KR20150003968A - Composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic disease containing fermented Lonicerae Flos - Google Patents

Composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic disease containing fermented Lonicerae Flos Download PDF

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Abstract

The present invention relates to a composition for preventing or treating obesity, endotoxemia, or metabolic diseases comprising fermented lonicerae flos as an active ingredient. The fermented lonicerae flos of the present invention has excellent treatment effects on endotoxemia including: improvement of intestinal permeability; inhibition of inflammation by inhibiting generation of NO; inhibition of blood serum inflammation biomarkers; and control of intestinal effective microorganisms. Also, the fermented lonicerae flos of the present invention has excellent effects on weight reduction and metabolism improvement including: weight reduction; fat reduction in epididymis, kidney, and liver; and inhibition of blood serum metabolic biomarkers, thereby being useful for treating obesity or metabolic diseases.

Description

금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 조성물{Composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic disease containing fermented Lonicerae Flos}TECHNICAL FIELD [0001] The present invention relates to a composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases,

본 발명은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 관한 것이다. The present invention relates to a composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises fermented gold germ as an active ingredient.

대사성 질환(metabolic disease)은 생체 내 물질대사 장애에 의해서 발생하는 질환의 총칭이다. 대사성 질환은 당질, 지질, 단백질, 비타민, 무기질 및 수분 등의 불균형에 의한 질환을 말하며, 대사병 또는 대사장해라고도 한다. 대사성 질환은 질환의 원인이 다양하고 복합적으로 작용하기 때문에, 명확한 치료법을 개발하기 어려운 실정이다.Metabolic disease is a generic term for diseases caused by metabolic disorders in vivo. Metabolic disease refers to diseases caused by imbalance such as carbohydrates, lipids, proteins, vitamins, minerals and water, and is also referred to as metabolic diseases or metabolic disorders. It is difficult to develop a clear treatment method because metabolic diseases act as diverse and complex causes of diseases.

비만(obesity)은 음식물의 섭취와 에너지 소비 사이의 불균형으로 인한 대사장애로, 체내에 지방이 과잉 축적된 상태를 말한다. 비만은 섭취된 음식물에 포함되어 있는 지방이 리파아제의 의해 분해 및 흡수되어 세포 내에 축적되거나, 축적된 지방이 지방전구세포를 지방세포로 분화하는 것을 유도하여 지방세포의 부피나 수가 늘어날 때 많이 발생한다.Obesity is a metabolic disorder caused by an imbalance between the consumption of food and energy consumption, which is an excess accumulation of fat in the body. Obesity occurs when the fat contained in the ingested food is decomposed and absorbed by lipase and accumulates in the cells or accumulated fat induces differentiation of lipid precursor cells into adipocytes, thereby increasing the volume or number of adipocytes .

세계보건기구(WHO)에서는 1996년 비만을 치료가 필요한 질병으로 분류하였다. 비만은 각종 성인병과 만성질환의 원인으로, 당뇨병, 고혈압, 고지혈증, 심장질환, 관절염, 호흡기 질환, 성기능 장애 및 암 등을 유발하는데 관여하는 것으로 알려져 있다. 연구 결과에 따르면, 2005년 전세계 비만 인구는 4억 명으로 통계되었으며, 2015년에는 전세계 비만 인구가 7억 명으로 증가할 것으로 예상되고 있다.The World Health Organization (WHO) classified obesity as a disease requiring treatment in 1996. Obesity is a cause of various adult diseases and chronic diseases, and is known to be involved in causing diabetes, hypertension, hyperlipidemia, heart disease, arthritis, respiratory disease, sexual dysfunction and cancer. According to the results of the study, worldwide obesity in 2005 was estimated at 400 million people, and by 2015, the global obesity population is expected to increase to 700 million.

현재까지 알려진 비만의 치료법은 약물 투여, 수술, 식이요법 및 운동요법 등이 있으며, 그중 약물투여법이 가장 우수한 효과를 나타내는 것으로 알려져 있다. 그러나, 우수한 효과를 내는 약물투여, 특히 항비만 치료용 약물투여는 두통 및 구토 등의 부작용이 있어, 약물을 장기간 투여하기 어렵고 개체의 체질에 따라 부작용의 정도가 상이하게 나타난다는 문제점이 있다. 이와 같은 약물투여의 부작용을 해결하기 위해, 천연물 유래의 소재 또는 안정성이 확보되어 있는 식품을 소재로 한 항비만 소재에 대한 연구가 활발히 진행되고 있다.The treatment of obesity known to date is drug administration, surgery, diet and exercise therapy, among which the drug administration method is known to have the most excellent effect. However, there is a problem in that administration of a drug having excellent effects, particularly administration of an anti-obesity drug, has side effects such as headache and vomiting, so that it is difficult to administer the drug for a long period of time and the degree of side effects varies depending on the constitution of the individual. In order to solve such a side effect of drug administration, researches on anti-obesity materials based on natural materials or foods with stable stability have been actively conducted.

한편, 장(腸)은 체내로 섭취된 음식물의 영양소를 흡수하는 동시에 내부를 보호하는 방어벽으로 작용하는 소화기관이다. 장은 크게 멱역학적 기전과 비면역학적 기전으로 방어벽의 역할을 수행하는 것으로 알려져 있다. 장의 비면역학적 방어는 선택적 장투과에 의해 일어난다. 체내 장투과성이 지나치게 증가되면 생명체 활동에 필요한 영양소의 흡수 저하를 가져오며, 유해한 물질의 유입을 차단하는 능력의 상실을 가져오게 된다. 체내로 유입된 독성 물질은 내부 면역계와 상호작용하여 여러 면역반응을 일으키고, 최종적으로 질병을 유발하게 된다.On the other hand, the bowel is a digestive organs that acts as a barrier to protect the inside of the body while absorbing the nutrients of foods consumed in the body. The chapter is largely known to play a role of a defense wall due to the epidemiological and epidemiological mechanisms. Non-epidermal defense of the intestine is caused by selective intestinal permeation. Excessive intestinal permeability leads to loss of absorption of nutrients needed for life activities and loss of ability to block the entry of harmful substances. Toxic substances introduced into the body interact with the internal immune system, causing a variety of immune responses, and ultimately leading to disease.

한편, 위장관 손상이 발생할 경우, 장내세균 및 감염성 합병증이 유발되고, 내독소가 장관장벽을 넘어 장 이외의 기관으로 이동하게 된다. 내독소혈증(endotoxemia)은 장내세균의 일부인 내독소(endotoxin)가 파급되는 현상을 말하며, 장내세균전위는 장내세균 및 각종 세균의 생성물이 장관벽을 넘어 장 이외의 곳으로 파급되는 현상을 말한다. 내독소는 전신 염증반응 증후군(SIRS, systemic inflammatory response syndrome)과 패혈증을 유발하는 것으로 알려져 있다. 장내세균전위나 장관 내독소혈증이 발생하면, 장내세균 및 각종 생성물들은 우선 장간막 림프절로 전파되고, 림파계를 따라 흉관으로 이동하여 간, 비장 및 폐 등의 멀리 떨어진 장기까지 전파되기도 하며 간문맥을 통하여 간과 비장을 거쳐 전신혈류로 파급되기도 한다. On the other hand, when gastrointestinal injury occurs, intestinal bacteria and infectious complications are induced, and the endotoxin is transferred to the organs beyond the intestinal wall. Endotoxemia refers to a phenomenon in which endotoxin, which is a part of intestinal bacteria, is spread. Intestinal bacterial disruption refers to a phenomenon in which intestinal bacteria and various bacterial products are spread beyond the intestinal wall and into the intestines. Endotoxins are known to cause systemic inflammatory response syndrome (SIRS) and sepsis. Intestinal bacterial and intestinal endotoxemia occurs, intestinal bacteria and various products first spread to the mesenteric lymph nodes, travel to the chest tube along the lymphatic system and spread to distant organs such as liver, spleen and lung, Spleen and spread to the systemic bloodstream.

장내세균전위 및 내독소혈증과 연관된 질환으로는 외상, 대동맥류 수술 및 장관이식술, 폐색성 황달, 급성췌장염, 장관폐색증, 간경변증, 심부전, 종양성 질환, 염증성 장 질환, 폐외 급성호흡부전증(extrapulomonary ARDS), 전신적 염증성 반응 증후군과 폐혈증 등이 있으며, 내독소혈증은 이러한 질환의 감염성 합병증과도 상관관계가 있음이 밝혀지고 있다(Adv.Exp.Med.Biol 1999;473:11-30). Diseases associated with intestinal bacterial dislocations and endotoxemia include trauma, aortic aneurysm surgery and intestinal transplantation, obstructive jaundice, acute pancreatitis, intestinal obstruction, cirrhosis, heart failure, tumor disease, inflammatory bowel disease, extrapulmonary ARDS ), Systemic inflammatory response syndrome and sepsis, and endotoxemia has been found to correlate with infectious complications of these diseases (Adv.Exp.Med.Biol 1999; 473: 11-30).

한편, 금은화(Lonicerae Flos) 또는 인동물은 인동과(Caprifoliaceae)에 속하는 인동덩굴(Lonicera japonica Thunberg)의 꽃으로, 해열 및 해독 효과가 있는 것으로 알려져 있다. 또한, 금은화는 종기, 상처, 종양, 인후염, 피부질환, 치루, 감모, 열성 이 등의 치료에 사용되어 왔다.On the other hand, Lonicerae Flos or Indong water is a flower of Lonicera japonica Thunberg belonging to Caprifoliaceae, and it is known to be effective in detoxification and detoxification. In addition, gingkohwa has been used for treatment of bruises, wounds, tumors, sore throat, skin diseases, furrows, gait and fever.

발효 한약이란 한약재를 우수한 종균으로 발효시켜 원래 한약이 가지는 약효를 증가시키거나 새로운 기능을 추가한 약재를 말한다. 일반 한약에 비하여 발효 한약의 경우, 약효가 빠르고 소화흡수율이 뛰어나며 항산화 활성이 우수하다. 또한, 발효 한약은 일반 한약에 비하여 농약 및 중금속 등의 독성물질로부터 상대적으로 안전하고 부작용이 적다는 장점이 있으나, 아직 이에 대한 체계적인 연구는 미미한 실정이다. Fermented Chinese medicine refers to a medicinal substance which fermented herb medicine as an excellent seed bacterium to increase the medicinal effect of the original herbal medicine or to add a new function. Compared to general Chinese medicine, fermented Chinese medicine has fast action, excellent digestion rate and excellent antioxidant activity. In addition, the fermented Chinese medicine is relatively safe from toxic substances such as pesticides and heavy metals, and has less side effects than general Chinese medicine, but systematic research on it has not been done yet.

본 발명자들은 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 치료 효과가 우수한 천연 소재에 관해 연구하던 중, 금은화 발효물이 장투과성을 개선시키고, NO 발생을 억제하여 염증을 억제하고, 혈청 염증 지표물질을 억제하고, 장내 유용 미생물을 조절하며, 체중을 감소시키고, 부고환, 신장 및 간에서 지방을 감소시키고, 혈청 대사성 지표물질을 억제하는 등 체중감량 및 대사 개선효과가 우수하여 비만, 내국소혈증 또는 대사성 질환에 대한 우수한 치료 효과를 가지는 것을 확인하고, 본 발명을 완성하게 되었다.
The present inventors have conducted studies on natural materials having excellent therapeutic effects of obesity, endotoxemia or metabolic diseases, and found that the fermented product of gold eucharide improves intestinal permeability, inhibits NO generation to suppress inflammation, inhibits serum inflammatory indicator substances And is effective in reducing intestinal microorganisms, reducing body weight, reducing fats in epididymis, kidney and liver, inhibiting serum metabolic indicator substances, and improving weight loss and metabolism, thereby preventing obesity, endometriosis or metabolic diseases And the present invention has been completed.

본 발명의 목적은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공하는 것이다.It is an object of the present invention to provide a pharmaceutical composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises a fermented product of gold-silver euroside as an active ingredient.

본 발명의 다른 목적은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공하는 것이다.
It is another object of the present invention to provide a food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises a fermented product of gold-silver europium as an active ingredient.

본 발명은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.The present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises a fermented product of giitanium sulphate as an active ingredient.

본 발명은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공한다.
The present invention provides a food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxemia, or metabolic diseases, which comprises fermented gold germ as an active ingredient.

본 발명의 금은화 발효물은 장투과성을 개선시키고, NO 발생을 억제하여 염증을 억제하고, 혈청 염증 지표물질을 억제하고, 장내 유용 미생물을 조절하는 등 내독소혈증에 대한 우수한 치료 효과를 가지고 있다. 또한, 본 발명의 금은화 발효물은 체중을 감소시키고, 부고환, 신장 및 간에서 지방을 감소시키고, 혈청 대사성 지표물질을 억제하는 등 체중감량 및 대사 개선효과가 우수하므로, 비만 또는 대사성 질환의 치료에 유용하게 사용될 수 있다.
The gold-silver fermented product of the present invention has an excellent therapeutic effect on endotoxemia such as improving intestinal permeability, inhibiting NO generation to inhibit inflammation, inhibiting serum inflammatory indicator substances, and controlling intestinal useful microorganisms. In addition, the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of reducing body weight, reducing fat in epididymis, kidney and liver, inhibiting serum metabolism indicator substances, and reducing weight loss and metabolism. Can be usefully used.

