염에 대한 숙주 반응은 주로 선천성 면역계(innate immune system), 특히 PRR(pattern-recognition receptors)를 발현하는 면역 세포(대식세포(macrophage), 호중구(neutrophils) 및 림프구(lymphocytes))에 의해 조절된다(Xu J. et.al., Nature medicine., 15(11):1318-1321, 2009). 박테리아 감염에 의해 유도된 PRR 신호전달 경로(signaling pathway)의 자극은 염증성 사이토카인(inflammatory cytokines)의 분비와, 감염 물질(infectious agents)의 제거 및 조직 회복의 유도(tissue repair)를 촉진시키는 다양한 전염증성 매개체(proinflammatory mediators)의 분비를 개시한다(Janeway CA, Jr., et.al., Annual review of immunology., 20:197-216, 2002; Gay NJ. et.al., Annual review of biochemistry., 76:141-165, 2007). 특히, 전염증성 매개체로서 식균작용(phagocytosis) 중에 생성되는 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)은 세균 활성(microbicidal activity)에 필수적일 뿐만 아니라, 여러 사이토카인, 성장인자(growth factors) 및 호르몬의 발현과 같은 생리적 세포 기능에 중요한 역할을 한다. ROS의 과도한 방출은 염증, 산화 조직 손상, 혈관 투과성 및 기관 손상을 증가시켜 패혈증을 악화시킨다. 그러나 ROS의 과도한 방출은 염증, 산화적 조직 손상(oxidative tissue damage), 혈관 투과성(vascular permeability) 및 장기 손상을 증가시켜 패혈증을 악화시킨다(Lambeth JD., Nature reviews Immunology., 4(3):181-189, 2004; Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014). 따라서, ROS 생성을 조절하는 것은 패혈증에 대한 가능성 있는 치료적 접근이 될 수 있을 것이다.
과산화물 음이온(superoxide anion) 생성 및 결과적으로 ROS 생성에 관여하는 효소는 NADPH 산화효소(NADPH oxidase, NOX) 또는 호흡 폭발 산화효소(respiratory burst oxidase)라고 불리우며, 공통의 필수적인 막 단백질(membrane protein) 서브유닛(subunit)인 p22phox, 촉매(catalytic) 서브유닛(subunit)인 gp91phox(NOX2), 조절(regulatory) 서브유닛(subunit)인 p47phox, p40phox, p67phox 및 저분자량 GTP아제(small GTPase)인 Rac으로 구성되어 있다. ROS는 그 자체로 독성을 가지며 신속히 미생물을 죽일 수 있을 뿐만 아니라, 세포증식(cell proliferation), 세포 사멸(apoptosis), 노화(senescence), 및 수용체 신호전달(receptor signaling)을 조절함으로써 숙주의 방어에도 기여한다(Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014; van der Vliet A., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955, 2008). NOX 유래 ROS는 NK-κB의 활성화와, IL-1α, IL-6, MCP-1(monocyte chemotactic protein-1), TNF-α와 같은 전-염증성 매개체(pro-inflammatory mediators)의 방출에 관여하는 것으로 알려져 왔다. 숙주 방어에서 NOX의 중요성은 생명을 위협하는 박테리아 및 균류에 의한 감염으로 이어지는 식세포(phagocyte) 효소의 이상으로 인한 치명적인 유전적 장애인 만성육아종증(Chronic granulomatous disease: CGD)으로 설명되어 질 수 있다(van der Vliet A. et.al., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955, 2008; Yang CS. et.al., Journal of immunology., 182(6):3696-705, 2009). 또한, ROS가 주위의 조직을 손상시킬 수 있기 때문에, 그들의 생성과 NOX의 활성은 반드시 강력하게 조절되어야 한다.
식세포작용(Phagocytosis)과 자가소화작용(autophagy)은 숙주의 미생물 침입에 대해 숙주의 일선의 면역 방어 체계로서 협력한다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012). 특히, 자가소화작용(autophagy)은 쓸모없는 단백질, 기능 부전 세포기관(malfunctioning organelles), 침투한 세균들을 없애고 분해하는 점에서 항상성을 유지하는 과정을 수반하는 최근에 알려진 숙주 선천적 면역 경로(host innate immune pathway)이다(Deretic V. et.al., Scientific American., 298(5):74-81, 2008; Deretic V. et.al., Cell host & microbe., 5(6):527-549, 2009). 자가소화작용(autophagy)은 세균의 복제를 막기 위해 세포 내 병원균의 분해를 향상시키거나, 미생물이 기생하는 동안 세포의 영양 상태를 유지하여 감염된 세포를 보호한다. 또한, 자가소화작용(autophagy)은 파고솜(phagosome) 성숙(maturation)과 빠른 산성화(acidification)를 촉진하고, 병원균(pathogen)이 세포질(cytosol)로 빠져나가는 것을 방지하여 식세포작용(phagocytosis)을 가능하게 한다(Shibutani ST. et.al., Nature immunology., 16(10):1014-1024, 2015). 최근 밝혀진 엔도좀/리소좀 자가소화작용 단백질(endosome/lysosome autophagy protein)인 루비콘(Rubicon; Run/cysteine-rich-domain-containing-Beclin1-interacting autophagy protein)은 자가소화포(autophagosome) 성숙과 엔도시토시스(endocytosis)를 억제하는 베클린-1(Beclin-1) 복합체의 소집단(subpopulation)d에서 확인되었다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012; Matsunaga K. et.al., Nature cell biology., 11(4):385-396, 2009; Zhong Y. et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476, 2009). 본 발명자들은 이전 연구를 통해 루비콘(Rubicon)이 세균 감염 또는 원형질막(plasma membrane)의 TLR(Toll-like receptor) 활성화 시, ROS 생성을 유도하는 NOX 복합체의 필수적인 양성 조절자(positive regulator)임을 증명하였다. 루비콘(Rubicon)은 정상 및 스트레스 조건 하에서 베클린-1(Beclin-1)-UVRAG(UV radiation resistance-associated gene)-함유 자가소화작용(autophagy) 복합체와 연관되어 있지만, 세균 감염에 의해 NOX 복합체의 내재막단백질(integral membrane protein) p22phox와 주기적으로 상호작용하며, 이에 따라 p22phox-NOX 복합체의 안정화 및 식포의 수송(phagosomal trafficking)이 가능하게 되어 ROS 분출(burst), 염증성 사이토카인 생성을 유도함으로써 강력한 항균 활성을 유도한다. 결과적으로, 루비콘(Rubicon) 유전자의 발현 또는 결핍은 ROS 및 염증성 사이토카인 생성에 상당한 영향을 미친다. 베클린-1(Beclin-1)-Vps34(vacuolar protein sorting 34)-함유 자가소화작용(autophagy) 복합체 및 p22phox-gp91phox-함유 NOX 복합체 내에서 루비콘(Rubicon)은 기능적 그리고 유전적으로 분리되어 작용한다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012). 이러한 발견은 루비콘(Rubicon)이 자가소화작용(autophagy)과 식세포작용(phagocytosis) 간의 직접적 상호작용을 중재하고, 이에, 환경적 자극에 따라 두 가지 선척적 면역 기작(innate immune machineries)인 자가소화작용(autophagy)과 식세포작용(phagocytosis)을 조율하게 되므로, 궁극적으로 세균 감염에 대한 최적의 세포 내 면역 환경이 생성됨을 밝혔다.
본 발명자들은 p22phox에서 유래된 N 말단의 8개 아미노산의 N8 펩타이드(N-terminal 8-amino-acid N8 peptide)가 루비콘(Rubicon)-p22phox의 상호작용을 차단하여 ROS 및 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해함을 확인하였다. 결과적으로, Tat-N8 펩타이드 또는 인실리코(in- silico) 가상 스크리닝을 통한 모방 화합물(mimetic compound), 즉 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물(N8 peptide-mimetic)을 CLP(cecal ligation procedure)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 동물 모델에 처리하면 현저하게 사망률을 감소시키고, 뿐만 아니라 마우스 동물 모델에서의 병리학적 반응 또한 개선 시킴을 확인하였다. 아울러, p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물과 광범위 항생제(broad-spectrum antibiotics)와 조합하여 치료할 경우, 우수한 시너지 효과가 있음을 확인하였다.
이러한 배경하에서, 본 발명자들은 패혈증과 같은 염증성 질환 치료를 위한 치료제를 개발하고자 예의 연구 노력한 결과, p22phox에서 유래된 N 말단의 8개 아미노산의 N8 펩타이드(N-terminal 8-amino-acid N8 peptide)의 모방 화합물(mimetic compound)이 루비콘(Rubicon)-p22phox의 상호작용을 차단하여 ROS 과잉 생성, NOX 조립(assembly) 및 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해할 뿐만 아니라, 이를 패혈증 동물 모델에 적용해 본 결과, 패혈증에 대한 개선 및 치료 효과가 우수하며, 이와 더불어 광범위 항생제(broad-spectrum antibiotics)와 조합(combination) 할 경우, 패혈증 치료에 있어 시너지 효과가 있음을 확인함으로써, 본 발명을 완성하게 되었다.
Cohen J., Nature., 420(6917):885-891, 2002 Balk RA., Critical care clinics., 16(2):179-192, 2000 Dombrovskiy VY. et.al., Critical care medicine., 35(5):1244-1250, 2007 Martin GS. et.al., The New England journal of medicine., 348(16):1546-1554, 2003 Padkin A. et.al., Critical care medicine., 31(9):2332-2338, 2003 Vincent JL. et.al., Jama., 274(8):639-644, 1995 Janeway CA, Jr., et.al., Annual review of immunology., 20:197-216, 2002; Gay NJ. et.al., Annual review of biochemistry., 76:141-165, 2007 Lambeth JD., Nature reviews Immunology., 4(3):181-189, 2004 Lambeth JD. et.al., Annual review of pathology., 9:119-145, 2014 van der Vliet A., Free radical biology & medicine., 44(6):938-955, 2008 Yang CS. et.al., Journal of immunology., 182(6):3696-705, 2009 Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012 Deretic V. et.al., Scientific American., 298(5):74-81, 2008 Deretic V. et.al., Cell host & microbe., 5(6):527-549, 2009 Shibutani ST. et.al., Nature immunology., 16(10):1014-1024, 2015 Matsunaga K. et.al., Nature cell biology., 11(4):385-396, 2009 Zhong Y. et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476, 2009
본 발명의 목적은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물, 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하기 위한 것이다.
본 발명의 다른 목적은 상기 N8 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 개선용 건강 기능 식품 조성물을 제공하기 위한 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 N8 펩타이드의 모방 화합물 및 상기 화합물을 동물에 투여하기 위한 지시서를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 키트를 제공하기 위한 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물, 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물, 상기 N8 펩타이드의 모방 화합물을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 개선용 건강 기능 식품 조성물 및 상기 N8 펩타이드의 모방 화합물 및 상기 화합물을 동물에 투여하기 위한 지시서를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 키트를 제공한다.
이하, 본 발명을 구체적으로 설명한다.
하나의 양태로서, 본 발명은 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물, 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다:
[화학식 1]
Figure pat00001
[화학식 2]
Figure pat00002
[화학식 3]
Figure pat00003
[화학식 4]
Figure pat00004
[화학식 5]
Figure pat00005
.
본 발명에서 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물로, 보다 상세하게는 서열번호 3(RRRQRRKKRGYGAWMAWEIQ)의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드의 모방 화합물(mimetic compound)이다.
본 발명에서 용어 "p22phox" 단백질은 인간 호중구 시토크롬 b 경쇄(human neutrophil cytochrome b light chain (CYBA))로 알려진 단백질로, 막 관련 효소의 식세포(membrane-associated enzyme phagocyte) NOX(NADPH oxidase)의 필수 구성 요소이다. 상기 NOX는 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)인 과산화물음이온(superoxide anion)을 생성하기 위한 산소의 전자 환원(reduction)을 위한 전자 공여자(electron donor)로서 NADH 또는 NADPH를 사용하며, 식세포(phagocytic cell)의 항균 활성을 위해 기능적으로 중요하다. p22phox는 내피 세포(endothelial cell) 및 혈관 평활근 세포(vascular smooth muscle cell)와 같은 많은 다른 인간 세포에서도 발현되며, 하기 표 2의 서열번호 12의 아미노산 서열로 구성된다.
또한, 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"은 루비콘(Rubicon)과 p22phox의 상호작용 및 ROS-매개 염증 반응(reactive oxygen species-mediated inflammation) 억제에 관여한다.
본 발명에서 용어 "루비콘(Rubicon; Run/cysteine-rich-domain-containing-Beclin1-interacting autophagy protein)"은 자가소화작용(autophagy) 관련 단백질로, TLR2(Toll-like receptor 2)의 자극에 의해 ROS 생성에 관여하는 NOX 복합체(NADPH oxidase complex)의 구성성분 중 하나인 p22phox 단백질에 결합하여 NOX의 효소활성을 증가시켜 ROS의 생성을 촉진시키고, NF-κB 신호를 활성화시켜 염증성 사이토카인의 분비를 촉진시킴으로서 염증반응을 촉진하여 파고솜(phagosome) 내로 유입된 세균(bacteria)의 증식을 억제시키는데 있어 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 한편, 루비콘(Rubicon)은 하기 표 2의 서열번호 11의 아미노산 서열로 구성된다.
본 발명의 일실시예에 있어서, p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 화학식 1로 표시되는 화합물 1(compound 1)이 p22phox가 매개하는 NOX 복합체(p22phox-mediated NADPH oxidase complex)의 조립(assembly)과 염증 반응(inflammation)을 저해함을 확인하였다(도 8).
또한, CLP(cecal ligation procedure)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 in vivo 동물 모델에 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 화학식 1로 표시되는 화합물 1(compound 1)을 처리하면, 전염증성 사이토카인의 과도한 생성을 조절하여 현저하게 사망률을 감소시키고, 뿐만 아니라 마우스 동물 모델에서의 병리학적 반응 또한 개선시킴을 확인하였다(도 11 및 도 12).
