KR20150136884A - 유기인 신경작용제 분해효소의 변이체 및 이의 제조방법 - Google Patents

유기인 신경작용제 분해효소의 변이체 및 이의 제조방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 유기인 신경작용제 분해효소 변이체에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 유기인 신경작용 분해효소 OPH(organophosphate hydrolase) 변이체로부터 활성을 더욱 증대시킨 변이체 및 이의 제조방법에 관한 것이다.
본 발명에 따른 OPH 변이체는 야생형 유기인계 화합물 분해효소에서 분해활성이 낮았던 신경작용제 VX에 대하여 높은 분해활성을 가지고 있어, 화생방전에서 신경작용제로 인한 인명피해를 줄일 수 있다

Description

유기인 신경작용제 분해효소의 변이체 및 이의 제조방법{Organophosphorous Hydrolase Varient and Method for Preparing Thereof}
본 발명은 유기인 신경작용제 분해효소 변이체에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 유기인 신경작용 분해효소 OPH(organophosphate hydrolase) 변이체로부터 활성을 더욱 증대시킨 변이체 및 이의 제조방법에 관한 것이다.
유기인 화합물은 농약, 살충제에서 생화학 무기인 신경 작용제까지 다양하게 존재한다. 유기인 화합물은 체내에서 acetylcholinesterase(AChE)를 저해하여 생리작용 및 신경전달을 방해하고 이는 심하게 되면 사망에 이르게 된다. 농약과 살충제는 그 잔류농도가 낮고 기간이 짧으나 그로 인해 사용량이 많아 환경과 인체에 해를 입힐 수 있다. 신경작용제의 경우는 그 독성이 매우 높아 인체에 치명적이며, 기존의 실용화된 화학제독제는 사 후 분해 산물 또한 부식성을 비롯한 각종 독성을 지녀 여전히 인체에 해롭다. 이로 인해 인체에 무해하고 친환경적인 생물학 효소 기반의 제독제 개발의 필요성이 있었다.
자연적으로 유기인 화합물 분해 활성을 갖는 효소를 기반으로한 개량체 개발은 주로 error prone-PCR이나 UV-irradiation등을 이용한 random mutagenesis를 기반으로한 개발과 효소의 3차원구조를 기반으로한 rational design으로 나뉜다.
신경작용제 중 그 독성이 심하고 실용화된 효소제독제가 거의 없는 VX(O-ethyl-S-diisopropyl amino methylphosphonothiolate)에 대한 활성을 지닌 유기인 분해효소(organophosphate hydrolasem, 이하 OPH)가 발견되었고 이를 기반으로 random mutagenesis를 통한 개량체 개발이 수행되었으나 여전히 그 활성은 실용적인 수준에는 미치지 못하였다.
이에, 본 발명자들은 신경작용제인 VX 분해활성이 뛰어난 OPH 변이체를 개발하고자 예의 노력한 결과, OPH 아미노산 서열의 rational design을 통하여 제작된 변이체가, 기존의 OPH 변이체 보다 현저히 뛰어난 VX 분해활성을 가지는 것을 확인하고 본 발명을 완성하게 되었다.
본 발명의 목적은 신경작용제인 VX 분해활성이 뛰어난 OPH 변이체를 제공하는데 있다.
본 발명의 다른 목적은 신경작용제인 VX 분해활성이 뛰어난 OPH 변이체의 제조방법을 제공하는데 있다.
본 발명의 또다른 상기 OPH 변이체를 이용한 유기인계 화합물의 분해방법을 제공는데 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1~ 6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체 및 이를 코딩하는 유전자를 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 유전자가 도입되어 있는 재조합 미생물을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 재조합 미생물을 배양하여 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 생성시키는 단계; 및 상기 생성된 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 수득하는 단계를 포함하는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체의 제조방법을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 이용한 유기인계 화합물의 분해방법을 제공한다.
본 발명에 따른 OPH 변이체는 야생형 유기인계 화합물 분해효소에서 분해활성이 낮았던 신경작용제 VX에 대하여 높은 분해활성을 가지고 있어, 화생방전에서 신경작용제로 인한 인명피해를 줄일 수 있다.
도 1은 OPH의 구조 및 VX 결합 사이트를 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 OPH 변이체의 VX 분해활성을 나타낸 그래프이다.
도 3은 본 발명의 OPH 변이체의 파라옥손 분해활성을 나타낸 그래프이다.
달리 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로, 본 명세서에서 사용된 명명법 및 이하에 기술하는 실험 방법은 본 기술분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
일 관점에서, 본 발명은 서열번호 1~ 6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체 및 이를 코딩하는 유전자에 관한 것이다.
본 발명의 유기인 화합물 분해효소는 V-타입 신경작용제에 대하여 우수한 분해활성을 가지는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, "유기인계 화합물 (organophosphorus compounds)"은 신경계에서 아세틸콜린 에스터라제를 억제하여, 신경 기능을 차차 손상시키고 결국 죽음에 이르게 하는 이유로 매우 독성인 물질로 알려져 있어, 산업적으로 이러한 화합물들이 포함되어 있는 살충제, 농약 및 유기인계 화합물을 함유하는 생화학무기 등의 제거 방법에 관한 여러 연구가 이루어지고 있다.
이러한 유기인계 화합물의 예시로써, 파라옥손(paraoxon), 파라티온(parathion), 아자메티포스(azametiphos), 아진포스(azinphos), 벤술리드(bensulide), 말라옥손(malaoxon), 말리티온(malathion), 헤프테토포스(heptenophos), 디클로보스(dichlorvos), 디알리포스(dialifos), 디아지논(diazinon), 디클로펜티온(dichlofenthion), 디메토에이트(dimethoate), 디메틸빈포스(dimethylvinphos), 디옥사벤조포스(dioxabenzofos), 디설포톤(disulfoton), 데메톤 에스(demethon S), 에디펜포스(edifenphos), 에테폰(ethephon), 에티온(ethion), 에토프로포스(ethoprophos), 클로펜빈포스(chlorfenvinphos), 클로피리포스(chlorpyrifos), 페니트로티온(fenitrothion), 펜티온(fenthion), 포노포스(fonofos), 포모티온(formothion), 헵테노포스(heptenophos), 이프로벤포스(iprobenfos), 이사조포스(isazofos), 이속사티온(isoxathion), 메카밤(mecarbam), 메타미도포스(methamidophos), 메티다티온(methidathion), 모노크로토포스(monocrotophos), 날레드(naled), 오메토에이트(omethoate), 폭심(phoxim), 피림포스(pirimphos), 프로페노포스(profenofos), 프로파포스(propaphos), 프로티오포스(prothiofos), 피라클로포스(pyraclofos), 피라조포스(pyrazophos), 피리다펜티온(pyridaphenthion), 퀴날포스(quinalphos), 터부포스(terbufos), 테트라클로빈포스(tetrachlorvinphos), 티오메톤(thiometon), 톨클로포스(tolclofos), 트리아조포스(triazophos), 트리클로폰(trichlorphon), 바미도티온(vamidothion) 및 코우마포스(coumaphos) 등이 있다.