도 1은 본 발명에 따른 금은화 발효물의 TEER 변화율을 실험시작 직후에 측정한 결과를 나타낸 도이다(1. 대조군: DSS 무처리군 ; 2. DSS: DSS 처리군; 3. DSS+LF: DSS 및 금은화 추출물 처리군 ; 및 4. DSS+FLF: DSS 및 금은화 발효물 처리군).
도 2는 본 발명에 따른 금은화 발효물의 TEER 변화율을 실험시작 4시간 경과시점에 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 4는 도 1에 기재된 바와 같다.).
도 3은 본 발명에 따른 금은화 발효물의 TEER 변화율을 실험시작 22시간 경과 시점에 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 4는 도 1에 기재된 바와 같다.).
도 4는 본 발명에 따른 금은화 발효물의 HRP 투과성 변화율을 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 4는 도 1에 기재된 바와 같다.).
도 5는 본 발명에 따른 금은화 발효물의 클라우딘-1 저해 활성을 측정한 결과를 나타낸 도이다(1. 정상군; 2. LPS 처리군(대조군); 3. LPS+금은화 추출물 100 ㎍/㎖처리군; 4. LPS+금은화 추출물 400 ㎍/㎖처리군; 5. LPS+금은화 발효물 100 ㎍/㎖처리군; 및 6. LPS+금은화 발효물 400 ㎍/㎖처리군).
도 6은 본 발명에 따른 금은화 발효물의 일산화질소 발생 억제활성을 측정한 결과를 나타낸 도이다((1. 정상군; 2. LPS 단독처리군(대조군); 3. 금은화 추출물 100 ㎍/㎖+LPS 처리군; 4. 금은화 추출물 200 ㎍/㎖+LPS 처리군; 5. 금은화 추출물 400 ㎍/㎖+LPS 처리군; 6. 금은화 발효물 100 ㎍/㎖+LPS 처리군; 7. 금은화 발효물 200 ㎍/㎖+LPS 처리군; 및 8. 금은화 발효물 400 ㎍/㎖+LPS 처리군).
도 7은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 체중 감소 효과를 시계열적으로 측정한 결과를 나타낸 도이다(1. 정상식이군; 2. 고지방식이군; 3. 고지방식이+LPS 처리군; 4. 고지방식이+LPS+금은화 추출물 처리군; 및 5. 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군; 6. 고지방식이+LPS+초유 처리군).
도 8은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 부고환 조직의 지방 무게 감소 효과를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 9는 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 신장 조직의 지방 무게 감소 효과를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 10은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청 총 콜레스테롤 함량 변화를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 11은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청 포도당 함량 변화를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 12는 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청 중성지방 함량 변화를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 13은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청 HDL-콜레스테롤 함량 변화를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 14은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청 GOT 함량 변화를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 15는 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청내 TNF-α 농도를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 16은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 혈청내 CRP의 농도를 측정한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 17은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물 중 하나인 비피도박테리아에 대한 Q-PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 18은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물 중 하나인 락토바실러스에 대한 Q-PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 19는 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물 중 하나인 박테리오데트에 대한 Q-PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 20은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물 중 하나인 피르미쿠테스에 대한 Q-PCR을 수행한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 21은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물에 대한 Q-PCR을 수행한 후, 박테리오데트/피르미쿠테스의 비율을 분석한 결과를 나타낸 도이다(1 내지 6은 도 7에 기재된 바와 같다.).
도 22은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 간조직 지방세포 분화 억제활성을 오일 레드 O 염색을 통해 측정한 결과를 나타낸 도이다.
도 23은 본 발명에 따른 금은화 발효물을 경구투여한 실험동물의 장내 미생물에 대한 군간 정성분석 결과를 나타낸 도이다.
Figure 1 shows the result of measurement of the TEER change rate of the germinated fermented product according to the present invention immediately after the start of the experiment (1. Control group: no DSS treated group 2. DSS: treated DSS group 3. DSS + LF: And 4. DSS + FLF: DSS and germination fermentation treatment group.
FIG. 2 is a graph showing the change in TEER of the gingival perilla fermented product according to the present invention measured 4 hours after the start of the experiment (1 to 4 are as shown in FIG. 1).
FIG. 3 shows the results of measurement of the TEER change rate of the germanium fermentation product according to the present invention at the elapsed time of 22 hours from the start of the experiment (1 to 4 are as shown in FIG. 1).
FIG. 4 is a graph showing the results of measurement of the rate of change of HRP permeability of the gold-silver fermented product according to the present invention (1 to 4 are as shown in FIG. 1).
5 is a graph showing the results of measurement of the Claudin-1 inhibitory activity of the germinated fermented product according to the present invention (1. normal group; 2. LPS treatment group (control group); 3. LPS + ginger extract extract group: 100 μg / ml treatment group; 4. LPS + gingival extract 400 ㎍ / ㎖ treated group 5. LPS + gold silver fermentation 100 ㎍ / ㎖ treated group and 6. LPS + germanium fermentation 400 ㎍ / ㎖ treated group).
(1) normal group; (2) LPS alone treatment group (control group); (3) 100 ㎍ / ml of LPS / LPS LPS-treated group; Eq. (200 ㎍ / ㎖) + LPS treated group; Epsonol 400 ㎍ / ml + LPS treated group / Ml < / RTI > + LPS treated group; and 8. gingivalized fermented product 400 占 퐂 / ml + LPS treated group).
Figure 7 shows the result of the time-lapse measurement of the weight loss effect of the experimental animals on oral administration of the germinated fermented product according to the present invention (1. Normal diet; 2. High fat diet method; 3. High fat diet + LPS 4. LPS + Ginseng Extract Treated Group, 4. LPS + Ginseng Fermentation Treatment Group, and 6. Highland LPS + Colostrum Treatment Group.
FIG. 8 is a graph showing the results of measuring lipid weight-reducing effects of epididymal tissues of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 9 is a graph showing the results of measurement of the fat weight-reducing effect of renal tissue of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 10 is a graph showing the results of measurement of serum total cholesterol content changes in an experimental animal to which the gold-silver fermentation product according to the present invention was orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 11 is a graph showing changes in serum glucose content of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 12 is a graph showing changes in serum triglyceride content of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 13 is a graph showing changes in serum HDL-cholesterol content of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 14 is a graph showing the results of measurement of changes in serum GOT content of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 15 is a graph showing the results of measurement of TNF-.alpha. Concentration in serum of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 16 is a graph showing the results of measurement of the concentration of CRP in serum of an experimental animal to which the gold-silver fermentation product according to the present invention was orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7).
FIG. 17 is a graph showing the results of Q-PCR of Bifidobacterium, one of intestinal microorganisms, of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7). ).
18 is a graph showing the results of Q-PCR of Lactobacillus, one of intestinal microorganisms, of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7). .
FIG. 19 is a graph showing the results of Q-PCR of bacteriodet, one of intestinal microorganisms of an experimental animal to which gold-silver fermentation according to the present invention is orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7). .
FIG. 20 is a graph showing the results of Q-PCR of pirimicut, one of intestinal microorganisms, of an experimental animal in which gold-silver fermentation according to the present invention was orally administered (1 to 6 are as shown in FIG. 7). ).
FIG. 21 is a graph showing the results of an analysis of the ratio of bacteriodet / pyromycetes after performing Q-PCR on intestinal microorganisms of an experimental animal orally administered with the germinated fermented product according to the present invention (1 to 6 7).
FIG. 22 is a graph showing the activity of inhibiting the differentiation of adipocyte differentiation in an experimental animal by oral gavage fermentation according to the present invention through oil red O staining. FIG.
FIG. 23 is a diagram showing the result of group interim analysis on intestinal microorganisms of an experimental animal orally administered with the germinated fermented product according to the present invention. FIG.

본 발명은 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공한다.The present invention provides a composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises a fermented product of gingkoferment as an active ingredient.

상기 조성물은 약학적 조성물 및 식품 조성물을 포함한다.The composition comprises a pharmaceutical composition and a food composition.

이하 본 발명에 관하여 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.

본 발명에 따른 조성물에서 유효성분인 금은화 발효물은 금은화 열수추출물에 락토바실러스속 균주, 바람직하게는 락토바실라스 플란타룸을 접종하여 발효시켜 얻을 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. In the composition according to the present invention, the gold-silver fermentation product as an active ingredient can be obtained by fermenting Ganoderma lucidum hot-water extract inoculated with a strain of the genus Lactobacillus, preferably Lactobacillus planta, but is not limited thereto.

상기 금은화 발효물은 통상적인 추출 및 발효 방법에 의해 얻을 수 있고, 시판되는 것을 구입하여 사용할 수 있다. 통상적인 추출 방법으로는 초음파 추출법, 여과법 및 환류 추출법 등을 포함할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.The above-described gingival sausage fermented product can be obtained by a conventional extraction and fermentation method, and commercially available ones can be purchased and used. Conventional extraction methods include, but are not limited to, ultrasonic extraction, filtration, and reflux extraction.

본 발명의 일실시예에서는 하기와 같은 방법으로 수득하였다.In one embodiment of the present invention, it was obtained in the following manner.

먼저, 금은화 분말에 유산균 배양액을 첨가한 후 초음파 처리하고 열수추출한다. 금은화 열수추출물을 고압멸균시킨 후 실온에서 충분히 식힌다. 식은 멸균된 금은화 열수추출물에 락토바실러스 플란타룸를 접종하여 발효시킨다. 수득된 발효물을 고압멸균시키고 원심분리한 후 상층액을 수득함으로써, 금은화 발효물을 얻는다.First, the lactic acid bacteria culture solution is added to the germanium powder, and the mixture is subjected to ultrasonic treatment and hot water extraction. After high-pressure sterilization of Ganghwa hot-water extract, cool well at room temperature. The formula is fermented by inoculating Lactobacillus planta with sterilized Ganoderma lucidum extract. The obtained fermentation product is autoclaved at high pressure and centrifuged to obtain a supernatant, thereby obtaining a fermented silver microcrystalline product.

본 발명의 금은화 발효물은 장투과성을 개선시키고, NO 발생을 억제하여 염증을 억제하고, 혈청 염증 지표물질을 억제하고, 장내 유용 미생물을 조절하는 등 내독소혈증에 대한 우수한 치료 효과를 가지고 있다. 또한, 본 발명의 금은화 발효물은 체중을 감소시키고, 부고환, 신장 및 간에서 지방을 감소시키고, 혈청 대사성 지표물질을 억제하는 등 체중감량 및 대사 개선효과가 우수하므로, 비만 또는 대사성 질환의 치료에 유용하게 사용될 수 있다.The gold-silver fermented product of the present invention has an excellent therapeutic effect on endotoxemia such as improving intestinal permeability, inhibiting NO generation to inhibit inflammation, inhibiting serum inflammatory indicator substances, and controlling intestinal useful microorganisms. In addition, the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of reducing body weight, reducing fat in epididymis, kidney and liver, inhibiting serum metabolism indicator substances, and reducing weight loss and metabolism. Can be usefully used.

상기 비만은 단순 비만, 증후성 비만, 소아비만, 성인비만, 세포 증식형 비만, 세포 비대형 비만, 상체 비만, 하체 비만, 내장지방형 비만 및 피하지방형 비만을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다. The obesity includes but is not limited to simple obesity, symptomatic obesity, childhood obesity, adult obesity, cell proliferative obesity, cell non-large obesity, upper body obesity, lower body obesity, visceral fat obesity and subcutaneous fat obesity.

상기 대사성 질환은 대사성비만, 대사성고지혈증, 대사성당뇨병, 대사성이상지질혈증, 대사성동맥경화 및 대사성고혈압을 포함하나, 이에 한정되는 것은 아니다.
The metabolic diseases include, but are not limited to, metabolic obesity, metabolic hyperlipidemia, metabolic diabetes, metabolic dyslipidemia, metabolic arteriosclerosis and metabolic hypertension.

본 발명의 조성물은 금은화 발효물과 함께 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환에 대하여 예방 또는 치료의 효과를 갖는 공지의 유효성분을 1종 이상 더 함유할 수 있다. The composition of the present invention may further contain one or more known active ingredients having an effect of preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases together with the fermented gold europae.

본 발명의 조성물은 약학적 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 적절한 담체, 부형제 및 희석제를 더 포함할 수 있다. 또한, 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다. 당해 기술 분야에 알려진 적합한 제제는 문헌 (Remington's Pharmaceutical Science, 최근, Mack Publishing Company, Easton PA)에 개시되어 있는 것을 사용하는 것이 바람직하다. 포함될 수 있는 담체, 부형제 및 희석제로는 락토오스, 덱스트로오스, 수크로오스, 소르비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로오스, 메틸 셀룰로오스, 미정질 셀룰로오스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시 벤조에이트, 프로필히드록시 벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유 등이 있다. 상기 조성물을 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 조성물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트 (calcium carbonate), 수크로오스, 락토오스, 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜 (propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔 (witepsol), 마크로골, 트윈 (tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다. The compositions of the present invention may further comprise suitable carriers, excipients and diluents conventionally used in the manufacture of pharmaceutical compositions. In addition, it can be formulated in the form of powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, oral formulations such as syrups and aerosols, external preparations, suppositories and sterilized injection solutions according to a conventional method. Suitable formulations known in the art are preferably those as disclosed in Remington ' s Pharmaceutical Science, recently, Mack Publishing Company, Easton PA. Examples of carriers, excipients and diluents which may be included include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, cellulose, methylcellulose, Cellulose, polyvinylpyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate, and mineral oil. When the composition is formulated, it is prepared using a diluent such as a filler, an extender, a binder, a wetting agent, a disintegrant, a surfactant, or an excipient usually used. Solid formulations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules and the like, which may contain at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose, lactose, Gelatin and the like. In addition to simple excipients, lubricants such as magnesium stearate and talc may also be used. Examples of the liquid preparation for oral administration include suspensions, solutions, emulsions, and syrups. In addition to water and liquid paraffin, simple diluents commonly used, various excipients such as wetting agents, sweeteners, fragrances, preservatives and the like may be included . Formulations for parenteral administration include sterilized aqueous solutions, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, freeze-dried preparations, and suppositories. Examples of the suspending agent include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate, and the like. Examples of the suppository base include witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin, glycerogelatin and the like.