아울러, CLP(cecal ligation procedure)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 in vivo 동물 모델에 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 화학식 1로 표시되는 화합물 1(compound 1) 및, 젠타마이신(gentamicin) 또는 세팔로스포린(cephalosporin)을 병용 처리하면, CLP 유도 마우스의 생존율 향상에 시너지 효과를 보임을 확인하였다(도 13).
이에, 본 발명에 따른 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 유효성분으로 포함하는 조성물은 패혈증 동물 모델의 사망률을 감소시키고, 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해시키며, 항생제와 병용 사용시 항생제의 효과를 증가시키는 효과를 갖는 바, 패혈증 과 같은 염증성 질환을 예방 또는 치료할 수 있다.
구체적으로, 상기 염증성 질환은 이에 제한되지는 않으나, 패혈증(sepsis), 패혈성 쇼크, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD), 복막염, 신장염, 급성 기관지염, 만성 기관지염, 골관절염, 장질환 척추염, 만성 폐쇄성 폐질환(chronic obstructive pulmonary disease, COPD), 류마티스성 관절염(rheumatoid arthritis), 급성 폐손상(acute lung injury) 및 기관지 폐 형성장애(broncho-pulmonary dysplasia)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
한편, 이에 제한되지는 않으나, 상기 염증성 장질환(IBD)은 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC) 또는 크론씨병(Crohns disease)일 수 있다.
본 발명에서 용어 "예방"이란, 본 발명의 약학적 조성물의 투여로 염증성 질환의 발병을 억제 또는 지연시키는 모든 행위를 의미하며, "치료"란, 본 발명의 약학적 조성물의 투여로 인해 이미 유발된 염증성 질환의 증세가 호전되거나 이롭게 되는 모든 행위를 의미한다.
상기 본 발명의 약학적 조성물은 약학적으로 허용가능한 담체를 추가로 포함할 수 있다. 본 발명의 용어 "약학적으로 허용가능한"이란 상기 조성물에 노출되는 세포나 인간에게 독성이 없는 특성을 나타내는 것을 의미한다. 상기 담체는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제, 기제, 부형제, 윤활제 등 당업계에 공지된 것이라면 제한없이 사용할 수 있다.
또한, 본 발명의 약학적 조성물은 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다. 나아가, 연고제, 로션제, 스프레이제, 패취제, 크림제, 산제, 현탁제, 겔제 또는 젤의 형태의 피부 외용제의 형태로 사용될 수 있다. 본 발명의 조성물에 포함될 수 있는 담체, 부형제 및 희석제로는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다.
경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 제니스테인에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트 (calcium carbonate), 수크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는 데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜 (propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈 61(tween 61), 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
한편, 본 발명의 약학적 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여한다. 본 발명의 용어 "약학적으로 유효한 양"은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분하며 부작용을 일으키지 않을 정도의 양을 의미하며, 유효용량 수준은 환자의 건강상태, 암의 종류, 중증도, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 방법, 투여 시간, 투여 경로 및 배출 비율, 치료기간, 배합 또는 동시 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 결정될 수 있다. 본 발명의 조성물은 개별 치료제로 투여하거나 다른 치료제와 병용하여 투여될 수 있고, 종래의 치료제와 순차적으로 또는 동시에 투여될 수 있으며, 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 상기한 요소들을 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 조성물에 함유된 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"의 유효량은 환자의 나이, 성별, 체중에 따라 달라질 수 있으며, 일반적으로는 본 발명의 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"은 고형분을 기준으로 1일 체중 kg 당 0.001 내지 100 mg, 바람직하게는 체중 kg 당 1 내지 10 mg, 보다 바람직하게는 1 내지 5 mg을 매일 또는 격일 투여하거나 1일 1 내지 3회로 나누어 투여할 수 있다. 그러나, 투여 경로, 질병의 중증도, 성별, 체중, 연령 등에 따라서 증감될 수 있으므로 상기 투여량이 어떠한 방법으로도 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.
본 발명의 조성물은 쥐, 생쥐, 가축, 인간 등의 포유동물에 다양한 경로로 투여될 수 있다. 투여의 모든 방식은 예상될 수 있는데, 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁내 경막 또는 뇌혈관내(intracerebroventricular) 주사에 의해 투여될 수 있다.
다른 하나의 양태로서, 본 발명은 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 이를 필요로 하는 개체에게 투여하는 단계를 포함하는, 염증성 질환을 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
본 발명의 용어 "개체"란, 상기 암이 발병하였거나 발병할 수 있는 인간을 포함한 원숭이, 소, 말, 양, 돼지, 닭, 칠면조, 메추라기, 고양이, 개, 마우스, 쥐, 토끼 또는 기니아 피그를 포함한 모든 동물을 의미하고, 본 발명의 약학적 조성물을 개체에게 투여함으로써 상기 염증성 질환을 효과적으로 예방 또는 치료할 수 있다. 본 발명의 약학적 조성물은 기존의 치료제와 병행하여 투여될 수 있다.
본 발명의 용어 "투여"란, 임의의 적절한 방법으로 환자에게 소정의 물질을 제공하는 것을 의미하며, 본 발명의 조성물의 투여 경로는 목적 조직에 도달할 수 있는 한 어떠한 일반적인 경로를 통하여 투여될 수 있다. 복강내 투여, 정맥내 투여, 근육내 투여, 피하 투여, 피내 투여, 경구 투여, 국소 투여, 비내 투여, 폐내 투여, 직장내 투여될 수 있으나, 이에 제한되지는 않는다. 또한, 본 발명의 약학적 조성물은 활성 물질이 표적 세포로 이동할 수 있는 임의의 장치에 의해 투여될 수도 있다. 바람직한 투여방식 및 제제는 정맥 주사제, 피하 주사제, 피내 주사제, 근육 주사제, 점적 주사제 등이다. 주사제는 생리식염액, 링겔액 등의 수성 용제, 식물유, 고급 지방산 에스테르(예, 올레인산에칠 등), 알코올 류(예, 에탄올, 벤질알코올, 프로필렌글리콜, 글리세린 등) 등의 비수성 용제 등을 이용하여 제조할 수 있고, 변질 방지를 위한 안정화제(예, 아스코르빈산, 아황산수소나트륨, 피로아황산나트륨, BHA, 토코페롤, EDTA 등), 유화제, pH 조절을 위한 완충제, 미생물 발육을 저지하기 위한 보존제(예, 질산페닐수은, 치메로살, 염화벤잘코늄, 페놀, 크레솔, 벤질알코올 등) 등의 약학적 담체를 포함할 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물은 유효성분으로서 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물" 이외에 공지된 항생제를 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물에 포함될 수 있는 항생제의 예시에는 카바페넴계(carbapenem) 항생제, 세팔로스포린계(cephalosporin) 항생제, 당펩타이드계(glycopeptide) 항생제, 페니실린계 항생제, 퀴놀론계(quinolone) 항생제, 세린 프로테아제계(serine protease) 항생제, 폴리믹신계(polymyxin) 항생제, 아미노글리코시드계(aminoglycoside) 항생제, 살균계(bacteriostatic) 항생제, 및 상기 항생제의 조합으로 이루어진 군에서 선택될 수 있으나, 반드시 이로 제한되는 것은 아니다.
상기 카바페넴계 항생제는 도리페넴(Doripenem)이고, 상기 세팔로스포린계 항생제는 세프트리악손 나트륨(Ceftriaxone sodium)이며, 상기 당펩타이드계 항생제는 염산반코마이신(Vancomycin hydrochloride)이고, 상기 페니실린계 항생제는 벤질페니실린 칼륨(Potassium benzylpenicillin)이며, 상기 퀴놀론계 항생제는 DW286(7-[3-(aminomethyl)-4-(methoxyimino)-3-methyltetrahydro-1H-1-pyrrolyl]-1-cyclopropyl-6-fluoro-4-oxo-1,4-dihydro[1,8]naphthyridine-3-carboxylic acid hydrochloric acidsalt) 또는 시프로플록사신염산염수화물(Ciprofloxacin hydrochloride hydrate)이고, 상기 세린 프로테아제계 항생제는 드로트레코진 알파(활성화된)(Drotrecogin alfa (activated))이며, 상기 폴리믹신계(polymyxin) 항생제는 콜리스틴(colistin)이고, 상기 아미노글리코시드계(aminoglycoside) 항생제는 토브라마이신(tobramycin)이며, 상기 살균계(bacteriostatic) 항생제는 푸시딘산(fusidic acid)일 수 있으나, 반드시 이로 제한되는 것은 아니다.
그러나, 본 발명에 따른 화합물 함유 제제는 상술된 것으로 제한되는 것은 아니며, 염증성 질환의 치료나 예방에 유용한 제제라면 어느 것이나 포함될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 0.1 내지 5 mg/kg의 양으로 개체에 병용 투여될 수 있으나, 반드시 이로 제한되는 것은 아니다.
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물을 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 개선용 건강 기능 식품 조성물을 제공한다:
[화학식 1]
Figure pat00006
[화학식 2]
Figure pat00007
[화학식 3]
Figure pat00008
[화학식 4]
Figure pat00009
[화학식 5]
Figure pat00010
.
본 발명에서 용어 "개선"은 치료되는 상태와 관련된 파라미터, 예를 들면 증상의 정도를 적어도 감소시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 조성물을 식품 조성물로 사용하는 경우, p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 그대로 첨가하거나 다른 식품 또는 식품 성분과 함께 사용할 수 있고, 통상의 방법에 따라 적절하게 사용할 수 있다. 상기 조성물은 유효성분 이외에 식품학적으로 허용가능한 식품보조첨가제를 포함할 수 있으며, 유효성분의 혼합양은 사용 목적(예방, 건강 또는 치료적 처치)에 따라 적합하게 결정될 수 있다.
본 발명에서 사용되는 용어 "식품보조첨가제"란 식품에 보조적으로 첨가될 수 있는 구성요소를 의미하며, 각 제형의 건강기능식품을 제조하는데 첨가되는 것으로서 당업자가 적절히 선택하여 사용할 수 있다. 식품보조첨가제의 예로는 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제 및 충진제, 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알콜, 탄산음료에 사용되는 탄산화제 등이 포함되지만, 상기 예들에 의해 본 발명의 식품보조첨가제의 종류가 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 식품 조성물에는 건강기능식품이 포함될 수 있다. 본 발명에서 사용되는 용어 "건강기능식품"이란 인체에 유용한 기능성을 가진 원료나 성분을 사용하여 정제, 캅셀, 분말, 과립, 액상 및 환 등의 형태로 제조 및 가공한 식품을 말한다. 여기서 '기능성'이라 함은 인체의 구조 및 기능에 대하여 영양소를 조절하거나 생리학적 작용 등과 같은 보건용도에 유용한 효과를 얻는 것을 의미한다. 본 발명의 건강기능식품은 당업계에서 통상적으로 사용되는 방법에 의하여 제조가능하며, 상기 제조시에는 당업계에서 통상적으로 첨가하는 원료 및 성분을 첨가하여 제조할 수 있다. 또한 상기 건강기능식품의 제형 또한 건강기능식품으로 인정되는 제형이면 제한없이 제조될 수 있다. 본 발명의 식품용 조성물은 다양한 형태의 제형으로 제조될 수 있으며, 일반 약품과는 달리 식품을 원료로 하여 약품의 장기 복용 시 발생할 수 있는 부작용 등이 없는 장점이 있고, 휴대성이 뛰어나, 본 발명의 건강기능식품은 염증성 질환의 효과를 증진시키기 위한 보조제로 섭취가 가능하다.
또한, 본 발명의 조성물이 사용될 수 있는 건강식품의 종류에는 제한이 없다. 아울러 본 발명의 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 유효성분으로 포함하는 조성물은 당업자의 선택에 따라 건강기능식품에 함유될 수 있는 적절한 기타 보조 성분과 공지의 첨가제를 혼합하여 제조할 수 있다. 첨가할 수 있는 식품의 예로는 육류, 소세지, 빵, 쵸코렛, 캔디류, 스낵류, 과자류, 피자, 라면, 기타 면류, 껌류, 아이스크림 류를 포함한 낙농제품, 각종 스프, 음료수, 차, 드링크제, 알콜 음료 및 비타민 복합제 등이 있으며, 본 발명에 따른 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 주성분으로 하여 제조한 즙, 차, 젤리 및 주스 등에 첨가하여 제조할 수 있다.
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물 및 상기 화합물을 동물에 투여하기 위한 지시서를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 키트를 제공한다:
[화학식 1]
Figure pat00011
[화학식 2]
Figure pat00012
[화학식 3]
Figure pat00013
[화학식 4]
Figure pat00014
[화학식 5]
Figure pat00015
.
상기 키트에는 다른 치료 약제, 구체적으로 항염증 치료 효과를 갖는 약제, 예를 들어 항생제, 항히스타민제 또는 소염진통제를 임의로 포함할 수 있다.
예컨대, 상기 항생제는 이에 제한되지는 않으나, 젠타마이신(gentamicin), 세팔로스포린(cephalosporin), 반코마이신, 페니실린, 메티실린, 세팔로신(Cephalothin), 에리스로마이신(Erythromycin), 노플로삭신(Norfloxacin), 옥사실린(Oxacillin), 클로람페니콜(Chloramphenicol), 설폰아마이드(Sulfonamides), 스트렙토마이신(Streptomycin) 또는 테트라사이클린(Tetracyclin)일 수 있다.
상기 지시서는 염증성 질환을 가진 동물에게 본 발명의 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물인 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"을 투여하기 위한 지침서로, 염증성 질환의 치료를 위해 본 발명에 따른 상기 "화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물"과 항생제 등의 혼합 방법, 각각의 약물의 투여 순서가 기재된 것일 수 있다.
상기 염증성 질환은 이에 제한되지는 않으나, 패혈증(sepsis), 패혈성 쇼크, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD), 복막염, 신장염, 급성 기관지염, 만성 기관지염, 골관절염, 장질환 척추염, 만성 폐쇄성 폐질환(chronic obstructive pulmonary disease, COPD), 류마티스성 관절염(rheumatoid arthritis), 급성 폐손상(acute lung injury) 및 기관지 폐 형성장애(broncho-pulmonary dysplasia)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나일 수 있다.
한편, 이에 제한되지는 않으나, 상기 염증성 장질환(IBD)은 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC) 또는 크론씨병(Crohns disease)일 수 있다.
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로, 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
본 발명에 따른 p22phox 유래 N 말단의 8개 아미노산인 N8 펩타이드의 모방 화합물은 루비콘(Rubicon)-p22phox의 상호작용을 차단하여 ROS 과잉 생성, NOX 조립(assembly) 및 염증성 사이토카인의 생성을 현저하게 저해하므로, 패혈증과 같은 ROS와 관련된 치명적인 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 또는 건강 기능 식품 조성물로 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N10 펩타이드가 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox) 상호작용(interaction)을 저해함에 따라 특이적으로 TLR4 신호전달(signaling)을 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) HEK293T 세포에 V5-p22phox 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 공-형질주입(co-transfection) 시키고 12시간이 지난 후에, Tat-N10 펩타이드를 24시간 동안 처리하였다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, V5(αV5)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag, αV5, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (B) 루비콘(Rubicon)을 발현하는 A549 세포에 Tat-N10 펩타이드(30 μM)를 6시간 동안 전처리한 후, 지시된 시간(0, 5, 15, 30 및 60분) 동안 LPS(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αNOX4, αp22phox, αBeclin-1 또는 αUVRAG에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αNOX4, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (C) Tat-N10 펩타이드를 6시간 동안 처리한 후, LPS로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (D) 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포에 Tat-N10 펩타이드를 6시간 동안 전처리한 후, LPS로 24시간 동안 자극을 주었다. 이후, 배양 상층액(culture supernatants)을 수확(harvest)하고, 사이토카인 ELISA 분석을 수행하였다.