본 발명에서 유기인계 신경작용제는또한, 군사적으로 사린(Sarin), 소만(Soman), 타분(Tabun) 등의 화학무기로써 신경작용제로 이용된다. 이러한 화합물들이 인간의 체내에 유입되면 아세틸콜린에스터라제(acertylcholinesterase)의 활성 저해작용을 일으켜서 근육성 진통을 포함하는 만성적인 합병증 유발 및 생명에 위협을 주는 물질로 밝혀졌다.
유기인 화합물의 생물학적 처리는 효소를 이용하는 방법이 있다. OPH는 P-O, P-F, P-CN, P-S등의 다양한 인산 에스테르(phosphorus-ester) 결합을 가수분해 할 수 있다. 유기인 화합물을 기질로 하여 다양한 생물체에서 OPH가 확인되었다. 그 중 플라보박테리움 종 유래의 OPH가 넓은 기질 특이성과 높은 가수분해 활성 때문에 꾸준히 연구되어 왔다. 플라보박테리움 종 유래의 OPH는 1989년에 유전자 염기서열이 확인 되었다(W W Mulbry. et al., Journal of Bacteriology, 6740-6746, 1989).
본 발명에서는 유기인 화합물 분해효소(OPH)의 분자구조를 분석하여, OPH의 VX 결합 부위 중심으로 다양한 돌연변이를 제조였으며, 유기인계 화합물중 신경작용제인 VX(O-ethyl-S-diisopropyl amino methylphosphonothiolate)의 유도체인 demeton-S (VX simulant)를 이용하여, 야생형 OPH와 대비하여 VX 분해능이 26배 증가된 돌연변이를 개발하였다 (J. Appl. Microbiol. 2010. 109:548-57). 모두 9개 아미노산에 돌연변이가 가해졌음 (이하 9M 변이체). 본 연구진은 보고된 OPH 호활성부위(active site)를 중심으로 추가적인 구조기반 개량화 작업을 수행하여 다양한 개량효소를 획득하고 실작용제 분해능을 분석하였다.
OPH의 구조분석 결과 상대적으로 크기가 큰 VX 기질의 기질 접근성(substrate accessibility)를 증대시켜 OPH 활성을 높이기 위한 중요 잔기를 선정하여 변이체를 구축하였다(도 1). 상술한 9M 변이체를 기준으로 demeton-S-methyl을 이용하여 이에 대한 상대적인 활성이 1.2배에서 2.5배 사이로 증대된 6개의 변이체를 확보하였다.
본 발명의 상기 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체의 아미노산 서열을 서열번호 1~6에 나타내었으며, 상기 변이체들을 코딩하는 염기서열을 서열번호 7~12에 나타내었다.
본 발명의 일양태에서는 다양한 OPH 개량체 중에 2개의 아미노산을 치환한 L271A/Y309A 변이체에서 가장 좋은 VX 분해능 결과를 얻었다. 이는 기존에 보고된 개량체 중 가장 우수하다고 생각되는 상기 9M 변이체보다 VX 분해능이 5배 (kcat/km 기준) 증가하였으며, 민간분야에서 이용 가능성의 기준이 될 수 있는 paraoxon 분해능은 wild type 대비 3배 이상 증가하였다.
따라서, 기존 문헌에 보고된 바처럼 9M 변이체가 OPH 야생형에 대비하여, 26배 활성이 높게 개량된 것이라면, 본 발명의 L271A/Y309A 돌연변이는 야생형에 대비하여 약 130배 높은 활성을 가지도록 개량된 것이라고 할 수 있다.
다른 관점에서, 본 발명은 서열번호 1~ 6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 코딩하는 유전자가 도입되어 있는 재조합 미생물 및 이를 이용한 상기 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체의 제조방법에 관한 것이다.
본 발명의 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체의 제조방법은 다음 단계를 포함한다:
(a) 서열번호 1~ 6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 코딩하는 유전자로 형질전환된 미생물을 배양하여 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 생성시키는 단계; 및
(b) 상기 생성된 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 수득하는 단계.
또다른 관점에서 본 발명은 상기 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 이용하는 것을 특징으로 하는 유기인계 화합물의 분해방법에 관한 것이다.
본 발명에 있어서, 상기 유기인계 화합물은 VX(O-ethyl-S-diisopropyl amino methylphosphonothiolate) 또는 그 유도체인 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에서, "벡터 (vector)"는 적합한 숙주 내에서 DNA를 발현 시킬 수 [0048] 있는 적합한 조절 서열에 작동가능하게 연결된 DNA 서열을 함유하는 DNA 제조물을 의미한다. 벡터는 플라스미드, 파지 입자 또는 간단하게 잠재적 게놈 삽입물 일 수 있다. 적당한 숙주로 형질전환되면, 벡터는 숙주게놈과 무관하게 복제하고 기능할 수 있거나, 또는 일부경우에 게놈 그 자체에 통합될 수 있다. 플라스미드가 현재 벡터의 가장 통상적으로 사용되는 형태이므로, 본 발명의 명세서에서 "플라스미드(plasmid)" 및 "벡터(vector)"는 때로 상호교환적으로 사용된다.