본 발명에서 사용되는 용어 "투여"는 임의의 적절한 방법으로 개체에게 소정의 본 발명의 조성물을 제공하는 것을 의미한다.The term "administering" as used herein is meant to provide any desired composition of the invention to a subject in any suitable manner.

본 발명의 약학적 조성물의 바람직한 투여량은 개체의 상태 및 체중, 질병의 정도, 약물형태, 투여경로 및 기간에 따라 다르지만, 당업자에 의해 적절하게 선택될 수 있다. 바람직한 효과를 위해서, 본 발명의 금은화 발효물은 1일 1 mg/ kg 내지 10000 mg/kg의 양으로 투여할 수 있으며, 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수 회 나누어 투여할 수도 있다. The preferred dosage of the pharmaceutical composition of the present invention varies depending on the condition and the weight of the individual, the degree of disease, the type of drug, the route of administration and the period of time, but can be appropriately selected by those skilled in the art. For the desired effect, the gold-silver fermented product of the present invention may be administered in an amount of 1 mg / kg to 10000 mg / kg per day, or may be administered once a day or divided into several times.

본 발명의 약학적 조성물은 개체에게 다양한 경로로 투여될 수 있다. 투여의 모든 방식은 예상될 수 있는데, 예를 들면, 경구, 직장 또는 정맥, 근육, 피하, 자궁 내 경막 또는 뇌혈관 내 주사에 의해 투여될 수 있다. The pharmaceutical composition of the present invention may be administered to a subject in various routes. All modes of administration may be expected, for example, by oral, rectal or intravenous, intramuscular, subcutaneous, intra-uterine dural or intracerebral injection.

본 발명의 조성물은 비만, 내독소혈증 및 대사성 질환의 예방 및 치료를 위하여 단독으로, 또는 수술, 방사선 치료, 호르몬 치료, 화학 치료 및 생물학적 반응 조절제를 사용하는 방법들과 병용하여 사용할 수 있다.
The composition of the present invention can be used alone or in combination with methods using surgery, radiation therapy, hormone therapy, chemotherapy, and biological response modifiers for the prevention and treatment of obesity, endotoxemia and metabolic diseases.

본 발명에서, "건강기능식품"이란, 질병의 예방 및 개선, 생체방어, 면역, 병후의 회복, 노화 억제 등 생체조절 기능을 가지는 식품을 말하는 것으로, 장기적으로 복용하였을 때 인체에 무해해야 한다. In the present invention, the term "health functional food" refers to a food having a biological control function such as prevention and improvement of disease, bio-defense, immunity, recovery after disease and aging inhibition.

본 발명의 조성물은 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선을 목적으로 건강기능식품에 첨가될 수 있다. 본 발명의 금은화 발효물을 식품 첨가물로 사용할 경우, 상기 금은화 발효물을 그대로 첨가하거나 다른 식품 또는 식품 성분과 함께 사용될 수 있고, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용될 수 있다. 유효성분의 혼합양은 사용 목적 (예방, 건강 또는 치료적 처치)에 따라 적합하게 결정될 수 있다. 일반적으로, 식품 또는 음료의 제조 시에 본 발명의 금은화 발효물은 원료에 대하여 15중량% 이하, 바람직하게는 10 중량% 이하의 양으로 첨가된다. 그러나, 건강 및 위생을 목적으로 하거나 또는 건강 조절을 목적으로 하는 장기간의 섭취의 경우에는 상기 범위 이하일 수 있으며, 안전성 면에서 아무런 문제가 없기 때문에 유효성분은 상기 범위 이상의 양으로도 사용될 수 있다.The composition of the present invention may be added to a health functional food for the purpose of preventing or improving obesity, endotoxemia or metabolic diseases. When the ferrous sulfide fermentation product of the present invention is used as a food additive, the fermented germanium fermentation product can be used as it is or can be used together with other food or food ingredients, and can be suitably used according to a conventional method. The amount of the active ingredient to be mixed can be suitably determined according to the intended use (prevention, health or therapeutic treatment). Generally, the gold or silver fermentation product of the present invention is added in an amount of not more than 15% by weight, preferably not more than 10% by weight based on the raw material, when the food or beverage is produced. However, in the case of long-term intake for the purpose of health and hygiene or for the purpose of controlling health, the amount may be less than the above range, and since there is no problem in terms of safety, the active ingredient may be used in an amount exceeding the above range.

상기 식품의 종류에는 특별한 제한은 없다. 상기 물질을 첨가할 수 있는 식품의 예로는 육류, 소시지, 빵, 초콜릿, 캔디류, 스낵류, 과자류, 피자, 라면, 기타 면류, 껌류, 아이스크림류를 포함한 낙농제품, 각종 수프, 음료수, 차, 드링크제, 알코올 음료 및 비타민 복합제 등이 있으며, 통상적인 의미에서의 건강식품을 모두 포함한다.There is no particular limitation on the kind of the food. Examples of foods to which the above substances can be added include dairy products including meat, sausage, bread, chocolate, candy, snacks, confectionery, pizza, ramen and other noodles, gums, ice cream, various soups, drinks, tea, Alcoholic beverages, and vitamin complexes, all of which include health foods in a conventional sense.

본 발명의 건강음료 조성물은 통상의 음료와 같이 여러 가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로서 포함할 수 있다. 상술한 천연 탄수화물은 포도당, 과당과 같은 모노사카라이드, 말토오스, 수크로오스와 같은 디사카라이드, 및 덱스트린, 사이클로덱스트린과 같은 천연 감미제나, 사카린, 아스파르탐과 같은 합성 감미제 등을 사용할 수 있다. 상기 천연 탄수화물의 비율은 본 발명의 조성물 100 ml 당 일반적으로 약 0.01 내지 10 g, 바람직하게는 약 0.01 내지 0.1 g 이다.The health beverage composition of the present invention may contain various flavors or natural carbohydrates as an additional ingredient such as ordinary beverages. The natural carbohydrates may be monosaccharides such as glucose and fructose, disaccharides such as maltose and sucrose, natural sweeteners such as dextrin and cyclodextrin, synthetic sweeteners such as saccharine and aspartame, and the like. The ratio of the natural carbohydrate is generally about 0.01 to 10 g, preferably about 0.01 to 0.1 g per 100 ml of the composition of the present invention.

상기 외에 본 발명의 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 전해질, 풍미제, 착색제, 펙트산 및 그의 염, 알긴산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알코올, 탄산 음료에 사용되는 탄산화제 등을 포함할 수 있다. 그 밖에 본 발명의 조성물은 천연 과일주스, 과일주스 음료 및 야채 음료의 제조를 위한 과육을 포함할 수 있다. 이러한 성분은 독립적으로 또는 조합하여 사용할 수 있다. 이러한 첨가제의 비율은 크게 중요하진 않지만 본 발명의 조성물 100 중량부 당 0.01 내지 0.1 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.
In addition to the above, the composition of the present invention may further contain various nutrients, vitamins, electrolytes, flavors, colorants, pectic acid and salts thereof, alginic acid and salts thereof, organic acids, protective colloid thickeners, pH adjusters, stabilizers, preservatives, glycerin, A carbonating agent used in a carbonated beverage, and the like. In addition, the composition of the present invention may comprise flesh for the production of natural fruit juices, fruit juice drinks and vegetable drinks. These components may be used independently or in combination. Although the ratio of such additives is not critical, it is generally selected in the range of 0.01 to 0.1 parts by weight per 100 parts by weight of the composition of the present invention.

이하 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예, 실험예 및 제제예를 제시한다. 그러나 하기 실시예, 실험예 및 제제예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 실시예, 실험예 및 제제예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
Hereinafter, preferred examples, experimental examples, and formulation examples are provided to facilitate understanding of the present invention. However, the following examples, experimental examples and preparation examples are provided only for the purpose of easier understanding of the present invention, and the present invention is not limited by the examples, experimental examples and preparation examples.

[실시예 1. 금은화 발효물의 제조][Example 1: preparation of fermented gangrenous]

1. 금은화 발효물의 제조1. Manufacture of Fermented Gold Eunhwa

금은화(Lonicerae Flos) 분말을 동국대학교 일산병원으로부터 제공받아 밀봉한 후, 암소에서 보관하면서 실험에 사용하였다. 제공받은 금은화 분말 30 g을 250 ml 비이커에 넣고 유산균용 MRS 배양액(Lactobacilli MRS broth) 150 ml을 첨가한 후, 실온(15 내지 20℃의 온도)에서 30분간 초음파처리(sonication)하였다. 진탕항온수조(shaking water bath)를 이용하여 70℃의 온도, 70 rpm의 유속 조건에서 3시간 동안 열수추출을 수행하였다. 수득된 금은화 열수추출물을 121℃의 온도에서 15분간 고압멸균(autoclave)시킨 후, 실온에서 충분히 방치하여 냉각시켰다. 식은 멸균된 금은화 열수추출물에 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum)을 2×107 CFU/ml의 농도로 접종하고 24시간 동안 37℃의 온도의 배양기에서 발효시켰다. 상기 발효물을 121℃의 온도에서 15분간 고압멸균시킨 다음, 3000 rpm의 유속으로 5분간 원심분리하여 분리된 상층액을 실험에 사용하였으며, 이하 "금은화 발효물"로 명명하였다. 상기 수득된 금은화 열수추출물을 "금은화 추출물"로 기재하여 하기 실험예에서 금은화 발효물의 비교대상으로 제공하였다.
Lonicerae Flos powder was supplied from Ilsan Hospital of Dongguk University and sealed and stored in a cow. 30 g of the gold germanium powder was placed in a 250 ml beaker and 150 ml of a MRS broth for lactic acid bacteria was added and sonication was performed at room temperature (15 to 20 ° C) for 30 minutes. Hot water extraction was carried out in a shaking water bath at a temperature of 70 ° C and a flow rate of 70 rpm for 3 hours. The obtained gingkochose hot-water extract was autoclaved at 121 ° C for 15 minutes under high pressure, and allowed to stand at room temperature for cooling. Lactobacillus plantarum was inoculated at a concentration of 2 × 10 7 CFU / ml in a sterilized ginger powdery extract and fermented in an incubator at 37 ° C. for 24 hours. The fermented product was autoclaved at 121 ° C for 15 minutes, centrifuged at a flow rate of 3000 rpm for 5 minutes, and the separated supernatant was used in the experiment. The obtained gingylum hot-water extract was referred to as "gingko ginger extract" and was provided as a comparative object of the gingko fermentation product in the following experimental examples.

[실험예 1. 금은화 발효물의 장점막 투과성 개선 효과 측정][Experimental Example 1: Measurement of improving effect on permeability of intestinal membrane of fermented gangrene]

본 발명에 따른 금은화 발효물의 장점막 투과성 개선 효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물에 대한 장점막 투과성 측정검사(Permeability test)를 수행하였다. 상기 장점막 투과성 측정검사는 TEER(Transepithelial Electrical Resistance) 측정검사, HRP(Horseradish peroxide) 투과성 측정검사 및 치밀간극연접단백질(tight junction protein) 측정검사로 나누어 하기와 같이 수행하였다.
In order to examine the effect of improving the permeability of intestinal germinated fermented product according to the present invention, the permeability test for the germinated fermented product prepared in Example 1 was performed. The measurement of permeability of the intestinal permeability was performed as follows: TEER (Transepithelial Electrical Resistance) measurement test, HRP (Horseradish peroxide) permeability measurement test, and tight junction protein measurement test.

1. 장점막 투과성이 증가된 HCT-116 세포 제작1. Production of HCT-116 cells with enhanced permeability

먼저, HCT-116 세포의 분화가 최대치가 되었을 때, 24-세포/웰 배양 삽입 플레이트(well culture insert plate)(apical)에 멕코이스 5A 배지(McCoys 5A medium), 10% FBS, 1% 페니실린 스트렙토마이신을 첨가한 500μl의 배양액을 사용하여 2×105 세포/웰의 농도로 넣어 배양하였다. 24-웰 수용기 플레이트(well receiver plate) (basolateral)에는 800μl의 배양액만을 넣고, 37℃의 온도, 5% CO2, 90%의 습도조건 하에서 24시간 동안 배양하였다. 맥파랜드 스케일(Macfarland Scale)에 상응하는 흡광도를 측정하여 계산한 유산균의 균수가 109 CFU/10μl가 되도록 각각의 균주 10μl를 상기 삽입 플레이트(insert plate)에 넣어 HCT-116 배양액에 첨가하고 24시간 동안 배양하였다. 세포가 잘 부착된 것을 확인한 다음, 장점막 투과성의 증가를 유발하기 위하여, 3% 덱스트란 황산나트륨염(dextran sodium sulphate)(DSS)을 첨가하여 다시 24시간 동안 배양하였다. 실험에서 금은화 추출물 및 금은화 발효물을 동일한 방법으로 HCT-116 세포의 배양시 각각 처리하고, DSS 첨가 후 재배양한 결과인 장점막 투과성 변화를 측정하였다.
First, when the differentiation of HCT-116 cells reached a maximum, 24-cell / well culture insert plates (apical) were inoculated with McCoys 5A medium, 10% FBS, 1% penicillin streptococci The cells were cultured at a concentration of 2 x 105 cells / well using 500 μl of the culture medium supplemented with the mycin. In a 24-well well receiver plate (basolateral), only 800 μl of culture medium was added and cultured for 24 hours at 37 ° C., 5% CO 2 , 90% humidity. 10 μl of each strain was added to the above insert plate and added to the culture medium of HCT-116 so that the number of lactic acid bacteria calculated by measuring the absorbance corresponding to the Macfarland scale was 10 9 CFU / 10 μl, Lt; / RTI > After confirming that the cells were well adhered, 3% dextran sodium sulphate (DSS) was added to induce an increase in permeability of the intestinal membrane, followed by culturing for another 24 hours. In the experiment, the Eucalyptus japonica extract and the Ganoderma lucidum fermented product were respectively treated at the time of culture of HCT-116 cells, and the change in the permeability of the intestinal membrane was measured after the addition of DSS.