도 2는 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N10 펩타이드가 대식세포(macrophage)에서 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox) 상호작용(interaction)을 저해함에 따라 특이적으로 TLR2 신호전달(signaling)을 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A 및 B) HEK293T 세포에 V5-p22phox 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 공-형질주입(co-transfection) 시키고 12시간이 지난 후에, Tat-N10 펩타이드를 24시간 동안 처리(A)하거나, 지시된 시간(0, 1, 3, 6, 12 및 24시간) 동안 처리(B)하였다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, V5(αV5)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag, αV5, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (C) 루비콘(Rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포에 Tat-N10 펩타이드(30 μM)를 6시간 동안 전처리한 후, 지시된 시간(0, 5, 15, 30 및 60분) 동안 BLP(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αpg91phox, αp22phox, αBeclin-1, 또는 αUVRAG에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αgp91phox, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (D) Tat-N10 펩타이드를 6시간 동안 처리한 후, BLP로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (E) 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포에 Tat-N10 펩타이드를 6시간 동안 전처리한 후, BLP로 24시간 동안 자극을 주었다. 이후, 배양 상층액(culture supernatants)을 수확(harvest)하고, 사이토카인 ELISA 분석을 수행하였다.
도 3은 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N8 펩타이드가 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox) 상호작용(interaction)을 저해함에 따라 특이적으로 TLR4 신호전달(signaling)을 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A 및 D) HEK293T 세포에 V5-p22phox 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 공-형질주입(co-transfection) 시키고 12시간이 지난 후에, Tat-p22phox 펩타이드를 24시간 동안 처리하였다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, V5(αV5)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag, αV5, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (B) HEK293T 세포에 GST 또는 GST-p22phox 구조(construct) 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 공-형질주입(co-transfection) 시키고, GST pull down assay를 수행한 후, 플래그(αFlag)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag, αGST, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (C) A549 세포에 GST 또는 GST-p22phox 구조(construct)를 형질주입(transfection) 시키고 48시간이 지난 후에, 지시된 시간(0, 5, 15, 30 및 60분) 동안 LPS(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. 이후, GST pull down assay를 수행하고, αRubicon에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αRubicon, αGST, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (E) 루비콘(Rubicon)을 함유하는 A549 세포에 6시간 동안Tat-N8 펩타이드(30 μM)를 전처리한 후, 지시된 시간(0, 5, 15, 30 및 60분) 동안 LPS로 자극을 주었다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αNOX4 또는 αp22phox에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (F) Tat-N8 펩타이드를 6시간 동안 처리한 후, LPS로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (G) 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포에 Tat-N8 펩타이드를 6시간 동안 전처리한 후, LPS로 24시간 동안 자극을 주었다. 이후, 배양 상층액(culture supernatants)을 수확(harvest)하고, 사이토카인 ELISA 분석을 수행하였다.
도 4는 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N8 펩타이드가 TLR2 및 TLR4 신호전달(signaling)에서 염증성 매개자(inflammatory mediator)의 발현을 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. A549 세포 또는 Raw264.7 세포에 Tat-N8 펩타이드를 6시간 동안 처리한 후, 지시된 시간(0, 18 및 48시간) 동안 LPS 또는 BLP로 자극을 주었다. 이후, 배양 상층액(culture supernatants)을 수확(harvest)하고, 트리클로로아세트산(trichloroacetic acid)으로 침전시켜 단백질을 농축한 후, αHMGB1 또는 αHistone H3에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다.
도 5 는 본 발명의 일실시예에 따라 p22phox N8 펩타이드가 비효율적으로 TLR2 신호전달(signaling)을 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) HEK293T 세포에 V5-p22phox 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 공-형질주입(co-transfection) 시키고 12시간이 지난 후에, Tat 또는 N8 펩타이드를 24시간 동안 처리하였다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, V5(αV5)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag, αV5, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (B) 루비콘(Rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포에 Tat 또는 N8 펩타이드(500 μM)를 6시간 동안 전처리한 후, 지시된 시간(0, 5, 15, 30 및 60분) 동안 BLP(100 ng/㎖)로 자극을 주었다. 이후, 플래그(αFlag)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αp22phox에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αFlag 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (C) Tat 또는 N8 펩타이드를 6시간 동안 처리한 후, BLP로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다.
도 6은 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N8 펩타이드가 자가소화작용(autophagy) 활성에는 영향을 주지 않으면서, 루비콘-p22phox 상호작용(Rubicon-p22phox interaction)을 차단함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 단일 분자 pull-down 분석법(single-molecule pull-down assay, SiMPull assay)을 수행한 후, 촬영한 단일 분자 형광 현미경(single-molecule fluorescence microscope) 사진으로, YFP-루비콘 SR2(YFP-Rubicon SR2), V5-p22phox, 또는 YFP-루비콘 SR2(YFP-Rubicon SR2) 및 V5-p22phox를 모두 발현하는 세포로부터의 용해물(lysate)을 V5 항체가 있는 챔버(chamber)에 적용하고, 단일 분자 결과(single-molecule data)를 얻기 위해 프리즘 타입(prism type)의 TIRF 현미경으로 가시화하여 나타내었다. (B 및 C) 벡터(Vector) 또는 루비콘(Rubicon)을 발현하는 A549 세포(B)와 Raw264.7 세포(C)에 Tat 또는 Tat-N8 펩타이드(30 μM)를 6시간 동안 전처리한 후, 라파마이신(Rapamycin, 2uM), LPS(100 ng/㎖), BLP(100 ng/㎖) 또는 자이모산(Zymosan, 100 ㎍/㎖)을 지시된 시간(0, 0.5, 1 또는 4시간) 동안 처리하여 자극을 주었다. 이후, αLC3, αp62 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다.
도 7은 본 발명의 일실시예에 따라 Tat-p22phox N8 펩타이드 처리에 따른 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis)의 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) Tat 또는 Tat-N8 펩타이드를 처리한 CLP 유도 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). Tat 또는 Tat-N8 펩타이드를 정맥 주사한 CLP-유도 마우스의 생존율을 7일 동안 관찰하였으며, 그룹당 20마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). 대조군(control)인 Tat 펩타이드를 투여한 CLP-유도 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test). (B 및 C) 비장세포에서의 NOX(NADPH oxidase) 활성(B) 및 혈청(serum) 사이토카인 수준(C)은 CLP-유도 마우스에 펩타이드를 처리한 후 20시간째 측정하였다. (D) 혈청(Serum)을 수확(harvest)하고, 트리클로로아세트산(trichloroacetic acid)으로 침전시켜 단백질을 농축시켰다. 이후, αHMGB1 또는 αHistone H3에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. αiNOS, αCOX-2 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하기 위해 비장세포(splenocyte)를 사용하였다. (E) 그룹당 5마리의 CLP 유도 마우스에서 수득한 폐(lung), 간(liver), 비장(spleen)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과를 나타내었다(왼쪽). 또한, 폐 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출한 조직 병리학 점수 그래프(오른쪽, 위)와, 비장(spleen)의 총 형태학적 차이를 촬영한 사진을 나타내었다(오른쪽, 아래).
도 8은 본 발명의 일실시예에 따라 화합물 1(Compound 1)이 TLR4-매개 루비콘-p22phox(TLR4-mediated Rubicon-p22phox) 상호작용 및 ROS-매개 염증반응(ROS-mediated inflammation)을 강하게 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 화합물 1(Compound 1)의 구조를 나타내었다. (B) A549 세포에 화합물 1을 처리하여 48시간 동안 배양한 후, 세포 생존력에 대한 MTT 분석 결과를 나타내었다(위). WCL(whole cell lysate)을 사용하여, α22phox, αRubicon 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다(아래). (C) 벡터(Vector) 또는 루비콘(Rubicon)을 발현하는 A549 세포에 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 처리한 후, LPS(100 ng/㎖)로 24시간 동안 자극을 주었다. 이후, WCL(whole cell lysate)을 사용하여, α22phox, αRubicon 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (D) 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 처리한 후, LPS(100 ng/㎖)로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (E) NF-κB 리포터 플라스미드(NF-κB reporter plasmid)와 표준화(normalization)를 위한 pRL-TK 레닐라 플라스미드(pRL-TK Renilla plasmid)를 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포(A549-Rubicon)에 공-형질주입(co-transfection) 시켰다. 루시퍼라아제 분석(Luciferase assay)을 수행하기 위해, 2일 후, 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 처리하고, 세포를 LPS로 6시간 동안 자극하였다. (F) 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포(A549-Rubicon)에 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 전처리한 후, LPS로 24시간 동안 자극을 주었다. 이후, 배양 상층액(culture supernatants)을 수확(harvest)하고, 사이토카인 ELISA 분석을 수행하였다. (G 및 H) 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포에 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 전처리한 후, LPS로 30분 동안 자극을 주었다. 이후, αFlag(G) 또는 αV5(H)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αNOX4, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag(G) 또는 αRubicon, αp47phox, αNOX4, αp67phox, αV5(H)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. WCL(whole cell lysate)을 사용하여, αNOX4, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag(G) 또는 αRubicon, αp47phox, αNOX4, αp67phox, αV5(H)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다.
도 9는 본 발명의 일실시예에 따라 본 발명의 화합물을 찾아내는 과정을 나타낸 도로, p22phox-루비콘(p22phox-Rubicon) 상호작용을 타겟으로 하여 N8 펩타이드 모방체(N8 peptide mimetics)를 선별하기 위해 단일 화합물(single compounds)의 화학적 라이브러리(chemical libraries)를 스크리닝하는 단계를 개략적으로 나타내었다.