본 발명의 목적상, 플라스미드 벡터를 이용하는 것이 바람직하다. 이러한 목적에 사용될 수 있는 전형적인 플라스미드 벡터는 (a) 숙주세포당 수백개의 플라스미드벡터를 포함하도록 복제가 효율적으로 이루어지도록하는 복제 개시점, (b) 플라스미드 벡터로 형질전환된 숙주세포가 선발될 수 있도록 하는 항생제 내성 유전자 및 (c) 외래 DNA 절편이 삽입될 수 있도록 하는 제한효소 절단부위를 포함하는 구조를 지니고 있다. 적절한 제한효소 절단부위가 존재하지 않을지라도, 통상의 방법에 따른 합성 올리고뉴클레오타이드어댑터(oligonucleotideadaptor) 또는 링커(linker)를 사용하면 벡터와 외래 DNA를 용이하게 라이게이션(ligation) 할 수 있다.
아울러, 상기 유전자는 다른 핵산 서열과 기능적 관계로 배치될 때 "작동가능하게 연결(operably linked)"된다. 이것은 적절한 분자(예를 들면, 전사 활성화 단백질)가 조절 서열(들)에 결합될 때 유전자 발현을 가능하게 하는 방식으로 연결된 유전자 및 조절 서열(들) 일 수 있다. 예를 들면, 전서열(pre-sequence) 또는 분비리더(leader)에 대한 DNA는 폴리펩타이드의 분비에 참여하는 전단백질로서 발현되는 경우 폴리펩타이드에 대한 DNA에 작동가능하게 연결되고; 프로모터 또는 인핸서는 서열의 전사에 영향을 끼치는 경우 코딩서열에 작동가능하게 연결되거나; 또는 리보좀 결합 부위는 서열의 전사에 영향을 끼치는 경우 코딩 서열에 작동가능하게 연결되거나; 또는 리보좀 결합 부위는 번역을 용이하게 하도록 배치되는 경우 코딩 서열에 작동가능하게 연결된다.
일반적으로 "작동가능하게 연결된"은 연결된 DNA 서열이 접촉하고, 또한 분비 리더의 경우 접촉하고 리딩 프레임 내에 존재하는 것을 의미한다. 그러나, 인핸서(enhancer)는 접촉할 필요가 없다. 이들 서열의 연결은 편리한 제한 효소 부위에서 라이게이션 (연결)에 의해 수행된다. 그러한 부위가 존재하지 않는 경우, 통상의 방법에 따른 합성 올리고뉴클레오티드 어댑터(oligonucleotide adaptor) 또는 링커(linker)를 사용한다.
물론 모든 벡터가 본 발명의 DNA 서열을 발현하는데 모두 동등하게 기능을 발휘하지는 않고, 마찬가지로 모든 숙주가 동일한 발현 시스템에 대해 동일하게 기능을 발휘하지는 않는다. 그러나, 당업자라면 과도한 실험적 부담없이 본 발명의 범위를 벗어나지 않는 상태에서, 다른 여러 벡터, 발현 조절 서열 및 숙주 중에서 적절한 선택하여 적용할 수 있다. 예를 들어, 벡터를 선택함에 있어서는 숙주를 고려하여야 하는데, 이는 벡터가 그 안에서 복제되어야만 하기 때문이고, 벡터의 복제 수, 복제 수를 조절할 수 있는 능력 및 당해 벡터에 의해 코딩되는 다른 단백질, 예를 들어 항생제 마커의 발현도 또한 고려되어야만 한다.
앞서 설명한 라이게이션 후에, 재조합 벡터는 적절한 숙주세포로 형질전환되어야 한다. 여기서, 선호되는 숙주세포는 원핵세포이고, 적합한 원핵 숙주세포는 대장균일 수 있고, 예컨대, E. coli JM109, E. coli DH5α, E.coli JM101, E. coli K12, E. coli W3110, E. coli X1776, E. coli XL1-Blue(Stratagene, 미국), E. coli BL21(DE3), E. coli TOP10 등을 포함한다. FMB101, NM522, NM538 및 NM539와 같은 E. coli 균주 및 다른 원핵생물의 종(species) 및 속(genera)등이 또한 사용될 수 있다. 전술한 E. coli에 덧붙여, 아그로박테리움 A4와 같은 아그로박테리움 속 균주, 바실루스 섭틸리스(Bacillus subtilis)와 같은 바실리(bacilli), 살모넬라타이피뮤리움(Salmonella typhimurium) 또는 세라티아 마르게센스(Serratia marcescens)와 같은 또 다른 장내세균 및 다양한 슈도모나스(Pseudomonas) 속 균주가 숙주세포로서 이용될 수 있다. 또한, 효모 및 곰팡이와 같은 진핵세포를 숙주로 사용하는 것도 가능하다.
상기 형질전환된 재조합 미생물은 임의의 형질전환 방법에 따라 제조할 수 있다. 본 발명의 "형질전환(transformation)"은 DNA를 숙주로 도입하여 DNA가 염색체의 인자로서 또는 염색체 통합완성에 의해 복제 가능하게 되는 것으로 외부의 DNA를 세포 내로 도입하여 인위적으로 유전적인 변화를 일으키는 현상을 의미한다. 일반적으로 형질전환방법에는, 특히, 원형질세포의 형질전환은 Sambrook 등의 'Molecular Cloning' 저서에서 1.82섹션에 기술된 칼슘 클로라이드를 이용한 heat shock 방법을 사용해서 용이하게 달성될 수 있다. 선택적으로, 전기천공법(electroporaton, (Neumann et al., EMBO J., 1:841, 1982)), 인산칼슘(CaPO4) 침전, 염화칼슘(CaCl2)침전, 미세주입법(microinjection), 초산 리튬-DMSO법 등이 이용가능하다. 또한, 본 발명에서 상기 유전자를 숙주세포의 염색체상에 삽입하는 방법으로는 통상적으로 알려진 유전자조작방법을 사용할 수 있으며, 일예로는 레트로바이러스 벡터, 아데노바이러스 벡터, 아데노-연관 바이러스 벡터, 헤르페스 심플렉스 바이러스벡터, 폭스바이러스 벡터, 렌티바이러스 벡터 또는 비바이러스성 벡터를 이용하는 방법을 들 수 있다.
상기 형질전환된 재조합 미생물의 배양은 널리 공지된 방법에 따라서 수행되고, 배양 온도 및 시간, 배지의 pH 등의 조건은 적절하게 조절될 수 있다.