2. 금은화 발효물의 TEER 측정검사2. TEER measurement test of fermentation product

본 발명의 금은화 발효물의 장점막 투과성 측정검사를 수행하기 위하여, 상기 1에서 제작된 점막 투과성이 증가된 HCT-116 세포에 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 처리하여 TEER(Transepithelial Electrical Resistance)값을 측정하였다. In order to carry out the measurement of the permeability measurement of the germanium fermentation product of the present invention, the germanium fermentation product prepared in Example 1 was treated with HCT-116 cells having increased mucosal permeability prepared in the above 1 to determine the TEER (Transepithelial Electrical Resistance) Were measured.

구체적으로는, 상기 HCT-116 세포를 정단 플레이트(apical plate)에 배양하고 DSS를 처리한 다음, 금은화 추출물 또는 금은화 발효물을 추가로 처리하고 4시간, 22시간후에 각각 Millicell-ERS 기계(Millipore, USA)를 이용하여 TEER 값을 측정하였다. TEER 측정 전극은 사용하기 전에 0점을 확인하였으며, 전극 끝이 긴쪽을 각 트렌스웰(transwell)의 안쪽에 있는 구멍에 넣어 기저외층 플레이트(basolateral plate)의 배지(media)에 잠기도록 하고, 전극의 짧은 쪽은 정단 플레이트(apical plate)의 배지에 닿을 정도로만 넣어 세포 단층막의 손상을 주의하였다. 실험군으로는 HCT-116 세포의 점막에 처리한 물질에 따라 DSS 처리군, DSS 및 금은화 추출물 처리군, DSS 및 금은화 발효물 처리군을 설정하였다. 대조군으로는 DSS 무처리군을 설정하여 DSS를 처리하지 않은 배지를 포함하는 웰의 단층(monolayer) TEER 값을 측정하였다. 대조군 및 실험군을 실험시작 직후, 4시간 경과 시점, 22시간 경과 시점에 각각의 TEER값을 측정하였다. 이때 측정된 모든 값은 동일하게 처리된 총 3개의 웰로부터 계산된 평균값을 의미한다. 측정된 대조군 및 각 실험군의 TEER 값으로부터 대조군을 100%로 하는 TEER 변화율을 계산하였다. 대조군 및 실험군의 TEER 변화율은 하기 수학식 1을 사용하여 대조군 대비 백분율(percentage of control)(%)로 계산되었으며, 이의 결과를 도 1 내지 3에 나타내었다.Specifically, the HCT-116 cells were cultured on an apical plate, treated with DSS, and further treated with Ganoderma lucidum extract or Ganoderma lucidum fermented. After 4 hours and 22 hours, the cells were treated with Millicol-ERS machine (Millipore, USA) was used to measure the TEER value. The TEER measurement electrode was checked for zero before use and the electrode tip was inserted into the hole in the inner side of each transwell to immerse it in the media of the basolateral plate, The short side was inserted only to reach the culture medium of the apical plate, and the damage of the monolayer was noted. As the experimental group, DSS-treated group, DSS-treated group, DSS-treated group and DSS-treated group were set according to the mucosal treatment of HCT-116 cells. As the control group, the DSS non-treated group was set to measure the monolayer TEER value of the wells containing the medium not treated with DSS. The TEER values of the control and experimental groups were measured immediately after the start of the experiment, 4 hours after the start of the experiment, and 22 hours after the start of the experiment. At this time, all the measured values mean the average value calculated from a total of 3 wells treated in the same manner. From the TEER values of the control group and each experimental group, the TEER change ratio was calculated to be 100% for the control group. The percent change in TEER of the control and experimental groups was calculated as a percentage of control (%) using the following equation (1), and the results are shown in FIGS.

Figure pat00001
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도 1 내지 3에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 금은화 발효물 처리군은 HCT-116 세포에 DSS만을 처리한 DSS 처리군에 비하여 높은 TEER 변화율을 나타내었다. 그중 실험시작 직후 측정한 수치를 제외한 나머지 4개의 시점에서의 TEER 값을 토대로 대조군 대비 백분율의 값을 계산한 결과, 각각 약물처리 2시간 후에 100.96%, 4시간 후에 95.58%, 20시간 후에 93.87%, 24시간 후에 90.5%로 측정되어, 대조군에 비하여 장점막 투과성이 유의하게 증가되었음을 확인하였다.As shown in FIGS. 1 to 3, the gold-silver fermentation treatment group of the present invention exhibited a higher TEER change ratio than the DSS-treated group treated with only DSS in HCT-116 cells. Based on the TEER values at four different timepoints except the measured values immediately after the start of the experiment, the percentage of the control group was calculated as 100.96% at 2 hours, 95.58% at 4 hours, 93.87% at 20 hours, And 90.5% after 24 hours, indicating that the permeability of the intestinal mucosa was significantly increased compared with the control.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 TEER 값을 유의하게 증가시키므로, 점막 투과성을 개선시키는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermentation product of the present invention significantly increases the TEER value, and therefore, the effect of improving the mucosal permeability is excellent.

3. 금은화 발효물의 HRP 투과성 측정3. HRP permeability measurement of fermented gold eu

본 발명의 금은화 발효물의 장점막 투과성 측정검사를 수행하기 위하여, 상기 1에서 제작된 HCT-116 세포에 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 처리하여 HRP(Horseradish peroxide) 투과성 측정검사를 하기와 같이 수행하였다. In order to perform the measurement of the permeability measurement of intestinal germinated fermented product of the present invention, the fermented ginseng fermented product prepared in Example 1 was subjected to HRP (Horseradish peroxide) permeability measurement test to the HCT-116 cells prepared in 1 above Respectively.

구체적으로는, 상기 HCT-116 세포에 DSS를 첨가하고 22시간 후, 24-웰 배양 삽입 플레이트(상단형)에 기존 배지를 제거한 다음, HRP(peroxide from Horseradish Type VI-A, Sigma) 60μl를 첨가하여 37℃의 온도, 5% CO2, 90%의 습도 조건하에서 1시간 동안 배양하였다. 이후 수용기 플레이트(외부기저형)의 배지에 10000배 희석한 배지액 100μl 및 HRP 기질용액인 TMB SOL(3,3'5,5'-테트라메틸벤지딘(tetramethylbenzidine)) 100μl를 넣고 혼합하여 10분간 실온에서 반응시켰다. HRP가 처리된 플레이트에 있는 용액의 색이 진하게 변하는 것이 확인되면, 반응중지 용액(Stop solution) (2M H2SO4) 100μl를 처리하여 반응을 종결시키고, UV ELISA 마이크로플레이트 리더(microplate reader)를 이용하여 450nm의 파장에서 흡광도를 측정하였다. 이때, HRP의 측정은 HRP의 활성도가 증가할수록 점막 투과성이 높아진 것이며, 수용기 플레이트의 농도가 증가했음을 의미한다. 또한, 측정된 모든 값은 동일하게 처리된 총 3개의 웰로부터 계산된 평균값을 의미한다. 측정된 대조군 및 각 실험군의 HRP 값으로부터 대조군을 100%로 하는 HRP 투과성 변화율을 계산하였다. 대조군 및 실험군의 HRP 투과성 변화율은 하기 수학식 2를 사용하여 대조군 대비 백분율(percentage of control)(%)로 계산되었으며, 이의 결과를 도 4에 나타내었다.Specifically, DSS was added to the HCT-116 cells. After 22 hours, the existing medium was removed from the 24-well culture insert plate (top type), and then 60 μl of HRP (peroxide from Horseradish Type VI-A, Sigma) And incubated for 1 hour at 37 ° C, 5% CO 2 , 90% humidity. Subsequently, 100 μl of the culture medium diluted 10000 times and 100 μl of HRP substrate solution TMB SOL (3,3'5,5'-tetramethylbenzidine) were added to the medium of the receptor plate (outer base type) Lt; / RTI > When the color of the solution on the HRP-treated plate is confirmed to change sharply, the reaction is terminated by treating 100 μl of Stop solution (2M H 2 SO 4 ), and a UV ELISA microplate reader Absorbance was measured at a wavelength of 450 nm. At this time, the measurement of HRP means that the mucosal permeability increases as the activity of HRP increases and the concentration of the receptor plate increases. Also, all the measured values mean an average value calculated from a total of three wells treated in the same manner. From the HRP values of the control group and each experimental group, the percent change in HRP permeability was calculated from the control group as 100%. The percent change in HRP permeability of the control and experimental groups was calculated as a percentage of control (%) relative to the control using the following equation (2), and the results are shown in FIG.

Figure pat00002
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도 4에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 금은화 발효물 처리군은 HRP 투과성 변화율이 174.01%로 측정되어 대조군에 비해 현저히 낮은 수치로 확인되어, 세포 점막 투과성을 현저히 감소시켰음을 확인하였다. As shown in FIG. 4, in the gold-silver fermentation treated group of the present invention, the rate of change of HRP permeability was measured to be 174.01%, which was significantly lower than that of the control group, and it was confirmed that the cell mucosal permeability was remarkably reduced.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 HRP 투과성을 현저히 감소시키므로, 세포 점막 투과성을 감소시키는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Thus, it can be seen that the ferrous sulfide fermented product of the present invention significantly reduces HRP permeability, and thus has an excellent effect of reducing cell mucosal permeability.

4. 금은화 발효물의 클라우딘-1 유전자 수준 저해활성 측정4. Measurement of Claudin-1 gene level inhibitory activity of fermented Ganoderma lucidum

본 발명의 금은화 발효물의 장점막 투과성 측정검사를 수행하기 위하여, 상기 1에서 제작된 HCT-116 세포에 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물 및 금은화(발효되지 않은)를 처리하여 세포의 치밀간극연접단백질(tight gap junction protein)인 클라우딘-1(claudin-1) 수준 변화를 하기와 같이 측정하였다. In order to perform the measurement of the permeability measurement of the germanium fermentation product of the present invention, HCT-116 cells prepared in the above 1 were treated with the germanium fermentation product and gold silver (nonfermented) prepared in Example 1, The level of the tight gap junction protein, claudin-1, was measured as follows.

구체적으로는, 상기 HCT-116 세포(1×107 세포/웰)에 상기 금은화 및 금은화 발효물을 0, 100, 200 또는 400 ㎍/ml의 농도로 각각 2시간 동안 처리한 다음, 0.2 ㎍/ml LPS를 6시간 동안 처리하였다. LPS로 처리한 HCT-116 세포의 총 RNA를 TRIsure reagent(Bioline,UK)를 사용하여 분리한 다음, cDNA를 AccuPower RT premix 키트(Bioneer, Daejeon, Korea)를 사용하여 합성하였다. 프라이머 서열(primers sequences)은 다음과 같다: 글리세르알데하이드(glyceraldehydes)-3-인산디하이드로게나아제(phosphate dehydrogenase) (GAPDH)는 "TGA TGA CAT CAA GAA GGT GGT GAA G 와 TCC TTG GAG GCC ATG TAG GCC AT(서열번호 1)"이고, 클라우딘-1은 "CTT CTA CAA ATG GAC CTC T와 AGC CTA CAC TAC CTC CTA A(서열번호 2)"이다. 연관된 유전자 발현의 정량물은 2-ΔCt수식(ΔCt=Ct-타켓 유전자 ― Ct-GAPDH)에 의해 표현된 후, 하우스키핑(housekeeping) 유전자인 GAPDH에 의해 정상화(normalize) 또는 정상수준으로 되었다. 이의 결과를 도 5에 나타내었다.Specifically, the HCT-116 cells (1 × 10 7 cells / well), respectively for 2 hours in the honeysuckle and honeysuckle concentration of the fermentation 0, 100, 200, or 400 ㎍ / ml in the following, 0.2 ㎍ / ml < / RTI > LPS for 6 hours. Total RNA of HCT-116 cells treated with LPS was isolated using TRIsure reagent (Bioline, UK) and cDNA was synthesized using AccuPower RT premix kit (Bioneer, Daejeon, Korea). The primer sequences are as follows: glyceraldehydes-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) is a "TGA TGA CAT CAA GAA GGT GGT GAA G and TCC TTG GAG GCC ATG TAG GCC AT (SEQ ID NO: 1) ", and claudin-1 is "CTT CTA CAA ATG GAC CTC T and AGC CTA CAC TAC CTC CTA A (SEQ ID NO: 2). The quantification of the associated gene expression was expressed by the 2-ΔCt equation (ΔCt = Ct-target gene-Ct-GAPDH) and then normalized or normalized by the housekeeping gene GAPDH. The results are shown in Fig.