도 10은 본 발명의 일실시예에 따라 화합물 1(Compound 1)이 TLR2-매개 루비콘-p22phox(TLR2-mediated Rubicon-p22phox) 상호작용 및 ROS-매개 염증(ROS-mediated inflammation)을 강하게 억제함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) Raw264.7 세포에 화합물 1을 처리하여 48시간 동안 배양한 후, 세포 생존력에 대한 MTT 분석 결과를 나타내었다(위). WCL(whole cell lysate)을 사용하여, α22phox, αRubicon 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다(아래). (B) 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 처리한 후, BLP(100 ng/㎖)로 30분 동안 자극한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포의 NOX(NADPH oxidase) 활성을 측정하여 나타내었다. (C) NF-κB 리포터 플라스미드(NF-κB reporter plasmid)와 표준화(normalization)를 위한 pRL-TK 레닐라 플라스미드(pRL-TK Renilla plasmid)를 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포(Raw264.7-Rubicon)에 형질주입(transfection) 시켰다. 루시퍼라아제 분석(Luciferase assay)을 수행하기 위해, 2일 후, 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 처리하고, 세포를 BLP로 6시간 동안 자극하였다. (D 및 E) 루비콘(rubicon)을 발현하는 Raw264.7 세포에 화합물 1(Compound 1)을 1시간 동안 전처리한 후, BLP로 30분 동안 자극을 주었다. 이후, αFlag(D) 또는 αV5(E)에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αgp91phox, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag(D) 또는 αRubicon, αp47phox, αp91phox, αp67phox, αV5(E)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. WCL(whole cell lysate)을 사용하여, αgp91phox, αp22phox, αBeclin-1, αUVRAG, αFlag(D) 또는 αRubicon, αp47phox, αp91phox, αp67phox, αV5(E)에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. (F) Tat-N8 펩타이드 또는 화합물 1(compound 1)에 관한 요약도로, Tat-N8 펩타이드가 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox) 상호작용을 억제하고(위), 또는 화합물 1(compound 1)이 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox) 상호작용을 포함하는 NOX 조립(NADPH oxidase assembly)을 억제함에 관해 개략적으로 나타내었다.
도 11은 본 발명의 일실시예에 따라 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1) 처리에 따른 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis)의 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP 유도 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 화합물 1(compound 1)을 정맥 주사한 CLP-유도 마우스의 생존율을 7일 동안 관찰하였으며, 그룹당 25마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). 대조군(control)인 PBS를 투여한 CLP-유도 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test). (B) 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP 유도 마우스로부터 20시간째 혈청(Serum)을 수확(harvest)하고, 트리클로로아세트산(trichloroacetic acid)으로 침전시켜 단백질을 농축시켰다. 이후, αHMGB1 또는 αHistone H3에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다. αiNOS, αCOX-2 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하기 위해 비장세포(splenocyte)를 사용하였다. (C) 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP 유도 마우스로부터 20시간째 비장(spleen)을 수득하였다. 상기 수득한 비장에서의 iNOS 및 COX-2의 면역반응성( immunoreactivity)을 촬영한 현미경 사진을 나타내었다. 이미지는 그룹당 5마리의 마우스로부터 얻은 대표적인 비장 절편(section) 이미지이다. (D) 그룹당 5마리의 CLP 유도 마우스에서 수득한 폐(lung), 간(liver), 비장(spleen)의 대표적인 H&E(Hematoxylin-eosin) 염색 결과를 나타내었다(왼쪽). 또한, 폐 절편(section)의 H&E 염색 결과로부터 도출한 조직 병리학 점수 그래프(오른쪽, 위)와, 비장(spleen)의 총 형태학적 차이를 촬영한 사진을 나타내었다(오른쪽, 아래). (E) 비장세포를 이용하여 αRubicon 또는 αp22phox에 대한 면역침강법(immunoprecipitation; IP)을 수행하고, αp22phox 또는 αRubicon에 대한 항체로 각각 면역 블롯(IB)을 진행하였다. 여기에서, 대조군으로 WCL(whole cell lysate)을 사용하였으며, αRubicon, αp22phox, αLC3, αp62, 또는 αActin에 대한 항체로 면역 블롯(IB)을 진행하였다.
도 12는 본 발명의 일실시예에 따라 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1)이 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 동물 모델에서 NOX 활성(NADPH oxidase activity) 및 전염증성 사이토카인(proinflammatory cytokines)의 생성을 저해함에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP 유도 마우스로부터 20시간째 비장을 수득하고, 비장세포(splenocyte)에서의 NOX 활성(NADPH oxidase activity)을 측정하여 나타내었다. (B) 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP 유도 마우스로부터 20시간째 혈청(serum)을 수득하고, ELISA assay(enzyme-linked immunosorbent assay)를 수행하여 사이토카인(cytokine) 생성 정도를 확인하였다.
도 13은 본 발명의 일실시예에 따라 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1)과 광범위 항생제(broad-spectrum antibiotics) 조합(combination) 처리에 따른 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis)의 치료 효과에 대한 결과를 나타낸 도이다. (A) CLP 유도 마우스에 화합물 1(compound 1)을 처리한 후, 24시간 뒤에 세균(bacteria) 수를 측정하여 나타내었다(그룹당 n=10 마우스). (B) 화합물 1(compound 1)과 항생제를 처리한 CLP 유도 동물 모델 구축을 위한 개략도이다(위). 화합물 1(compound 1)과 항생제를 처리한 CLP-유도 마우스의 생존율을 7일 동안 관찰하였으며, 그룹당 25마리의 마우스에 대해 사망률을 측정하였다(아래). 대조군(control)인 PBS를 투여한 CLP-유도 마우스와 비교한 통계적 차이로 표시하였다(log-rank test).
이하, 실시예를 통하여 본 발명의 구성 및 효과를 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 실험 재료 준비 및 실험 방법
실시예 1-1: 패혈증(sepsis) 마우스 동물 모델 구축
CLP(cecal ligation and puncture)로 유도된 패혈증 마우스 모델은 6주령(6-week-old) C57BL/6 암컷 마우스(Samtako, Korea)를 사용하여 Kim SD. et.al., Journal of immunology., 185(7):4302-4310 (2010)에 기재되어 있는 방법에 따라 준비하였다. 구체적으로, 마우스는 펜토탈(pentothal sodium; 50 ㎎/㎏, i.p.(intraperitoneal))로 마취시키고, 복부의 정중선을 절개해서 맹장을 노출시켰다. 맹장(cecum)은 회맹판(ileocecal valve) 아래를 결찰(ligation) 시킨 후, 22-게이지(22-gauge) 바늘(needle)을 사용하여 양쪽 표면을 통해 두 번 구멍을 내고 복부를 닫았다. 6시간 후, 펩타이드(peptide) 및 화합물 1(compound 1)을 각각 6시간 간격으로 3회 정맥 내(intravenously) 또는 복강 내(intraperitoneally) 주사하였다. 생존율(survival rate)은 7일 동안 매일 모니터링하였으며, 모든 동물 관련 절차는 한양대학교 동물 보호 기관과 사용 위원회에 의해 검토되고 승인되었다.
실시예 1-2: 펩타이드 (peptide) 준비
Tat가 연결된 p22phox 펩타이드(Tat-conjugated p22phox peptides)는 Peptro(Korea)에 의해 상업적으로 합성하고 정제되었다. 본 발명에서 사용한 펩타이드의 아미노산 서열(amino acid sequence)은 하기 표 1과 같다.
p22phox 펩타이드 (peptide) 아미노산 서열
(amino acid sequence, from N to C) 		서열번호
Tat-p22phox (1-10, N10) RRRQRRKKRGYGAWMAWEIQGM 1
Tat-p22phox (2-10) RRRQRRKKRGYGAWMAWEIQG 2
Tat-p22phox (3-10, N8) RRRQRRKKRGYGAWMAWEIQ 3
Tat-p22phox (4-10) RRRQRRKKRGYGAWMAWEI 4
Tat-p22phox (5-10) RRRQRRKKRGYGAWMAWE 5
Tat-p22phox (2-9) RRRQRRKKRGYGWMAWEIQG 6
Tat-p22phox (2-8) RRRQRRKKRGYGMAWEIQ 7
Tat-p22phox (W6A) RRRQRRKKRGYGAWMAAEIQ 8
Tat-p22phox (W9A) RRRQRRKKRGYGAAMAWEIQ 9
Tat RRRQRRKKRGY 10
실시예 1-3: 세포 준비
마우스 대식세포 세포주(macrophage cell line)인 RAW264.7(ATCC TIB-71; American Type Culture Collection)와 HEK293T(ATCC-11268) 세포는 10% FBS(fetal bovine serum; invitrogen), 소디움 피루베이트(sodium pyruvate), 비필수 아미노산(NAA; nonessential amino acids), 페니실린 G(penicillin G, 100 IU/ml), 스트렙토마이신(streptomycin, 100ug/ml)이 포함한 DMEM 배지(invitrogen)를 이용하여 배양하였다. 인간 폐포 A549(ATCC CCL-185) 세포는 10% FBS가 포함된 RPMI 1640-GlutaMAXTM 배지를 사용하여 배양하였다. 일시적 형질주입(transient transfection)은 제조사의 메뉴얼에 따라 리포펙타민®　3000(Lipofectamine®　3000; Invitrogen), 또는 인산칼슘(calcium phosphate)(Clontech)을 사용하여 시행했다. A549와 Raw264.7의 안정적(stable) 세포주(cell line)는 2 ㎍/㎖의 퓨로마이신(puromycin)으로 표준 선택 프로토콜(standard selection protocol)을 사용하여 생성하였다.
실시예 1-4: 시약 및 항체 준비
LPS(Escherichia coli O111:B4), BLP(Pam2CSK4), 자이모산(Zymosan)은 Invivogen사에서 구입하였다. 라파마이신(Rapamycin, R8781), 젠타마이신(Gentamycin, G1397), 세팔로스포린(cepalosporin, C8145)은 Sigma사에서 구입하였다. 루비콘(Rubicon, ab92388)에 대한 특이 항체는 Abcam사로부터 구입하였다. LC3(4108), p62(5114), 베클린-1(Beclin-1, 3738) 및 UVRAG(5320)에 대한 항체는 Cell Signaling Technology사로부터 구입하였다. HMGB1(high-mobility group protein 1, W-18), 히스톤 H3(Histon H3, FL-136), 액틴(actin, I-19), iNOS(inducible NO synthase, H-174), COX-2(H-3), NOX4(H-300), p22phox(FL-195) gp61phox(H-60), p70phox(H-195), p67phox(H-300), V5(H-9), Flag(D-8) 및 GST(B-14)에 대한 특이 항체는 Santa Cruz Biotechnology사로부터 구입하였다.
실시예 1-5: 플라스미드 구축( plasmid construction)
p22phox(V5-p22phox), 루비콘(Flag-Rubicon)의 전체-길이(full-length)를 암호화(encoding)하는 플라스미드(plasmid)와 NF-κB 루시퍼라아제 리포터(NF-κB luciferase reporter) 플라스미드는 Yang CS. et al., Cell host & microbe., 11(3):264-276 (2012) 및 Yang CS. et al., Cell host & microbe., //Rice TW et al., 11(3):277-289 (2012)에 설명되어 있다. p22phox(3-10, W6A, W9A)의 상이한 영역을 암호화(encoding)하는 플라스미드는 전장(full-length) p22phox cDNA로부터의 PCR 증폭(amplification)과 N-말단 GST 에피토프 태그(N-terminal GST epitope tag)를 암호화하는 pEBG 유도체(pEBG derivative) 내의 BamHI 및 NotI 사이트(site) 사이에서의 서브클로닝(subcloning)을 통해 제조되었다. 모든 포유류 세포(mammalian cell)에서 일시적(transient)이고 지속적(stable)으로 발현되는 구조(construct)는 pEBS-GST 포유류 융합 벡터(pEBG-GST mammalian fusion vector) 및 pEF-IRES-Puro 발현 벡터(pEF-IRES-Puro expression vector)로부터 유래 되었다. 모든 구조(construct)는 원래 시퀀스(sequence)와의 100% 상동성을 확인하기 위하여 ABI PRISM 377 자동 DNA 시퀀서(ABI PRISM 377 automatic DNA sequencer)를 사용하여 시퀀싱(squencing) 하였다.
실시예 1-6: 형태(shape) 및 정전기학(electrostatics)에 따른 리간드 가상 스크리닝(Ligand Virtual screening)
비-펩타이드(non-peptide)와 p22phox의 새로운 화학적 억제제를 탐색하기 위해 리간드 형태와 정전기학적 유사성을 결합한 in- silico 가상 스크리닝 접근법을 적용하였다. p22phox의 3차원 구조를 사용하기 위해 Preotein Data Bank(http://www.rcsb.org)로부터 X선 결정 구조(X-ray crystal structure)를 살펴보았다. OpenEye Scientifics 소프트웨어의 OMEGA v2.5를 사용하여 260,000-Korea Chemical Bank(KCB) 라이브러리(library)로부터 각각 200개의 저에너지(low energy) 이형체(conformer)를 도출하였다. p22phox의 3차원(3D) 구조는 OpenEye ROCS v3.2.를 사용하여 KCB 라이브러리(KCB library)에 대한 쿼리 분자(query molecule)로서 가상 스크리닝 되었다. 쿼리(query)와 비교하여 형태 유사성에 따라 TanimotoCombo 점수(score)(ROCS_TanimotoCombo) 순으로 상위 1,000종의 유망물질(hits)을 산출(output) 하였다. 정전기 특성을 비교하기 위해, EON v2.2를 사용하여 EON_ET_Combo 점수 순으로 상위 1,000종의 ROCS 유망물질(hits)을 형태와 정전기적 유사성의 합계로 재순위를 정하였다. 상위 1,000개의 순위 및 가상 검사(visual inspection)를 결합한 결과를 기반으로 214종의 화합물(compounds)을 생물학적 테스트를 위한 후보물질로 선정하였다. 상기 선정한 214종의 화합물을 이용하여 in vitro 상에서 효소 활성을 측정하였다. 2개의 작은 비펩타이드 화합물(small nonpeptidyl compounds)을 발굴하였으며, 활성 화합물(active compound)의 유사체(analogue)를 더 발굴하기 위해 지문 유사성 방법(fingerprint similarity method)을 기반으로 한 2차 가상 스크리닝을 수행하였다. 화합물의 단일 쌍 간의 유사성은 Biovia의 Pipeline pilot v.9.5를 사용하여 계산하였다. 유사성 점수는 두 분자(molecule)와의 유사도에 대한 수치로 제공되었다. KCB 라이브러리 데이터베이스(KCB library database)는 쿼리(query) 구조와 비교했을 때 Tanimoto 계수가 0.8 이상(≥ 0.8)인 유사체(analogue)에 대해 스크리닝 되었다. 가상 검사(visual inspection)에 의해 추가로 80개의 화합물을 선택하였으며, 생물학적 테스트로부터, 비펩타이드 억제제(nonpeptidyl inhibitor)로서 5종의 화합물이 in vitro 상에서 효능을 나타내었고, 화합물 1(compound 1)이 가장 우수한 생물학적 억제제로 확인되었다(도 9).
실시예 1-7: GST pulldown assay, 면역 블롯 및 면역침강법 분석
GST pulldown assay, 면역침강법(immunoprecipitation) 및 면역 블롯 분석(immunoblot assay)은 Yang CS. et al., Cell host & microbe., 11(3):264-276 (2012) 및 Yang CS. et al., Cell host & microbe., 11(3):277-289 (2012)에 설명되어 있다. GST pulldown assay를 수행하기 위해, 세포를 수확(harvest)하고, 컴플리트 프로테아제 저해제 칵테일(complete protease inhibitor cocktail, Roche)을 첨가한 NP-40 버퍼(buffer)에서 용해시켰다. 원심분리 후, 상층액(supernatants)을 4℃에서 2시간 동안 단백질 A/G(단백질 A-아가로오스) 비드(bead)로 전-세척(preclear)하였다. 사전-세척된 용해물(pre-cleared lysate)은 글루타티온이 결합된 세파로오스 비드(glutathione-conjugated Sepharose bead; Amersham Biosciences) 슬러리 50%와 혼합하였으며, 결합 반응(binding reaction)은 4시간 동안 4에서 인큐베이션(incubation)하여 수행하였다. 침전물(precipitate)은 용해 버퍼(lysis buffer)로 세척하였으며, 글루타티온 비드(glutathione beads)에 결합된 단백질은 5분 동안 비등(boiling) 시킴으로써, SDS 로딩 버퍼(loading buffer)로 용출시켰다.