상기 배양된 재조합 미생물로부터의 유기인산 화합물 가수분해효소 변이체의 회수는 통상적인 생화학 분리기술, 예를 들어 단백질 침전제에 의한 처리(염석법), 원심분리, 초음파 파쇄, 한외여과, 투석법, 분자체 크로마토그래피(겔여과), 흡착크로마토그래피, 이온교환 크로마토그래피, 친화도 크로마토그래피 등의 각종 크로마토그래피 등을 이용할 수 있으며, 통상적으로 순도가 높은 단백질을 분리하기 위하여 이들을 조합하여 이용할수 있다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다. 특히, 하기 실시예에서는 유기인산 화합물로 VX 유사체인 Demeton-S methyl에 대한 활성 증가를 확인하였으나, 이를 포함한 다른 유기인산 화합물에 대해서도 본 발명의 변이체가 뛰어난 분해활성을 가지는 것은 당업자에게 자명할 것이다.
실시예 1: OPH 변이체의 제조
자연적인 OPH 중 활성이 가장 높은 Flavobacterium sp. 유래의 OPH의 아미노산 서열을 분석하여, OPH 유전자가 시그널 시퀀스와 mature 형태로 구성된 것을 확인하였다. 재조합 발현을 위해 OPH 자체의 signal sequence를 제거하고, 또한 mature 서열의 시작 아미노산인 세린(serine)을 제거한 형태의 mature OPH를 제작하여, 최초의 full length wild-type의 10배 이상의 활성을 가지는 OPH gene을 구축하고, 이를 개량효소의 출발 유전자(start gene)로 하였다.
플라보박테리움(Flavobacterium sp KCTC2480)을 조성이 0.05% 질산칼슘, 0.2% 제2인산나트륨, 0.5% 펩톤, 1.5% 설탕, 0.05% 제일황산철7수염인 배지에 30℃에서 24시간 배양하였다. 상기 세포로부터 게놈 DNA 500㎍을 분리(Genomic DNA extraction kit; RBC사)하였다. 상기 분리된 게놈 DNA를 주형으로 하고 하기 표 1의 PCT 프라이머(서열번호 15~32)를 사용하여 over-lapping PCR을 수행하여 9개 변이를 가지는 변이체 mutant9(A80V, I106V, F132D, K185R, D208G, H257W, I274N, S308L 및 R319S) (Schofield, D. A. et al., J. Appl. Microbiol. 109:548-57, 2010)을 제작하였으며, 본 발명에 따른 추가 변이는 프라이머 서열번호(33~62)의 프라이머 쌍을 이용하여, 제작하였다
PCR 반응액은 KCl (50 mM), MgCl2 (5 mM), dNTP (각 2.5 mM), 주형(약 100 pg in 50㎕ 반응액), 프라이머 (각 0.5 mM) 및 Taq DNA Polymerase (2.5 unit/ 50 ㎕ 반응액) in Tris·Cl (10 mM, pH 8.3)로 구성되고, 반응은 94℃에서 5 분간 반응시킨 후, 94 ℃에서 1분, 50℃에서 1분, 72℃에서 1분을 35 사이클 반응한 후, 마지막으로 72℃에서 5분간 신장시켰다. PCR 산물의 정제는 DNA-spinTM Plasmid DNA Purification Kit(iNtRON Bio, Sungnam, Korea)와 MEGA-spinTM Agarose Gel Extraction Kit (iNtRON Bio, Sungnam, Korea)를 사용하였다.
본 실시예에서 사용된 프라이머 서열
F.OPH Primer name Primer sequences
N-OPH(EcoRI) 5'-TGGAATTCATGCAAACGAGAAGGGTTGTGC-3'(서열번호 13)
C-OPH(HindIII) 5'-CCAAGCTTTCATGACGCCCGCAAGGTCGG-3'(서열번호 14)
A80V A80V-R 5'-CACAGCCTTTTCCACTAGAGCTTTGCG-3'(서열번호 15)
A80V-F 5'-CGCAAAGCTCTAGTGGAAAAGGCTGTG-3'(서열번호 16)
I106V I106V-R 5'-GACGTCGCGACCGACATCGAAAGTCGA-3'(서열번호 17)
I106V-F 5'-TCGACTTTCGATGTCGGTCGCGACGTC-3'(서열번호 18)
F132D F132D-R 5'-AAGTGGCGGGTCGTCCCACAAGCCGGT-3'(서열번호 19)
F132D-F 5'-ACCGGCTTGTGGGACGACCCGCCACTT-3'(서열번호 20)
K185R K185R-R 5'-CCGGGCGGCCGCCCTTAACACTAACTC-3'(서열번호 21)
K185R-F 5'-GAGTTAGTGTTAAGGGCGGCCGCCCGG-3'(서열번호 22)
D208G D208G-R 5'-CTGCTGCTCACCACCGCGCTGACTTGC-3'(서열번호 23)
D208R-F 5'-GCAAGTCAGCGCGGTGGTGAGCAGCAG-3'(서열번호 24)
H257W H257W-R 5'-ACCAATCGCACTCCACGGGATGTGGTC-3'(서열번호 25)
H257W-F 5'-GACCACATCCCGTGGAGTGCGATTGGT-3'(서열번호 26)
I274N I274N-R 5'-TTGCCACGAACGGTTGCCCAGGAGGGC-3'(서열번호 27)
I274N-F 5'-GCCCTCCTGGGCAACCGTTCGTGGCAA-3'(서열번호 28)
S308L S308L-R 5'-GTTGGTGACATACAGCGAAAACCCGAA-3'(서열번호 29)
S308L-F 5'-TTCGGGTTTTCGCTGTATGTCACCAAC-3'(서열번호 30)
R319S R319S-R 5'-GTCGGGGTTCACGCTATCCATCACGTC-3'(서열번호 31)
R319S-F 5'-GACGTGATGGATAGCGTGAACCCCGAC-3'(서열번호 32)
W131A W131A-N 5'-GCGACCGGCTTGGCGGACGACCCGCCA-3'(서열번호 33)
W131A-R 5'-TGGCGGGTCGTCCGCCAAGCCGGTCGC-3'(서열번호 34)