도 5에 나타낸 바와 같이, 클라우딘-1 유전자는 LPS 처리에 의해 모든 처리군에서 정상군에 비해 유의하게 증가되었다. 본 발명의 금은화 발효물 처리군은, 특히 400 ug/ml의 농도에서, LPS 처리에 의한 클라우딘-1 유전자를 현저하게 감소시켰다.As shown in FIG. 5, the Claudin-1 gene was significantly increased in all treated groups by LPS treatment as compared with the normal group. The gold-silver fermentation treatment group of the present invention markedly reduced the clodin-1 gene by LPS treatment, especially at a concentration of 400 ug / ml.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 클라우딘-1 유전자를 현저히 저해하므로, 장내 투과성의 개선 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-eutectic fermented product of the present invention remarkably inhibits the claudin-1 gene, and thus the intestinal permeability is improved.

[실험예 2. 금은화 발효물의 항염증 효과 측정][Experimental Example 2: Measurement of anti-inflammatory effect of fermented gangrenous]

본 발명의 금은화 발효물에 대한 항염증 효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물에 대한 일산화질소(Nitric oxide; NO) 발생 억제활성을 측정하였다.
In order to examine the anti-inflammatory effect of the fermented product of the present invention, the activity of inhibiting nitric oxide (NO) production of the fermented product prepared in Example 1 was measured.

1. 세포의 준비 및 배양1. Cell preparation and culture

쥐의 대식세포주(Murine-leukemic monocyte-macrophage cell)인 RAW 264.7 세포를 한국 세포주 은행(Korea Cell Line Bank) (KCLB, Seoul, Korea)에서 구입하였으며, 10% 소태아혈청(fetal bovine serum; FBS)을 첨가한 DMDM 배지(Dulbecco's modified Eagle's medium, GIBCO, USA)에서 배양하였다. 상기 RAW 264.7 세포주를 10% 가열하여 비활성된(heat inactivated) 소태아혈청(Fetal bovine serum; FBS), 2mM L-글루타민, 100 U/ml 페니실린, 100μg/ml 스트렙토마이신을 첨가하여 혼합한 DMEM 배지에 옮겨 37℃의 온도, 5% CO2의 조건을 제공하면서 배양하였다.
RAW 264.7 cells, a murine leukemic monocyte-macrophage cell, were purchased from Korea Cell Line Bank (KCLB, Seoul, Korea) and cultured in 10% fetal bovine serum (FBS) (Dulbecco's modified Eagle's medium, GIBCO, USA). The RAW 264.7 cell line was heat-inactivated by heating to 10%, and DMEM medium supplemented with Fetal bovine serum (FBS), 2 mM L-glutamine, 100 U / ml penicillin, and 100 μg / ml streptomycin And the cells were incubated at 37 ° C. and 5% CO 2 .

2. 금은화 발효물의 NO 발생 억제활성 측정2. Measurement of NO generation inhibitory activity of fermented germanium

상기 1에서 준비된 대식세포주 RAW 264.7 세포에 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 처리하여 NO 발생 억제활성을 측정하였다. The germinated fermented product prepared in Example 1 was treated with the RAW 264.7 cells prepared in Example 1 to measure the inhibitory activity against NO production.

구체적으로는, 상기 RAW 264.7 세포를 24-웰 프레이트에 각 웰당 2×10의 농도로 배양하였다. 미발효 금은화 및 상기 금은화 발효물을 각각 0,100,200 또는 400 ㎍/ml의 농도로 2시간 동안 전처리한 다음, 0.2㎍/ml LPS를 24시간 동안 처리하였다. LPS로 처리된 RAW 264.7 세포의 배양액으로부터 상층액을 분리한 후, 그라쎄 염색 시스템 키트(Griess reagent system kit)(Promeag, WI, USA)를 이용하여 NO를 측정하였다. 이의 결과를 도 6에 나타내었다.Specifically, the RAW 264.7 cells were cultured in a 24-well plate at a concentration of 2 × 10 5 per well. The unfermented Eucalyptus and the above fermented Gingivalaceae were pretreated for 2 hours at a concentration of 0, 100, 200 or 400 / / ml, respectively, and treated with 0.2 / / ml LPS for 24 hours. The supernatant was separated from the culture of RAW 264.7 cells treated with LPS and NO was measured using a Griess reagent system kit (Promeag, Wis., USA). The results are shown in Fig.

도 6에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 금은화 발효물 처리군은 LPS에 의해 유도된 NO 발생을 농도의존적으로 억제하였다(p<0.01). As shown in FIG. 6, the gold-silver fermentation treatment group of the present invention inhibited LPS-induced NO production in a concentration-dependent manner (p < 0.01).

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 NO 발생 억제활성이 우수하므로, 염증 및 내독소 반응을 억제하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-eutectic fermented product of the present invention is excellent in the effect of suppressing inflammation and endotoxin reaction because of its excellent activity of inhibiting NO generation.

[실험예 3. 금은화 발효물의 체중 감소효과 측정][Experimental Example 3: Measurement of weight loss effect of fermented gangrenous]

본 발명의 금은화 발효물에 대한 체중 조절 효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 시간에 따른 체중 변화율을 측정하였다.
In order to examine the effect of controlling the weight of the fermented product of the present invention, the fermented product prepared in Example 1 was orally administered to experimental animals, and then the rate of change of body weight with time was measured.

1. 실험동물의 구입 및 사육1. Purchase and breeding of experimental animals

실험동물로 생후 8주령의 체중 200±20g인 외관상 건강한 수컷 쥐(rat) 42마리를 오리엔트 바이오(사) (Orient Bio, Seongnam-si, Korea)로부터 구입하였다. 구입한 실험동물은 온도 및 습도가 적절히 조절되는 동물 사육실에서 고형사료(Soyagreentec, Hwaseong-si. Korea)와 물을 자유롭게 급여하면서 일주일 동안 적응시켰다. 고형사료는 20% 단백질, 4.5% 지방, 63% 탄수화물로 구성되었다. 사육실의 환경은 온도 22±2℃, 상대습도 40%~60%로 유지되었다. 사육은 12시간을 주기로 일정하게 공급하여 명암이 엄격하게 유지되는 동물 사육실에서 수행되었으며, 시험기간 중 동물 실험실의 온·습도는 항온, 항습기에 의해 일정하게 유지되었다.Forty-two healthy male rats weighing 200 ± 20 g at 8 weeks of age were purchased from Orient Bio (Seongnam-si, Korea) as experimental animals. The purchased animals were adapted for one week while being freely fed with solid feed (Soyagreentec, Hwaseong-si. Korea) and water in an animal breeding room where temperature and humidity were controlled appropriately. Solid feeds consisted of 20% protein, 4.5% fat, and 63% carbohydrates. The environment of the breeding room was maintained at a temperature of 22 ± 2 ° C and a relative humidity of 40% ~ 60%. Breeding was carried out in the animal breeding room where the intensity was constantly maintained at a constant rate of 12 hours. During the test period, the temperature and humidity of the animal laboratory were constantly maintained by constant temperature and humidity.

적응기간을 거친 42마리의 수컷 쥐(rat)를 각 케이지당 3 내지 4마리씩 무작위로 선별한 다음, 다음과 같이 식이별로 그룹을 나누어 처리하였다: 정상식이군(Normal Group, 정상군 또는 N, n=7); 고지방식이군(High Fat Diet Group, 대조군 또는 HFD, n=7); 고지방식이+LPS 처리군(High Fat Diet+LPS Group 또는 음성대조군 n=7); 고지방식이+LPS+금은화 추출물 처리군(High Fat Diet+LPS+Lonicerae Flos Group, 금은화 추출물 처리군 또는 LF, n=7); 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군(High Fat Diet+LPS+fermented Lonicerae Flos, 금은화 발효물 처리군 또는 FLF, n=7); 및 고지방식이+LPS+초유처리군(High Fat Diet+LPS+Colostrum Group, 초유처리군 또는 Colostrum군, n=7);의 6개의 그룹(또는 처리군)으로 나누어 실험을 진행하였다.
Forty-two adult male rats were randomly selected from three to four rats per cage, and were divided into groups according to diet as follows: Normal group (normal group, normal group or N, n = 7); High Fat Diet Group (control or HFD, n = 7); High fat diet + LPS treated group (High Fat Diet + LPS Group or negative control group n = 7); High Fat Diet + LPS + Lonicerae Flos Group, Liliaceae extract treatment group or LF, n = 7); High fat Diet + LPS + fermented Lonicerae Flos, germinated fermented water treatment group or FLF, n = 7); (High fat diet + LPS + colostrum group, colostrum treatment group or Colostrum group, n = 7), and the high fat diet + LPS + colostrum group.

2. 실험동물의 체중 변화 측정2. Measurement of weight change in experimental animals

상기 1에 기재된 그룹별로 식이를 조절하면서 실험동물의 체중을 8주 동안 측정하였다. 상기 실험예 1에서 구입한 금은화 및 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물, 및 시장에서 구입한 초유를 5㎖ 주사기(syringe) (한국백신, Seoul, Korea) 및 경구투여용 관(oral zonde) (동서과학, Seongnam-si, Korea)을 이용하여 매일 일정한 시간에 실험동물에게 경구로 정량투여하였다. 실험동물의 체중은 8주 동안 매주 1회, 일정한 요일 및 시간에 측정되었으며, 전자저울(Sartorius, Goettingen, Germany)을 이용하여 측정하였다. 실험시작 전 측정한 체중와 8주후 측정한 체중간의 차이를 평균으로 나타내었다. 이의 결과를 도 7에 나타내었다.The body weight of the experimental animals was measured for 8 weeks while controlling the diet according to the group described in 1 above. The gilt silver obtained in Experimental Example 1 and the gilt-silver fermentation product prepared in Example 1 and the colostrum purchased in the market were placed in a 5 ml syringe (Korea Vaccine, Seoul, Korea) and an oral zonde (Dongseo Scientific, Seongnam-si, Korea) were orally administered to experimental animals at regular intervals on a daily basis. The body weights of the experimental animals were measured once a week for 8 weeks on a certain day and time, and were measured using an electronic balance (Sartorius, Goettingen, Germany). The difference between the weight measured before the start of the experiment and the weight measured after 8 weeks was expressed as an average. The results are shown in Fig.

도 7에 나타낸 바와 같이, 정상군은 평균과의 차이가 355±26.74g이었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 평균과의 차이가 456.71±18.49g으로, 정상군에 비해 8주간 체중이 증가되었음을 확인하였다(p<0.05). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 평균과의 차이가 359.43±26.11g로 측정되어, 음성대조군에 비해 체중이 감소되었음을 확인하였다.As shown in Fig. 7, the difference between the normal group and the average was 355 ± 26.74 g. The difference in mean + LPS treated group (negative control group) was 456.71 ± 18.49g, and the body weight was increased for 8 weeks compared to the normal group (p <0.05). In the case of the high fat diet of the present invention, the + LPS + germanium fermented product group had a difference of 359.43 ± 26.11 g from the mean, and it was confirmed that the body weight was reduced compared to the negative control group.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 체중감량 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in weight loss effect.

5. 통계분석5. Statistical Analysis

모든 통계분석(Statistical analysis)은 윈도우용 SPSS(Statistical package for social science,New York. United states) 소프트웨어 프로그램(version 17.0)을 사용하여 이루어졌으며, 각 처리군의 측정값을 평균±표준편차로 표시되었다. One Way ANOVA로 분석하였다. 각 군 간의 차이는 튜키(Tukey) HSD로 사후검정을 시행하였으며, 유의확률(p-value)이 0.05 이하일 경우 유의성을 인정하였다.
All statistical analyzes were performed using the SPSS software package (version 17.0, Statistical package for social science, New York, United states), and the measurements of each treatment group were expressed as mean ± SD . One Way ANOVA. The difference between the groups was postmarked by Tukey HSD and significance was recognized when the significance (p-value) was 0.05 or less.

[실험예 4. 금은화 발효물의 부고환 조직 지방무게 감소효과 측정][Experimental Example 4: Measurement of effect of reducing the weight of epididymal tissue fat of fermented gangrenosum]

본 발명의 금은화 발효물에 대한 부고환 조직 지방무게 감소효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 시간에 따른 부고환 주변조직 지방무게 변화를 측정하였다.
To investigate the effect of reducing the epididymal tissue fat weight of the fermented product of the present invention by oral administration to the experimental animals, the change in the fat mass of the epididymal peripheral tissues was measured over time .

1. 시료 및 조직의 채취1. Sampling of samples and tissues

상기 실험예 3에서 8주간의 실험기간이 종료된 실험동물으로부터 시료 및 조직을 채취하였다. 실험종료후, 6시간 동안 절식시키고, 대변 및 소변 샘플을 채취한 후, 66 ㎎/㎖ 락투로오스(lactulose) 및 50 ㎎/㎖ 만니톨(mannitol)이 포함된 용액 1㎖를 투여하였다. LPS를 주입(0.75㎎/㎏)시키고, 18시간 후, 다시 대변 및 소변을 채취하였다. 이후, 마취시키고, 복부 정중선을 따라 개복한 다음, 주사기를 이용하여 심장으로부터 필요한 혈액을 채혈하였다. 채혈한 후 부고환 지방 및 신장 지방을 적출하였으며, 적출한 각 장기를 식염수에 수차례 세척하여 피를 제거하고 물기를 제거한 다음, 10% 포름알데하이드(formaldehyde)에 넣어 보관하였다.
In Experimental Example 3, samples and tissues were collected from experimental animals whose experimental period of 8 weeks was completed. After the completion of the experiment, the stool was fasted for 6 hours, and a feces and a urine sample were collected. Then, 1 ml of a solution containing 66 mg / ml of lactulose and 50 mg / ml of mannitol was administered. LPS was injected (0.75 mg / kg), and after 18 hours, feces and urine were collected again. Thereafter, anesthesia was performed, followed by laparotomy along the abdominal midline, and blood was drawn from the heart using a syringe. After collecting blood, epididymal fat and kidney fat were extracted. Each organs were washed several times in saline to remove blood, remove water, and stored in formaldehyde (10%).