면역침강법을 위해 세포를 수확하고 컴플리트 프로테아제 저해제 칵테일(complete protease inhibitor cocktail; Roche)이 추가된 NP-40 버퍼(buffer)를 이용하여 용해시켰다. 4℃에서 1시간 동안 단백질 A/G(단백질 A-아가로오스) 비드(bead)로 전-세척(preclear)한 후, 전세포 용해물(whole-cell lysate)을 지시된 특이 항체로 면역침전시켰다. 일반적으로 1~4 ㎍의 상업용 항체를 1㎖의 세포 용해물(cell lysate)에 첨가하고, 8~12시간 동안 4℃에서 반응시켰다. 단백질 A/G(단백질 A-아가로오스) 비드(bead)를 6시간 동안 첨가한 후, 면역침전물(immunoprecipitate)을 용해 버퍼(lysis buffer)로 세척하고, 5분 동안 비등(boiling) 시켜 SDS 로딩 버퍼(loading buffer)로 용출하였다.
면역블롯팅(immunoblotting)을 수행하기 위해, 폴리펩타이드(polypeptide)를 SDS-PAGE(SDS-polyacrylamide gel electrophoresis)에 의해 분리하고, PVDF 멤브레인(PVDF membrane, Bio-Rad)으로 옮겼다. 면역 검출(immune detection)은 특이 항체(specific antiboy)를 사용하여 이루어졌으며, 항체 결합은 화학 발광계(chemiluminescence; ECL:Millipore)를 사용하여 가시화하고, Vilber사의 화학 발광 분석기(Vilber chemiluminescence analyzer, Fusion SL 3;Vilber Lourmat)로 검출하였다.
실시예 1-8: 효소면역측정법( ELISA , enzyme -linked immunosorbent assay)
세포 배양 상층액(supernatant)과 마우스 혈청(serum)으로부터 TNF-α, IL-6, IL-1β, IFN-γ, IL-12p40, IL-10 및 IL-4를 검출하기 위해 BD OptEIA ELISA set(BD Pharmingen)를 사용하여 사이토카인의 함량을 분석하였다. 모든 분석(assay)은 제조사의 제품 메뉴얼에 따라 수행하였다.
실시예 1-9: 루시퍼라아제 분석( Luciferase assay)
리포터 유전자 분석법(reporter gene assay)은 Yang CS. et al., Cell host & microbe., 11(3):277-289 (2012)에 설명되어 있다. 구체적으로, 리포터 유전자 구조(construct)는 트랜스펙션(transfection) 후 36시간에, 1× 패시브 리포터 용해 버퍼(1× Passive Reporter Lysis Buffer, Promega)를 첨가하여 세포 추출물(cell extract)을 제조하였다. 루시퍼라아제 활성(Luciferase activity)은 제조사의 제품 메뉴얼에 따라 루시퍼라아제 분석 시스템(Luciferase Assay System, Promega)을 사용하여 측정하였다. 각 트랜스펙션은 3회 실시하였으며, 3회의 독립적인 실험을 수행하였다.
실시예 1-10: NOX 활성( NOX activity)에 의한 세포 내(intracellular) ROS의 측정
세포 내 초과산화물(superoxide) 생성은 루시제닌(lucigenin; bis-N-methylacridinium nitrate)-ECL 방법으로 측정하였다(Yang CS. et.al., Journal of immunology., 182(6):3696-3705, 2009; Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012). 구체적으로, 세포 또는 결장 용해물(colon lysate)은 50 mM 포스페이트 버퍼(phosphate buffer, pH 7.0), 1 mM EGTA, 150 mM 수크로오스(sucrose) 및 프로테아제 저해제 혼합물(protease inhibitor mixture)을 함유하는 반응을 통해 37℃에서 30분 동안 균질화(equilibration) 시켰다. 단, 상기 반응은 전자 수용체(electron acceptor)로서 루시제닌(lucigenin, 5 μM)과 전자 공여체(electron donor)로서 NADPH(100 μM)이 포함된 Krebs-HEPES 버퍼(Krebs-HEPES buffer)를 첨가하기 전에 이루어졌다. 측정값은 1×105 세포수 당 상대적인 광선 단위(light units)로 표시하였다.
실시예 1-11: 단일-분자 pull-down 분석법(single-molecule pull-down assay)
단일-분자 pull-down 분석법(single-molecule pull-down assay)은 Jain A. et.al., Nature., 473(7348):484-488 (2011)에 설명되어 있다. 구체적으로, HEK293T 세포에서 p22phox-V5 및 루비콘 SR2(Rubicon SR2; aa558-625)-YFP를 12시간 동안 일시적으로 발현시키고, 다양한 농도의 Tat 또는 Tat-N8 펩타이드를 12시간 동안 처리하였다. 세포를 용해 버퍼(lysis buffer; 10 mM Tris pH 7.5, 1% NP-40, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM 벤즈아미딘(benzamidine), 10 ㎍/㎖ 류펩틴(leupeptin), 1 mM NaF, 1 mM Na3VO4)로 수확(harvest)하고, 용해물(lysate)은 SimPull(Single-molecule pull-down)에 사용하기 위해 14,000g에서 20분 동안 원심 분리하였다. 이후, V5 항체가 코팅된 슬라이드(V5 antibody-coated slide)(표면 밀도는 ㎛2 당 약 20~40개의 항체 분자(antibody molecules))에서 이미지 영역의 ㎛2 당 0.1~0.2 분자(molecule)를 얻기 위해 20분 동안 반응시킬 시, 250배(250-fold) 희석된 용해물(lysate)을 사용하였다. p22phox-V5와 루비콘 SR2(Rubicon SR2)-YFP의 상호작용(interaction)을 분석하기 위해 p22phox-V5 복합체(complex)에 결합된 루비콘 SR2-YFP를 프리즘형(prism type) TIRF 현미경을 사용하여 시각화하였으며, 이에 따라 단일 분자(single-molecule) 데이터를 얻었다(Gay NJ. et.al., Annual review of biochemistry., 76:141-65, 2007; Opal SM. et.al., Jama ., 309(11):1154-1162, 2013). YFP는 488 nm의 파장에서 여기(excitation) 되었다. 좁은 대역 통과 필터(Narrow band-pass filters)가 채널(channels; YFP용 Chroma Technology사의 HQ 535/30)에 사용되었다. 모든 실험은 실온(room temperature, 22~25℃)에서 수행되었다. 단일-분자 분석(Single-molecule analysis)은 Jain A. et.al., Nature protocols., 7(3):445-452 (2012)에 설명되어 있다. 이미지(이미징 영역 2,500 ㎛2) 당 평균 스팟(spot) 수(count)와 표준편차(standard deviation)는20개 이상의 서로 다른 영역(region)에서 촬영한 이미지로부터 계산하였다.
실시예 1-12: 세균 수 측정(bacteria count)
CLP(cecal ligation and puncture) 유도 후, 24시간째 심장천자(cardiac puncture)를 통해 마우스로부터 혈액을 채취하였다. 혈액을 계단희석(serial dilution)한 후, 각 희석액의 5 ㎖을 취하여 혈액 한천 플레이트(blood agar plates)에 도말하였다. 세균(bacteria)은 37℃에서 24시간 동안 배양한 후 계수(count) 하였으며, 전체 복막 투석액(peritoneal lavage) 또는 혈액 당 CFU(Colony-forming unit)로 계산하였다.
실시예 1-13: 조직학(histology) 및 면역조직화학검사(immunohistochemistry)
조직 절편(tissue section)의 면역조직화학검사(immunohistochemistry)를 위해 마우스의 비장(spleen), 간(liver), 폐(lung)를 10 % 포르말린(formalin)으로 고정시키고 파라핀에 포매(embedding) 시켰다. 상기 파라핀 절편(paraffin section)을 4 ㎛ 두께로 절단하고 H&E(hematoxylin and eosin) 염색을 수행하였다. 조직 병리학 점수(histopathologic score)는 조직 내 염증 세포의 수와 분포 뿐만 아니라, 세(細)기관지(bronchiolar)의 상피 손상 및 회복(repair)의 증거와 같은 비-염증성(non-inflammatory) 변화를 근거로 하여 측정하였다(Buchweitz JP. et.al., The Journal of pharmacology and experimental therapeutics., 323(2):675-683, 2007).
점수는 다음과 같이 지정되었다: 0, 염증 없음, 1, 가벼운(mild), 혈관주위(perivascular)/세기관지주위(peribronchiolar) 영역(compartment)으로의 염증 세포(inflammatory cell) 침윤(infiltration), 2, 중간의(moderate), 폐포 실질(alveolar parenchyma) 내로 보통의 확장(modest extension)으로 혈관주위(perivascular)/세기관지주위(peribronchiolar) 공간(space)으로의 염증 세포(inflammatory cell) 침윤(infiltration), 3, 심각한(severe), 폐포 실질(alveolar parenchyma) 내에서 발견되는 더 많은 수의 염증성 병소(inflammatory foci)와 혈관주위(perivascular)/세기관지주위(peribronchiolar) 공간(space)으로의 염증 세포(inflammatory cell) 침윤(infiltration).
면허가 있는(board-certified) 병리학자(pathologist)가 처리(treatment) 그룹에 대한 사전 정보 없이 각 폐 절편(lung section)을 독립적으로 점수화 하였으며, 평균의 표준오차(Standard error of the mean; S.E.M.)는 각 처리 그룹에 대해 계산하였다. 면역염색(immunostaining)을 위해, 4 ㎛ 두께의 파라핀 절편(paraffin section)을 100 %, 95 % 및 80% 에탄올, 증류수 및 PBS에 연속 침지(serial immersion) 시킴에 따라, 탈파라핀화(deparaffinization) 하고, 수화(hydration) 시켰다(Zhong Y. et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476, 2009). 슬라이드(slide)는 20분 동안 PBS로 희석한 1.5%의 정상 토끼 혈청(serum)을 이용하여 블로킹(blocking) 시키고, iNOS(H-174; SantaCruz Biotechnology) 또는 COX-2(H-3; SantaCruz Biotechnology)에 대해 면역조직화학적(immunohistochemically)으로 염색하였다.
실시예 1-14: 통계 분석(statistical analysis)
독립적인 실험(평균(means) ± 표준편차(SD))로부터 얻은 결과는 two-tailed Student's t-test를 사용하여 분석하였다. 차이(differences)는 p <0.05에서 유의한 것으로 간주되었다. 생존율(survival) 비교를 위해서는 log-rank(Mantel-Cox) 테스트를 사용하여 Kaplan-Meier 생존분석, 즉 누적한계추정법(product-limit method)에 따라 결과를 그래프화하고 분석하였다(Prism, version 5.0, GraphPad Software).
실시예 2: 실험 결과
실시예 2-1: p22phox N-말단 펩타이드 ( p22phox N-terminal peptide)는 루비 콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction), NOX 활성( NOX activity) 및 염증반응(inflammation)을 강력하게 억제한다.
본 발명자들은 p22phox의 N-말단 10개의 아미노산 서열(N-terminal 10-amino acid sequence)이 루비콘(Rubicon)과의 상호작용(interaction)에 충분하다는 것을 입증한 바 있다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012).
이에, 본 발명자들은 단백질 가수분해(proteolytic degradation)를 피하면서 세포내(intracellular)로 전달하기 위해 HIV-1 Tat 단백질 전달체(Protein Transduction Domain, PTD)를 'Tat-N10 펩타이드(Tat-N10 peptide)'로 명명한 레트로-인버소(retro-inverso) 형태(version)의 펩타이드(peptide)인 p22phox의 N-말단 10개의 아미노산 서열(N-terminal 10-amino acid sequence)에 추가하고(Gump JM. et.al., Trends in molecular medicine., 13(10):443-448, 2007; Wadia JS. et.al., Nature medicine., 10(3):310-315, 2004; Hotchkiss RS. et.al., Journal of immunology., 176(9):5471-5477, 2006)(표 1 및 표 2), 상기 펩타이드가 루비콘과 p22phox의 상호작용(Rubicon-p22phox interaction)에 영향을 미치는지 실험을 통해 검증하였다.
루비콘(Rubicon) 및 p22phox의 아미노산 서열
Gene Accession No. Sequence 서열번호
Rubicon
(Kiaa0226)		 Q92622 MRPEGAGMEL GGGEERLPEE SRREHWQLLG NLKTTVEGLV STNSPNVWSK YGGLERLCRD MQSILYHGLI RDQACRRQTD YWQFVKDIRW LSPHSALHVE KFISVHENDQ SSADGASERA VAELWLQHSL QYHCLSAQLR PLLGDRQYIR KFYTDAAFLL SDAHVTAMLQ CLEAVEQNNP RLLAQIDASM FARKHESPLL VTKSQSLTAL PSSTYTPPNS YAQHSYFGSF SSLHQSVPNN GSERRSTSFP LSGPPRKPQE SRGHVSPAED QTIQAPPVSV SALARDSPLT PNEMSSSTLT SPIEASWVSS QNDSPGDASE GPEYLAIGNL DPRGRTASCQ SHSSNAESSS SNLFSSSSSQ KPDSAASSLG DQEGGGESQL SSVLRRSSFS EGQTLTVTSG AKKSHIRSHS DTSIASRGAP ESCNDKAKLR GPLPYSGQSS EVSTPSSLYM EYEGGRYLCS GEGMFRRPSE GQSLISYLSE QDFGSCADLE KENAHFSISE SLIAAIELMK CNMMSQCLEE EEVEEEDSDR EIQELKQKIR LRRQQIRTKN LLPMYQEAEH GSFRVT SSSS QFSSRDSAQL SDSGSADEVD EFEIQDADIR RNTASSSKSF VSSQSFSHCF LHSTS AEAVA MGLLKQFEGM QLPAASELEW LVPEHDAPQK LLPIPDSLPI SPDDGQHADI YKLRIRVRGN LEWAPPRPQI IFNVHPAPTR KIAVAKQNYR CAGCGIRTDP DYIKRLRYCE YLGKYFCQCC HENAQMAIPS RVLRKWDFSK YYVSNFSKDL LIKIWNDPLF NVQDINSALY RKVKLLNQVR LLRVQLCHMK NMFKTCRLAK ELLDSFDTVP GHLTEDLHLY SLNDLTATRK GELGPRLAEL TRAGATHVER CMLCQAKGFI CEFCQNEDDI IFPFELHKCR TCEECKACYH KACFKSGSCP RCERLQARRE ALARQSLESY LSDYEEEPAE ALALEAAVLE AT 11
p22phox
(Cyba)		 P13498 MG QIEWAMWA NEQALASGLI LITGGIVATA GRFTQWYFGA YSIVAGVFVC LLEYPRGKRK KGSTMERWGQ KHMTAVVKLF GPFTRNYYVR AVLHLLLSVP AGFLLATILG TACLAIASGI YLLAAVRGEQ WTPIEPKPRE RPQIGGTIKQ PPSNPPPRPP AEARKKPSEE EAAAAAGGPP GGPQVNPIPV TDEVV 12
구체적으로, HEK293T 세포에 V5-p22phox 및 플래그-루비콘(Flag-Rubicon)을 트랜스펙션(transfection) 시키고 12시간이 지난 후에, 다양한 농도의 Tat 단독 또는 Tat-N10 펩타이드를 처리하고, 다양한 시간 동안 배양한 후, 루비콘-p22phox 복합체(Rubicon-p22phox complex)의 공면역침강법(co-immunoprecipitation; co-IP) 분석을 수행하였다. 그 결과, 6시간 이내의 배양에서 30 μM 또는 50 μM의 Tat-N10 펩타이드(Tat-N10 peptide)가 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction)을 효율적으로 차단할 수 있음을 확인하였다. 반면, Tat 펩타이드만으로는 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction)이 전혀 차단되지 않음을 확인하였다(도 1의 A, 도 2의 A 및 도 2의 B).