FN132A FN132A-N 5'-ACCGGCTTGTGGGCGGACCCGCCACTT-3'(서열번호 35)
FN132A-R 5'-AAGTGGCGGGTCCGCCCACAAGCCGGT-3'(서열번호 36)
T172A T172A-N 5'-ATCAAGGTCGCGGCGACAGGCAAGGCG-3'(서열번호 37)
T172A-R 5'-CGCCTTGCCTGTCGCCGCGACCTTGAT-3'(서열번호 38)
T173A T173A-N 5'-AAGGTCGCGACCGCTGGCAAGGCGGCC-3'(서열번호 39)
T173A-R 5'-GGCCGCCTTGCCAGCGGTCGCGACCTT-3'(서열번호 40)
H254A H254A-N 5'-ATCGGTCTAGACGCGATCCCGTGGAGT-3'(서열번호 41)
H254A-R 5'-ACTCCACGGGATCGCGTCTAGACCGAT-3'(서열번호 42)
I255A I255A-N 5'-GGTCTAGACCACGCGCCGTGGAGTGCG-3'(서열번호 43)
I255A-R 5'-CGCACTCCACGGCGCGTGGTCTAGACC-3'(서열번호 44)
P256A P256A-N 5'-CTAGACCACATCGCGTGGAGTGCGATT-3'(서열번호 45)
P256A-R 5'-AATCGCACTCCACGCGATGTGGTCTAG-3'(서열번호 46)
HW257A HW257A-N 5'-GACCACATCCCGGCGAGTGCGATTGGT-3'(서열번호 47)
HW257A-R 5'-ACCAATCGCACTCGCCGGGATGTGGTC-3'(서열번호 48)
S307A S307A-N 5'-CTGTTCGGGTTTGCCCTGTATGTCACC-3'(서열번호 49)
S307A-R 5'-GGTGACATACAGGGCAAACCCGAACAG-3'(서열번호 50)
Y309A Y309A-N 5'-GGGTTTTCGCTGGCGGTCACCAACATC-3'(서열번호 51)
Y309A-R 5'-GATGTTGGTGACCGCCAGCGAAAACCC-3'(서열번호 52)
T202A T201A-N 5'-GGTAACCACTCACGCCGCAGCAAGTCAG-3'(서열번호 53)
T201A-R 5'-CTGACTTGCTGCGGCGTGAGTGGTTACC-3'(서열번호 54)
D233A D233A-N 5'-GGTCACAGCGATGCGACTGACGATTTG-3'(서열번호 55)
D233A-R 5'-CAAATCGTCAGTCGCATCGCTGTGACC-3'(서열번호 56)
L271A L271A-N 5'-AGTGCATCAGCCGCACTGGGCAACCGTTC-3'(서열번호 57)
L271A-R 5'-GAACGGTTGCCCAGTGCGGCTGATGCACT-3'(서열번호 58)
I274A I274A-N 5'-GCCCTCCTGGGCGCGCGTTCGTGGCAAA-3'(서열번호 59)
I274A-R 5'-TTTGCCACGAACGCGCGCCCAGGAGGGC-3'(서열번호 60)
R275A R275A-N 5'-CTCCTGGGCAACGCGTCGTGGCAAACA-3'(서열번호 61)
R275A-R 5'-TGTTTGCCACGACGCGTTGCCCAGGAG-3'(서열번호 62)
pMAL-c2X plasmid(New England Biolab)의 EcoRI 및 HindIII 절단 사이트에 T4 DNA ligase를 이용하여, 증폭된 PCR 산물을 도입하였다. 제작된 재조합 플라스미드는 GroEL 및 GroESp 유전자를 포함하는 Gro7 벡터(TaKaRa사)를 함유하는 E. coli XL1-Blue 에 형질전환시켜, OPH 변이체들을 생산하는 재조합 대장균을 제조하였다.
실시예 2: OPH 변이체의 생산 및 VX 분해 활성 분석
실시예 1에서 제작한 OPH 변이체를 포함하는 재조합 대장균은 37℃에서 carbenicillin (100 ㎍/mL), chloramphenicol (25 ㎍/mL), L-arabinose (1mM) 및 ZnCl2 (0.2mM)를 포함하는 LB배지에서 배양하고, OD600 이 0.4일때, IPTG를 최종농.5mM이 되도록 첨가하여, OPH 발현을 유도한 후, 30℃ 12시간 배양하였다.Backbone 벡터인 pMAL-c2X 벡터에 포함된 MBP와 융합단백질 형태로 발현되는 OPH 변이체는 MBP Excellose　 SPIN Kit (Bioprogen, 한국)를 이용하여 정제하였으며, Bradford 어세이로 정량하였다.
OPH 변이체의 상대적 활성은 Ellman assay를 이용하여 412 nm에서 측정하였다(Schofield, D. A. et al., J. Appl. Microbiol. 109:548-57, 2010; Ellman, G. L et al.,Biochem. Pharmacol. 7, 88-95, 1961).
200㎕의 반응액에는 50 mM Tris-HCl (pH 7.0), 100 mM NaCl, 0.2 mM ZnCl2, 정제된 효소 (100㎕, 0.1 mg/mL농도), Demeton-S-methyl (final 1μM) 및 0.5 mM DTNB [Ellman's agent, 5',5'-dithiobis (2-nitrobenzoic acid)가 포함된다.
그 결과, 본 발명의 변이체 중 standard(mutant9) 보다 높은 demeton-S-methyl 분해 활성을 나타내는 변이체가 6개(T172A, L271A, Y309A, T172A/Y309A, L271A/Y309A 및 D132A)가 확인되었다(도 2).
그 중에서도, L271A/Y309A변이체(0.015μM/min/mg)는 기존의standard(mutant9) (0.033μM/min/mg))보다 2.1배나 높은 VX 분해활성을 나타내었으 며, Lineweaver-Burk 그래프를 이용하여 계산된 k cat/Km 값을 표 2에 나타내었으며, standard 보다 VX 분해능이 5.1배 (kcat/km 기준) 증가한 결과이다.