2. 부고환 주변조직 지방의 무게 측정2. Measurement of tissue fat around the epididymis

상기 1에서 수득된 부고환 지방의 무게를 측정하였다. 측정된 부고환 지방의 무게는 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다. 이의 결과를 도 8에 나타내었다.The weight of epididymal fat obtained in 1 above was measured. The weight of the measured epididymal fat was statistically analyzed by the same method as described in Experimental Example 1 above. The results are shown in Fig.

도 8에 나타낸 바와 같이, 부고환 주변조직 지방의 무게 변화율은 정상군이 5.38±0.87g으로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 15.36±2.91g으로 확인되어, 상기 정상군에 비해 부고환 조직의 지방무게가 증가되었음을 확인하였다(p<0.05). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 8.96±1.37g로 확인되어, 상기 음성대조군에 비해 부고환 조직의 지방무게가 감소된 것을 확인하였다. As shown in FIG. 8, the weight change ratio of the epididymal surrounding tissue fat was 5.38 ± 0.87 g in the normal group. The lipid weight of the epididymal tissues was higher than that of the normal group (p <0.05), indicating that the high fat diet + LPS treatment group (negative control group) was 15.36 ± 2.91g. It was confirmed that the high fat diet of the present invention was 8.96 ± 1.37 g in the + LPS + fermented germinated fermented food group, and the fat weight of the epididymal tissues was reduced compared to the negative control group.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 부고환 조직의 지방을 감소시키는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in reducing fat of epididymal tissues.

[실험예 5. 금은화 발효물의 신장 조직 지방무게 감소효과 측정][Experimental Example 5: Measurement of weight reduction effect of kidney tissue fat of fermented gangrenous]

본 발명의 금은화 발효물에 대한 신장 조직 지방무게 감소효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 시간에 따른 신장 주변조직 지방무게 변화를 측정하였다. In order to examine the effect of reducing the weight of kidney tissue fat in the fermented product of the present invention, the fermented product prepared in Example 1 was orally administered to an experimental animal, and the change in the weight of the fat around the kidney was measured .

상기 실험예 4의 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 신장 조직을 적출한 후, 신장 주변조직의 지방의 무게를 측정하였다. 측정된 신장 주변조직 지방의 무게는 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다. 이의 결과를 도 9에 나타내었다. After extracting the kidney tissue in the same manner as described in 1 of Experimental Example 4, the fat weight of the tissue around the kidney was measured. The weight of the measured tissue fat around the kidney was analyzed by the same method as described in Experimental Example 1 above. The results are shown in Fig.

도 9에 나타낸 바와 같이, 신장 주변조직 지방의 무게 변화율은 정상군이 6.62±1.09g으로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군은 25.99±2.61 g으로 확인되어, 정상군에 비해 신장 조직의 지방무게가 증가되었음을 확인하였다(p<0.05). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 12.72±3.74 g로 확인되어, 상기 음성대조군에 비해 신장 조직의 지방무게가 감소된 것을 확인하였다(p<0.001). 또한, 상기 고지방식이+LPS+발효된 금은화 처리군은 고지방식이군에 비해 신장 조직의 지방무게가 감소된 것을 확인되었다(p<0.05).As shown in Fig. 9, the weight change ratio of the tissue fat around the kidney was 6.62 ± 1.09 g in the normal group. The high fat diet + LPS treatment group was 25.99 ± 2.61 g, indicating that the fat weight of kidney tissue was increased compared to the normal group (p <0.05). The high fat diet of the present invention was confirmed to be 12.72 ± 3.74 g in the + LPS + germanium fermented water treatment group, indicating that the fat weight of kidney tissues was decreased compared to the negative control group (p <0.001). In addition, it was confirmed that the fat weight of the kidney tissue was decreased in the high fat diet + LPS + fermented group (p <0.05) compared to the high fat diet group.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 신장 조직의 지방을 감소하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in reducing the fat of the kidney tissue.

[실험예 6. 금은화 발효물의 혈청 대사성 지표물질 활성 조절][Experimental Example 6 Control of Serum Metabolic Indicator Activity of Fermented Gold Ears]

본 발명에 따른 금은화 발효물의 혈청 대사성 지표물질(Serum metabolic markers)의 활성을 조절하는 효과에 관해 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 그룹별 혈청 대사성 지표물질 활성을 측정하였다. 상기 대사성 지표물질은 총 콜레스테롤(Total cholesterol), 포도당(glucose), 중성지방(Triglyceride), HDL-콜레스테롤(HDL-cholesterol) 및 GOT으로, 아산제약(Seoul, Korea)의 분석용 키트(AM202-k, AM-2011C, AM-101 등)를 사용하여 비색 정량법을 통해 측정되었다. 측정된 모든 값은 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다.
In order to examine the effect of controlling the activity of serum metabolic markers of the gingkoferment fermented product according to the present invention, the fermented gingivalae prepared in Example 1 was orally administered to experimental animals, The metabolic indicator activity was measured. The metabolic indicator may be a total cholesterol, glucose, triglyceride, HDL-cholesterol and GOT, as well as assay kits (AM202-k , AM-2011C, AM-101, etc.). All the measured values were statistically analyzed in the same manner as described in Experimental Example 1 above.

1. 혈청의 수득1. Obtaining of serum

상기 실험예 4의 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 마취된 쥐의 심장에서 주사기를 이용하여 혈액을 채혈하였다. 채혈된 혈액은 4℃의 온도에서 15분간 1000g으로 원심분리 (centrifuge)하여 혈청을 수득한 다음, -70℃의 온도로 유지되는 냉각기(refrigerator)에 넣고, 분석시까지 보관하였다.
Blood was collected from the heart of anesthetized rats using a syringe in the same manner as described in 1 of Experimental Example 4. The collected blood was centrifuged at 1000 g for 15 minutes at a temperature of 4 째 C to obtain serum, and then put in a refrigerator maintained at a temperature of -70 째 C and stored until analysis.

2. 혈청 대사성 지표물질 측정2. Measurement of serum metabolic indicator

가. 총 콜레스테롤(Total cholesterol) 측정end. Total cholesterol measurement

상기 1에 기재된 바와 같이, 보관중인 혈청의 총 콜레스테롤 함량 변화를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 10에 나타내었다.As described in the above 1, the change in the total cholesterol content of the stored serum was measured using the assay kit, and the results are shown in FIG.

도 10에 나타낸 바와 같이, 혈청에서의 총 콜레스테롤 변화율은 정상군이 48.42±7.93 ㎎/㎗으로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 90.49±16.81 ㎎/㎗으로 확인되어, 정상군에 비해 총 콜레스테롤 함량이 증가되었음을 확인하였다(p<0.05). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 56.37±8.45 ㎎/㎗으로 확인되어, 상기 음성대조군에 비해 혈청 총 콜레스테롤 함량이 감소되었음을 확인하였다(p<0.001).
As shown in FIG. 10, the change rate of total cholesterol in the serum was 48.42 ± 7.93 mg / dl in the normal group. The high - fat diet + LPS - treated group (negative control) was 90.49 ± 16.81 ㎎ / ㎗ and the total cholesterol level was increased compared to the normal group (p <0.05). The high fat diet of the present invention was found to be 56.37 ± 8.45 mg / dL in the + LPS + fermented germinated fermented milk group, indicating that the serum total cholesterol content was decreased compared to the negative control group (p <0.001).

나. 포도당(glucose) 함량 측정I. Measurement of glucose content

상기 1에 기재된 바와 같이, 보관중인 혈청의 포도당 함량 변화를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 11에 나타내었다.As described in the above 1, the change in glucose content of the stored serum was measured using the assay kit, and the results are shown in FIG.

도 11에 나타낸 바와 같이, 혈청에서의 포도당 함량 변화율은 정상군이 244.22±22.13 ㎎/㎗로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 214.05±33.30 ㎎/㎗로 확인되었다. 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 176.20±51.68 ㎎/㎗로 확인되어, 상기 정상군 또는 음성대조군에 비해 포도당 함량이 감소되었음을 확인하였다.
As shown in Fig. 11, the change rate of glucose content in the serum was found to be 244.22 ± 22.13 mg / dl in the normal group. The high - fat diet + LPS treatment group (negative control group) was 214.05 ± 33.30 ㎎ / ㎗. The high - fat diet of the present invention was confirmed to be 176.20 ± 51.68 mg / dL in the + LPS + fermented ginseng fermented food group, and it was confirmed that the glucose content was reduced compared to the normal or negative control group.

다. 중성지방(Triglyceride) 함량 측정All. Measurement of Triglyceride Content

상기 1에 기재된 바와 같이, 보관중인 혈청의 중성지방 함량 변화를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 12에 나타내었다.As described in the above 1, the change in the triglyceride content of the stored serum was measured using the above assay kit, and the results are shown in FIG.

도 12에 나타낸 바와 같이, 혈청에서의 중성지방의 함량 변화율은 정상군이 26.53±6.86 ㎎/㎗로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 59.21±12.20 ㎎/㎗로 확인되었다. 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 43.24±7.67 ㎎/㎗로 확인되어, 상기 음성대조군에 비해 중성지방 함량이 감소되었음을 확인하였다.
As shown in Fig. 12, the change rate of the content of triglyceride in the serum was found to be 26.53 ± 6.86 mg / dl in the normal group. The high - fat diet + LPS treatment group (negative control) was 59.21 ± 12.20 ㎎ / ㎗. The high fat diet of the present invention was confirmed to be 43.24 ± 7.67 mg / dL in the + LPS + fermented germinated fermented food group, and it was confirmed that the neutral fat content was reduced compared to the negative control group.

라. HDL-콜레스테롤(HDL-cholesterol) 함량 측정la. Determination of HDL-cholesterol content

상기 1에 기재된 바와 같이, 보관중인 혈청의 HDL-콜레스테롤 함량 변화를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 13에 나타내었다.As described in the above 1, the change in the HDL-cholesterol content of the stored serum was measured using the above assay kit, and the results are shown in FIG.

도 13에 나타낸 바와 같이, 혈청에서의 HDL-콜레스테롤 함량 변화율은 정상군이 34.80±7.10 ㎎/㎗으로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 21.55±4.44 ㎎/㎗으로 확인되어, 정상군에 비해 HDL-콜레스테롤 함량이 감소되었음을 확인하였다(p<0.05). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 26.36±6.05 ㎎/㎗로 확인되어, 상기 음성대조군에 비해 증가하였음을 확인하였다.
As shown in Fig. 13, the change rate of the HDL-cholesterol content in the serum was 34.80 ± 7.10 mg / dl in the normal group. The HDL-cholesterol content of the control group was 21.55 ± 4.44 ㎎ / ㎗ compared to the control group (p <0.05). The high fat diet of the present invention was confirmed to be 26.36 ± 6.05 mg / dL in the + LPS + fermented ginseng fermented food group, which was higher than that of the negative control group.

마. GOT 함량 측정hemp. GOT content measurement

상기 1에 기재된 바와 같이, 보관중인 혈청의 GOT 함량 변화를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 14에 나타내었다.As described in the above 1, the change in the GOT content of the stored serum was measured using the above assay kit, and the results are shown in FIG.

도 14에 나타낸 바와 같이, 혈청에서의 GOT 함량 변화율은 정상군이 23.59±1.34 ㎎/㎗으로 확인되었다. 고지방식이+LPS 처리군(음성대조군)은 124.35±63.38 ㎎/㎗으로 확인되어, 정상군에 비해 GOT 함량이 감소되었음을 확인하였다(p<0.001). 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 10.55±1.93 ㎎/㎗로 확인되어(p<0.001), 상기 정상군 및 음성대조군에 비해 현저히 감소되었음을 확인하였다.
As shown in FIG. 14, the change rate of the GOT content in the serum was 23.59 ± 1.34 mg / dl in the normal group. The high - fat diet + LPS treatment group (negative control group) was 124.35 ± 63.38 mg / dl, and the GOT content was decreased compared to the normal group (p <0.001). It was confirmed that the high fat diet of the present invention was confirmed to be 10.55 ± 1.93 ㎎ / ㎗ (p <0.001) in the + LPS + fermented germinated fermented milk group, compared with the normal group and the negative control group.

3. 결론3. Conclusion

본 발명의 금은화 발효물은 혈청 대사성 지표물질의 활성을 조절하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
It can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of controlling the activity of the serum metabolic indicator.