미생물 감염(microbial infection) 또는 TLR(Toll-like receptor) 활성화(activation)에 따라, 루비콘(rubicon)은 주기적으로 p22phox-gp91phox NOX와 상호작용을 하여 면역세포(예컨대, 대식세포(macrophage)와 단핵구(monocyte)) 및 비-면역세포(non-immune cell)(예컨대, 내피세포와 상피세포)로부터 활성산소(Reactive oxygen species, ROS) 및 염증성 사이토카인(inflammatory cytokines)의 생성을 촉진시킨다(Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276, 2012). 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 일시적인 상호작용 프로파일(profile)에 대한 N10 펩타이드(N10 peptide)의 효과를 보다 상세하게 규명하기 위해, 인간 폐포 A549-플래그-루비콘(human alveolar A549-Flag-Rubicon) 또는 마우스 Raw264.7-플래그-루비콘(murine Raw264.7-Flag-Rubicon)에 Tat 또는 Tat-N10 펩타이드를 30 μM의 농도로 6시간 동안 전처리(pretreatment)한 후, LPS/TLR4 또는 BLP/TLR2로 다양한 시간 동안 자극을 주고, 플래그-루비콘 복합체(Flag-Rubicon complexes)에 대한 면역정제(immune-purification)와 다양한 항체로 면역 블로팅(immunoblotting)을 수행하였다. 그 결과, 루비콘(rubicon)과 p22phox의 상호작용이 TLR 자극 후 5분 및 30분에 주기적으로 증가하는 양상을 나타내었으나, 이러한 상호작용은 Tat-N10 펩타이드를 처리한 경우 현저하게 억제됨을 확인하였다. 한편, 상기 루비콘(rubicon)과 p22phox의 상호작용은 Tat 펩타이드만을 처리한 경우에는 억제되지 않았다(도 1의 B 및 도 2의 C). 루비콘(rubicon)과 자가소화작용 경로(autophagy pathway)와 관련된 베클린-1(Beclin-1) 및 UVRAG와의 상호작용, 또는 루비콘(rubicon)과 NOX 경로(NOX pathway)와 관련 있는 NOX4 및 gp91phox와의 상호작용에 거의 또는 전혀 영향을 미치지 않았기 때문에 N10 펩타이드의 효과는 특이적임을 확인하였다(도 1의 B 및 도 2의 C). 또한, 벡터(vector) 또는 루비콘(rubicon)을 발현하는 A549 세포(도 1의 C) 또는 Raw 264.7 세포(도 2의 D)에 각각 Tat-N10 펩타이드를 처리한 경우, 농도 의존적으로 LPS에 의해 유도된 초과산화물 음이온(superoxide anion) 생성(결과 보여주지 않음) 및 NOX 활성이 현저하게 억제됨을 확인하였다. 반면, Tat 펩타이드만을 처리한 경우에는 NOX 활성이 억제되지 않았다(도 1의 C 및 도 2의 D). NOX 신호전달(signaling)은 전-염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokine) 발현을 조절하는 것으로 알려져 있기 때문에(Fang FC., Nature reviews Microbiology., 2(10):820-832, 2004), A549 세포 또는 Raw264.7 세포에 Tat 또는 Tat-N10 펩타이드를 다양한 농도로 전처리한 후, LPS(lipopolysaccharide) 또는 BLP(bacterial lipopeptide)를 처리하여 24시간 동안 배양하고, 상층액(supernatant)을 수집하여 사이토카인 분비량을 측정하였다. 그 결과, LPS 또는 BLP를 처리함에 따라 TNF-α 및 IL-6의 생성을 강력하게 유도하였다(도 1의 D 및 도 2의 E). 그러나, Tat-N10 펩타이드를 처리한 경우에는 사이토카인의 생성이 두드러지게 감소하였다. 반면, Tat 펩타이드만을 처리한 경우에는 사이토카인 생성 저해 효과를 나타내지 않았다(도 1의 D 및 도 2의 E).
상기 결과를 통해, p22phox(아미노산(amino acid) 1-10)의 루비콘-결합 소구역(Rubicon-binding subregion)이 TLR2 및 TLR4에 의해 유도된 ROS 매개 전-염증성 신호(ROS mediated pro-inflammatory signaling)를 특이적으로 조절하는데 사용될 수 있음을 알 수 있었다.
실시예 2-2: p22phox의 8개의 N-말단 아미노산(N-terminal 8-amino acid)은 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction)을 차단하고, NOX ( NADPH oxidase) 활성 및 염증(inflammation)을 억제하는데 충분하다.
본 발명자들은 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction)을 차단할 수 있는, 다양한 길이의 펩타이드를 포함하는 p22phox의 N-말단 부위(p22phox N-terminal region)를 테스트함에 따라, p22phox의 소구역(subregion)을 더 줄이고자 하였다. 'N8 펩타이드(N8 peptide)'로 명명한, p22phox의 8개의 N-말단 아미노산(aa 3-10)이 N10 펩타이드(N10 peptide) 펩타이드 만큼 효과적으로 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용을 차단함을 확인하였다(도 3의 A 및 표 2). 이를 더 구체적으로 입증하기 위해, 본 발명자들은 p22phox N 말단 3-10 아미노산(amino acid, aa) 서열을 포함하는 GST-p22phox (3-10) 포유류 발현 벡터(GST-p22phox (3-10) mammalian expression vector)를 구축하였다. 또한, p22phox의 8개의 아미노산 서열(p22phox 8-amino acid sequences; Q3IE W 6 AM W 9 A10)의 소수성(hydrophobic) 트립토판(tryptophan, W) 잔기(residue)를 알라닌(alanine, A)으로 바꾼 GST-p22phox (3-10) 돌연변이체(mutant) W6A 및 W9A를 포함하여 구축하였다(표 1). GST pull down assay 분석 결과, GST-p22phox (3-10)이 내인성(endogenous) 및 외인성(exogenous) 루비콘(Rubicon)과 결합하는 데 충분한 데 반해, 동일한 조건하에서 돌연변이체인 GST-p22phox W6A 및 GST-p22phox W9A는 루비콘(Rubicon)과 결합하지 못하였다(도 3의 B 및 도 3의 C). 상기 결과와 일치하게, Tat-N8 펩타이드는 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용, NOX 활성(NADPH oxidase activity) 및 사이토카인 생성을 차단하였으나, 돌연변이체 펩타이드(mutant peptide)인 Tat-N8 W6A 및 Tat-N8 W9A는 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용, NOX 활성(NADPH oxidase activity) 및 사이토카인 생성을 차단하지 못하였다(도 3의 D 내지 도 3의 G). 더욱이, 후기(late) 전-염증성(pro-inflammatory) HMGB1(high mobility group box protein 1) 및 세포 외(extracellular) 히스톤 H3(histones H3)가 패혈증(sepsis) 사망의 주요 매개자(mediator)로 알려져 있다(El Gazzar M. et.al., Molecular and cellular biology., 29(7):1959-1971, 2009; Xu J. et.al., Nature medicine., 15(11):1318-1321, 2009). LPS 또는 BLP가 각각 처리된 A549 세포 또는 Raw 264.7 세포에 Tat-N8 펩타이드를 처리한 경우, HMGB1 및 히스톤 H3(histones H3)와 같은 염증성 매개자의 방출(release)이 두드러지게 약화됨을 확인하였다. 반면, Tat 펩타이드를 처리한 경우, 염증성 매개자의 방출이 감소하는 효과를 보이지 않았다(도 4). 마지막으로, HIV-1 Tat 단백질 전달체(Protein Transduction Domain, PTD) 서열 없이 N8 펩타이드만으로도 루비콘-p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용 및 ROS 생성을 차단할 수 있음을 확인하였으나, 고농도(500 μM)에서만 차단되었다. 이를 통해, 8개의 아미노산 N8 펩타이드(8-amino acid N8 peptide)는 세포 내 전달(intracellular delivery)에 비효율적임을 유추할 수 있었다(도 5). 따라서, p22phox의 최소 부위(minimal region) (3-10)와 루비콘(rubicon)과의 상호작용은 특이적으로 ROS 생성을 억제함을 알 수 있다.
실시예 2-3: p22phox의 8개의 N-말단 아미노산(N-terminal 8-amino acid)은 자가소화작용(autophagy) 활성에 영향없이 루비콘 - p22phox(Rubicon-p22phox)의 상호작용(interaction)을 차단하기에 충분하다.
루비콘(Rubicon)과 p22phox 상호작용을 차단하기 위한 N8 펩타이드의 효력을 직접적으로 가시화하기 위해, 단일 분자 현미경(single-molecule fluorescence microscopy)으로 전통적인 pull-down 분석법의 원리를 결합한 단일 분자 pull-down 분석법(single-molecule pull-down, SiMPull)을 사용하였다(Jain A. et.al., Nature., 473(7348):484-488, 2011). 이 접근법은 단일 분자 형광 현미경(single-molecule fluorescence microscope) 하에서 관찰하는 커버슬립(coverslip)에 직접적으로 비교적 적은 양의 용해된 세포(lysed cells, 최소 10~50개의 세포)를 취하고, 상기 세포에 단백질 복합체(protein complex)를 고정(immobilization) 시킴으로써, 단백질-단백질 상호작용의 정량적 평가를 간단하고 직접적 증명이 가능하게 한다. p22phox의 8개의 N-말단 아미노산(N-terminal 8-amino acid)이 루비콘(Rubicon)의 세린이 풍부한 2 부위(serin-rich-2 region; SR-2, aa558-625)에 효과적으로 결합하기 때문에, HEK293T 세포에 12시간 동안 p22phox-V5 및 루비콘 SR2-YFP(Rubicon SR2-YFP)를 트랜스펙션(transfection) 시키고, 다양한 농도의 Tat 또는 Tat-N8 펩타이드를 처리하여 12시간 동안 더 배양하였다. 각각의 세포 용해물(cell lysate)을 V5 항체가 코팅된 커버슬립(V5-antibody-coated coverslip)에 직접적으로 첨가하고, 버퍼(buffer)로 세척하였다. 세척 후, p22phox-V5 및 루비콘 SR2-YFP(Rubicon SR2-YFP)의 상호작용을 검출하기 위해 현미경 분석(microscopic analysis)을 수행하였다. 구체적으로, p22phox-V5 복합체(complex)에 결합된 루비콘 SR2-YFP(Rubicon SR2-YFP)는 형광 융합 단백질(fluorescent fusion protein)로 가시화되었으며, 형광 이미지 상에서 각각 개별의 단백질 복합체를 나타내는 형광 스팟(fluorescent spot)의 수를 계수함에 따라 간단하게 정량화하였다(도 6의 A). SiMPull 분석법(single-molecule pull-down assay)을 통해, Tat-N8 펩타이드가 in vitro 상에서 농도 의존적으로 p22phox-V5 및 루비콘 SR2-YFP(Rubicon SR2-YFP)의 상호작용을 현저하게 억제하는 반면, Tat 펩타이드 단독으로는 p22phox-V5 및 루비콘 SR2-YFP(Rubicon SR2-YFP)의 상호작용을 억제하지 않음을 확인하였다(도 6의 A).
Yang CS. et.al., Cell host & microbe., 11(3):264-276 (2012), Matsunaga K. et.al., Nature cell biology., 11(4):385-396 (2009), Zhong Y. et.al., Nature cell biology., 11(4):468-476 (2009)에 설명되어 있는 바와 같이, 베클린-1(Beclin-1)과 결합할 수 있는 루비콘 야생형(Rubicon wild type(WT))의 발현은, 자가소화포(autophagosome) 성숙 단계를 저해하는 영양분 고갈 상태(starvation) 또는 라파마이신(rapamycin) 처리 조건하에서, LC3-Ⅱ 및 p62 단백질 수준을 증가시킴을 확인하였다. 대조적으로, 루비콘 야생형(Rubicon wild type(WT))은 LPS, BLP 또는 자이모산(Zymosan) 처리에 의한 자가소화포(autophagosome) 성숙에 대한 억제 효과를 나타내지 않았다. 이는, 베클린1-UVRAG-함유 자가소화작용 복합체(Beclin1-UVRAG-containing autophagy complex)에서 루비콘이 분리(dissociation) 되고, 이후, LPS, BLP 또는 자이모산(Zymosan) 처리시 p22phox와결합하기 때문인 것으로 보인다(도 6의 B 및 도 6의 C). 그러나, Tat-N8 펩타이드를 처리한 결과, p62 단백질 수준을 현저하게 증가시킴을 확인하였으며, 이에 반해 Tat 펩타이드만을 처리한 경우에는 p62 단백질 수준이 증가되지 않았다(도 6의 B 및 도 6의 C).
상기 결과를 통해, Tat-N8 펩타이드가 루비콘-베클린1-UVRAG 상호작용(Rubicon-Beclin1-UVRAG interaction)에는 영향을 주지 않으면서, 루비콘-p22phox 상호작용(Rubicon-p22phox interaction)을 특이적으로 차단함을 알 수 있었다. 또한, 루비콘(rubicon)과 p22phox의 결합(association)은 베클린1-UVRAG 복합체(Beclin1-UVRAG complex)로부터 루비콘(rubicon)이 분리(dissociation)되기 이전에 이루어져야 함을 유추할 수 있었다. 따라서 종합하면, p22phox N8 펩타이드가 치명적인 염증성 질환에 대한 치료적 가능성이 있음을 알 수 있다.
실시예 2-4: 전신성 패혈증(systemic sepsis) 마우스 동물 모델에서의 p22phox N8 펩타이드의 치료 효과
Tat-N8 펩타이드(peptide)가 감염(infection)에 대항할 수 있는 숙주의 능력은 손상시키지 않으면서, 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis)과 패혈증(sepsis)으로 인한 패혈증 쇼크(septic shock)에 대한 보호 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, 본 발명자들은 통상적으로 치명적인 인간 다균성 감염-유발 전신성 염증 반응 증후군(human polymicrobial infection-induced systemic inflammatory response syndrome)과 유사한 CLP(cecal ligation and puncture) 마우스 동물 모델을 사용하였다(Hubbard WJ. et.al., Shock., 24 Suppl1:52-57, 2005). 먼저, 마우스 동물 모델에서 CLP로 인한 사망률(mortality)에 대한 Tat-N8 펩타이드의 치료 효과를 검증하였다. 구체적으로, 마우스에 CLP(cecal ligation and puncture)를 유도한 후, Tat-N8 펩타이드를 6시간, 12시간 및 18시간에 정맥 주사(intravenous injection)로 3회 처리한 결과, 농도 의존적으로 보호 효과가 나타남을 확인하였다. 특히, 마우스 당 30 ㎎/㎏의 투여량(10 mM 농도와 동등)으로 Tat-N8 펩타이드를 정맥 주사한 CLP(cecal ligation and puncture) 유도 마우스의 경우, 30 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 즉, Tat-N8 펩타이드를 정맥 주사한 CLP 유도 마우스의 사망률이 현저하게 감소함을 확인하였다. 반면, Tat 펩타이드를 처리한 대조군의 경우, 처리 횟수에 관계없이 CLP 유도 마우스의 생존률이 현저하게 감소함을 확인하였다(도 7의 A). ROS-생성 NOX 신호(ROS-producing NOX signaling)는 전신성 패혈증(systemic sepsis)의 발병(pathogenesis)에 기여하는 사이토카인 폭풍(cytokine storm)을 조절하는 것으로 알려져 있으며, 이로 인해 복합장기부전(multiple organ failure)이 유발된다(Cavaillon JM. et.al., Scandinavian journal of infectious diseases., 35(9):535-544, 2003; Victor VM. et.al., Current pharmaceutical design., 11(24):3141-3158, 2005; Hutchins NA. et.al., Trends in molecular medicine., 20(4):224-233. 2014). 따라서, 패혈증과 메커니즘적으로 관련되어 있는 NOX 활성 및 염증성 매개자(inflammatory mediators)의 생성에 미치는 Tat-N8 펩타이드의 영향을 평가하였다. 사망률 결과와 일치하게, 비장에서의 NOX 활성, 및 TNF-α, IL-6 및 IL-1β와 같은 전염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokines)의 혈청에서의 농도, HMGB1과 히스톤 H3(histone H3) 단백질의 수준이, Tat-N8 펩타이드를 처리한 CLP-유도 마우스 동물 모델에서 현저하게 약화됨을 확인하였다(도 7의 B 내지 도 7의 D).
또한, Tat-N8 펩타이드를 처리한 CLP-유도 마우스의 비장에서 iNOS의 활성화 및 COX-2의 발현이 감소함을 확인하였다(도 7의 D). 이러한 임상 평가는 대표적인 폐(lung), 간(liver) 및 비장(spleen) 절편(section)의 조직학적 검사를 통해 검증하였다(Buchweitz JP. et.al., The Journal of pharmacology and experimental therapeutics., 323(2):675-683, 2007). 대조군으로서 스크램블드 펩타이드(scrambled peptide)를 처리한 CLP-유도 마우스의 다양한 조직에 대해 H&E(Hematoxylin & eosin) 염색을 수행해 본 결과, 폐포 벽(alveolar wall)이 두꺼워진 심각한 폐 염증(pulmonary inflammation) 및 간세포(세포질의 호산구 증가증(eosinophilia) 및 핵농축(pyknosis) 증가)와 비장세포(핵붕괴(karyorrhexis))의 괴사(necrosis)를 나타내었다. 그러나, Tat-N8 펩타이드를 처리한 CLP 유도 마우스에서는 상기와 같은 변화, 즉 심각한 폐 염증 및 간세포와 비장세포의 괴사를 유의하게 감소시켰다(도 7의 E, 왼쪽). 이러한 조직학적 매개 변수(histologic parameters)의 반정량적 점수(semiquantitative scoring)는 조직 내 염증 세포의 수와 분포 뿐만 아니라, 세(細)기관지(bronchiolar)의 상피 손상 및 회복(repair)의 증거와 같은 비-염증성(non-inflammatory) 변화까지 포함하여 측정되었다. CLP에 의해 유발된 비장 비대증(splenomegaly)에 있어서, Tat-N8 펩타이드를 처리한 CLP 유도 마우스의 패혈증의 중증도(severity)가 스크램블드 펩타이드(scrambled peptide)를 처리한 대조군 CLP 유도 마우스와 비교하여 현저하게 낮음을 확인하였다(도 7의 E, 오른쪽). 상기 결과를 통해, CLP-유도 패혈증(CLP-induced sepsis)에서 Tat-N8 펩타이드가 보호하는 역할을 함을 알 수 있었다.
실시예 2-5: p22phox의 N8 펩타이드 -모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)은 루비콘 - p22phox (Rubicon- p22phox ) 상호작용 및 ROS -매개 염증( ROS -mediated inflammation)을 강하게 억제한다.
치료제(therapeutic agents)로서 펩타이드 유사체(peptide analogs)가 가지는 잠재적인 문제점은 in vivo 상에서 효소 분해(enzymatic degradation)에 대한 감수성(susceptibility) 및 짧은 제거 반감기(elimination half-lives)이다(Bruno BJ. et.al., Therapeutic delivery., 4(11):1443-1467, 2013; Craik DJ. et.al., Chemical biology & drug design., 81(1):136-147, 2013). 따라서, 본 발명자들은 p22phox-루비콘(p22phox-Rubicon) 상호작용을 타겟으로 하여 p22phox의 N8 펩타이드 모방체(N8 peptide mimetics)를 선별하기 위해 단일 화합물(single compounds)의 화학적 라이브러리(chemical libraries)를 스크리닝하였다. 모든 스크리닝은 3회 반복하였으며, 재현성을 나타내는 화합물을 1차 선별하였다(표 3).