9M mutant L271A/Y309A Fold increased
VX kcat (s-1) 0.001 0.15 5.1
Km (mM) 0.15 5.87
kcat/Km (s-1.M-1) 4.86E+00 2.49E+01
실시예 3: OPH 변이체의 paraoxon 분해활성 확인
실시예 2에서 가장 높은 VX 분해활성을 나타낸 L271A/Y309A변이체를 이용하여, 대표적인 유기인산 화합물인 파라옥손(paraoxon)의 분해활성을 확인하였다.
paraoxon(Supelco사)을 DMSO(dimethyl sulfoxide, Sigma사) 에 녹여 10 mg/ml 농도가 되도록 만들었다. 299μl CHES(2-(cyclohexylamino)ethanesulfonic acid, Sigma사) buffer (pH 8.5), 1μl paraoxon(10 mg/ml), 100μl OPH 변이체용액을 혼합하여 50℃에서 10 분간 반응하였다.
반응 후 300μl 10% TCA(trichloroacetic acid, Sigma사)와 300 μl 10% sodium carbonate(Sigma사)를 첨가하여 반응을 정지시켰다. 효소 활성은 415 nm에서의 흡광도에서 유리된 P-니트로페놀의 농도를 확인하였다. OPH 1 unit는 상기 조건에서 1분당 1 μmol의 P-니트로페놀을 유리시키는 효소의 양으로 결정하였다.
그 결과, 도 3에 나타난 바와 같이 파라옥손의 분해활성은 L271A/Y309A변이체가 야생형 보다 3배 이상 높은 것을 확인할 수 있었으며, 양성대조군인 OPH 9M 보다 높은 것을 확인하였다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시의 일예일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
<110> GenoFocus, Inc Korea Insititute of Biosscience and Biotechnology <120> Organophosphorous Hytrolase Varient and Method for Preparing Thereof <130> P13-144 <160> 62 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 336 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> OPH varient-T172A <400> 1 Met Ile Gly Thr Gly Asp Arg Ile Asn Thr Val Arg Gly Pro Ile Thr 1 5 10 15 Ile Ser Glu Ala Gly Phe Thr Leu Thr His Glu His Ile Cys Gly Ser 20 25 30 Ser Ala Gly Phe Leu Arg Ala Trp Pro Glu Phe Phe Gly Ser Arg Lys 35 40 45 Ala Leu Val Glu Lys Ala Val Arg Gly Leu Arg Arg Ala Arg Ala Ala 50 55 60 Gly Val Arg Thr Ile Val Asp Val Ser Thr Phe Asp Val Gly Arg Asp 65 70 75 80 Val Ser Leu Leu Ala Glu Val Ser Arg Ala Ala Asp Val His Ile Val 85 90 95 Ala Ala Thr Gly Leu Trp Asp Asp Pro Pro Leu Ser Met Arg Leu Arg 100 105 110 Ser Val Glu Glu Leu Thr Gln Phe Phe Leu Arg Glu Ile Gln Tyr Gly 115 120 125 Ile Glu Asp Thr Gly Ile Arg Ala Gly Ile Ile Lys Val Ala Ala Thr 130 135 140 Gly Lys Ala Ala Pro Phe Gln Glu Leu Val Leu Arg 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Gly Arg Asp 65 70 75 80 Val Ser Leu Leu Ala Glu Val Ser Arg Ala Ala Asp Val His Ile Val 85 90 95 Ala Ala Thr Gly Leu Trp Asp Asp Pro Pro Leu Ser Met Arg Leu Arg 100 105 110 Ser Val Glu Glu Leu Thr Gln Phe Phe Leu Arg Glu Ile Gln Tyr Gly 115 120 125 Ile Glu Asp Thr Gly Ile Arg Ala Gly Ile Ile Lys Val Ala Thr Thr 130 135 140 Gly Lys Ala Ala Pro Phe Gln Glu Leu Val Leu Arg Ala Ala Ala Arg 145 150 155 160 Ala Ser Leu Ala Thr Gly Val Pro Val Thr Thr His Thr Ala Ala Ser 165 170 175 Gln Arg Gly Gly Glu Gln Gln Ala Ala Ile Phe Glu Ser Glu Gly Leu 180 185 190 Ser Pro Ser Arg Val Cys Ile Gly His Ser Asp Asp Thr Asp Asp Leu 195 200 205 Ser Tyr Leu Thr Ala Leu Ala Ala Arg Gly Tyr Leu Ile Gly Leu Asp 210 215 220 His Ile Pro Trp Ser Ala Ile Gly Leu Glu Asp Asn Ala Ser Ala Ser 225 230 235 240 Ala Leu Leu Gly Asn Arg Ser Trp Gln Thr Arg Ala Leu Leu Ile Lys 245 250 255 Ala Leu Ile Asp Gln Gly Tyr Met Lys Gln Ile Leu Val Ser Asn Asp 260 265 270 Trp Leu Phe Gly Phe Ser Leu Ala Val Thr Asn Ile Met Asp Val 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Thr 130 135 140 Gly Lys Ala Ala Pro Phe Gln Glu Leu Val Leu Arg Ala Ala Ala Arg 145 150 155 160 Ala Ser Leu Ala Thr Gly Val Pro Val Thr Thr His Thr Ala Ala Ser 165 170 175 Gln Arg Gly Gly Glu Gln Gln Ala Ala Ile Phe Glu Ser Glu Gly Leu 180 185 190 Ser Pro Ser Arg Val Cys Ile Gly His Ser Asp Asp Thr Asp Asp Leu 195 200 205 Ser Tyr Leu Thr Ala Leu Ala Ala Arg Gly Tyr Leu Ile Gly Leu Asp 210 215 220 His Ile Pro Trp Ser Ala Ile Gly Leu Glu Asp Asn Ala Ser Ala Ser 225 230 235 240 Ala Leu Leu Gly Asn Arg Ser Trp Gln Thr Arg Ala Leu Leu Ile Lys 245 250 255 Ala Leu Ile Asp Gln Gly Tyr Met Lys Gln Ile Leu Val Ser Asn Asp 260 265 270 Trp Leu Phe Gly Phe Ser Leu Ala Val Thr Asn Ile Met Asp Val Met 275 280 285 Asp Ser Val Asn Pro Asp Gly Met Ala Phe Ile Pro Leu Arg Val Ile 290 295 300 Pro Phe Leu Arg Glu Lys Gly Val Pro Gln Glu Thr Leu Ala Gly Ile 305 310 315 320 Thr Val Thr Asn Pro Ala Arg Phe Leu Ser Pro Thr Leu Arg Ala Ser 325 330 335 <210> 5 <211> 336 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> 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260 265 270 Trp Leu Phe Gly Phe Ser Leu Tyr Val Thr Asn Ile Met Asp Val Met 275 280 285 Asp Ser Val Asn Pro Asp Gly Met Ala Phe Ile Pro Leu Arg Val Ile 290 295 300 Pro Phe Leu Arg Glu Lys Gly Val Pro Gln Glu Thr Leu Ala Gly Ile 305 310 315 320 Thr Val Thr Asn Pro Ala Arg Phe Leu Ser Pro Thr Leu Arg Ala Ser 325 330 335 <210> 7 <211> 1011 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> OPH varient-T172A <400> 7 atgatcggca caggcgatcg gatcaatacc gtgcgcggtc ctatcacaat ctctgaagcg 60 ggtttcacac tgactcacga gcacatctgc ggcagctcgg caggattctt gcgtgcttgg 120 ccagagttct tcggtagccg caaagctcta gtggaaaagg