[실험예 7. 금은화 발효물의 혈청 염증 지표물질 활성 조절][Experimental Example 7: Regulation of serum inflammation index substance activity of fermented gold europaea]

본 발명에 따른 금은화 발효물의 혈청 염증 지표물질의 활성을 조절하는 효과에 관해 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 그룹별 혈청 염증 지표물질의 활성을 측정하였다. 상기 염증 지표물질은 TNF-α 및 CRP로, BD 바이오사이언스(사) (Biosciences. San Diego, CA, USA)의 키트(BD ELISA Rat TNF-α & CRP kit)를 사용하여 측정하였다. 상기 실험예 6의 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 혈청을 수득하여 실험에 사용하였으며, 측정된 모든 값은 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다.
In order to examine the effect of controlling the activity of the serum inflammation index substance of the gingkoferment fermented product according to the present invention, the fermented gingivalae prepared in Example 1 was orally administered to experimental animals, and then the activity of the serum inflammation indicator substance Were measured. The inflammatory index substance was measured using a kit (BD ELISA Rat TNF-α & CRP kit) of BD Biosciences (San Diego, CA, USA) as TNF-α and CRP. Serum was obtained and used in the experiment in the same manner as described in Experimental Example 6-1. All the measured values were statistically analyzed in the same manner as described in Experimental Example 1 above.

1. TNF-α 농도 측정1. Measurement of TNF-α concentration

혈청내 TNF-α 농도를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 15에 나타내었다.The concentration of TNF-α in the serum was measured using the above assay kit, and the results are shown in FIG.

도 15에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 음성대조군인 고지방식이+LPS 처리군에 비해 TNF-α가 유의하게 감소되었음을 확인하였다(p<0.05).
As shown in FIG. 15, the high-fat diet of the present invention showed a significant decrease in TNF-α compared with the + LPS-treated diet (p <0.05).

2. CRP 농도 측정2. Measurement of CRP concentration

혈청내 CRP의 농도를 상기 분석용 키트를 이용하여 측정하였으며, 이의 결과를 도 16에 나타내었다. The concentration of CRP in the serum was measured using the above assay kit, and the results are shown in FIG.

도 16에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 음성대조군인 고지방식이+LPS 처리군에 비해 CRP의 농도가 유의하게 감소되었음을 확인하였다(p<0.05).
As shown in FIG. 16, it was confirmed that the high-fat diet system of the present invention had a significantly decreased CRP concentration compared to the + LPS-treated diet (p <0.05) in the + LPS + germanium fermentation treatment group.

3. 결론3. Conclusion

상기 결과에 의해, 본 발명의 금은화 발효물은 염증 지표물질의 활성을 조절하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
From the above results, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in controlling the activity of the inflammatory indicator substance.

[실험예 8. Q-PCR을 통한 장내 유용 미생물 분포 측정][Experimental example 8] Measurement of useful microorganism distribution in the intestine through Q-PCR [

본 발명의 금은화 발효물에 의한 장내 유용 미생물 분포 변화를 알아보기 위하여, 비만 관련 장내부 균총, 즉 비피도박테리아(Bifidobacteria spp.), 락토바실러스(Lactobacillus spp.), 박테리오데트(Bacteriodetes) 및 피르미쿠테스(Firmicutes)의 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응(real time-PCR)으로 정량화하여 분석하였다.
In order to investigate the changes in the distribution of useful microorganisms in the intestinal fermentation product according to the present invention, the intestinal microflora of the intestine-related intestinal flora, namely, Bifidobacteria spp., Lactobacillus spp., Bacteriodetes, The relative DNA levels of Firmicutes were quantified by real-time PCR.

1. 시료의 수득1. Obtaining samples

비만 관련 장내부 균총 시료를 수득하기 위해, 상기 실험예 4의 1에서 채취 및 보관중이던 실험종료후 6시간 및 18시간 후의 대변 샘플을 사용하였으며, AccuPrep stool DNA 추출 키트(extraction kit) (Bioneer, Daejeon, Korea)를 이용하여 쥐 분변으로부터 게놈 DNA를 추출하였다.
In order to obtain an intestinal microflora sample of the obesity-related intestine, fecal samples at 6 hours and 18 hours after the end of the experiment, which had been collected and stored in Experimental Example 1, were used, and an AccuPrep stool DNA extraction kit (Bioneer, Daejeon , Korea) were used to extract genomic DNA from rat feces.

2. 비만 관련 장내부 균총의 Q-PCR 측정2. Q-PCR measurement of internal microflora in obesity-related intestine

가. 비피도박테리아end. Bifidobacterium

상기 1을 통해 수득된 비피도박테리아의 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응으로 정량화하였으며, 이의 결과를 도 17에 나타내었다.The relative DNA levels of the Bifidobacterium bacteria obtained in the above 1 were quantified by real-time PCR, and the results are shown in FIG.

도 17에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 고지방식이군 및 고지방식이+LPS 처리군에 비해 비피도박테리아의 상대적 DNA 수준을 변화시키는 효과가 있음을 확인하였다.
As shown in FIG. 17, it was confirmed that the high-fat diet system of the present invention had an effect of changing the relative DNA level of Bifidobacterium bacteria in the + LPS + germanium fermentation treatment group compared to the high fat diet system and high fat diet system + LPS treatment group .

나. 락토바실러스I. Lactobacillus

상기 1을 통해 수득된 락토바실러스의 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응으로 정량화하였으며, 이의 결과를 도 18에 나타내었다.The relative DNA level of the lactobacillus obtained in 1 above was quantified by real-time PCR, and the results are shown in FIG.

도 18에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 고지방식이군 및 고지방식이+LPS 처리군에 비해 락토바실러스의 상대적 DNA 수준을 변화시키는 효과가 있음을 확인하였다.
As shown in FIG. 18, it was confirmed that the high-fat diet system of the present invention had an effect of changing the relative DNA level of Lactobacillus in the high fat diet system and the high fat diet system compared to the + LPS-treated group.

다. 박테리오데트All. Bacteriodet

상기 1을 통해 수득된 박테리오데트의 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응으로 정량화하였으며, 이의 결과를 도 19에 나타내었다.The relative DNA level of the bacteriodetes obtained from 1 above was quantified by real-time PCR, and the results are shown in FIG.

도 19에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 음성대조군인 고지방식이+LPS 처리군에 비해 락토바실러스의 상대적 DNA 수준을 증가시켰음을 확인하였다(p<0.05).
As shown in FIG. 19, the high-fat diet system of the present invention, + LPS + germanium fermentation treatment group, showed a higher relative level of Lactobacillus than the + LPS treatment group (P <0.05), respectively.

라. 피르미쿠테스la. Pirimikutes

상기 1을 통해 수득된 피르미쿠테스의 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응으로 정량화하였으며, 이의 결과를 도 20에 나타내었다.The relative DNA levels of the pyrimucestes obtained in 1 above were quantified by real-time PCR, and the results are shown in FIG.

도 20에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 음성대조군인 고지방식이+LPS 처리군에 비해 피르미쿠테스의 상대적 DNA 수준을 증가시켰음을 확인하였다(p<0.05).
As shown in FIG. 20, it was confirmed that the high-fat diet system of the present invention increased the relative DNA level of pirimicutes in the + LPS + germanium fermentation treatment group compared to the + LPS treatment group (p <0.05 ).

마. 박테리오데트/피르미쿠테스의 비율hemp. Percentage of bacteriodet / pyromycetes

상기 1을 통해 수득된 박테리오데트/피르미쿠테스의 비율에 대한 상대적 DNA 수준을 실시간 중합효소연쇄반응으로 정량화하였으며, 이의 결과를 도 21에 나타내었다.The relative DNA level relative to the proportion of bacteriodetin / pyrimictes obtained in 1 above was quantified by real-time PCR, and the results are shown in FIG.

도 21에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 고지방식이+LPS+금은화 발효물 처리군은 음성대조군인 고지방식이+LPS 처리군에 비해 박테리오데트/피르미쿠테스의 비율을 증가시켰음을 확인하였다(p<0.05).
As shown in FIG. 21, it was confirmed that the high-fat diet method of the present invention increased the ratio of bacteriodet / pyromycetes compared to the + LPS-treated diet (p < 0.05).

3. 결론3. Conclusion

상기 결과에 의해, 본 발명의 금은화 발효물은 장내 유용 미생물의 수준을 조절하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
From the above results, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of controlling the level of useful microorganisms in intestines.

[실험예 9. 금은화 발효물의 간조직 지방무게 감소효과 측정][Experimental Example 9: Measurement of liver fat weight reduction effect of fermented gangrenosum]

본 발명의 금은화 발효물에 의한 간조직 지방무게 감소효과를 알아보기 위하여, 상기 실시예 1에서 제조된 금은화 발효물을 실험동물에게 경구투여한 후, 시간에 따른 간조직 지방무게 변화를 측정하였다. 간조직 지방무게 측정을 위해, 오일레드 0 염색을 수행하였으며, 측정된 모든 값은 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다.In order to examine the effect of the fermentation product of the present invention on the weight loss of liver tissue fat, the fermented product prepared in Example 1 was orally administered to an experimental animal, and the change of liver fat weight was measured with time. For measurement of liver tissue fat, Oil Red 0 staining was performed, and all values measured were statistically analyzed in the same manner as described in Experimental Example 1 above.

상기 실험예 4의 1에서 적출하여 보관중이던 냉동된 간조직을 실리콘으로 코팅된 슬라이드에 마운트된 상태에서 오일 레드 0 용액(oil red O solution, Cayman chemical, USA)으로 60℃의 온도에서 10분간, 메이어의 헤마톡실린 용액(Mayer's hamatoxylin solution)으로 1분간 염색하였다. 모든 슬라이드는 올림푸스 BX61 현미경(Olympus BX61 microscope, Tokyo, Japan)으로 관찰되었으며, 올림푸스 DP70 디지털카메라(Olympus DP70 digital camera, Tokyo, Japan)를 이용하여 각 슬라이드를 촬영하였다. 이미지 J 소프트웨어(Image J software, Bethesda, MD, USA)를 이용하여 붉게 표시된 지방조직의 면적을 계산하였으며, 이의 결과를 도 22에 나타내었다.The frozen liver tissues, which had been extracted and stored in Experimental Example 1, were mounted on a silicon-coated slide at a temperature of 60 ° C for 10 minutes with an oil red O solution (Cayman chemical, USA) Mayer ' s hamatoxylin solution for 1 minute. All slides were observed with an Olympus BX61 microscope (Tokyo, Japan) and each slide was photographed using an Olympus DP70 digital camera (Olympus DP70 digital camera, Tokyo, Japan). The area of reddish fat tissue was calculated using Image J software (Image J software, Bethesda, Md., USA) and the results are shown in FIG.

도 22에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 금은화 발효물 처리군은 지방세포의 분화가 억제되었음을 확인하였다. As shown in FIG. 22, the gold-silver fermentation treatment group of the present invention was confirmed to inhibit the differentiation of adipocytes.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 간조직에서 지방세포의 분화를 억제하여, 간조직의 지방을 감소하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of inhibiting the differentiation of adipocytes in liver tissue and reducing the fat of liver tissue.

[실험예 10. 금은화 발효물의 장내 미생물 조정 효과][Experimental example 10: Effect of fermentation of gingkoferment on intestinal microorganism]

본 발명의 금은화 발효물에 의한 장내 미생물 조정 효과를 알아보기 위하여, PCR-DGGE(Denaturing Gradient Gel Electrophoresis)를 이용한 장내 미생물의 군간 정성분석을 수행하였다. 측정된 모든 값은 상기 실험예 1에 기재된 방법과 동일한 방법으로 통계분석되었다.In order to examine the intestinal microbial control effect of the gold-silver fermentation product of the present invention, intramuscular qualitative analysis of intestinal microorganisms was performed using PCR-DGGE (Denaturing Gradient Gel Electrophoresis). All the measured values were statistically analyzed in the same manner as described in Experimental Example 1 above.

구체적으로는, 상기 실험예 4의 1에서 채취 및 보관중이던 실험종료후 6시간 및 18시간 후의 대변 및 소변 샘플을 사용하였으며, AccuPrep stool DNA 추출 키트(extraction kit) (Bioneer, Daejeon, Korea)를 이용하여 쥐 분변으로부터 게놈 DNA를 추출하였다. 이후, 보편적인 세균성 프라이머(universal bacterial primer) (5'→3': AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG and AAG GAG GTG ATC CAG CC, 서열번호 3)를 이용하여 16s rRNA 유전자에 대한 중합효소연쇄반응(PCR)을 수행하였다. 이 PCR 엠플리콘(PCR amplicon)을 주형(template)으로 하여, 이중 중합효소연쇄반응(nest PCR)을 수행하였다. 이중 중합효소연쇄반응에 프라이머는 341fGC(5'-CGC CCG CCG CGC GCG GCG GGC GGG GCG GGG GCA CGG GGG GCC TAC GGG AGG CAG CAG-3', 서열번호 4) 및 518r(5'-ATT ACC GCG GCT GCT GG-3', 서열번호 5)이다. 이중 중합효소연쇄반응 엠플리콘(Nest PCR amplicon) 시료를 DcodeTM System(BIO-RAD, USA)를 이용하여 60℃의 온도, 80V의 전압에서 15시간 동안 전기영동(40% 아크릴아마이드/반복수(Acrylamide/bis) (37.5: 1)). 에티디움브로마이드(Ethidium Bromide; EtBr)로 15분간 염색한 후, UV 조사(illumination) (LAS-3000; Fuji photo film, Tokyo, Japan)하에서 겔의 사진을 촬영하였다. 촬영된 DGGE 패턴을 바이오너머릭스 3.0 소프트웨어(Bionumerics 3.0 software, Applied Maths, Sint-Martens-Latem, Belgium)를 이용하여 분석하였다. 이의 결과를 도 23에 나타내었다. Specifically, faecal and urine samples were collected 6 hours and 18 hours after the end of the experiment, which was being collected and stored in Experimental Example 1, and an AccuPrep stool DNA extraction kit (Bioneer, Daejeon, Korea) was used To extract genomic DNA from rat feces. Thereafter, PCR was performed using a universal bacterial primer (5 '→ 3': AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG and AAG GAG GTG ATC CAG CC, SEQ ID NO: 3) PCR) was performed. This PCR amplicon was used as a template to perform nested PCR (nest PCR). The primers used for the double polymerase chain reaction were 341 fGC (5'-CGC CCG CCG CGC GCG GCG GGC GGG GCG GGG GCA CGG GGG GCC TAC GGG AGG CAG CAG-3 ', SEQ ID NO: 4) and 518r GCT GG-3 ', SEQ ID NO: 5). The Nest PCR amplicon samples were electrophoresed at 40 ° C for 15 hours at a temperature of 60 ° C and a voltage of 80V using a Dcode ™ System (BIO-RAD, USA) (40% acrylamide / / bis) (37.5: 1)). After staining with Ethidium Bromide (EtBr) for 15 minutes, the gel was photographed under UV illumination (LAS-3000; Fuji photo film, Tokyo, Japan). The photographed DGGE patterns were analyzed using Bionumerics 3.0 software (Applied Maths, Sint-Martens-Latem, Belgium). The results are shown in Fig.