Figure pat00016
1차 선별한 화합물 중에서, 추가 실험을 위해 화합물 1(compound 1; M.W.524.33)을 선별하였다(도 8의 A 및 도 9).
첫째, 화합물 1(compound 1)의 세포독성을 측정하여 p22phox-루비콘(p22phox-Rubicon) 상호작용 억제 효과가 세포 생존력의 저해로부터 기인한 가능성을 배제하고자 하였다. 화합물 1(compound 1)을 A549 세포 또는 Raw264.7 세포에 다양한 농도(0, 1, 5, 10, 20, 50 및 100 μM)로 처리하고 배양한 후에도 세포 생존력에 어떠한 유의한 변화도 유도하지 않았다. 즉, 화합물 1에 의한 세포 사멸이 일어나지 않음을 확인함으로써, 세포독성이 없음을 알 수 있었다(도 8의 B, 도 8의 C 및 도 10의 A). 또한, 화합물 1(compound 1)은 A549 세포 또는 Raw264.7 세포에서 p22phox 또는 루비콘(Rubicon) 단백질의 발현에 영향을 미치지 않음을 확인하였다(도 8의 B, 도 8의 C 및 도 10의 A). 다음으로, N8 펩타이드 모방체(N8 peptide-mimetic)인 상기 화합물 1(compound 1)이 약리학적(pharmacologic) 그리고 생물학적(biologic) 프로파일(profile)을 가지고 있는지 확인하기 위하여 실험을 수행하였다. 도 8의 D 내지 도 8의 F와, 도 10의 B 및 도 10의 C에 나타낸 바와 같이, Tat-N8 펩타이드의 활성과 일치하게, 화합물 1이 NOX 활성, NF-κB-루시퍼라아제(NF-κB-luciferase) 프로모터 활성 및 사이토사인 생성을 농도 의존적으로 현저히 억제 시킴을 확인하였다. 흥미롭게도, 루비콘을 발현하는 A549(Rubicon-expressing A549) 세포 및 Raw264.7(Rubicon-expressing Raw264.7) 세포에서 루비콘(Rubicon)과 p22phox 및 gp91phox 또는 NOX4와의 상호작용은, TLR2 또는 TLR4로 자극하기 1시간 전에 화합물 1을 전처리(pretreatment) 함에 따라 현저하게 억제됨을 확인하였다(도 8의 G, 도 10의 D 및 도 10의 F). 또한, p22phox를 발현하는 A549(p22phox-expressing A549) 세포 및 Raw264.7(p22phox-expressing Raw264.7) 세포에서 화합물 1에 의해 루비콘(Rubicon), gp91phox 또는 NOX4, p47phpx 및 p67phox와 p22phox의 상호작용이 현저하게 억제됨을 확인하였다(도 8의 H, 도 10의 E 및 도 10의 F). 상기 결과를 통해, 화합물 1(compound 1)이 p22phox가 매개하는 NOX 복합체(p22phox-mediated NADPH oxidase complex)의 조립(assembly)과 염증(inflammation)을 저해함에 따라 면역 조절제(immunomodulator)로서 작용함을 알 수 있었다.
실시예 2-6: 전신성 패혈증(systemic sepsis) 마우스 동물 모델에서의 p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)의 치료 효과
본 발명의 p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1)이 CLP(cecal ligation and puncture)-유도 다균성 패혈증(polymicrobial sepsis) 마우스 동물 모델에 대해 보호 효과를 나타내는지 확인하기 위하여, 먼저, 마우스 동물 모델에서 CLP로 인한 사망률(mortality)에 대한 화합물 1(compound 1)의 치료 효과를 검증하였다. 구체적으로, 마우스에 CLP(cecal ligation and puncture)를 유도한 후, 화합물 1(compound 1)을 6시간, 12시간 및 18시간에 정맥 주사(intravenous injection)로 3회 처리한 결과, 농도 의존적으로 보호 효과가 나타남을 확인하였다. 특히, 마우스 당 5 ㎎/㎏의 투여량(2 mM 농도와 동등)으로 화합물 1(compound 1)을 복강 내 주사한 CLP(cecal ligation and puncture) 유도 마우스의 경우, 70 %의 마우스가 CLP 유도로 인한 죽음으로부터 보호됨을 확인하였다. 즉, 화합물 1(compound 1)을 복강 내 주사한 CLP 유도 마우스의 사망률이 현저하게 감소함을 확인하였다(도 11의 A). 사망률 결과와 일치하게, 비장에서의 NOX 활성, 및 TNF-α, IL-6, IL-1β, IFN-γ 및 IL12p40와 같은 전염증성 사이토카인(pro-inflammatory cytokines)의 혈청에서의 농도, HMGB1과 히스톤 H3(histone H3) 단백질의 수준이, 화합물 1(compound 1)을 처리한 CLP-유도 마우스 동물 모델에서 현저하게 약화됨을 확인하였다. 그러나 IL-10과 IL-4의 농도는 유의한 변화를 보이지 않았다(도 11의 B 및 도 12). 이러한 변화는 비장에서 iNOS 및 COX-2 단백질이 낮은 수준으로 발현하게 되는 것을 동반하였으며, H&E 염색 결과를 통해 면역세포의 침윤(infiltration) 감소와 폐(lung), 간(liver), 비장(spleen)의 손상이 감소됨을 확인하였다(도 11의 B 내지 도 11의 D).
다음으로, 본 발명자들은 본 발명의 화합물이 in vivo 상에서 약리학적 활성을 가지는지 그 여부를 실험을 통해 확인하였다. 신규 화합물을 평가할 때 식세포작용-관련 타겟 단백질 결합 프로파일(phagocytosis-related target protein binding profiles)과 자가소화작용(autophagy) 활성을 in vivo 상에서 탐지하는 것은 치명적인 염증성 질환을 치료하기 위한 치료제를 탐색하는 데 있어 중요하다. 도 6의 B 및 C에 나타낸 in vitro 결과와 일치하게, CLP 유도 마우스의 비장세포(splenocyte)에 화합물 1(compound 1)을 처리함에 의해 루비콘(Rubicon)과 p22phox의 결합을 현저하게 감소시키고, p62 단백질 수준을 증가시킴을 확인하였다(도 11의 E). 상기 결과를 통해, p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 본 발명의 화합물 1(compound 1)이 루비콘-베클린1-UVRAG 상호작용(Rubicon-Beclin1-UVRAG interaction)에는 영향을 주지 않으면서, 루비콘-p22phox 상호작용(Rubicon-p22phox interaction)을 특이적으로 차단함을 알 수 있었다.
따라서 종합하면, 본 발명의 p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1)이 CLP에 의해 유도된 패혈증을 완화 시키는 치료 효과가 있음을 알 수 있으며, 더 나아가 패혈증과 같은 염증 질환 치료제로 유용하게 이용할 수 있음을 유추할 수 있다.
실시예 2-7: 전신성 패혈증(systemic sepsis) 마우스 동물 모델에서의 p22phox의 N8 펩타이드 -모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)과 광범위 항생제(broad-spectrum antibiotics) 조합(combination)의 치료 효과
CLP에 의해 유발된 치사율은 말초 혈액(peripheral blood) 및 복막액(peritoneal fluid)에서 세균 콜로니 형성 수(bacterial colony forming units(CFU))와 양성적으로 관련되어 있고(Lee YS. et.al., EMBO molecular medicine., 7(5):577-592, 2015), 본 발명의 p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1)이 폐포상피세포(alveolar epithelial cell)와 대식세포(macrophage)에 의한 살균성 초과산화물(bactericidal superoxide) 생성을 증가시키기 때문에, 본 발명자들은 상기 화합물 1(compound 1)이 세균 제거 또한 향상시키는지 확인하였다. CLP-유도 마우스에 화합물 1(compound 1)을 처리한 결과, 대조군인 PBS를 처리한 경우와 비교하여 말초 혈액(peripheral blood) 및 복막액(peritoneal fluid)에서 세균 콜로니 형성 수(bacterial colony forming units(CFU))에 있어서 실질적인 차이가 없음을 확인하였다(도 13의 A). 이러한 결과를 통해 화합물 1(compound 1)이 세균에 의한 감염을 직접적으로 조절하지는 않으나, 염증성 반응(inflammatory responses)을 감소시킬 수 있음을 유추할 수 있다.
항-패혈성 쇼크(Anti-septic shock) 치료는 병원균(pathogens)과 숙주 면역 반응(host immune responses) 모두를 다면적으로 표적화(multifaceted targeting) 하여야 한다. 따라서, 화합물 1(compound 1)과 일반적으로 임상 환경(clinical settings)에서 패혈증 치료를 위해 사용되는 항생제(antibiotics)의 병용 치료가 시너지 효과(synergistic effect)를 나타내는지 확인하였다. 그람 음성균(Gram-negative bacteria)과 그람 양성균(Gram-positive bacteria)에 사용되는 젠타마이신(gentamicin, 8 ㎎/㎏)과 세팔로스포린(cephalosporin, 8 ㎎/㎏)을 CLP 유도 마우스에 투여하였다(Lee YS. et.al., EMBO molecular medicine., 7(5):577-592, 2015). 그 결과, 항생제 단독 조건에서는 40%의 생존율을 보였으나, 저농도의 화합물 1(compound 1, 1 ㎎/㎏)과 항생제의 조합 조건에서는 CLP 유도 마우스의 생존율 향상에 시너지 효과를 보임을 확인하였다(도 13의 A, 왼쪽). 또한, 고농도의 화합물 1(compound 1, 5 ㎎/㎏)과 항생제의 조합 조건에서는 CLP 유도 마우스의 100%의 생존율을 보임을 확인하였다(도 13의 B, 오른쪽). 근본적인 기작(mechanism)은 알려져 있지 않으나, 상기 결과를 통해 본 발명의 p22phox의 N8 펩타이드-모방 화합물(N8 peptide-mimetic compound)인 화합물 1(compound 1) 및 항생제와의 병용 요법에 대한 투여 최적화(dosing optimization)의 중요성을 알 수 있으며, 화합물 1(compound 1) 및 항생제를 조합하여 치료할 경우, 우수한 시너지 효과가 있음을 알 수 있었다.
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Ala His Val Thr Ala Met Leu Gln Cys Leu Glu Ala Val Glu 165 170 175 Gln Asn Asn Pro Arg Leu Leu Ala Gln Ile Asp Ala Ser Met Phe Ala 180 185 190 Arg Lys His Glu Ser Pro Leu Leu Val Thr Lys Ser Gln Ser Leu Thr 195 200 205 Ala Leu Pro Ser Ser Thr Tyr Thr Pro Pro Asn Ser Tyr Ala Gln His 210 215 220 Ser Tyr Phe Gly Ser Phe Ser Ser Leu His Gln Ser Val Pro Asn Asn 225 230 235 240 Gly Ser Glu Arg Arg Ser Thr Ser Phe Pro Leu Ser Gly Pro Pro Arg 245 250 255 Lys Pro Gln Glu Ser Arg Gly His Val Ser Pro Ala Glu Asp Gln Thr 260 265 270 Ile Gln Ala Pro Pro Val Ser Val Ser Ala Leu Ala Arg Asp Ser Pro 275 280 285 Leu Thr Pro Asn Glu Met Ser Ser Ser Thr Leu Thr Ser Pro Ile Glu 290 295 300 Ala Ser Trp Val Ser Ser Gln Asn Asp Ser Pro Gly Asp Ala Ser Glu 305 310 315 320 Gly Pro Glu Tyr Leu Ala Ile Gly Asn Leu Asp Pro Arg Gly Arg Thr 325 330 335 Ala Ser Cys Gln Ser His Ser Ser Asn Ala Glu Ser Ser Ser Ser Asn 340 345 350 Leu Phe Ser Ser Ser Ser Ser Gln Lys Pro Asp Ser Ala Ala Ser Ser 355 360 365 Leu Gly Asp Gln Glu Gly Gly Gly Glu Ser Gln Leu Ser Ser Val Leu 370 375 380 Arg Arg Ser Ser Phe Ser Glu Gly Gln Thr Leu Thr Val Thr Ser Gly 385 390 395 400 Ala Lys Lys Ser His Ile Arg Ser His Ser Asp Thr Ser Ile Ala Ser 405 410 415 Arg Gly Ala Pro Glu Ser Cys Asn Asp Lys Ala Lys Leu Arg Gly Pro 420 425 430 Leu Pro Tyr Ser Gly Gln Ser Ser Glu Val Ser Thr Pro Ser Ser Leu 435 440 445 Tyr Met Glu Tyr Glu Gly Gly Arg Tyr Leu Cys Ser Gly Glu Gly Met 450 455 460 Phe Arg Arg Pro Ser Glu Gly Gln Ser Leu Ile Ser Tyr Leu Ser Glu 465 470 475 480 Gln Asp Phe Gly Ser Cys Ala Asp Leu Glu Lys Glu Asn Ala His Phe 485 490 495 Ser Ile Ser Glu Ser Leu Ile Ala Ala Ile Glu Leu Met Lys Cys Asn 500 505 510 Met Met Ser Gln Cys Leu Glu Glu Glu Glu Val Glu Glu Glu Asp Ser 515 520 525 Asp Arg Glu Ile Gln Glu Leu Lys Gln Lys Ile Arg Leu Arg Arg Gln 530 535 540 Gln Ile Arg Thr Lys Asn Leu Leu Pro Met Tyr Gln Glu Ala Glu His 545 550 555 560 Gly Ser Phe Arg Val Thr Ser Ser Ser Ser Gln Phe Ser Ser Arg Asp 565 570 575 Ser Ala Gln Leu Ser Asp Ser Gly Ser Ala Asp Glu Val Asp Glu Phe 580 585 590 Glu Ile Gln Asp Ala Asp Ile Arg Arg Asn Thr Ala Ser Ser Ser Lys 595 600 605 Ser Phe Val Ser Ser Gln Ser Phe Ser His Cys Phe Leu His Ser Thr 610 615 620 Ser Ala Glu Ala Val Ala Met Gly Leu Leu Lys Gln Phe Glu Gly Met 625 630 635 640 Gln Leu Pro Ala Ala Ser Glu Leu Glu Trp Leu Val Pro Glu His Asp 645 650 655 Ala Pro Gln Lys Leu Leu Pro Ile Pro Asp Ser Leu Pro Ile Ser Pro 660 665 670 Asp Asp Gly Gln His Ala Asp Ile Tyr Lys Leu Arg Ile Arg Val Arg 675 680 685 Gly Asn Leu Glu Trp Ala Pro Pro Arg Pro Gln Ile Ile Phe Asn Val 690 695 700 His Pro Ala Pro Thr Arg Lys Ile Ala Val Ala Lys Gln Asn Tyr Arg 705 710 715 720 Cys Ala Gly Cys Gly Ile Arg Thr Asp Pro Asp Tyr Ile Lys Arg Leu 725 730 735 Arg Tyr Cys Glu Tyr Leu Gly Lys Tyr Phe Cys Gln Cys Cys His Glu 740 745 750 Asn Ala Gln Met Ala Ile Pro Ser Arg Val Leu Arg Lys Trp Asp Phe 755 760 765 Ser Lys Tyr Tyr Val Ser Asn Phe Ser Lys Asp Leu Leu Ile Lys Ile 770 775 780 Trp Asn Asp Pro Leu Phe Asn Val Gln Asp Ile Asn Ser Ala Leu Tyr 785 790 795 800 Arg Lys Val Lys Leu Leu Asn Gln Val Arg Leu Leu Arg Val Gln Leu 805 810 815 Cys His Met Lys Asn Met Phe Lys Thr Cys Arg Leu Ala Lys Glu Leu 820 825 830 Leu Asp Ser Phe Asp Thr Val Pro Gly His Leu Thr Glu Asp Leu His 835 840 845 Leu Tyr Ser Leu Asn Asp Leu Thr Ala Thr Arg Lys Gly Glu Leu Gly 850 855 860 Pro Arg Leu Ala Glu Leu Thr Arg Ala Gly Ala Thr His Val Glu Arg 865 870 875 880 Cys Met Leu Cys Gln Ala Lys Gly Phe Ile Cys Glu Phe Cys Gln Asn 885 890 895 Glu Asp Asp Ile Ile Phe Pro Phe Glu Leu His Lys Cys Arg Thr Cys 900 905 910 Glu Glu Cys Lys Ala Cys Tyr His Lys Ala Cys Phe Lys Ser Gly Ser 915 920 925 Cys Pro Arg Cys Glu Arg Leu Gln Ala Arg Arg Glu Ala Leu Ala Arg 930 935 940 Gln Ser Leu Glu Ser Tyr Leu Ser Asp Tyr Glu Glu Glu Pro Ala Glu 945 950 955 960 Ala Leu Ala Leu Glu Ala Ala Val Leu Glu Ala Thr 965 970 <210> 12 <211> 195 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> p22phox(Cyba) <400> 12 Met Gly Gln Ile Glu 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Claims (10)