ctgtgagagg attgcgccgc 180 gccagagcgg ctggcgtgcg aacgattgtc gatgtgtcga ctttcgatgt cggtcgcgac 240 gtcagtttat tggccgaggt ttcgcgggct gccgacgttc atatcgtggc ggcgaccggc 300 ttgtgggacg acccgccact ttcgatgcga ttgaggagtg tagaggaact cacacagttc 360 ttcctgcgtg agattcaata tggcatcgaa gacaccggaa ttagggcggg cattatcaag 420 gtcgcggcga caggcaaggc ggcccccttt caggagttag tgttaagggc ggccgcccgg 480 gccagcttgg ccaccggtgt 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acgggatggc cttcattcca 900 ctgagagtga tcccattcct acgagagaag ggcgtcccac aggaaacgct ggcaggcatc 960 actgtgacta acccggcgcg gttcttgtca ccgaccttgc gggcgtcatg a 1011 <210> 10 <211> 1011 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> OPH varient-T172A/Y309A <400> 10 atgatcggca caggcgatcg gatcaatacc gtgcgcggtc ctatcacaat ctctgaagcg 60 ggtttcacac tgactcacga gcacatctgc ggcagctcgg caggattctt gcgtgcttgg 120 ccagagttct tcggtagccg caaagctcta gtggaaaagg ctgtgagagg attgcgccgc 180 gccagagcgg ctggcgtgcg aacgattgtc gatgtgtcga ctttcgatgt cggtcgcgac 240 gtcagtttat tggccgaggt ttcgcgggct gccgacgttc atatcgtggc ggcgaccggc 300 ttgtgggacg acccgccact ttcgatgcga ttgaggagtg tagaggaact cacacagttc 360 ttcctgcgtg agattcaata tggcatcgaa gacaccggaa ttagggcggg cattatcaag 420 gtcgcggcga caggcaaggc ggcccccttt caggagttag tgttaagggc ggccgcccgg 480 gccagcttgg ccaccggtgt tccggtaacc actcacacgg cagcaagtca gcgcggtggt 540 gagcagcagg ccgccatttt tgagtccgaa ggcttgagcc cctcacgggt ttgtattggt 600 cacagcgatg atactgacga tttgagctat ctcaccgccc tcgctgcgcg cggatacctc 660 atcggtctag accacatccc gtggagtgcg attggtctag aagataatgc gagtgcatca 720 gccctcctgg gcaaccgttc gtggcaaaca cgggctctct tgatcaaggc gctcatcgac 780 caaggctaca tgaaacaaat cctcgtttcg aatgactggc tgttcgggtt ttcgctggcg 840 gtcaccaaca tcatggacgt gatggatagc gtgaaccccg acgggatggc cttcattcca 900 ctgagagtga tcccattcct acgagagaag ggcgtcccac aggaaacgct ggcaggcatc 960 actgtgacta acccggcgcg gttcttgtca ccgaccttgc gggcgtcatg a 1011 <210> 11 <211> 1011 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> OPH varient-L271A/Y309A <400> 11 atgatcggca caggcgatcg gatcaatacc gtgcgcggtc ctatcacaat ctctgaagcg 60 ggtttcacac tgactcacga gcacatctgc ggcagctcgg caggattctt gcgtgcttgg 120 ccagagttct tcggtagccg caaagctcta gtggaaaagg ctgtgagagg attgcgccgc 180 gccagagcgg ctggcgtgcg aacgattgtc gatgtgtcga ctttcgatgt cggtcgcgac 240 gtcagtttat tggccgaggt ttcgcgggct gccgacgttc atatcgtggc ggcgaccggc 300 ttgtgggacg acccgccact ttcgatgcga ttgaggagtg tagaggaact cacacagttc 360 ttcctgcgtg agattcaata tggcatcgaa gacaccggaa ttagggcggg cattatcaag 420 gtcgcgacca caggcaaggc ggcccccttt caggagttag tgttaagggc ggccgcccgg 480 gccagcttgg ccaccggtgt tccggtaacc actcacacgg cagcaagtca gcgcggtggt 540 gagcagcagg ccgccatttt tgagtccgaa ggcttgagcc cctcacgggt ttgtattggt 600 cacagcgatg atactgacga tttgagctat ctcaccgccc tcgctgcgcg cggatacctc 660 atcggtctag accacatccc gtggagtgcg attggtctag aagataatgc gagtgcatca 720 gccgcactgg gcaaccgttc gtggcaaaca cgggctctct tgatcaaggc gctcatcgac 780 caaggctaca tgaaacaaat cctcgtttcg aatgactggc tgttcgggtt ttcgctggcg 840 gtcaccaaca tcatggacgt gatggatagc gtgaaccccg acgggatggc cttcattcca 900 ctgagagtga tcccattcct acgagagaag ggcgtcccac aggaaacgct ggcaggcatc 960 actgtgacta acccggcgcg gttcttgtca ccgaccttgc gggcgtcatg a 1011 <210> 12 <211> 1011 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> OPH varient-D132A <400> 12 atgatcggca caggcgatcg gatcaatacc gtgcgcggtc ctatcacaat ctctgaagcg 60 ggtttcacac tgactcacga gcacatctgc ggcagctcgg caggattctt gcgtgcttgg 120 ccagagttct tcggtagccg caaagctcta gtggaaaagg ctgtgagagg attgcgccgc 180 gccagagcgg ctggcgtgcg aacgattgtc gatgtgtcga ctttcgatgt cggtcgcgac 240 gtcagtttat tggccgaggt ttcgcgggct gccgacgttc atatcgtggc ggcgaccggc 300 ttgtgggcgg acccgccact ttcgatgcga ttgaggagtg tagaggaact cacacagttc 360 ttcctgcgtg agattcaata tggcatcgaa gacaccggaa ttagggcggg cattatcaag 420 gtcgcgacca caggcaaggc ggcccccttt caggagttag tgttaagggc ggccgcccgg 480 gccagcttgg ccaccggtgt tccggtaacc actcacacgg cagcaagtca gcgcggtggt 540 gagcagcagg ccgccatttt tgagtccgaa ggcttgagcc cctcacgggt ttgtattggt 600 cacagcgatg atactgacga tttgagctat ctcaccgccc tcgctgcgcg cggatacctc 660 atcggtctag accacatccc gtggagtgcg attggtctag aagataatgc gagtgcatca 720 gccctcctgg gcaaccgttc gtggcaaaca cgggctctct tgatcaaggc gctcatcgac 780 caaggctaca tgaaacaaat cctcgtttcg aatgactggc tgttcgggtt ttcgctgtat 840 gtcaccaaca tcatggacgt gatggatagc gtgaaccccg acgggatggc cttcattcca 900 ctgagagtga tcccattcct acgagagaag ggcgtcccac aggaaacgct ggcaggcatc 960 actgtgacta acccggcgcg gttcttgtca ccgaccttgc gggcgtcatg a 1011 <210> 13 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 13 tggaattcat gcaaacgaga agggttgtgc 30 <210> 14 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 14 ccaagctttc atgacgcccg caaggtcgg 29 <210> 15 