도 23에 나타낸 바와 같이, PCR-DGGE를 이용하여 장내 군간 미생물의 패턴 비교한 결과, 군별로 동물들의 분변내에서 장내 미생물이 군집화되었음을 확인하였다. As shown in FIG. 23, a pattern comparison of intestinal microorganisms using PCR-DGGE revealed that intestinal microorganisms were clustered in the feces of animals in each group.

따라서, 본 발명의 금은화 발효물은 장내 군간 미생물 조정 효과가 우수함을 알 수 있다.
Therefore, it can be seen that the gold-silver fermented product of the present invention is excellent in the effect of regulating intestinal microflora.

이하 본 발명의 금은화 발효물을 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물 및 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물의 제제예를 설명하나, 본 발명을 한정하고자 함이 아닌 단지 구체적으로 설명하고자 함이다.
Hereinafter, a pharmaceutical composition for prevention or treatment of obesity, endotoxemia or metabolic diseases containing the gold-silver fermentation product of the present invention, and a food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxemia or metabolic diseases are described, Rather than to limit the invention.

[제제예 1. 약학적 제제의 제조] [Preparation Example 1: Preparation of pharmaceutical preparation]

1. 산제의 제조 1. Manufacturing of powder

금은화 발효물 20 mlFermented gangrenous 20 ml

유당 100 mgLactose 100 mg

탈크 10 mgTalc 10 mg

상기의 성분들을 혼합하고 기밀포에 충진하여 산제를 제조한다.
The above components are mixed and filled in airtight bags to prepare powders.

2. 정제의 제조2. Preparation of tablets

금은화 발효물 10 ml10 ml of fermented silver

옥수수전분 100 mgCorn starch 100 mg

유당 100 mgLactose 100 mg

스테아린산 마그네슘 2 mgMagnesium stearate 2 mg

상기의 성분들을 혼합한 후 통상의 정제의 제조방법에 따라서 타정하여 정제를 제조한다.
After mixing the above components, tablets are prepared by tableting according to the usual preparation method of tablets.

3. 캡슐제의 제조3. Preparation of capsules

금은화 발효물 10 ml10 ml of fermented silver

결정성 셀룰로오스 3 mgCrystalline cellulose 3 mg

락토오스 14.8 mgLactose 14.8 mg

마그네슘 스테아레이트 0.2 mgMagnesium stearate 0.2 mg

통상의 캡슐제 제조방법에 따라 상기의 성분을 혼합하고 젤라틴 캡슐에 충전하여 캡슐제를 제조한다.
The above components are mixed according to a conventional capsule preparation method and filled in gelatin capsules to prepare capsules.

4. 주사제의 제조4. Preparation of injections

금은화 발효물 10 ml10 ml of fermented silver

만니톨 180 mg180 mg mannitol

주사용 멸균 증류수 2974 mgSterile sterilized water for injection 2974 mg

Na2HPO42H2O 26 mgNa 2 HPO 4 2H 2 O 26 mg

통상의 주사제의 제조방법에 따라 1 앰플당 (2 ml) 상기의 성분 함량으로 제조한다.
(2 ml) per 1 ampoule in accordance with the usual injection preparation method.

5. 액제의 제조5. Manufacture of liquids

금은화 발효물 20 ml Fermented gangrenous 20 ml

이성화당 10 g10 g per isomer

만니톨 5 g5 g mannitol

정제수 적량Purified water quantity

통상의 액제의 제조방법에 따라 정제수에 각각의 성분을 가하여 용해시키고 레몬향을 적량 가한 다음 상기의 성분을 혼합한 다음 정제수를 가하여 전체를 정제수를 가하여 전체 100 ml로 조절한 후 갈색병에 충진하여 멸균시켜 액제를 제조한다.
Each component was added and dissolved in purified water according to the usual liquid preparation method, and the lemon flavor was added in an appropriate amount. Then, the above components were mixed, and purified water was added thereto. The whole was added with purified water to adjust the total volume to 100 ml, And sterilized to prepare a liquid preparation.

[제제예 2. 식품 제제의 제조][Formulation example 2. Preparation of food preparation]

1. 건강식품의 제조1. Manufacture of health food

금은화 발효물 100 ml100 ml fermented gold silver

비타민 혼합물 적량Vitamin mixture quantity

비타민 A 아세테이트 70 g 70 g of vitamin A acetate

비타민 E 1.0 mgVitamin E 1.0 mg

비타민 B1 0.13 mgVitamin B1 0.13 mg

비타민 B2 0.15 mg0.15 mg of vitamin B2

비타민 B6 0.5 mgVitamin B6 0.5 mg

비타민 B12 0.2 g 0.2 g of vitamin B12

비타민 C 10 mgVitamin C 10 mg

비오틴 10 g Biotin 10 g

니코틴산아미드 1.7 mgNicotinic acid amide 1.7 mg

엽산 50 g Folate 50 g

판토텐산 칼슘 0.5 mgCalcium pantothenate 0.5 mg

무기질 혼합물 적량Mineral mixture quantity

황산제1철 1.75 mg1.75 mg of ferrous sulfate

산화아연 0.82 mg0.82 mg of zinc oxide

탄산마그네슘 25.3 mgMagnesium carbonate 25.3 mg

제1인산칼륨 15 mgPotassium monophosphate 15 mg

제2인산칼슘 55 mgSecondary calcium phosphate 55 mg

구연산칼륨 90 mgPotassium citrate 90 mg

탄산칼슘 100 mgCalcium carbonate 100 mg

염화마그네슘 24.8 mg
Magnesium chloride 24.8 mg

상기의 비타민 및 미네랄 혼합물의 조성비는 비교적 건강식품에 적합한 성분을 바람직한 실시예로 혼합 조성하였지만, 그 배합비를 임의로 변형 실시하여도 무방하며, 통상의 건강식품 제조방법에 따라 상기의 성분을 혼합한 다음, 과립을 제조하고, 통상의 방법에 따라 건강식품 조성물 제조에 사용할 수 있다.
Although the composition ratio of the above-mentioned vitamin and mineral mixture is comparatively mixed with a composition suitable for health food as a preferred embodiment, the compounding ratio may be arbitrarily modified, and the above ingredients are mixed according to a conventional method for producing healthy foods , Granules can be prepared and used in the manufacture of health food compositions according to conventional methods.

2. 건강음료의 제조2. Manufacture of health drinks

금은화 발효물 100 ml100 ml fermented gold silver

비타민 C 15 gVitamin C 15 g

비타민 E(분말) 100 gVitamin E (powder) 100 g

젖산철 19.75 g19.75 g of ferrous lactate

산화아연 3.5 g3.5 g of zinc oxide

니코틴산아미드 3.5 gNicotinic acid amide 3.5 g

비타민 A 0.2 gVitamin A 0.2 g

비타민 B1 0.25 gVitamin B1 0.25 g

비타민 B2 0.3gVitamin B2 0.3g

물 정량
Water quantification

통상의 건강음료 제조방법에 따라 상기의 성분을 혼합한 다음, 약 1시간 동안 85℃에서 교반 가열한 후, 만들어진 용액을 여과하여 멸균된 2 l 용기에 취득하여 밀봉 멸균한 뒤 냉장 보관한 다음 본 발명의 건강음료 조성물 제조에 사용한다.The above components were mixed according to a conventional health drink manufacturing method, and the mixture was stirred and heated at 85 DEG C for about 1 hour. The solution thus prepared was filtered and sterilized in a sterilized 2 liter container, It is used in the production of the health beverage composition of the invention.

상기 조성비는 비교적 기호음료에 적합한 성분을 바람직한 실시예로 혼합 조성하였지만 수요계층이나, 수요국가, 사용용도 등 지역적, 민족적 기호도에 따라서 그 배합비를 임의로 변형 실시하여도 무방하다.Although the compositional ratio is relatively mixed with a component suitable for a favorite drink, it is also possible to arbitrarily modify the compounding ratio according to the regional or national preference such as the demand class, the demanding country, and the use purpose.

Claims (10)

금은화 발효물(Lonicerae Flos fermentation)을 유효성분으로 함유하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
A pharmaceutical composition for the prevention or treatment of obesity, endotoxemia or metabolic diseases, which comprises fermented ginseng (Lonicerae Flos fermentation) as an active ingredient.
제 1항에 있어서, 상기 금은화 발효물은 금은화 열수추출물을 락토바실러스(Lactobacillus)속 균주로 발효시켜 얻은 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
The pharmaceutical composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases according to claim 1, wherein the germinated fermented product is obtained by fermenting Ganoderma lucidum hydrothermal extract with a strain of Lactobacillus sp.
제 2항에 있어서, 상기 락토바실러스속 균주는 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum)인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
The pharmaceutical composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases according to claim 2, wherein the Lactobacillus sp. Strain is Lactobacillus plantarum.
제 1항에 있어서, 상기 비만은 단순 비만, 증후성 비만, 소아비만, 성인비만, 세포 증식형 비만, 세포 비대형 비만, 상체 비만, 하체 비만, 내장지방형 비만 및 피하지방형 비만으로 이루어진 군으로부터 선택된 1종 이상의 비만인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
The method of claim 1, wherein the obesity is selected from the group consisting of simple obesity, symptomatic obesity, childhood obesity, adult obesity, cell proliferative obesity, cell non-large obesity, upper body obesity, lower body obesity, visceral fat obesity and subcutaneous fat obesity A pharmaceutical composition for preventing or treating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, characterized in that it is at least one kind of obesity.
제 1항에 있어서, 상기 대사성 질환은 대사성비만, 대사성고지혈증, 대사성당뇨병, 대사성이상지질혈증, 대사성동맥경화 및 대사성고혈압으로 이루어진 군으로부터 선택된 1종 이상의 대사성 질환인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
The method according to claim 1, wherein the metabolic disease is one or more metabolic diseases selected from the group consisting of metabolic obesity, metabolic hyperlipidemia, metabolic diabetes, metabolic dyslipidemia, metabolic arteriosclerosis and metabolic hypertension. A pharmaceutical composition for the prevention or treatment of a disease or metabolic disease.
금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.
A food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxinemia or metabolic diseases, which comprises fermented gingkoferment as an active ingredient.
제 6항에 있어서, 상기 금은화 발효물은 금은화 열수추출물을 락토바실러스(Lactobacillus)속 균주로 발효시켜 얻은 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.
The food composition for preventing or improving obesity, endotoxemia or metabolic diseases according to claim 6, wherein the germinated fermented product is obtained by fermenting Ganoderma lucidum hot-water extract with a strain of Lactobacillus.
제 7항에 있어서, 상기 락토바실러스속 균주는 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum)인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.
8. The food composition according to claim 7, wherein the Lactobacillus sp. Strain is Lactobacillus plantarum. 7. A food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxemia or metabolic diseases.
제 6항에 있어서, 상기 비만은 단순 비만, 증후성 비만, 소아비만, 성인비만, 세포 증식형 비만, 세포 비대형 비만, 상체 비만, 하체 비만, 내장지방형 비만 및 피하지방형 비만으로 이루어진 군으로부터 선택된 1종 이상의 비만인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.
7. The method of claim 6, wherein the obesity is selected from the group consisting of simple obesity, symptomatic obesity, childhood obesity, adult obesity, cell proliferative obesity, cell non-large obesity, upper body obesity, lower body obesity, visceral fat obesity and subcutaneous fat obesity A food composition for preventing or ameliorating obesity, endotoxemia or metabolic diseases, characterized in that it is at least one kind of obesity.
제 6항에 있어서, 상기 대사성 질환은 대사성비만, 대사성고지혈증, 대사성당뇨병, 대사성이상지질혈증, 대사성동맥경화 및 대사성고혈압으로 이루어진 군으로부터 선택된 1종 이상의 대사성 질환인 것을 특징으로 하는, 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 개선용 식품 조성물.The method of claim 6, wherein the metabolic disease is one or more metabolic diseases selected from the group consisting of metabolic obesity, metabolic hyperlipidemia, metabolic diabetes mellitus, metabolic dyslipidemia, metabolic arteriosclerosis and metabolic hypertension. A food composition for preventing or ameliorating a disease or metabolic disease.
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WO2023239222A1 (en) * 2022-06-10 2023-12-14 (주)보인바이오컨버젼스 Composition for body fat reduction containing extracts of taraxacum platycarpum and lonicerae japonica as active ingredients

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