  1. 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물, 또는 이의 약학적으로 허용가능한 염을 유효성분으로 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물:

    [화학식 1]
    Figure pat00017

    [화학식 2]
    Figure pat00018

    [화학식 3]
    Figure pat00019

    [화학식 4]
    Figure pat00020

    [화학식 5]
    Figure pat00021
    .
  2. 제1항에 있어서, 상기 염증성 질환은 패혈증(sepsis), 패혈성 쇼크, 염증성 장질환(Inflammatory bowel disease, IBD), 복막염, 신장염, 급성 기관지염, 만성 기관지염, 골관절염, 장질환 척추염, 만성 폐쇄성 폐질환(chronic obstructive pulmonary disease, COPD), 류마티스성 관절염(rheumatoid arthritis), 급성 폐손상(acute lung injury) 및 기관지 폐 형성장애(broncho-pulmonary dysplasia)로 이루어진 군에서 선택된 어느 하나인 것인 약학 조성물.
  3. 제2항에 있어서, 상기 염증성 장질환(IBD)은 궤양성 대장염(Ulcerative colitis, UC) 또는 크론씨병(Crohns disease)인 약학적 조성물.
  4. 제1항에 있어서, 상기 화학식 1 내지 화학식 5로 표시되는 화합물은 서열번호 3의 아미노산 서열로 구성된 펩타이드의 모방 화합물인 약학적 조성물.
  5. 제1항에 있어서, 상기 유효성분은 루비콘(Rubicon)과 p22phox의 상호작용 및 ROS-매개 염증 반응(reactive oxygen species-mediated inflammation) 억제에 관여하는 것인 약학적 조성물.
  6. 제1항에 있어서, 상기 조성물은 항생제와 병용 사용시 항생제의 효과를 증강시키는 것인 약학적 조성물.
  7. 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물을 포함하는 염증성 질환의 예방 또는 개선용 건강 기능 식품 조성물:

    [화학식 1]
    Figure pat00022

    [화학식 2]
    Figure pat00023

    [화학식 3]
    Figure pat00024

    [화학식 4]
    Figure pat00025

    [화학식 5]
    Figure pat00026
    .
  8. 하기 화학식 1 내지 5로 표시되는 화합물로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나의 화합물 및 상기 화합물을 동물에 투여하기 위한 지시서를 포함하는, 염증성 질환 예방 또는 치료용 키트:

    [화학식 1]
    Figure pat00027

    [화학식 2]
    Figure pat00028

    [화학식 3]
    Figure pat00029

    [화학식 4]
    Figure pat00030

    [화학식 5]
    Figure pat00031
    .
  9. 제8항에 있어서, 항생제를 추가로 포함하는 것인 키트.
  10. 제9항에 있어서, 상기 항생제는 젠타마이신(gentamicin), 세팔로스포린(cephalosporin), 반코마이신, 페니실린, 메티실린, 세팔로신(Cephalothin), 에리스로마이신(Erythromycin), 노플로삭신(Norfloxacin), 옥사실린(Oxacillin), 클로람페니콜(Chloramphenicol), 설폰아마이드(Sulfonamides), 스트렙토마이신(Streptomycin) 또는 테트라사이클린(Tetracyclin)인 것인 키트.
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