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 15 cacagccttt tccactagag ctttgcg 27 <210> 16 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 16 cgcaaagctc tagtggaaaa ggctgtg 27 <210> 17 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 17 gacgtcgcga ccgacatcga aagtcga 27 <210> 18 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 18 tcgactttcg atgtcggtcg cgacgtc 27 <210> 19 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 19 aagtggcggg tcgtcccaca agccggt 27 <210> 20 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 20 accggcttgt gggacgaccc gccactt 27 <210> 21 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 21 ccgggcggcc gcccttaaca ctaactc 27 <210> 22 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 22 gagttagtgt taagggcggc cgcccgg 27 <210> 23 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 23 ctgctgctca ccaccgcgct gacttgc 27 <210> 24 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 24 gcaagtcagc gcggtggtga gcagcag 27 <210> 25 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 25 accaatcgca ctccacggga tgtggtc 27 <210> 26 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 26 gaccacatcc cgtggagtgc gattggt 27 <210> 27 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 27 ttgccacgaa cggttgccca ggagggc 27 <210> 28 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 28 gccctcctgg gcaaccgttc gtggcaa 27 <210> 29 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 29 gttggtgaca tacagcgaaa acccgaa 27 <210> 30 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 30 ttcgggtttt cgctgtatgt caccaac 27 <210> 31 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 31 gtcggggttc acgctatcca tcacgtc 27 <210> 32 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 32 gacgtgatgg atagcgtgaa ccccgac 27 <210> 33 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 33 gcgaccggct tggcggacga cccgcca 27 <210> 34 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 34 tggcgggtcg tccgccaagc cggtcgc 27 <210> 35 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 35 accggcttgt gggcggaccc gccactt 27 <210> 36 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 36 aagtggcggg tccgcccaca agccggt 27 <210> 37 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 37 atcaaggtcg cggcgacagg caaggcg 27 <210> 38 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 38 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Sequence <220> <223> primer <400> 47 gaccacatcc cggcgagtgc gattggt 27 <210> 48 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 48 accaatcgca ctcgccggga tgtggtc 27 <210> 49 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 49 ctgttcgggt ttgccctgta tgtcacc 27 <210> 50 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 50 ggtgacatac agggcaaacc cgaacag 27 <210> 51 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 51 gggttttcgc tggcggtcac caacatc 27 <210> 52 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 52 gatgttggtg accgccagcg aaaaccc 27 <210> 53 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 53 ggtaaccact cacgccgcag caagtcag 28 <210> 54 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 54 ctgacttgct gcggcgtgag tggttacc 28 <210> 55 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 55 ggtcacagcg atgcgactga cgatttg 27 <210> 56 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 56 caaatcgtca gtcgcatcgc tgtgacc 27 <210> 57 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 57 agtgcatcag ccgcactggg caaccgttc 29 <210> 58 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 58 gaacggttgc ccagtgcggc tgatgcact 29 <210> 59 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 59 gccctcctgg gcgcgcgttc gtggcaaa 28 <210> 60 <211> 28 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 60 tttgccacga acgcgcgccc aggagggc 28 <210> 61 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 61 ctcctgggca acgcgtcgtg gcaaaca 27 <210> 62 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> primer <400> 62 tgtttgccac gacgcgttgc ccaggag 27

Claims (7)

  1. 서열번호 1~6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체.
  2. 제1항에 있어서, V-타입 신경작용제의 분해활성을 가지는 것을 특징으로 하는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체.
  3. 서열번호 1~6 중 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 코딩하는 유전자.
  4. 제3항의 유전자가 도입되어 있는 재조합 미생물.
  5. 제4항의 재조합 미생물을 배양하여 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 생성시키는 단계; 및 상기 생성된 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 수득하는 단계를 포함하는 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체의 제조방법.
  6. 제1항의 유기인 화합물 분해효소(OPH) 변이체를 이용하는 것을 특징으로 하는 유기인계 화합물의 분해방법.
  7. 제6항에 있어서, 상기 유기인계 화합물은 VX(O-ethyl-S-diisopropyl amino methylphosphonothiolate) 또는 그 유도체인 것을 특징으로 하는 방법.
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